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면역 세포의 표현형 및 기능적 특성화를 위한 바코드 분석

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

출처: Baxter, R. M., et al. 질량 세포 분석을 통한 말초 전혈의 면역 표현형 및 사이토카인 생산의 단일 세포 분석. J. Vis. 특급 (2018).

이 동영상은 별개의 세포 바코드를 위해 중금속 접합 항체를 사용하는 단일 세포 단백질체학 방법을 강조합니다. 그 후, 면역염색 및 질량 세포 분석법(mass cytometry)을 적용하여 인간 전혈 유래 면역 세포의 면역 표현형 및 기능적 변화를 평가합니다.

Protocol

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. 용해/고정 혈액 세포의 바코드

  1. -80 °C 저장소에서 용해/고정 세포 샘플을 얼음 위에서 천천히 해동하십시오. 최대 20개의 샘플에 고유한 바코드를 표시하고 이 시스템을 사용하여 풀링할 수 있습니다. PBS로 10X 바코드 펌 버퍼를 1:10으로 희석합니다. 샘플당 ~3mL를 위한 충분한 버퍼를 만드십시오.
  2. 비멸균 트러프 하나는 CSM으로, 다른 하나는 1X 바코드 펌 버퍼로 채웁니다. 갓 해동한 샘플에 얼음처럼 차가운 CSM 1mL를 첨가하고 피펫으로 완전히 혼합한 다음 사전 라벨링된 각각의 폴리프로필렌 클러스터 튜브로 옮깁니다.
  3. 10μL 샘플을 채취하여 자동 세포 계수기 또는 혈구계를 사용하여 세포를 계수합니다. 각 클러스터 튜브에서 세포 수를 샘플당 1.5–2 x 106 세포로 정규화: 2 x 106 세포 이상의 과도한 세포 부피를 제거하고 폐기합니다.
  4. 실온에서 600 x g에서 5분 동안 셀을 원심분리합니다. 멀티채널 피펫과 원심분리기를 사용하여 1mL의 1X 바코드 펌 버퍼에 실온에서 5분 동안 600 x g의 세포를 재현탁합니다. 상층액을 흡입하십시오.
  5. 바코드 키에 표시된 것과 동일한 순서로 클러스터 튜브를 랙에 정렬하여 샘플이 바코드와 일치하도록 합니다. 세포 손실을 줄이기 위해 피펫 팁(혼합 없음)으로 세포 펠릿을 건드리지 않고 클러스터 튜브의 모든 샘플에 멀티채널 피펫으로 800 μL 1X 바코드 펌 버퍼를 추가합니다. 클러스터 튜브가 있는 랙을 따로 보관하십시오.
  6. -20°C에서 20-plex Pd 바코드 키트 튜브 스트립을 제거하고 실온에서 해동합니다. 100μL의 1X 바코드 펌 버퍼를 추가하고, 철저히 혼합한 다음, 120μL의 재현탁 바코드 혼합물을 클러스터 튜브의 해당 세포 샘플로 옮깁니다.
  7. 멀티채널 피펫으로 철저히 혼합하여 개별적으로 바코드화된 시료 사이에 교차 오염이 발생하지 않도록 합니다. 바코드가 세포에 라벨을 붙일 수 있도록 실온에서 30분 동안 클러스터 튜브를 배양합니다.
  8. 실온에서 600 x g에서 5분 동안 원심분리기. 상층액을 흡입한 다음 CSM 1mL에 재현탁합니다.
  9. CSM에서 원심분리기 및 다시 부유합니다.
    메모: 이제 각 샘플에는 고유한 바코드가 부착되어 있으며 샘플을 통합할 준비가 되었습니다.
  10. 실온에서 600 x g에서 5분 동안 원심분리기를 하고 상층액을 흡입합니다. 단일 피펫과 동일한 팁을 사용하여 ~70–80 μL 잔류 부피의 모든 세포 펠릿을 하나의 폴리스티렌 튜브로 옮깁니다. 피펫 팁을 배출하지 마십시오. 이 팁으로 단일 피펫을 따로 보관하십시오.
  11. 멀티채널 피펫과 새로운 팁을 사용하여 각 기존 클러스터 튜브에 ~100 μL CSM을 추가하여 세포 회수를 극대화할 수 있습니다. 팁이 있는 단일 피펫을 사용하여 ~100μL 잔류 부피의 모든 세포 펠릿을 동일한 폴리스티렌 튜브로 옮깁니다.
  12. CSM을 추가하여 폴리스티렌 튜브(~3mL)를 마무리합니다. 풀링된 바코드 세트의 셀 번호를 세고 기록합니다. 실온에서 600 x g에서 5분 동안 원심분리기를 하고 상층액을 흡입합니다. 같은 날에 바코드가 있는 샘플의 염색을 진행하십시오.
    참고: 바코드 프로세스에서 ~20–30%의 셀 손실이 예상되는 것은 정상입니다.

2. 바코드 용해/고정 혈액 세포의 염색 및 질량 세포 분석 기기 분석 준비

참고: 염색 항체의 각 1X 역가(100μL 염색 반응당 항체 1μL)는 일반적으로 3-4 x 106 세포를 염색할 수 있습니다. 따라서 바코드가 찍힌 모든 시료를 하나의 튜브에 모을 때 항체의 양을 확장해야 합니다. 20개의 바코드 샘플이 30 x 106 셀에 해당하고 각 1X titer가 3–4 x 106 셀을 염색할 수 있는 경우, 바코드 샘플에는 각 샘플을 개별적으로 염색하는 것과 달리 10X titer만 필요하며, 이를 위해서는 20배의 항체(개별 튜브당 1X)가 필요합니다. 세포 수에 대한 항체의 농도는 각 개별 항체 칵테일에 대해 신중하게 적정해야 합니다(여기서는 논의되지 않음).

  1. 표면 염색 및 사이토카인 유도를 위한 항체(Table of Materials)를 사용하여 세포를 염색합니다.
    1. 첨가할 양을 계산하고 파이펫팅 오류를 고려하여 표면 염색 칵테일을 만듭니다(, 각 샘플에서 2 x 106 셀의 바코드 샘플 20개를 염색하는 경우 10X titer 염색이 필요합니다. 최종 부피 계산을 위해 10.5X 최종 염색 용액을 만들어 파이펫팅 오류를 보상
    2. ).
    3. 바코드가 부착된 세포 펠릿에 10배 상당의 표면 염색 부피를 추가합니다. 세포 손실을 줄이려면 동일한 팁으로 표면 염색과 세포 펠릿의 부피를 혼합하고 측정합니다.
    4. 세포의 부피와 염색 칵테일에 따라 세포 샘플 수당 50μL의 최종 염색 부피에 CSM을 추가합니다(, 20개의 샘플 세트를 실행하는 경우 50μL X 20 = 1mL). 4 °C에서 30분 동안 배양합니다. 균일한 염색을 촉진하기 위해 15분마다 샘플을 교반합니다.
    5. 표면 염색 배양 중 여과된 ddH2O로 1:10을 희석하여 Perm/Wash 완충액(Table of Materials)을 준비합니다. 투과화를 위해 2mL, 세척을 위해 5mL를 준비합니다. 4 °C 또는 얼음 위에 보관하십시오.
    6. CSM으로 표면 염색 튜브를 마무리하고 600 x g에서 4°C에서 5분 동안 원심분리합니다. 상층액을 흡입합니다. 바코드가 있는 샘플을 2mL의 4°C, 1:10 희석 Perm/Wash 버퍼에 재현탁합니다. 세포가 완전히 투과될 때까지 4°C에서 20-30분 동안 배양합니다.
    7. 600 x g에서 4°C에서 5분 동안 원심분리기를 하고 상층액을 흡입합니다.
    8. 세포 내 염색의 경우 유사한 염색 단계를 따릅니다(표면 염색과 마찬가지로). 그러나 CSM 대신 4 °C, 1:10 희석 Perm/Wash 완충액을 사용하여 총 염색량을 측정하여 세포 내 염색 전반에 걸쳐 세포가 투과성 환경에 유지되도록 합니다.
    9. 염색 및 투과화된 세포 펠릿 표면에 세포 내 항체 칵테일을 추가합니다(단계 2.1.2–2.1.7). 총 염색량을 세포 샘플 수당 50 μL로 가져옵니다. 4 °C에서 60분 동안 배양합니다. 균일한 염색을 위해 15분마다 샘플을 교반합니다.
    10. 세포 내 염색 중에 인터컬레이터 용액을 준비합니다: 여과된 PBS 900μL + 여과된 16% PFA 100μL(최종 농도 1.6% PFA) + 500uM 인터칼레이터 염료 0.2μL(재료 표).
    11. 세포 펠릿 + 세포 내 항체 칵테일을 차가운 1:10 Perm/Wash 버퍼로 마무리합니다.
    12. 600 x g에서 4°C에서 5분 동안 원심분리기를 하고 상층액을 흡입합니다. 염색 튜브를 CSM으로 마무리합니다. 셀 번호를 세고 기록합니다. 600 x g에서 4°C에서 5분 동안 원심분리기를 하고 상층액을 흡입합니다. 단계 4.9의 인터칼레이터 용액 1mL에 세포를 재현탁합니다. 전체 삽입을 위해 실온에서 최소 20분 동안 배양하거나 4°C에서 하룻밤 동안 배양합니다(삽입기 용액의 샘플은 질량 세포 분석 기기에서 실행하기 전에 최대 1주일 동안 4°C를 유지할 수 있음).
  2. 질량 세포 분석 기기를 위한 세포를 준비합니다.
    1. 여과된 ddH2O 3mL로 튜브를 덮고 4°C에서 5분 동안 600 x g에서 원심분리합니다. 여과된 ddH2O 3mL에 세포를 재현탁합니다. 이 현탁액을 100μm 필터에 통과시켜 질량 세포 분석 기기를 막을 수 있는 파편이나 응집체를 제거합니다.
    2. 여과 후 세포 수를 세고 기록합니다. 600 x g에서 4°C에서 5분간 원심분리기
  3. 검량 비드 용액(Table of Materials)을 여과된 ddH2O에 1:10으로 희석하여 준비합니다.
  4. 염색된 세포를 필요한 부피의 1:10 희석된 검량식 비드 용액에 재현탁시켜 ~1 x 106 cells.
    의 세포 농도를 달성합니다. 메모: 45 μL/min에서 CyTOF1의 경우 권장되는 최적점은 5 x 105 cells/mL입니다. Helios의 경우 30μL/분, 7.5 x 105셀/mL.
  5. 질량 세포 분석 기기에서 샘플을 실행합니다.

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Disclosures

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
선언된 이해 상충이 없습니다.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
룩소리티닙산타 크루즈사우스 캐롤라이나-364729A재고 Conc : 10 mM; 최종 농도 : 5 μM
R848인비보젠TLRL-R848-5재고 계수: 1 μg/μL; 최종 농도 : 1 μg / mL
LPS-EK인비보젠TLRL-EKLPS재고 계수: 1 μg/μL; 최종 농도 : 0.1 μg / mL
멸균 PBS론자17-516층
Lyse/Fix 버퍼BD 생명과학558049주식 콩그레스: 5X; 최종 Conc : 1X (ddH2O에 희석)
BD Phosflow 펌/워시 버퍼 IBD 생명과학557885주식 콘크: 10배; 최종 Conc: 1:10 (ddH2O에 희석)
RPMI지브코21870-076
아지드화나트륨(NaN3)시그마-알드리치S-8032주식 conc:>99.9%; 최종 계수: 0.0002
단백질 수송 억제제(PTI)e바이오사이언스전화: 00-4980-93주식 콘크리트: 500X; 파이널 콘크리트: 1X
DNA 인터컬레이터플루이다임201192ᄂ증권 Conc: 500 μM; 최종 농도 : 0.1 μM
MaxPar 바코드 펌 버퍼플루이다임201057주식 콘크: 10배; 파이널 콘크리트: 1X
20-plex Pd 바코드 세트플루이다임S0014주식 Conc: n/a; 최종 Conc: 해당 없음
질량 세포 분석에 사용되는 항체
표면 마커
CD1c바이오레전드L161질량 : 161
CD3BD (영어)우흐트1질량 : 144
CD4바이오레전드SK3질량 : 174
CD7 (영어BD (영어)M-T701질량 : 149
CD8바이오레전드SK1질량: 142
CD11b플루이다임ICRF44질량 : 209
CD11cBD (영어)비-리6질량 : 152
CD15BD (영어)하이98질량 : 115
CD14바이오레전드M5E2질량 : 154
CD16eBioscience/써모나73.1질량: 165
CD19산타 크루즈SJ25C1질량 : 163
CD21바이오레전드부32질량 : 141
CD27BD (영어)L128질량 : 155
CD38플루이다임히트2질량 : 172
CD45 합계바이오레전드하이30질량 : 89
CD45RA바이오레전드하이100질량 : 153
CD56밀테니REA196질량 : 168
CD66BD (영어)B1.1/CD66질량: 113
CD86플루이다임IT2.2질량 : 150
CD123플루이다임6시간 6질량: 143
CD278/아이코스바이오레전드씨398.4ᅡ질량 : 156
CD179/PD1바이오레전드EH12.2H7질량 : 162
IgD (영어)바이오레전드IA6-2질량 : 146
이그엠바이오레전드MHM-88질량 : 151
CXCR5BD (영어)RF8B2질량 : 173
흘라드르바이오레전드L243질량 : 167
사이토카인
IL-1α바이오레전드364-3B3-14질량 : 147
IL-1β바이오레전드H1B-98질량 : 169
IL-1RA산타 크루즈AS17 (영문질량 : 157
일리노이 -6바이오레전드MQ2-13A5질량 : 164
일리노이 -8BD (영어)E8N1질량 : 160
IL-12/IL-23P40바이오레전드C8.6질량 : 171
IL-17A바이오레전드BL168질량 : 148
IL23p19eBioscience/써모23DCDP질량 : 176
밉1βBD (영어)D21-1351질량 : 158
MCP1BD (영어)5D3-F7질량: 170
IFNα밀테니실27:295질량 : 175
IFNγ바이오레전드4S.B3질량: 165
PTENBD (영어)A2B1질량 : 159
티엔에프α바이오레전드마브11질량 : 166
참고: 제조업체가 Fluidigm으로 명시된 경우 이 항체는 금속이 사전 접합된 상태로 Fluidigm에서 구입했습니다. 제조업체가 Fluidigm 이외의 것으로 명시되어 있는 경우, 이 항체는 제조업체 프로토콜에 따라 MaxPar Multi-Metal Labeling Kit(Fluidigm Cat: 201300)를 사용하여 자가 접합되었습니다.
시리즈 년 년 ) 시리즈 분 ) 년 시리즈

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