1. BV-2 미세아교세포 배양
참고: Biosafety Level 2 격납 하에서 BV-2 세포를 처리합니다. BV-2 세포주는 외피를 가진 재조합 친환경성 레트로바이러스(쥐 세포만 감염시킬 수 있음)를 생성합니다. 이러한 바이러스는 체외 형질전환 능력과 생체 내 종양 발생 가능성으로 알려져 있습니다.
- 10% 소 태아 혈청(FBS), 100 U/mL 페니실린, 100 μg/mL 스트렙토마이신 및 2 mM L-글루타민(지금부터 배양 배지라고 함)이 보충된 고포도당 Dulbecco의 변형 독수리 배지(DMEM)에서 BV-2 세포를 4 x 104 cells/mL로 시딩하여 배양합니다.
- 37 ° C에서 5 % CO2 의 가습 된 분위기에서 배양을 유지하십시오 .
참고: 세포는 느슨하게 부착되어 현탁 상태로 자랍니다.
2. pH에 민감한 형광 염료를 사용한 라벨 재조합 타우 응집체
참고: 타우 응집체는 Apetri et al.에 기술된 대로 준비되었습니다.반응 완충액에 티오플라빈 T(ThT)가 첨가되지 않았다는 차이점이 있습니다. 응집된 샘플은 1.5mL 원심분리 튜브에 수집되었습니다. 최종 형광 신호는 118 μL의 풀 샘플과 12 μL의 50 μM ThT 용액을 혼합하여 검사하였다. 응집체 반응 혼합물을 20,000 x g에서 4°C에서 1시간 동안 원심분리하여 응집체를 분리했습니다. SEC-MALS로 상층액을 분석하여 모든 단량체 타우가 응집체로 전환되었음을 확인했습니다. 펠릿(타우 응집체)을 스냅 프로어링하여 -80°C의 냉동고에 보관했습니다.
- pH 8.5에서 0.1M 중탄산나트륨 완충액(NaHCO3)의 타우 응집체를 1mg/mL(~ 20μM)의 농도로 재현탁합니다.<브롬/>
메모: 타우 응집체의 농도는 0.31 mLmg-1 cm-1의 흡광 계수를 사용하여 280 nm에서 타우 단량체의 흡수에 의해 평가된 초기 단량체 농도를 기반으로 합니다.
- 과열을 방지하기 위해 얼음 위에 보관하면서 프로브 초음파 처리기를 사용하여 재현탁 응집체를 초음파 처리합니다.
- 65 %의 진폭을 사용하십시오 (250W의 초음파 발생기 사용).
- 과열을 방지하기 위해 펄스 사이에 8초의 일시 중지와 함께 3초의 15회 펄스를 수행합니다.
- 제조업체의 지시에 따라 디메틸 설폭사이드(DMSO)에 pH에 민감한 염료(이하 pH 염료라고 함)의 8.9mM 원액을 준비합니다.
메모: 항상 새 용액을 준비하고 준비된 날에만 사용하십시오.
- 단백질 몰당 10몰의 염료를 0.2mM의 최종 염료 농도에 추가합니다.
- 위아래로 부드럽게 피펫팅하여 혼합합니다.
- 반응 혼합물을 빛으로부터 보호된 실온에서 45-60분 동안 배양합니다.
- 그 동안, 제조업체의 지침에 따라 가교 결합된 dextran gel 탈염 컬럼을 조립하십시오.
- 3% DMSO를 포함하는 25mL의 0.1M NaHCO3 완충액 pH 8.5로 컬럼을 평형화합니다. 플로우 스루를 버립니다.
- 타우 응집체 라벨링 반응의 생성물을 총 부피 2.5mL의 컬럼에 추가합니다. 샘플이 2.5mL 미만인 경우 총 부피가 2.5mL가 될 때까지 버퍼를 추가합니다.
- 샘플이 포장 된 젤에 완전히 들어가도록하고 플로우 스루를 버리십시오.
- 3.5mL의 0.1M NaHCO3 완충액, pH 8.5, 3% DMSO로 용리하고 2mL 튜브에서 4개의 등가 분획으로 용리액을 수집합니다.
- bicinchoninic acid (BCA) assay로 4개 분획의 단백질 농도를 측정합니다.
- 라벨이 부착된 단백질을 -20°C 냉동고에 보관하십시오.
3. FACS(Fluorescence-activated Cell Sorting) 판독을 통한 흡수 분석
- 1일차 – 세포 씨 뿌리기
- 배양 배지를 제거하고 1x 인산염 완충 식염수(PBS)를 첨가하여 플라스크에서 BV-2 세포를 세척합니다.
메모: 세척량은 사용된 세포 플라스크의 크기에 따라 다릅니다. 예를 들어, T175 플라스크의 경우 10mL의 1x PBS로 세척합니다.
- 플라스크에서 PBS를 제거하고 세포가 플라스크에서 분리될 때까지 37°C에서 0.05% 트립신-에틸렌디아민테트라아세트산(EDTA) 및 5% CO2로 배양하여 세포를 분리합니다(약 5분).
메모: 트립신-EDTA 0.05%의 부피는 사용된 세포 플라스크의 크기에 따라 다릅니다. 예를 들어, T175 플라스크의 경우 트립신-EDTA 0.05% 2mL를 사용합니다.
- 배양 배지에서 3-5회 위아래로 피펫팅하여 세포를 재현탁합니다.
참고: 배양 배지의 부피는 사용된 세포 플라스크의 크기와 플라스크에 있는 총 세포 수에 따라 달라집니다. 예를 들어, T175 플라스크의 경우 8mL의 배양 배지를 사용합니다.
- 세포를 계수하고 200 μg/mL 헤파린을 함유한 배양 배지에서 1 x 105 cells/mL의 최종 농도로 세포 현탁액을 생성합니다.
- 플레이트: 96웰 조직 배양 평면 바닥 플레이트에서 웰당 250μL의 세포 현탁액(2.5 x 10,4개 세포).
- 37 ° C 및 5 % CO2에서 밤새 플레이트를 배양합니다.
- 1일차 – 면역복합체 준비
- 얼음 위에서 pH 염료 타우를 해동합니다.
- 무혈청 배지(SFM)에서 pH 염료-타우 응집체의 500nM 용액 조건당 65μl를 준비합니다(100U/mL 페니실린, 100μg/mL 스트렙토마이신 및 200μg/mL의 헤파린이 보충된 고포도당 DMEM).
- 65μl의 SFM에서 최종의 두 배 농도로 항체 희석액을 준비합니다. pH 염료-타우 응집체와 항체를 96웰 u-바닥 플레이트에 혼합합니다. 조건별 최종 부피는 이제 130 μl이고 pH 염료-타우 응집체 농도는 250 nM입니다. 희석 플레이트를 밀봉하고 37 °C에서 밤새 배양합니다.
- 2일차 – 면역복합체 흡수
- BV-2 세포에서 배양 배지를 제거합니다. 100μL 실온 1x PBS로 셀을 한 번 세척합니다.
- 멀티채널 피펫을 사용하여 125 μL의 면역복합체를 세포로 전달합니다. 37°C 및 5% CO2에서 2시간 동안 면역복합체가 있는 세포를 배양합니다.
- 세포에서 배양 배지를 제거하고 폐기합니다. 100μL 실온 1x PBS로 셀을 한 번 세척합니다.
- 1x PBS를 제거하고 37°C 및 5% CO2에서 20분 동안 50μL 트립신-EDTA 0.25%로 세포를 처리합니다.
- 200 μL의 배양 배지를 추가하고 위아래로 피펫팅하여 세포를 분리하여 잘 재현탁합니다. 세포를 96웰 U-바닥 플레이트로 이동합니다. 400 x g의 원심분리기 플레이트, 4°C에서 5분 동안 보관.
- 플레이트를 얼음 위에 놓고 배양 배지를 제거한 다음 세포 펠릿을 150μL의 얼음처럼 차가운 1x PBS에 재현탁하여 세포를 두 번 세척합니다. 400 x g의 원심분리기 플레이트, 4°C에서 5분 동안 보관.
- 세포를 얼음 위에 올려 놓고 첨가된 1x PBS를 제거한 후 150μL 저온 FACS 완충액(1x PBS, 0.5% 소 혈청 알부민(BSA), 2mM EDTA)에 세포 펠릿을 재현탁하여 세척합니다. 400 x g의 원심분리기 플레이트, 4°C에서 5분 동안 보관.
- 세포를 얼음 위에 놓고 추가된 FACS 완충액을 제거한 다음 200μL 차가운 FACS 완충액에 세포를 재현탁합니다.
- FACS가 라이브 셀 게이트에서 2 x 104 이벤트를 획득하여 즉시 샘플을 분석합니다(4.1단계 참조).