동물 모델과 관련된 모든 절차는 지역 기관 동물 관리 위원회와 JoVE 수의학 검토 위원회에서 검토되었습니다.
1. 조직 준비
- 관류 전날 0.1M 인산염 완충액 pH 7.4에 4% 포름알데히드를 준비합니다. 4 °C에서 보관하십시오.
- 좌심을 통해 심부 마취된 마우스(3.5% 이소플루란)를 10ml 얼음처럼 차가운 인산염 완충 식염수(PBS)로 경심 관류한 다음 40ml 얼음처럼 차가운 포름알데히드(유속 5ml/분)를 투여합니다. 뇌를 해부하고 동일한 정착액에 4°C에서 24시간 동안 후수정(post-fix)합니다.
- 뇌를 연속적으로 10%(4°C에서 24시간)와 30% 자당(뇌가 가라앉을 때까지, 약 48시간)으로 전환합니다. 동결을 위해 조직에서 거품이 나오지 않을 때까지 냉동 보호된 뇌를 -25°C 이소펜탄에 천천히 담그십시오. -80 °C에서 보관하십시오.
- 얼어붙은 마이크로톰에서 40μm 두께의 코로나 절편을 절단합니다(-25 - -16 °C에서 블록 온도). 24웰 세포 배양 플레이트의 웰이 들어 있는 부동액 용액으로 절편을 순차적으로 옮깁니다(그림 1 참조). -20 °C에서 보관하십시오.
2. 면역 염색
참고: 단면은 일반적으로 캐리어 플레이트와 메쉬 인서트가 장착된 6웰 플레이트에서 자유롭게 부동하여 처리됩니다. 예외적으로, 차단, 항체 배양 및 아비딘-비오틴 복합체(ABC) 반응은 메쉬 인서트 없이 12웰 또는 24웰 플레이트에서 수행됩니다(염색해야 하는 슬라이스 수에 따라 웰당 0.5-1ml면 충분함). 이 단계에서 미세한 브러시를 사용하여 섹션을 옮깁니다(각각의 새 용액으로 헹굽니다). 모든 배양은 지속적인 교반(최대 150rpm)으로 수행됩니다.
- 면역조직화학(ABC 방법)
- 부동액의 절편을 트리스 완충 식염수(TBS)로 옮기고 철저히 헹굽니다(4°C에서 O/N에 한 번, 실온[RT]에서 각각 10분씩 5회).
- 내인성 과산화효소 활성을 억제하기 위해 TBS-Tween 20(TBS-T)에서 1.5% H2O2에서 30분 동안 배양합니다. 필요한 경우 버블링 및 다시 잠기는 섹션에 주의하십시오. TBS에서 각각 3분씩 15회 헹굽니다.
- 선택 사항: 한편, 가열 캐비닛과 2N HCl을 37°C로 예열합니다. DNA를 변성시키려면, 2 N HCl에서 37 °C에서 30분 동안 절편을 배양합니다. 브러시를 사용하여 절편을 부드럽게 분리합니다.
- 선택 사항: 0.1M 붕산염 완충액 pH 8.5, RT에서 10분 동안 섹션을 중화합니다. 옮기는 동안 종이 타월에 섹션이 포함된 메쉬 삽입물을 짧게 닦아 HCl 찌꺼기를 제거합니다. TBS에서 각각 2분 동안 15회 헹굽니다.
- TBSplus에서 배양하여 조직을 투과화하고 RT에서 1시간 동안 비특이적 항체 결합 부위를 차단합니다.
- TBSplus에 희석된 1차 항체, O/N을 4°C에서 배양합니다. TBS에서 각각 15분씩 3회 헹굽니다.
- TBSplus에 희석된 비오틴화된 2차 항체를 RT에서 3시간 동안 배양합니다.TBS에서 각각 15분씩 3회 헹굽니다. 그동안...
- 제조업체의 프로토콜(TBS-T에서 1% A + 1% B)에 따라 ABC 복합체를 준비합니다. 사용하기 전에 RT에서 30분 동안 그대로 두십시오. RT에서 1시간 동안 AB 시약의 절편을 배양합니다. TBS에서 각각 15분 동안 3회 헹굽니다.
- 50웰 플레이트당 TBS-T에 0.5mg 또는 3,3'-Diaminobenzidine(DAB)을 6웰 또는 12웰 플레이트당 2ml로 나누어 각각 4ml 또는 2ml로 피펫팅합니다. 섹션을 DAB 솔루션으로 전송(주의! DAB는 독성이 있습니다. 공급업체가 제공하는 특정 MSDS를 따르십시오(예: 실험복과 장갑을 착용하고 화학 흄 후드를 사용).
- 나머지 25 ml DAB 용액에 0.5 ml 1%H2O2를 첨가하고, 위와 같이 등가 부피를 각 웰에 혼합하여 피펫 처리하여 과산화효소 반응을 시작한다. 12분 동안 배양합니다. TBS에서 각각 3분씩 15회 헹굽니다.
- 젤라틴과 공기 건조 O/N. 커버슬립에 영구 장착 매체가 있는 슬라이드에 섹션을 장착합니다.
- 선택 사항: 커버슬립을 배치하기 전에 대조 염색을 하십시오.
메모: 백그라운드가 높아 신호 대 잡음비가 낮은 경우 AB 시약으로 배양한 후H2O2 처리를 반복합니다(단계 2.1.8).
- 다중 면역형광
- 단일 또는 동시 다중 면역형광
- 부동액의 단면을 TBS로 옮기고 부동액을 완전히 제거하기 위해 철저히 헹굽니다(4°C에서 O/N에 한 번, RT에서 각각 10분 동안 5회).
- 선택 사항: 2.1.3 - 2.1.4 단계로.
- TBSplus에서 배양하여 조직을 투과화하고 불특이적 항체 결합 부위를 차단합니다(RT에서 1시간).
- TBSplus에 희석한 1차 항체 칵테일(예: 랫드 α-BrdU(브로모데옥시우리딘), 기니피그 α-DCX(더블코르틴), 염소 α-GFP(녹색 형광 단백질))를 4°C에서 O/N으로 배양합니다. TBS에서 각각 15분씩 3회 헹굽니다.
- TBSplus에 희석한 형광 색소 접합 2차 항체(예: Rhodamine Red α-rat, Alexa-647 α-guinea pig, Alexa-488 α-goat, 모두 당나귀에서 유래)를 실온에서 3시간 또는 4°C에서 O/N으로 배양합니다. 이제부터 빛으로부터 섹션을 보호하십시오. TBS에서 각각 3분씩 15회 헹굽니다.
- 젤라틴으로 슬라이드에 섹션을 장착하고 밤새 자연 건조합니다(O/N). 수성 장착 매체가 있는 커버슬립.
- 동일한 숙주 종의 1차 항체를 사용한 순차적 다중 면역형광
- 2.2.1.1 - 2.2.1.3 단계로.
- 첫 번째 기본 항체 (예 : 토끼 α-항원 A), 4 ° C에서 O / N을 배양합니다. TBS에서 3 회, TBS-T에서 각각 10 분 동안 한 번 헹굽니다.
- 첫 번째 형광 색소 접합 2 차 항체 (예 : Rhodamine Red-conj. 당나귀 α-토끼)에서 3 시간 RT로 배양합니다. 이제부터 빛으로부터 섹션을 보호하십시오. TBS에서 3회, TBS-T에서 각각 10분씩 헹굽니다.
- 1차 항체(예: 토끼 혈청)와 동일한 숙주에서 10% 정상 혈청을 3시간 RT 동안 배양하여 첫 번째 2차 항체의 열린 파라톱스를 포화시킵니다. TBS에서 3회, TBS-T에서 각각 10분씩 헹굽니다.
- 4°C에서 두 번째 2차 항체인 O/N으로 인식할 수 있는 항원결정인자를 커버하기 위해 1차 항체(예: α-rabbit IgG(H+L))의 숙주에 대한 50 μg/ml 비접합 1가 Fab 단편을 TBSplus에서 배양합니다.
- TBS에서 최소 3회, TBS-T에서 각각 10분 동안 한 번 헹굽니다. 전송하는 동안 종이 타월로 섹션이 포함된 메쉬 삽입물을 간단히 닦아 Fab 찌꺼기를 제거합니다.
- 두 번째 1 차 항체 (예 : 토끼 α-항원 B), 4 ° C에서 O / N을 배양합니다. TBS에서 3 회, TBS-T에서 각각 10 분 동안 한 번 헹굽니다.
- 두 번째 형광 접합 2 차 항체 (예 : Alexa-488-conj. 당나귀 α-토끼)에서 3 시간 RT로 배양합니다. TBS에서 각각 15 분 동안 3 번 헹구고 위와 같이 마운트 및 커버 슬립합니다 .
메모: 항원을 다른 숙주 종의 항체로 라벨링하려면 2.2.2.2 단계에 항원을 추가하고 2.2.2.3 단계에 해당 2 차 항체를 추가합니다.