검체 채취와 관련된 모든 절차는 연구소의 IRB 지침에 따라 수행되었습니다.
1. 글리코칩 생산
- 마이크로어레이 준비
- 비접촉 로봇 어레이어(방울 부피 ~900 pL)를 사용하여 300 mM 인산염 완충 식염수(PBS, pH 8.5)의 글라이칸(50 mM) 및 다당류(pH 8.5)를 N-하이드록시숙신이미드 유도체화된 유리 슬라이드에 6회 복제하여 인쇄합니다. 각 슬라이드에는 6번 반복되는 4개의 서로 다른 하위 어레이 블록(그림 1A, 색상)이 포함되어 있습니다. 모든 단일 서브 어레이는 대조군(8개 행 × 14개 열)을 포함하여 112개의 서로 다른 글라이칸 스폿으로 형성됩니다(그림 1B).
메모: 글리칸 관련 정보는 표 1에 나와 있습니다. 마이크로칩 인쇄에 사용되는 글라이칸 라이브러리는 IBCh 팀의 장기적인 합성 노력의 결과입니다. 합성의 예는 관련 출판물에 설명되어 있습니다. 글라이칸 라이브러리에는 혈액형 항원과 가장 빈번하게 발생하는 말단 올리고당뿐만 아니라 포유류의 N 및 O 결합 당단백질 및 당지질, 종양 관련 탄수화물 항원 및 병원성 박테리아의 다당류의 핵심 모티프가 포함되었습니다.
- 슬라이드를 수분 상자(상대 습도 ~70%)에 넣고 실온(25°C)에서 1시간 동안 배양합니다.
- 블로킹 마이크로어레이: 실온(100mM 붕산, 25mM 에탄올아민, 초순수 중 0.2%(v/v) Tween-20)에서 블로킹 버퍼를 사용하여 1.5시간 동안 슬라이드를 배양합니다.
- 글리코칩을 초순수로 씻고 공기로 건조시킵니다.
- Glycochip 품질 관리
- 복합 면역글로불린 제제(CIP, 면역글로불린 함유: IgG, IgM 및 IgA)의 1mg/mL 용액, 2차 항체(IgM + IgG + IgA)인 비오틴화된 염소 항인간 면역글로불린 10μg/mL 용액, 해당 형광 스트렙타비딘 접합체의 1μg/mL 용액(아래 설명된 프로토콜을 통해, 2단계 참조)을 사용하여 각 배치에서 두 개의 마이크로어레이를 분석합니다.
- 글리코칩을 스캔하고 분석합니다(3단계, 글라이칸 어레이 분석 참조).
- 칩 내부 및 칩 간 상관관계가 0.9보다 높은 마이크로어레이 배치를 사용합니다.
2. 글라이칸 어레이 기술
- 다음 수용액(초순수)을 준비하고 실온(25°C)에서 보관하십시오.
- 완충액-1: 인산염 완충 식염수(PBS) 내 1%(w/v) 소 혈청 알부민(BSA), 1%(v/v) Tween-20 및 0.01%(w/v) 아지드화나트륨(NaN3).
- 버퍼-2: PBS에서 1%(w/v) BSA, 0.1%(v/v) Tween-20 및 0.01%(w/v) NaN3.
- 버퍼-3: PBS에서 0.1%(v/v) Tween-20.
- 버퍼-4: PBS에서 0.001%(v/v) Tween-20.
- 글리코칩 및 시료 준비
- 슬라이드가 있는 보관 상자를 실온(25°C)에 도달할 때까지 테이블 위에 놓습니다.
메모: 가루가 없는 라텍스 장갑을 사용하십시오. 글리코칩은 바코드가 있는 유리 슬라이드의 하단 부분으로 조작해야 합니다. 바코드는 글라이칸이 인쇄되는 표면과의 접촉을 피하여 오른쪽을 식별하는 데 도움이 됩니다.
- 상자를 열고 글리코칩을 꺼내 챔버 내부의 습도를 일정하게 유지하기 위해 이미 젖은 여과지로 조절된 배양 챔버(25°C)에 넣습니다.
- 한편, Buffer-1 (1:20)이 함유된 마우스 혈청을 1.5 mL 튜브에 희석합니다. 세럼 용액(5초)을 와류 믹서로 균질화합니다.
메모: 단일 글리코칩 표면을 완전히 덮는 데 필요한 부피는 약 1mL입니다.
- 균질화 후, 면역글로불린 응집을 피하기 위해 37°C의 수조에서 10분 동안 희석된 혈청을 배양합니다. 10,000 x g 및 25 °C에서 3분 동안 튜브를 원심분리하고 상층액을 수집하고 침전된 물질을 버립니다.
- 글리코칩을 배양실에 조심스럽게 넣습니다. 글리코칩 표면의 잔류 물질을 제거하기 위해 1mL의 Buffer-3를 사용하여 25°C에서 15분 동안 배양합니다.
- 글리코칩을 수직으로 잡고 플라스틱 파스퇴르 피펫을 사용하여 Buffer-3 몇 방울로 다시 씻습니다. 여과지를 사용하여 글리코칩 표면에서 버퍼를 조심스럽게 제거합니다.
3. 반응 : 항체 결합
- 글리코칩을 배양실에 넣습니다. 희석된 혈청 샘플을 마이크로피펫을 사용하여 글리코칩 표면에 펴 바릅니다. 37°C에서 1.5시간 동안 궤도 교반(30rpm)으로 배양합니다. 글리코칩 표면의 모든 건조 영역이 피펫 끝을 사용하여 희석된 혈청 샘플로 덮여 있는지 확인합니다.
- 여분의 샘플을 제거하고 글리코칩을 25°C의 Buffer-3에 5분 동안 담그십시오. 그런 다음 글리코칩을 Buffer-4(5분)가 있는 용기로 옮기고 마지막으로 초순수로 글리코칩을 세척(5분)합니다. 글리코칩을 175 x g 및 25°C에서 1분 동안 원심분리하여 액체를 제거합니다.
4. 검출 : 2 차 항체
- 글리코칩을 배양실에 넣습니다. 글리코칩 표면에 Buffer-2의 비오틴과 접합된 염소 항-마우스(IgG + IgM) 용액(5μg/mL)을 펴 바릅니다. 37°C에서 1시간 동안 궤도 교반(30rpm)으로 배양합니다.
- 결합되지 않은 부분을 제거하고 세탁 단계를 반복하십시오.
- 원심분리 후, 글리코칩을 25°C의 어둠 속에서 45분(30rpm) 동안 해당 플루오로크롬 표지 스트렙타비딘 용액 2μg/mL(버퍼-2)와 함께 배양합니다.
- 어둠 속에서 결합되지 않은 부분을 제거하고 세탁 단계를 반복하십시오.
- 글리코칩을 공기로 건조시킵니다.
메모: 글리코칩은 가능한 한 빨리 스캔해야 합니다. 그러나 염색 직후 스캔이 불가능한 경우 글리코칩은 어두운 곳에서 서늘하고 건조한 곳에 보관할 수 있습니다.
3. 글라이칸 어레이 분석
- 어레이 스캔
- 글리코칩이 어두운 곳에서 실온에 도달할 때까지 테이블 위에 두십시오. 동시에 슬라이드 스캐너와 레이저(여기 파장 633nm)를 켭니다.
- 마이크로어레이를 잡고 글리코칩이 뒤쪽에 닿을 때까지 슬롯에 밀어 넣습니다.
- 글리코칩을 스캔하고("run easy scan"), 스캔을 ". TIFF" 파일.
표 1: 글라이칸 목록, BALB/c 마우스(n = 20)의 자연 순환 항체(IgM + IgG)에 대한 결합, 상대 형광 단위(RFU)로 MAD 중앙값으로 발현± 컷오프를 초과하는 동물의 수(≥4000 RFU).이 표는 Bello-Gil, D. et al. 이 표를 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.