1. 보안 예방 조치
참고: 이 방법은 광견병 생백신(RABV)과 불활성화 백신 모두에 적용할 수 있습니다.
- 우수한 실험실 관리 및 안전 절차를 사용하십시오.
- 일회용 코트, 장갑, 마스크, 안경 등을 포함한 적절한 개인 보호 장비(PPE)를 착용하십시오.
- 살아있는 바이러스가 적정될 때는 2등급 생물 안전 작업대를 사용하십시오.
- 샘플과 접촉하는 모든 물질(시약, 세척액 등)을 감염성 물질로 간주합니다.
- 오염된 물질을 표백제 용액(차아염소산나트륨 2,5%)에 30분 동안 담가 오염 물질을 처리합니다.
- 우수한 실험실 관행에 따라 화학 물질을 취급하십시오.
2. 준비
- 가능한 한 분석 등급 시약을 사용하십시오.
- 코팅 완충액/탄산염 완충액, 부동태화 완충액, 희석액 및 구연산염 완충액(표 1)의 새 용액을 준비하고, 0.45 또는 0.22μm 필터를 통해 여과한 다음 분석 순도를 보존하기 위해 사용 하루 전에 4°C에서 보관합니다.
- 시약을 사용하기 30분 전에 시약이 실온(+18 °C에서 +25 °C)에 도달하도록 하고 사용 전에 부드러운 혼합으로 균질화합니다.
3. 마이크로플레이트 민감성
참고: 다량의 면역글로불린을 결합하도록 최적화된 96웰 흡착 면역분석 플레이트를 사용합니다(예: 재료 표 참조).
- 각 웰에 탄산염 완충액에 희석된 단클론 항체(mAb-D1) 200μL를 추가합니다.
메모: 약 1 μg/mL의 최적 농도가 실험적으로 결정되었으며 이는 정제된 mAb-D1의 약 1/2000 희석에 해당합니다. 이 권장 농도는 각 mAb-D1 배치에 대해 표시되며 양성 대조군을 통해 주기적으로 확인해야 합니다.
- 플레이트를 접착 필름으로 덮고 가습 분위기에서 37°C에서 3시간 동안 마이크로플레이트를 배양합니다.
- 조심스럽게 흡인하고 2,5% 차아염소산나트륨 용액을 포함하는 수용체로 웰 함량을 옮깁니다.
- 마이크로플레이트를 뒤집어 흡수성 종이에 올려 실온에서 5분 동안 건조시킵니다.
4. 마이크로플레이트 패시베이션
- 각 웰에 300μL의 부동태화 완충액을 추가합니다.
- 플레이트를 접착 필름으로 덮고 37°C에서 30분 동안 배양합니다.
- 조심스럽게 흡인하고 웰 함량을 2,5% 차아염소산나트륨 용액을 함유하는 수취인으로 옮깁니다.
- 마이크로플레이트를 뒤집어 흡수성 종이에 올려 실온에서 1분 동안 건조시킵니다.
메모: 마이크로플레이트는 즉시 사용하거나 -20°C에서 밀봉하여 최대 3개월 동안 사용할 수 있습니다.
5. ELISA 분석
참고: 기준 백신의 통제 곡선을 설정하기 위해 5.3단계는 필요하지 않습니다. 테스트된 백신을 적정하려면 5.1단계부터 5.6단계까지 모두 필요합니다.
- 감광된 마이크로플레이트의 세척
- 각 웰에 세척 버퍼를 300μL씩 추가합니다.
- 조심스럽게 흡인하고 웰 함량을 2,5% 차아염소산나트륨 용액을 함유하는 수취인으로 옮깁니다.
- 5.1.1 및 5.1.2 단계를 5회 더 반복하여 감광판을 광범위하게 세척합니다.
- 마이크로플레이트를 뒤집어 흡착제가 있는 종이에 올려 실온에서 1분간 건조시킵니다.
- 대조군 곡선에 대한 reference vaccine의 희석
- 광견병 바이러스 당단백질 10μg/mL 농도에 해당하는 증류수 1mL에 기준 백신(검증 항원 Lot 09)을 재구성합니다.
- 1 μg/mL의 광견병 바이러스 당단백질에 도달하기 위해 희석제에 재구성 기준 백신을 10배 희석합니다.
- 표 1에 표시된 대로 희석제에 이 기준 백신을 6회 연속 2배 희석하여 준비합니다.
희- 석제 200μL를 중복(웰 1H/2H)으로 분배하여 빈 대조군 역할을 합니다.
- 각 참조 백신 희석액의 웰당 200μL를 중복(웰 G1/G2에서 A1/A2)으로 분배합니다.
- 적정을 위해 테스트된 백신의 희석
- 희석제에 테스트된 백신을 10배 희석하여 준비합니다.
- 표 2에 나타난 바와 같이 희석액에 테스트된 백신의 7회 연속 희석액을 준비합니다.
- 테스트된 각 백신 희석액의 웰당 200μL를 중복(웰 H3/H4 - A3/A4)으로 분배합니다.
- ELISA 플레이트의 배양/세척
- 마이크로플레이트를 접착 필름으로 덮고 37°C에서 1시간 동안 배양합니다.
- 필름을 제거하고, 주의깊게 흡인하고 2,5% 차아염소산나트륨 해결책을 포함하는 수용자로 각 우물의 내용을 옮깁니다.
- 각 웰에 300μL의 세척 버퍼를 추가합니다.
- 조심스럽게 흡인하고 각 웰의 내용물을 2,5% 차아염소산나트륨 용액을 함유한 수용액으로 옮깁니다.
- 5.4.3 및 5.4.4 단계를 5회 반복하여 결합되지 않은 항원을 제거하고 코팅된 항체(mAb D1)에 결합된 G 단백질 삼량체를 보존합니다.
- 마이크로플레이트를 뒤집어 실온에서 흡수지에 올려 1분 동안 건조시킵니다.
- 과산화효소 접합 mAb-D1의 결합
- peroxidase-labeled mAb-D1의 권장 희석량(1/2000)을 웰당 200μL를 희석액으로 분배합니다(약 1μg/mL 농도). 각 mAb-D1 배치에 대해 권장 농도가 표시되며 양성 대조군을 통해 주기적으로 확인해야 합니다.
- 마이크로플레이트를 접착 필름으로 덮고 37°C에서 1시간 동안 배양합니다.
- 필름을 제거하고, 주의깊게 흡인하고 2,5% 차아염소산나트륨 해결책을 포함하는 수용자로 각 우물의 내용을 옮깁니다.
- 각 웰에 300μL의 세척 버퍼를 추가합니다.
- 조심스럽게 흡인하고 각 웰의 내용물을 2,5% 차아염소산나트륨 용액을 함유한 수용액으로 옮깁니다.
- 5.5.4 및 5.5.5 단계를 5회 반복하여 결합되지 않은 과산화효소 표지 항체(mAb D1)를 제거합니다.
- 마이크로플레이트를 뒤집어 실온에서 흡수지에 올려 1분 동안 건조시킵니다.
- 기질-발색체를 사용한 계시
- 기질-발색 용액의 웰당 200μL를 분배합니다.
- 마이크로플레이트를 필름으로 밀봉하고 실온의 어두운 곳에서 30분 동안 배양합니다. 황색-주황색은 결합된 과산화효소 표지 항체(mAb D1)의 양에 비례하는 강도를 나타냅니다.
- 웰당 50 μL의 정지 용액을 첨가하여 반응을 중단합니다.
- 마이크로플레이트의 바닥을 조심스럽게 닦고 분광 광도계에 넣어 사용된 모든 웰(negative control(blank), reference vaccine 및 tested vaccine)의 492nm에서 광학 밀도(OD)를 측정합니다.
- 분석을 위해 .xls 또는 .xlsx 파일 형식으로 OD 데이터를 수집합니다.
표 1. 분석에 사용된 완충액.
| 완충액 및 시약 | 준비 |
코팅 버퍼
(탄산염 완충액 50mM pH=9.6) | 원하는 pH (중탄산 나트륨의 약 1/10 부피)가 될 때까지 탄산나트륨 50 mM (NaHCO3 )에 탄산나트륨 50 mM (Na2CO 3-10H2O)을 추가합니다. |
| 패시베이션 버퍼 | 0.3% 소 혈청 알부민(BSA, 분획 V), 탄산염 완충액 50mM pH 9.6의 5% 자당 |
| 10x 인산염 완충 식염수 pH=7 (PBS 10x) | 증류수 1L에 NaCl 80g, KCl 2g, Na2PO 4-12H2O 11.33 g, KH2PO4 2g. 4N NaOH로 pH=7 조정 |
| 세척 버퍼 | 0.05% 트윈(1x PBS) |
| 희석제 | 0.5% 소 혈청 알부민(분획 V), 1x PBS에서 0.05% 트윈(BSA에 의한 산성화로 인해 pH를 7로 조정) |
구연산염 완충액 pH-5.6
(과산화효소 기질의 경우) | 11.67g 구연산 삼나트륨-2H2O(Na3C6H5O 7-2H20), 증류수 1L에 2.17g 구연산-1H20 |
| 기질-발색원 용액 | 50 mg 오르토 페닐 렌 디아민 정제, 0.1 % 과산화수소 30 % (110 vol) 25 ml 구연산염 완충액 pH 5.6 |
중지 솔루션
(4N 황산) | 80ml 냉각 증류수에 10ml H2SO4 36N. 희석은 얼음 수조에서 수행해야 합니다 |