동물 모델과 관련된 모든 절차는 지역 기관 동물 관리 위원회와 JoVE 수의학 검토 위원회에서 검토되었습니다.
1. MRSA HI 항원 단백질의 제조
- 상용 소스에서 Fe 이온 표면 결정 인자 B(IsdB) 및 α-용혈 돌연변이(Hla) 클론을 얻고(재료 표 참조), 중합효소 연쇄 반응(PCR) 증폭을 수행하여 IsdB 및 Hla 유전자를 증폭하고, 해당 산물을 PGEX-6P-2 플라스미드(상업적으로 획득, 재료 표 참조)에 접합합니다. Escherichia coli의 벡터 Xl/blue 균주가 있는 화면.
- positive clone을 E. coli BL21 competent cells(재료 표 참조)로 형질전환하고 shark culture로 증폭합니다.
- isopropyl-β-D-1-mercaptogalactopyranoside 및 MMC(Multimodal Chromatography) 분리 키트로 유도 후 항원을 발현하고 분리합니다(재료 표 참조).
- 항원 단백질의 특성을 분석하고 완전 자동화 정제기로 정제합니다.
- 상업적으로 이용 가능한 친화성 크로마토그래피 수지를 사용하여 투명화된 용해물에서 GST(gutathione S-transferase) 태그가 지정된 단백질을 Affinity-purify 합니다(재료 표 참조).
- 이소프로필-β-D-1-메르캅토갈락피라노시드 및 멀티모달 크로마토그래피(MMC)로 재조합 단백질을 정제합니다.
- Triton X-114 상분리법으로 내독소를 제거합니다. 간단히 말해서, 1% Triton X-114와 재조합 단백질 용출액을 0°C에서 5분 동안 혼합하여 균일한 용액을 만들고 37°C에서 5분 동안 배양하여 2상이 형성될 수 있도록 합니다.
- Turtle 키트(재료 표 참조)와 함께 박테리아 내독소 테스트 방법을 사용하여 내독소 농도를 검출합니다. 단백질 항원에 대한 내독소는 0.06 EU/μg으로 국제 표준(1.5 EU/μg)보다 낮습니다.
- 내독소 검출에 대한 테스트 제품의 가능한 영향을 제거하기 위해 간섭 테스트를 수행합니다.
메모: 중국 약전의 부록 2020에 따르면 내독소 함량은 5EU/용량 미만이어야 합니다. Limulus lysate(λ0.25 EU/mL)의 감도와 최대 유효 희석 비율 33.3은 최대 유효 희석인 MVD = cL/λ를 기준으로 계산되었으며, 여기서 L은 시험 품목에 대한 세균 내독소의 한계값, c는 시험 품목 용액의 농도, L이 EU/m로 표시되는 경우, c는 1.0mg/mL와 같습니다. λ는 겔 방법에서 투구게 시약의 표지된 감도(EU/mL)입니다.
- 항원(48kDa, 12% sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel 전기영동[SDS-PAGE]에 의해 결정됨)을 내독소 또는 인산염 완충 식염수(PBS)(sodium dichlorate 방법)가 없는 멸균수에서 1.5mg/mL로 재조합합니다.
참고: 단백질 피크 시간은 13.843분, 순도는 99.4%(고성능 액체 크로마토그래피 방법)였으며 단백질은 -70°C에서 보관했습니다. S. aureus 균주 MRSA252(재료 표 참조)에서 추출한 게놈 DNA를 PCR 템플릿으로 사용했습니다. IsdB 유전자는 전방 프라이머 59-CGCGGATCCATGAATGGCGAAGCAAAAGCAG
를 사용하여 증폭되었습니다.
C-39 및 리버스 프라이머 59-TTTTCCTTTTGCGG
CCGCCTATGTCATATCTTTATTAGATTCTTC-39.
Hla 유전자는 정방향 프라이머 PHLAF (GCGGATCCGATTCTGATATTAATATTAAAACC) 및 역방향 프라이머 PHLAR (TAAGCGGCCGCTTATCAATTTGTCATTTCTTC)를 사용하여 증폭되었다.
2. 나노 에멀젼 백신의 준비
- 1:6:3(w/w)의 질량비에 따라 HI 항원 단백질 용액(10mg/mL)에 3종류의 부형제(이소프로필 미리스테이트, 폴리옥시에틸렌 피마자유, 프로필렌 글리콜, 재료 표 참조)를 차례로 첨가하고 잘 저어줍니다. 그런 다음 점차적으로 멸균된 순수를 추가하여 최종 부피 10mL에 도달하고 500rpm 및 25°C에서 약 20분 동안 저어줍니다.
메모: 이 프로토콜에서 제조된 나노에멀젼은 부피가 10mL이고 3가지 부형제의 질량은 각각 0.34g, 2g, 1g입니다. 여기서 단백질 용액은 최종 용액 농도의 10배인 작동 용액입니다.
- 투명하고 투명한 액체 용액을 얻기 위해 저에너지 유화법으로 나노에멀젼 보조 백신(1mg/mL 단백질)을 준비합니다.
메모: 블랭크 나노에멀젼(BNE)은 물을 HI로 대체한 것을 제외하고는 유사한 방법으로 제조했습니다. 일반적인 유화 방법은 유화를 위해 외부 및 내부 상을 약 80°C로 가열한 다음 점차적으로 교반 및 냉각하는 것입니다. 이 과정에서 많은 양의 에너지가 소비되고 최종적으로 에멀젼이 얻어집니다.
3. 나노에멀젼 보조제 백신의 물리적 특성 및 안정성
- 입자 크기, 제타 전위 및 고분자 분산 지수 특성화(PDI).
- 나노에멀젼 보조제 백신 100μL를 준비하고 주사용 물로 50배 희석합니다. 검출을 위해 샘플 2mL를 추가합니다.
- Nano Zetasizer(ZS, 재료 표 참조)를 사용하여 25°C에서 입자 크기, 제타 전위 및 PDI를 관찰합니다.
- 투과 전자 현미경 (TEM)
- 나노에멀젼 백신 10μL를 물로 50배 희석하고 탄소로 코팅된 100메쉬 구리 그리드에 놓고 실온에서 5분 동안 1% 포스포텅스텐산(재료 표 참조)으로 염색합니다.
- 여과지로 과도한 포스 포 텅스텐 산 용액을 제거하십시오.
- 투과 전자 현미경으로 형태를 관찰합니다(재료 표 참조). 완제품이 전자 현미경의 시야 내에서 거의 안정적이고 원형인지, 그리고 양호한 분산을 나타내는지 여부를 검사합니다.
- 주사 전자 현미경(SEM)
- 나노에멀젼 보조제 백신 10μL를 물로 50배 희석하고, 미리 희석된 샘플 10μL를 실리콘 웨이퍼에 떨어뜨린 다음 37°C 온도 조절기 제어 인큐베이터에 24시간 동안 넣습니다.
- 준비된 백금을 실리콘에 40초 동안 뿌리고 실온으로 식힙니다.
- 준비된 샘플의 형태학적 특성을 고해상도 주사 전자 현미경으로 관찰합니다(재료 표 참조). 샘플이 거의 안정적이고, 구형이며, 전자 현미경의 시야 내에 잘 분산되어 있는지 확인합니다.
- 형태학적 안정성
- 마이크로 원심분리 튜브에 나노 에멀젼 백신 샘플 1mL를 놓고 실온(25°C)에서 13,000 x g에서 30분 동안 원심분리하여 신선한 샘플의 안정성을 평가합니다.
- 이러한 신선한 샘플의 모양을 관찰한 다음 6가지 온도 주기의 열역학적 안정성 테스트를 수행합니다(1주기: 48시간 동안 4°C, 48시간 동안 25°C, 48시간 동안 37°C에서 보관).
- 원심분리 후 샘플을 15분 동안 그대로 두어 Tyndall 효과(샘플이 빛 아래에서 투명하고 투명한지 여부)가 있는지와 항유화가 발생했는지 여부(항유화 후 명확한 층화로 나타남)를 확인합니다.
- SDS-PAGE 및 웨스턴 블롯
- 샘플을 흔들어 0.6mL의 무수 에탄올 용액과 0.3mL의 백신을 혼합하고 원심분리기(13,000 x g, 실온에서 30분, 25°C)를 혼합합니다.
- 용액의 상등액을 깨끗한 튜브로 옮기고 침전물을 물 0.3mL로 용해시킵니다. 상층액과 침전액(블랭크 나노에멀젼 및 백신 모두)을 무수 에탄올과 증류수 용액으로 처리한 후 수득하고 동일한 50배 희석을 수행합니다.
- 2.5mL의 분리 겔 A와 2.5mL의 분리 겔 B(재료 표 참조)를 혼합하고 50μL의 10% 과황산암모늄을 첨가한 다음 피펫을 사용하여 용액을 유리판에 빠르게 놓습니다. 1mL의 농축 젤 A와 1mL의 농축 젤 B를 혼합하고 유리판에 20μL의 10% 과황산암모늄을 넣고 적절한 크기의 빗을 삽입하고 응고를 기다립니다.
- 3.5.2단계에서 얻은 희석된 샘플에 총 5μL의 5x 단백질 로딩 완충 용액을 추가하고 샘플을 5분 동안 끓입니다.
- 가열된 단백질 10μL를 해당 웰에 추가하고 단백질 마커 5μL를 마커 웰에 추가합니다.
- 전극을 연결하고 전기영동 측정기를 켜고(재료 표 참조) 볼륨을 조정합니다.tage를 300V로 조정합니다. 전기영동이 PAGE 고무 바닥에서 1cm 떨어진 곳에 도달하면 전원을 끕니다.
- 젤을 제거하고 이중 증류수(ddH2O)로 헹굽니다. Coomassie 밝은 파란색 G-250 염색 용액(재료 표 참조)을 10분 동안 추가합니다. 염색 용액을 붓고 용액과 시중에서 판매되는 탈색 용액으로 젤을 두 번 헹구고 젤을 전자레인지에 1분 동안 돌립니다. 젤을 10분 동안 흔들고 젤 배경이 깨끗해질 때까지 탈색 용액을 반복적으로 변경합니다. 그런 다음 겔 이미징을 수행합니다(재료 표 참조).
메모: 웨스턴 블롯은 3.5.1-3.5.6 단계에서 설명한 대로 전처리되었습니다.
- 3개의 여과지 블록을 전기영동 전달 버퍼로 담그십시오. 폴리비닐리덴 플루오라이드(PVDF) 멤브레인을 메탄올에 30초 동안 담그고 세미드라이 겔 전사 기기(여과지 2층, PVDF 멤브레인, 전기영동 젤 1층)로 전사합니다. 23V의 전압을 사용하여 23분 동안 멤브레인을 전송합니다.
- PVDF 멤브레인을 제거하고 이식 후 트리스 완충 식염수-Tween 20(TBST)으로 한 번 세척합니다.
- PVDF 멤브레인을 밀봉 용액(5% 탈지 분유 용액)에 넣고 4°C에서 밤새 밀봉합니다.
- PVDF 멤브레인을 제거하고 TBST로 3회 또는 각각 10분씩 세척합니다.
- 1차 항체(양성 혈청이 있는 면역된 마우스)로 배양합니다. TBST로 테스트할 1차 항체(Table of Materials(재료 표 참조)를 500배(100배)로 희석합니다. 차단된 PVDF 멤브레인을 1차 항체에 배치하고 37°C에서 1시간 동안 배양합니다.
- PVDF 멤브레인을 제거하고 TBST로 각각 10분씩 3회 세척합니다.
- 2차 항체로 배양합니다(Table of Materials(재료표 참조). TBST로 묽은 알칼리성 인산가수분해효소(AP) 표지된 염소 항마우스 2차 항체 5,000배. PVDF 멤브레인을 2차 항체에 넣고 37°C에서 40분 동안 배양합니다.
- PVDF 멤브레인을 제거하고 TBST로 각각 10분씩 4회 세척합니다.
- 염색을 위해 PVDF 멤브레인을 AP 기질 니트로 블루 테트라졸(NBT) 및 BCIP(5-브로모-4-클로로-3'-인도리포스페이트 p-톨루이딘 염)의 혼합물(멤브레인을 적실 만큼만)에 담그십시오(재료 표 참조). 양성 결과는 보라색입니다.
참고: 결과는 선명한 보라색 띠여야 하며 샘플 스트립과 항원의 분자량은 동일한 라벨링된 위치에 있어야 합니다.
4. 근육 투여 후 이 백신에 대한 항체 면역 반응 평가
참고: 생쥐는 발표된 보고서에 따라 나노에멀젼 백신의 근육 주사로 면역되었습니다. 마우스는 음성 대조군으로 PBS를 투여했습니다. 3회 면역 접종이 완료된 후 1주일 후에 마우스에서 혈청을 채취했습니다. IgG의 혈청 수준과 IgG1, IgG2a 및 IgG2b의 하위 분류는 효소 결합 면역흡착 분석법(ELISA)에 의해 정량적으로 측정되었습니다.
- 항원 코팅: 코팅 용액으로 HI 단백질 항원을 10μg/mL로 희석하고 100μL/웰에서 ELISA 플레이트에 추가합니다. 4 °C에서 밤새 배양합니다.
메모: 코팅 용액은 1.6g의 무수 탄산나트륨과 2.9g의 중탄산나트륨을 1L의 탈이온수에 용해시켜 제조합니다.
- 씰링: 플레이트를 세척합니다(3회 사이클, 각 사이클 300μL). 밀봉 용액 300μL를 각 웰에 추가하고 37°C에서 2시간 동안 웰을 밀봉합니다.
메모: 밀봉 용액은 PBS에 Tween-20 및 소 혈청 알부민(BSA)을 첨가하여 준비됩니다. PBST 용액의 BSA 함량은 1%입니다.
- 혈청 희석: 생쥐의 시료 혈청을 PBST로 100회 희석하고(혈청 3μL를 PBST 및 볼텍스 297μL에 첨가), 각 혈청 시료에 100μL를 사용합니다. PBST에 4 μL를 첨가하여 양성 혈청과 음성 대조 혈청을 PBST로 100회 희석한 후 볼텍싱으로 혼합합니다.
- 이중 비율 희석: 코팅된 ELISA 플레이트의 첫 번째 열에 위의 희석된 실험용 혈청 200μL를 추가하고 첫 번째 및 12번째 열을 제외한 모든 웰에 PBST 100μL를 추가합니다. 첫 번째 줄에서 연속적으로 1:2 희석을 수행합니다: 피펫을 100 μL로 조정하고, 첫 번째 행에서 두 번째 줄로 100 μL를 옮기고, 피펫과 10회 혼합합니다.
- 혈청을 여러 비율로 Row 11로 희석하고 액체 100μL를 버립니다.
- 샘플 템플릿(표 1 참조)-100 μL/well에 따라 12행의 해당 well에 희석된 음성 및 양성 혈청을 추가합니다.
- ELISA 플레이트를 비닐 랩으로 밀봉하고 37°C에서 1시간 동안 배양합니다.
- 2차 항체 항-마우스 IgG-HRP(재료 표 참조)를 PBST로 1:10,000으로 희석합니다.
- 플레이트를 세척합니다(3회 주기, 각 주기 300μL). 그런 다음 각 웰에 희석된 2차 항체 100μL를 추가하고 플레이트를 37°C에서 40분 동안 배양합니다.
- 염색 및 종결: 플레이트를 세척합니다(5회 주기, 각 주기 300μL). 각 웰에 3,3",5,5"-테트라메틸벤지딘(TMB) 염색 용액(100μL, 재료표 참조)을 추가합니다. 플레이트를 빛에서 10 분 동안 37 °C에 놓고 2 M H2SO4 의 50 μL로 즉시 반응을 종료하십시오.
- 효소 마커로 광학 밀도(OD450) 값을 검출합니다(종료 후 15분 이내에 OD450 값 판독).
표 1: ELISA 스파이크 서열 및 희석 템플릿.
