동물 모델과 관련된 모든 절차는 지역 기관 동물 관리 위원회와 JoVE 수의학 검토 위원회에서 검토되었습니다.
1. 마우스 준비
- 눈 확장 및 고정
- 데이터 수집 최소 15분 전에 10% 페닐에프린 점안액을 마우스 눈에 주입하고 초과분을 제거하며 0.5% 트로피카미드 점안액을 주입합니다.
참고: 첫 번째 확장은 세션에서 테스트 할 모든 마우스에 대해 한 번에 수행 할 수 있습니다. 액체가 실온에 있는지 확인하십시오. - 전신 마취를 유도한 직후(1.2단계), 0.4% 옥시부프로카인 염산염 점안액을 투여하고 3초 동안 제자리에 유지하여 눈을 마취하고 고정시킵니다. 그 후, 방울을 닦아내고 10% 페닐에프린과 0.5% 트로피카마이드를 반복적으로 주입하여 눈이 잘 확장되었는지 확인합니다.
참고: 액체가 실온에 있고 마우스가 옥시부프로카인을 삼키지 않는지 확인하십시오.
- 전신 마취
- 식염수에 케타민(20mg/mL)과 자일라진(1.17mg/mL)의 마취 용액을 준비합니다. 4 °C에서 최대 2 주 동안 보관하십시오.
- 테스트 약 5분 전에 마우스의 연령과 크기에 따라 체중 1g당 5 - 10μL의 마취 용액을 복강내 주사합니다.
참고: 어리거나 마른 쥐는 마취제가 덜 필요하고 마취 시간이 덜 걸리지만 더 빨리 깨어납니다. 여기서, 8 μL/g(케타민 160 mg/kg, 자일라진 9.33 mg/kg)입니다. - 선택적으로, 각막 건조를 방지하기 위해 점성이 있는 점안액이나 안과 젤로 눈을 윤활하십시오.
2. 마우스 위치
- 점성이 있는 글리콜 성분의 안약으로 눈을 윤활하여 각막에 수분을 공급합니다.
NOTE: 눈이 건조해 보일 경우 검사 중에 안약을 다시 바르십시오. - 수술용 거즈로 마우스를 감싸 따뜻하게 유지합니다.
- 스펀지나 면심지를 사용하여 0.3% 하이프로멜로스가 함유된 안과용 젤을 각 눈에 얇게 펴 바르면 빛의 굴절을 최소화하고 혼탁을 피하며 각막에 수분을 공급할 수 있습니다. 이때 속눈썹과 수염을 옆으로 치우십시오.
- 머리를 곧게 펴고 앞을 향하게 하여 마우스를 카세트에 놓습니다.
- 바이트 바 클램프를 부드럽게 열고 바를 입에 넣습니다. 노즈 밴드를 사용하여 위치를 고정합니다.
참고: 확인하십시오. 바이트 바는 카세트 중앙에 있습니다. - 오른쪽(왼쪽) 눈을 테스트하는 경우 오른쪽(왼쪽) 아래에 면봉을 놓습니다.
- 클립온 조준 팁을 마우스 전용 렌즈에 고정한 상태에서 Z-트랜슬레이터 나사를 시계 반대 방향으로 돌려 눈 쪽으로 가져옵니다.
- 카세트를 회전 및 회전하고 바이트 바와 X-트랜슬레이터 나사를 돌려 마우스의 위치를 미리 설정합니다. 목표는 오른쪽 눈이 렌즈를 직접 들여다보도록 하여 눈과 수정체의 광축을 정렬하는 것입니다.
참고: 마우스가 너무 높거나 낮으면 Y 변환기 나사를 먼저 사용해야 합니다. - "Exam"에서 첫 번째 스캔을 선택하고 "Start Aiming"을 클릭한 다음 망막 이미징에 대한 추가 수동 조정을 수행합니다.
- Z-translator 나사를 사용하여 왼쪽 패널에서 망막을 수직으로 이동합니다(그림 1, Horizontal B-scan Alignment) 및 오른쪽 패널에서 가로로(그림 1, 세로 B-스캔 정렬).
- ONH를 위 또는 아래로 움직여 카세트를 회전하여 ONH를 오른쪽 패널 중앙으로 가져옵니다. 바이트 바 나사를 사용하여 오른쪽 패널의 망막을 곧게 펴십시오. 카세트를 돌려 ONH를 왼쪽 패널 중앙에 배치합니다.
- X-트랜슬레이터 나사를 사용하여 왼쪽 패널의 망막을 수평으로 맞춥니다. 각 변조기의 주요 기능을 염두에 두고 망막의 위치를 추가로 조정하여 ONH를 중앙 집중화합니다.
참고: 필요한 경우 Y-트랜슬러 나사를 사용하여 오른쪽 패널에서 ONH를 위아래로 움직입니다. 위치는 스캔 사이에 언제든지 조정될 수 있습니다.
3. ONH 및 Retina의 SD-OCT 이미징
- 조정 내용이 완료되면 "스냅샷 시작"을 클릭하여 SD-OCT 스캔을 시작합니다.
- 3D 이미징이 필요하지 않은 경우 OCU 옵션을 선택 취소하십시오.
- 스캔과 보고서를 저장합니다.
- 다음 스캔을 진행합니다.
- 렌즈를 집어넣은 후 두 번째 눈을 이미지화하려면 카세트를 적절하게 돌리고 2.6-3.3단계를 반복합니다.
4. 획득 완료
- 획득이 완료되면 카세트에서 마우스를 제거하고 각 눈에 0.3% 하이프로멜로스가 함유된 점과 젤을 바르고 마우스를 가열판에 올려 놓고 깨어납니다.
- 마지막 취득 후 소프트웨어를 닫고 컴퓨터와 OCT 기기(전원 버튼)의 전원을 끕니다.
- 소독제로 카세트를 청소하십시오.
5. analysis
- 망막층 두께를 측정하려면 제조업체에서 제공하는 자동 분할 소프트웨어를 사용하십시오.
- "Patient"를 클릭하고 목록에서 원하는 "Exam"을 선택한 다음 "Review Exam" 옵션을 클릭합니다.
- 원하는 스캔에서 폴더 아이콘을 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하여 원하는 OCT 데이터를 OCT 소프트웨어에 로드합니다.
- B-스캔을 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭합니다. 최대 10개의 측정 캘리퍼를 활성화하여 캘리퍼를 구성합니다. 을 클릭하고 이름, 각도 및 색상을 입력합니다.
- B-스캔을 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하여 원하는 캘리퍼를 선택합니다. 측정을 위해 그에 따라 망막에 놓습니다.
참고: ONH를 중심으로 한 스캔의 경우 서로 같은 거리에 있는 각 측면에 5개의 캘리퍼를 설정합니다. 유두주위 분석을 위해 캘리퍼가 ONH에서 너무 멀리 배치되지 않았는지 확인하십시오. 방사형 스캔의 경우 OCT 소프트웨어에서 선택한 스캔당 10개의 사진을 분석합니다. 그들의 번호는 "보고서" 폴더에서 찾을 수 있습니다. - B-스캔을 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하고 "결과 저장"을 클릭하여 스프레드시트 소프트웨어 프로그램에서 분석을 위해 결과를 저장합니다.
참고: 결과는 스캔 데이터와 동일한 폴더에서 찾을 수 있습니다.
- 또는 오픈 소스 이미지 처리 프로그램용으로 개발된 수제 캘리퍼 매크로인 "MRI Retina Tool"을 사용합니다(재료 표 참조).
- MRI Retina Tool" 및 "Modify Polygon Section Tool" 매크로가 활성화되어 있는지 확인하십시오. 이미지를 로드합니다. m 버튼을 클릭하여 측정을 시작합니다.
참고: 매크로는 ONH의 양쪽에 0.2mm 길이의 측정 카세트 1개를 자동으로 생성합니다. 각 카세트에는 캘리퍼 역할을 하는 5개의 측정 지점이 있습니다. 측면 위치는 변경할 수 없으며 방사형 스캔의 peripapilla에 맞게 맞춤화됩니다. 카세트의 수평 위치는 RNFL/GCL 두께를 측정하기 위해 미리 정의되어 있지만 대신 GC 복합층을 측정하도록 쉽게 수정할 수 있습니다. 스캔 품질이 좋지 않으면 수평 위치를 조정하거나 사진을 분석에서 제외해야 합니다. - 수평 조정은 e 버튼을 클릭하십시오. 새로 열린 "ROI Manager" 창에서 첫 번째 카세트를 선택합니다.
- 파란색 다각형 버튼을 클릭하고 그림에서 측정된 레이어의 테두리를 클릭하여 첫 번째 카세트의 위치를 조정합니다.
- 먼저 "ROI Manager" 창에서 두 번째 카세트를 선택한 다음 해당 이미지를 클릭하여 두 번째 카세트에 대해 반복합니다. r 버튼을 클릭하여 다시 측정합니다. "측정" 창에서 결과를 봅니다.
NOTE: 결과는 언제든지 스프레드시트 소프트웨어 프로그램에 복사될 수 있습니다. 여기에는 오른쪽 카세트(r), 왼쪽 카세트(l) 및 총계에 대한 다음 값이 포함됩니다.Intden - 카세트 내 통합 밀도; 영역: 측정 영역(mm2)입니다. Len: 카세트 내의 캘리퍼 길이(mm); Mean: 카세트 내 신호의 평균 강도; 및 Std: 신호의 평균 강도의 표준 오차입니다. - 다음 이미지로 진행합니다.
- 스프레드시트 소프트웨어 프로그램에서 데이터를 추가로 분석합니다.
참고: 레이어의 평균 두께를 찾으려면 10개의 Len 값을 취하십시오.