허혈성 뇌졸중의 마우스 모델에서 경색 형성을 감지하기 위한 TSPO-PET/CT 이미징

초록

출처: Chaney, A. M., et.al. [¹¹C]DPA-713 허혈성 뇌졸중의 마우스 모델에서.J. Vis. 특급 (2018).

이 비디오는 허혈성 뇌졸중의 마우스 모델에서 신경염증의 생체 내 이미징 기술을 보여줍니다. TSPO 전용 방사성 추적자. 주사 후 방사성 추적자는 외부 미토콘드리아 막에 위치하며 활성화된 면역 세포에서 과발현되는 단백질인 TSPO에 결합합니다. PET/CT 스캐너는 방사성 추적자의 분포를 감지하고 CT 데이터와 함께 등록된 이미지를 생성하여 뇌의 신경염증 부위를 정밀하게 국소화할 수 있습니다.

프로토콜

동물 모델과 관련된 모든 절차는 지역 기관 동물 관리 위원회와 JoVE 수의학 검토 위원회에서 검토되었습니다.

1. PET/CT 보정 및 워크플로우 설정(dMCAO 수술 후 6일)

1. 스캐너 작동 소프트웨어에서 CT 감쇠 획득, 60분 C-11 동적 PET 획득(350 - 650keV 수준 식별, 3.438ns 일치 창)을 포함하는 이미징 워크플로우 생성, 히스토그램(20개 프레임: 5 x 15초, 4 x 1분, 11 x 5분, 데드 타임 보정 포함) 및 3DOSEM-OP 재구성(2개 반복, 18개 하위 집합)을 통해 0.776 x 0.776 x 0.96mm 복셀 크기의 128 x 128 x 159 이미지를 생성합니다.
2. 인터페이스의 왼쪽 상단 모서리에 있는 CT 보정 패널을 통해 X-ray 소스 컨디셔닝을 수행합니다. 이 보정은 지난 48시간 동안 시스템을 사용하지 않은 경우 매주 또는 스캔 전에 수행해야 합니다.
3. 어둡게/밝음(D/L) 및 중앙 오프셋(C/O) 보정을 수행합니다.
   1. 인터페이스의 왼쪽 상단에 있는 CT 보정 버튼(X)을 누릅니다.
   2. 실행할 CT 파일에 대해 D/L 및 C/O를 선택하고 갠트리에서 베드를 제거한 다음 D/L 보정을 실행합니다.
   3. 보정 도구 베드를 스캐너에 삽입하고 C/O 보정을 실행하여 인터페이스의 선택 항목을 "70mm 팔레트" 대신 "보정 도구"로 전환해야 합니다.
4. 보정 도구를 제거하고 표준 PET 베드를 되돌려 놓고 인터페이스의 선택 항목을 다시 "70mm 팔레트"로 변경해야 합니다.
5. 테이프를 사용하여 스캐너 플랫폼에 4마우스 이미징 베드를 고정하고 마취 튜브 (그림 1A)를 부착합니다. 이소플루란이 튜브를 통해 흐르고 있고 꼬임이 없는지 확인합니다.
6. 침대를 앞으로 밀어 시야각(FOV)의 중앙에 오도록 하고 CT 도어를 닫고 스카우트 view 침대가 올바른 위치에 있는지 확인하기 위해 CT의 e.
7. 알려진 선량의 C-11 용액을 방사선 소스로 포함하는 사내에서 제조된 팬텀을 사용하여 PET/CT 스캐너의 "표준" 보정을 수행합니다.
   1. 마우스 한 마리(식염수에 희석된 ~250 - 350 μCi/9 - 13 MBq의 C-11 추적자)에 투여한 용량과 동일한 용량으로 채워진 20mL 주사기를 준비합니다.
   2. 용량 교정기를 사용하여 표준물질의 활동을 기록하고 측정 시간을 기록하십시오.
   3. 마우스를 이미지화하는 데 사용될 것과 정확히 동일한 매개변수를 사용하여 표준의 PET/CT 스캔을 수행합니다(위에서 설명한 대로). 매주 이 작업을 수행하여 PET 스캐너가 이미징 데이터에 적용할 보정 계수를 만듭니다.

2. PET/CT 이미징을 위한 작업 공간 설정

1. {{}}virucide가 함유된 소독제(재료 TAG_121 TAG_120 TAG_119표 참조)를 사용하고 모든 표면에 보호용 흡수성 패딩을 배치하여 멸균 환경을 조성합니다.
2. 이소플루란과 산소 탱크가 적절하게 채워졌는지 확인합니다.
3. 1mL 주사기(27.5G 바늘 끝 장착)에 0.9% 염화나트륨(멸균 식염수)을 채우고 27.5G, 24cm 버터플라이 카테터로 세척하여 꼬리 정맥 카테터를 준비합니다. 캐뉼러를 삽입하기 전에 카테터의 날개를 잘라 꼬리 정맥의 시야를 가리지 않도록 하고 카테터를 옮기지 않고 마우스를 스캐너로 쉽게 이동할 수 있도록 합니다.
4. 여분의 "플러시" 주사기(멸균 식염수로 채워짐), 안구 윤활제, 에탄올 면봉, 열 램프, 준비된 카테터(식염수가 미리 채워짐), 수술용 테이프, 조직 접착제, 0.5mL 용량의 주사기, 가위, 꼬리 정맥에 성공적으로 배치된 후 카테터를 밀봉할 라이터 (그림 1B)를 포함한 모든 필수 장비가 워크스테이션에 배치되어 있는지 확인합니다.

3. 동물 준비 및 캐뉼레이션

1. 의 무게를 측정하여 각 마우스에 주입할 수 있는 최대 부피를 결정합니다(즉, 투여된 트레이서 및 투여된 식염수의 부피는 체중의 10%를 초과해서는 안 됩니다).
2. 3% 이소플루란을 사용하여 유도실에서 마우스를 마취하고 1-2%(2L/min 100% O₂)를 유지합니다.
3. 각 마우스에 눈 윤활제를 바르고 페달 반사(발가락 꼬집음)를 통해 마취를 확인합니다. 필요한 경우 마취 수준을 조정합니다.
4. 노즈콘이 장착된 가열된 침대에 마우스를 올려 1-2%(2L/min 100% O₂)로 이소플루란을 전달합니다.
5. 마우스가 마취되는 동안 다음 프로토콜을 사용하여 꼬리 정맥 캐뉼레이션을 수행합니다.
   1. 마우스를 옆으로 눕혀 측면 정맥 중 하나를 노출시키고 머리는 콧방울 안에 유지합니다.
   2. 꼬리를 히트 램프를 사용하여 따뜻하게 하고, 꼬리가 과열되거나 화상을 입지 않도록 주의하고, 알코올 닦아내기로 면봉으로 닦아 정맥을 확장시켜 주입 부위를 살균합니다.
   3. 경사가 위로 향하게 하여 바늘을 잡고 예각으로 정맥에 맞춥니다.
   4. 피부에 가볍게 압력을 가하여 피부에 구멍을 뚫고 바늘이 정맥과 일직선이 되도록 바늘을 평평하게 만듭니다.
   5. 바늘이 정맥으로 들어가도록 베벨을 몇 밀리미터 앞으로 부드럽게 밉니다.
   6. 식염수를 약간(10-20μL) 플러시하여 카테터가 삽입되었는지 확인합니다. 식염수는 주사기를 부드럽게 떠나야 하고 정맥은 깨끗해야 합니다. 저항이나 배압이 관찰되면 카테터가 정맥에 있지 않을 가능성이 높으므로 다시 캐뉼레이션을 시도하는 것이 좋습니다. 응고가 관찰되면 캐뉼레이션 설정 및 세척을 위해 헤파린(mL 식염수당 1,000 단위 헤파린)을 사용합니다.
      참고: 우리는 관심 마우스 균주에서 헤파린이 있거나 없는 캐뉼레이션을 평가했으며, 응고가 관찰되지 않았기 때문에 캐뉼레이션에 식염수만 사용되었습니다.
   7. 작은 조직 접착제 한 방울을 사용하여 카테터를 꼬리에 고정한 다음 수술용 테이프를 사용하여 마우스를 스캐너로 옮길 때 카테터가 움직이지 않도록 합니다.
   8. 카테터 끝에서 플러시 주사기를 제거하고 끝부분을 라이터로 밀봉하여 연구원이 이소플루란 또는 에탄올 근처에 있지 않은지 확인합니다.
   9. 스캔할 4개의 마우스가 모두 캐뉼레이션되고 준비되도록 3개의 추가 마우스에 대해 반복합니다.
6. PET/CT에 연결된 마취 흐름(2.5% 이소플루란, 2L/분 100% O₂)을 켜고 엎드린 마우스를 스캐너 베드에 조심스럽게 배치하여 카테터가 제자리에 유지되고 각 마우스의 머리가 콧방울 안에 곧게 펴지고 고정되도록 합니다. 부드러운 수술용 테이프로 각 마우스의 머리와 몸통을 침대에 테이프로 붙이고 테이프 배치로 인해 호흡이 제한되지 않도록 합니다. 이미지 분석을 위한 올바른 위치 및 그룹 할당을 허용하기 위해 각 마우스의 위치를 기록합니다.
7. 절차 내내 마우스를 가열하십시오(예: {{TAG_289 TAG_292}}예: {{}}는 생쥐가 과열되지 않고 따뜻하게 유지되도록 열 램프 또는 뜨거운 공기 펌프 시스템을 사용합니다). 개방형 갠트리를 사용하는 경우 시각적으로 또는 호흡 패드를 사용하는 원격 모니터링 시스템을 통해 모든 마우스의 호흡수를 모니터링하고 필요에 따라 마취 수준을 변경합니다.

4. CT 획득

1. 동물이 침대에 안정되고 안정되면 레이저 십자선을 켜고 스캔 침대를 움직여 4마리의 생쥐 모두의 뇌와 정렬되도록 합니다. 스캐너 베드를 마우스의 뇌가 FOV의 중심에 최대한 가깝게 하여 획득 위치(위치 3)로 이동합니다.
2. 마우스의 스카우트 뷰 이미지를 획득하여 위치를 확인하고(200mm FOV 사용) 필요한 경우 인터페이스에서 FOV 상자를 드래그하여 위치를 조정합니다. 스캐너 소프트웨어에서 "Start Workflow(워크플로우 시작)"를 클릭하여 CT 스캔을 시작하고, "display interactive user prompts(대화형 사용자 프롬프트 표시)"를 선택하여 추적자 주입 전에 PET 스캔을 수동으로 시작할 수 있습니다.

5. [¹¹C]DPA-713 투여제

1. 합성 [¹¹C]DPA-713, 방사능을 다루기 위해 실험복, 장갑, 개인 손가락 및 신체 선량계를 포함한 적절한 PPE(개인 보호 장비)를 착용하고 있는지 확인합니다. 방사능 오염을 방지하기 위해 장갑을 정기적으로 교체하고 가능한 경우 방사능 선원과의 거리를 늘리십시오.
2. 집게를 사용하여 방사성 추적자 바이알을 납 보호막 뒤로 조심스럽게 옮깁니다.
3. 60분 동적 PET 스캔에 적합한 용량을 보장하기 위해 100-200μL 부피에서 약 250-350μCi/9-13MBq를 포함하는 각 마우스에 대해 0.5mL 용량 주사기를 준비합니다(투여량은 동위원소의 반감기와 연구 설계의 타임라인을 고려하여 결정해야 하며, 용량은 마우스 무게에 따라 다름).
4. 도관 부위와 가까운 곳에 위치한 C-11로 설정된 용량 교정기를 사용하여 활성을 측정하고 측정 및 주입 시간을 기록하여 충치 보정을 가능하게 합니다. CT가 끝나기 직전에 선량을 기록하여 충치를 제한하고 원하는 수준의 방사능이 각 마우스에 주입되도록 합니다.
5. 활성을 측정하고 각 마우스에 주입하기 전에 투여 주사기에 기포가 없는지 확인하십시오.

6. PET 획득

1. 마우스가 CT에서 PET로 자동 진행하면 스캐너 뒷면을 [¹¹C]DPA-713 주입 (그림 1C)으로 설정합니다. 보호용 흡수성 패딩을 선반에 놓고 가위와 라이터가 가까이에 있는지 확인하십시오.
2. 밀봉된 카테터 튜브를 가위로 자르고, 카테터 라인에 기포가 없는지 확인하고, 10-20μL 식염수 세척을 수행하여 캐뉼라가 여전히 정맥 내에 있는지 확인합니다. 5.4단계에서 측정된 선량 주사기를 4개의 카테터 각각에 로드하고 각 마우스에 투여된 용량을 추적합니다.
3. PET 스캔을 시작할 준비가 되면 "확인"을 클릭하는 동시에 10초 타이머를 시작합니다. 두 명의 연구원을 스캐너 뒤쪽에 놓고 주사기를 손에 들고 타이머가 0이 되면 4마리의 마우스를 동시에 주입하도록 합니다. 각 카테터를 50-100μL의 식염수(카테터 튜브의 길이에 따라 다름 —, 즉 로 세척하여 전체 용량이 꼬리 정맥으로 들어가도록 하고 라이터를 사용하여 튜브를 다시 밀봉합니다.
4. 선량 교정기를 사용하여 선량 주사기를 측정하여 잔류 방사능 값(주사기에 남아 있는 추적자)을 구합니다. 값과 값이 기록되는 시간을 기록해 둡니다.
5. 스캔이 완료되면 모션 제어 패널 내의 수평 "홈" 버튼을 사용하여 PET 침대를 원래 위치로 이동합니다. 스캐너에서 마우스를 제거하고 카테터를 조심스럽게 제거합니다. 과도한 출혈을 방지하기 위해 캐뉼레이션 부위에 부드럽게 압력을 가합니다.
6. 용량 교정기를 사용하여 카테터의 잔류 활성을 측정합니다.
7. 쥐를 회수해야 하는 경우 회복을 용이하게 하기 위해 따뜻한 환경(예: {{TAG_441 TAG_444 TAG_442}}{{TAG_443 TAG_446}})에서 복구해야 합니다. 생쥐를 안락사시킬 계획이라면, 생쥐를 이소플루란이 함유된 유도실에 넣어 관류를 통한 안락사 전에 마취 상태를 유지하도록 합니다.
8. 데이터를 복원하려면 후처리 관리 소프트웨어(재료 표 참조)를 엽니다. 이 소프트웨어는 lst 파일에서 생성된 히스토그램 데이터를 사용하여 각 스캔을 자동으로 재구성합니다.

7. 동적 PET 이미지 분석

1. 이미지 분석 소프트웨어를 열고(재료 표 참조) "데이터 열기" 아이콘을 클릭하여 CT 이미지(소스)를 로드하고 "데이터 추가" 아이콘을 클릭하여 동적 PET를 참조로 로드합니다.

2. 드롭다운 메뉴에서 시계열 연산자를 통해 데이터의 시각적 품질 관리를 수행합니다: 참조("ref") 및 "global"을 선택하고 색상 스케일에 적절한 최소값 및 최대값을 적용합니다. 동적 PET 데이터를 프레임별로 시각화하여 방사능 흡수를 확인하고 스캔 내에서 교란되는 움직임이 있는지 확인합니다.

3. "산술 연산자"를 사용하여 평균 PET 이미지를 만듭니다.

1. "average selected"를 선택하고 "ref"를 선택 취소한 다음 입력 1("Inp1"), 입력 2("Inp2") 및 입력 별표("Inp*"-스캔의 나머지 PET 프레임 포함)가 선택되어 모든 PET 프레임의 평균을 생성하는지 확인합니다.

2. "데이터 관리자" 탭(DM)으로 이동하여 시각화를 위해 평균 이미지를 "input1" 위치로 드래그합니다. "min-max" 도구에서 자동 계산을 클릭하여 색상 스케일을 재분배합니다.

4. "방향 변경/정합" 드롭다운 메뉴의 "자동 3D" 기능을 사용하여 CT를 평균 PET 파일에 등록합니다. 위치

1. "ref" 및 "Inp1"을 선택하고 "rigid", "fast", "Inp1 to Ref" 등록을 선택합니다. 3차원 모두에서 정합을 육안으로 확인하고 필요한 경우 "수동 3D" 탭에서 "변환" 및 "회전" 기능을 사용하여 수동으로 조정합니다.

2. 등록이 만족스러우면 "Inp2" 및 "Inp*"를 선택하고 체크 표시를 클릭하여 모든 PET 프레임에 적용합니다. DM에서 CT 및 PET 파일을 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하고 원시로 저장합니다.

5. CT를 가이드로 사용하여 뇌 분석을 위해 한 번에 한 마우스의 뇌 자르기: 드롭다운 메뉴에서 "자르기"를 선택하고 이미지 경계를 드래그하여 뇌간 아래에 있는 마우스 머리를 자릅니다. 위에서 설명한 대로 "수동 3D 방향 전환" 기능을 사용하여 두개골이 모든 차원에서 직선이 되도록 PET 및 CT 이미지의 방향을 재지정합니다.

6. 인터페이스의 왼쪽 상단에 있는 "데이터 추가" 버튼을 사용하여 해당 마우스(DICOM 형식)에 대한 MR 이미지를 로드합니다. "수동 3D 방향 전환"을 사용하여 MR을 이동하고 CT 이미지 내의 두개골에 맞춥니다(모든 양식이 동일한 방향에 있는지 확인).

7. "3D ROI 도구"를 사용하여 MR 이미지에 스트로크 ROI를 그립니다.

1. 시각적 컨트롤러 탭(VC)에서 PET 시각화를 선택 취소하여 끄고 MR과 CT만 사용하여 ROI를 그립니다.

2. "ROI 추가" 버튼을 클릭하여 새 ROI를 생성하고 이름을 "infarct"로 지정합니다. "스플라인 도구"를 선택하고 마우스 왼쪽 버튼을 클릭하여 ROI 경계를 그리고 마우스 오른쪽 버튼을 클릭하여 닫습니다.

3. 스트로크를 포함하는 모든 슬라이스에 대해 반복하여 ROI에서 두개골을 캡처하지 않도록 하고 가장 좋은 방법은 두개골 테두리와 스트로크 ROI 사이에 복셀 간격을 두는 것입니다.

8. 경색 부피를 사용하여 반대쪽 ROI를 생성합니다.

1. 새 ROI를 만들고 "반대쪽"이라는 레이블을 지정합니다. Infarct ROI를 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하고 "내보내기"를 선택합니다. ROI를 위치 2("Inp1")로 드래그합니다.

2. "Inp1"만 선택한 상태에서 "재방향/등록" 메뉴의 "연산자" 기능을 사용하여 왼쪽 오른쪽 뒤집기를 적용합니다. "ROI" 상자를 선택하고 "보기 전용"을 선택한 다음 새 ROI를 반대쪽 동일한 영역으로 수동으로 이동합니다. "산술" 연산자를 선택하고 새 ROI에 스칼라 곱셈 2를 적용하여 ROI를 독립적으로 정량화할 수 있습니다.

3. 3D ROI 도구로 돌아갑니다. "전문가 및 실험적" 탭으로 이동하여 "ROI 가져오기" 버튼을 클릭합니다. 대화 상자에서 Inp1을 선택하여 새 볼륨을 반대 ROI로 로드합니다.

9. 평균 PET 이미지를 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하고 언로드한 다음 PET를 다시 켭니다. 3D ROI 도구 내의 "Export Results" 아이콘을 사용하여 정량적 흡수 결과를 생성합니다.

10입니다. 원하는 경우 추가 분할 뇌 분석을 수행합니다(즉, Vivoquant 소프트웨어용 3D 마우스 뇌 아틀라스 플러그인 모듈을 사용하여 우뇌 대 좌뇌 반구 영역의 자동 ROI 생성).

1. 등록된 PET/CT 이미지를 다시 로드합니다.

2. "고급 모듈" 메뉴를 클릭하고 3D 브레인 아틀라스 도구를 선택하여 마우스 브레인 아틀라스를 가져옵니다. "고급 설정"에서 "모든 지역 왼쪽/오른쪽"을 선택하고 "실행"을 클릭하여 3D 아틀라스를 가져옵니다.

3. 두개골을 경계로 사용하여 뇌 내부에 아틀라스를 수동으로 맞춥니다.

4. 아틀라스를 다시 실행하여 14개의 좌반구 및 우반구 ROI(수질, 소뇌, 중뇌, 폰스, 피질, 해마, 시상, 시상하부, 선조체, 팔리덤, 후각구, 말뭉치 및 백질)에 대한 결과 스프레드시트를 생성합니다.

11. 스캐너 운영 소프트웨어를 사용하여 비장에서 추적자 흡수를 정량화합니다(재료 표 참조).

1. PET 및 CT 이미지 파일을 데이터베이스에서 강조 표시하고 "일반 분석"을 클릭하여 로드합니다.

2. 등록 탭을 클릭하고 "rigid registration" 아이콘을 클릭하여 PET 및 CT 이미지를 공동 등록합니다.

3. ROI 정량화 탭을 클릭하고 "ROI 생성" 아이콘을 클릭한 다음 이름을 spleen으로 지정합니다.

4. "구체" 도구를 선택하여 참조용 CT 파일을 사용하여 비장 ROI를 그리고, 신장 흡수와 겹치지 않도록 합니다(신장에서 유출을 방지하기 위해 PET 이미지 및 신호 사용).

5. 동물 간의 ROI 볼륨을 일관되게 유지하기 위해 ROI를 편집합니다.

12. 흡수 정규화에 대한 표준 보정 값을 계산합니다.

1. 표준 스캔에서 PET/CT 데이터를 로드하고 "수동 3D ROI" 도구를 사용하여 20mL 주사기를 포함하는 실린더 ROI를 생성합니다.

2. 스프레드시트 아이콘을 사용하여 표준에 포함된 방사능 수준을 얻습니다.

3. 이 nCi/cc 결과와 표준에 대해 기록된 원본 방사능(즉, nCi/cc 단위의 표준의 선량 교정기 측정)을 사용하여 PET 흡수 값에 대한 보정 계수를 생성합니다. 즉, 선량 교정기에 의해 기록된 표준의 방사능을 표준의 PET 이미지에서 계산된 방사능으로 나눕니다.

13. 투여 활동과 측정 시간을 사용하여 모든 마우스의 PET 획득 시간으로 정확하게 감소합니다(즉, PET 스캔 시작 시 투여 활성도 계산).

14. 잔여 값에 대해 반복하고 충치 보정 복용량에서 빼서 각 동물이 받은 정확한 활성을 계산합니다.

15. 이 감쇠 보정을 적용한 후 표준 보정도 적용하여 데이터가 올바른 작업 수준에 있는지 확인합니다. 이러한 수정이 수동으로 그려진 ROI 결과와 브레인 아틀라스 ROI 데이터에 dMCAO 위치(즉, 피질, 해마 및 선조체)와 관련된 뇌 영역에 적용되는지 확인합니다.

16. 다음 방정식을 사용하여 모든 ROI에 대한 %ID/g를 계산합니다: %ID/g = (ROI 방사능(nCi/cc) / 감쇠 보정 선량(nCi/cc) x100. 각 ROI에 대한 시간 활동 곡선을 생성하기 위해 그래프 소프트웨어를 사용하여 %ID/g를 시간 함수로 플롯합니다.

17. 최종 이미지 시각화 및 그림 생성을 위해 스캐너 소프트웨어를 사용하십시오. 스캔 시 각 마우스가 받은 감쇠 보정 선량에 따라 이미지를 정규화하여 모든 이미지가 동일한 %ID/g 스케일에 있는지 확인합니다.

참고: 이것은 다른 마우스의 이미지 및/또는 다른 날에 수행된 연구의 이미지를 정확하게 비교할 수 있도록 하는 데 필요합니다.

결과

재료

이 논문에 사용된 재료 목록

이름	회사	카탈로그 번호	댓글
Inveon PET/CT 스캐너	Siemens	버전 4.2
VivoQuant 소프트웨어	InVicro	버전 2.5	이미지 분석 소프트웨어
Inveon Research Workspace 소프트웨어	Siemens	버전 4.2	스캐너 운영 소프트웨어. microQView, 후처리 관리 소프트웨어 포함
Dose calibrator	Capintech		CRC-15 PET
Typhoon 형광체 이미저 9410	GE Healthcare	8149-30-9410
나비 카테터	SAI Infusion Technologies	BFL-24	27.5 G 바늘
1mL 주사기	BD
인슐린 주사기	BD	329461	0.5mL 인슐린 주사기
20 mL 주사기	VWR	BD302831	BD 주사기 슬립 팁 눈금
조직 접착제	Santa Cruz Animal Health	sc-361931	3 mL
열 램프	fluker	27002	5.5" 클램프와 스위치가 있는 파충류 열 램프
0.9% 멸균 식염수	Pfizer	00409-4888-10	0.9% 주사용 염화나트륨, 10mL
Chux 흡수 시트	ThermoFisher Scientific	1420662	일회용 흡수성 패딩
아이리스 가위	World Precision Instruments	503708-12	11.5cm, 스트레이트, 12팩
수술용 테이프	3M Durapore	1538-0	1/2"X10 yard roll, silk, hypoallergenic
마우스 PET 침대			4 마우스 PET 침대
라이터	Bic	UDP2WMDC
Isoflurane	Henry Schein	ndc 11695-6776-2	Isothesia, 흡입 마취제, 250 mL
Oxygen	Praxiar	UN1072	Compressed gas
눈 윤활제	왓슨 럭비	PV926977	인공 눈물 윤활제 눈 연고, 1/8 oz