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동물 샘플과 관련된 모든 절차는 해당 동물 윤리 검토에 의해 검토되고 승인되었습니다..
1. 망막 조직의 준비 (2 h)
참고: 이 섹션의 모든 절차는 희미한 빨간색 조명 아래에서 수행해야 합니다.
- 해부 전 최소 1시간 동안 동물을 어둡게 적응시킵니다. 희미한 빨간색 조명 아래에서 모든 절차를 수행합니다.
- CO2 질식시키고 안구를 이전에 산소가 공급된 세포외 용액이 있는 페트리 접시로 적혈화합니다.
- 각막을 바늘로 찔러 안과 가위로 각막과 공막의 경계를 잘라냅니다.
- #5 집게를 사용하여 렌즈를 제거합니다. 겸자로 공막을 부드럽게 찢고 망막과 공막이 만나는 시신경을 절단합니다. 망막에서 공막을 조심스럽게 제거합니다.
- # 5 집게를 사용하여 투명한 유리체를 제거하십시오. 일단 제거되면 유리체는 겸자에 붙어있는 젤라틴 같은 물질로 나타납니다. 망막을 반으로 자르고(4개/동물이 있도록) 사용할 때까지 산소가 공급된 세포외 용액에 RT로 보관합니다.
- 기록 챔버에 조직을 장착할 준비가 되면 500μL의 산소가 공급된 세포외 용액에 희석된 효소 용액에 망막 조각을 넣어 배양합니다. 페트리 접시에 넣고 셰이커에 올려 실온(RT)에서 2분간 배양합니다.
- 산소가 공급된 세포외 용액으로 망막 조각을 씻고 조직을 유리 바닥 기록 챔버에 넣으십시오. 조직에 손상을 주지 않고 망막이 전달될 수 있도록 끝이 잘린 플라스틱 전사 피펫을 사용하십시오.
- 집게를 사용하여 광수용체층이 아래를 향하도록 조직을 조심스럽게 평평하게 만듭니다. 피펫을 사용하여 과도한 액체를 제거하십시오. 나일론 메쉬가 있는 백금 링을 사용하여 조직을 고정합니다.
참고: 이 방법은 표지된 무축삭 및 양극성 세포에서 RNA를 분리하기 위해 조직을 준비하는 데에도 사용할 수 있습니다. - 산소가 공급된 세포외 용액으로 챔버를 채우고 현미경 스테이지에 장착합니다. 산소가 공급된 세포외 용액으로 조직을 2-4mL/분으로 관류합니다.
3. GFP+ 망막 신경절 세포의 시각화 및 타겟팅 (10분)
참고: 이 섹션의 모든 절차는 희미한 빨간색 조명에서 수행해야 합니다
- IR-DIC(Infrared Differential Interference Contrast) 광학 장치(그림 1A). epifluorescence (~480 nm)를 사용하여 녹색 형광 단백질(GFP) + 망막 신경절 세포(RGC) 식별(그림 1B).
- DIC에서 세포 내 용액으로 채워진 피펫을 찾습니다. 약간의 양압과 0 볼륨을 적용하십시오.tage 오프셋 amp리퍼.
- 유리 마이크로피펫을 GFP+ 세포에 대고 누르고 음압을 가하여 피펫과 세포막 사이에 GΩ 밀봉을 형성합니다. 테스트 전압 명령 단계 적용 (e., 5mV)를 사용하여 밀봉 저항을 모니터링합니다. 안정적인 밀봉을 형성한 후 짧은 음압 펄스를 가하여 멤브레인을 파열하여 전체 세포에 접근할 수 있도록 합니다.
- 세포의 수상돌기가 형광 추적기로 채워질 때까지 1-2분 정도 기다립니다.
참고: 세포는 형광에서 형태학을 검사하여 형태학적으로 유형화할 수 있습니다(그림 1C). 멜라놉신 발현 망막 신경절 세포의 경우, 에피형광 조명 하에서 형광 추적자로 채워진 수상돌기를 검사하고 OFF 아층의 소마에서 멀리 떨어진 곳(M1 ipRGCs), ON 아층판의 신경절 세포층 근처(M2 & M4 ipRGCs) 또는 둘 다(M3 ipRGCs)를 측정하여 내부 망상층의 수상돌기 층화를 시각화합니다. 이 관찰은 소마 크기(M4는 다른 모든 ipRGC 아형에 비해 뚜렷하게 큰 소마를 가지고 있음)와 결합되어 세포 유형을 식별할 수 있습니다. 따라서 이 기술을 사용하면 셀 유형을 식별할 수 있습니다 in vitro RNA 분리 전. 이 방법은 수지상 형태학 또는 세포 생리학을 포함하는 다른 세포 유형 식별 프로토콜에 맞게 수정할 수 있습니다.