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방법 논문

흩뿌려진의 제목 셀 캡슐화

8.3K 조회수

DOI:

10.3791/316

2007년 10월 1일

이 논문에서

프로토콜

NIH3T3 세포 준비 :

탈출을위한 A. 셀

  1. 다음 세포, 세포 매체와 희석 1시 1분, 그리고 T75 플라스크에서 15 ML 팔콘 튜브로 전송 Trypsinize
  2. , centrifuging하여 펠렛으로 세포를 스핀 다운 뜨는을 기음과 DPBS로 세포를 씻어
  3. 다시 펠렛으로 세포를 스핀 다운 및 뜨는을 기음
  4. 미디어 Resuspend 세포
  5. hemocytometer (~ 200 T75 플라스크 당 X 10 4 셀 / ML)의 세포 밀도를 결정
  6. 원심 분리기 세포 솔루션은 뜨는 대기음 및 세포 농도 변화에 대한 미디어의 적절한 금액에 resuspend

B. 세포 방출

  1. 방출을 위해 사용하기 전에 소용돌이 세포
  2. 주사기로 세포 솔루션을 200 μL를 전송
  3. 펄스 발생기에 적절한 모드를 설정
    1. 꺼내기 한 방울 여러 방울을 위해 (파열), "E. 버"모드로 펄스 발생기를 설정
    2. 연속 비말의 방출 들어, "상식을 훨씬"모드로 펄스 발생기를 설정
  4. 신호 설정 변경
    1. 5 V 및 LOL 0 V 및 확인 "LIM"LED가 켜져입니다 힐러리 : 높은 수준과 낮은 수준의 출력 전압을 설정
    2. 사각형 펄스로 신호를 설정
    3. ( "의무") 솔레노이드 밸브가 '졌 그나 "에 대한 값을 변경하거나 듀티 사이클을 변경하여 비말의 방출을 위해 열려있는 시간을 변경
    4. 'PER'에 대한 값을 변경하여 배출의 주파수를 변경
    5. "버"에 대한 값을 변경하여 버스트에 탈출 방울의 개수를 변경
  5. 현미경으로 영상 준비 기판에 추출 세포 솔루션

C.의 스테 이닝

  1. 0.5 μL calcein - AM 및 DPBS의 ML 당 2 μL ethidium의 homodimer로 염료 용액을 만들어
  2. 염색 용액에 담가 준비 기판
  3. 샘플 37 10 분 동안 부화 허용 ° 이미징하기 전에 C를

실험 검증

  1. 니콘 이클립스 TE - 2000 U 형광 현미경에서
    1. 스팟 고급 소프트웨어 (진단 주식 회사)
    2. 데드 / 라이브 어세이

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공개 사항

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
형광 현미경Nikon InstrumentsEclipse TE-2000 U
솔레노이드 밸브 세포 이젝터작동 주파수: 1 KHz, 30psi, 50nl~0.5ul. 12V 밸브 드라이버: 2.5 Amp 구동 전류
5갤런 휴대용 공기 탱크ColemanPowermate CT5가압 공기: 30 PSI
압력 조절기Marsh Bellofram
펄스 발생기HP8112A구동 주파수 생성: 50 MHz
XYZ-스테이지Newmark Systems스테핑 모터 포함: 6inch 이동 xy-스테이지(NLS4-6-25), 2.5inch 이동 z-스테이지(NLS4-2.5-25), 3축 컨트롤러(NSC-G3), 0.1um 분해능
NIH 3T3세포주섬유아세포
Trypsin0.05% 용액
NIH 3T3 세포 배지
DPBS완충액
T75조직 배양 플라스크
플라스틱 원뿔형 튜브15 ml, 조직 배양용

재인쇄 및 허가

태그

액적 프린팅세포 프린팅솔레노이드 밸브전동 스테이지세포 밀도혈구계수기라이브-데드 분석Calcium AMEthidium Homodimer