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방법 논문

유도 된 신경 세포로 성숙한 인간 두뇌의 혈관 주위 세포에서 파생 된 세포의 리니지 - 프로그래밍

11.6K 조회수

⸱

DOI:

10.3791/51433

⸱

2014년 5월 12일

 ,  ,  , 
1Department of Physiological Genomics, Institute of Physiology, Ludwig Maximilians University Munich, 2Tumor Biology Lab, Neurosurgical Clinic, Ludwig-Maximilians University Munich, 3Institut für Biochemie, Emil-Fischer-Zentrum, Friedrich-Alexander-Universität Erlangen-Nürnberg, 4Institute of Physiological Chemistry and Focus Program Translational Neuroscience, Johannes Gutenberg University Mainz

이 논문에서

요약

직접 혈통 프로그래밍에 대한 뇌 상주 세포를 표적으로하는 것은 뇌 수리에 대한 새로운 관점을 제공합니다. 여기서 우리는 성인의 대뇌 피질에서 뇌에 상주하는 혈관 주위 세포에 풍부한 문화를 준비하고 SOX2 및 Ascl1 요인 전사의 레트로 바이러스 매개 식에 의해 유도 된 신경 세포로 이러한 변환하는 방법의 프로토콜을 설명합니다.

초록

유도 된 신경 세포 (INS)에 비 신경 세포의 직접 혈통 프로그래밍은 신경의 근간이되는 분자 메커니즘에 대한 통찰력을 제공하고 체외 모델링하거나 병에 걸린 뇌를 복구하기위한 새로운 전략을 가능하게 할 수있다. INS로 직접 변환 의무 식별 뇌 상주 비 신경 세포 유형은 손상된 뇌 조직 내에서, 즉, 현장에서 이러한 접근 방식을 실행을 허용 할 수 있습니다. 여기에서 우리는이 전제를 충족 성인의 뇌에서 파생 된 세포를 식별하는 시도에서 개발 된 프로토콜을 설명합니다. 이 프로토콜은 수반 : 성인 인간의 뇌 생검 의한 대뇌 피질에서 인간 세포의 (1)를 배양; (2) 시험 관내 (약 2-4주 필요) 확장 및 면역 세포에 의해 문화의 특성 및 유동 세포 계측법; (3) 항 PDGF 수용체 β 및 안티 CD146 항체를 사용하여 (FACS)를 정렬 형광 활성화 된 셀에 의해 농축;(4) 신경성 전사와 레트로 바이러스 매개 전달은 SOX2 및 ascl1 요인; (5) 마지막으로 면역 세포에 의해 생성 된 혈관 주위 세포 유래 유도 된 신경 세포 (PdiNs)의 특성 (8 주 14 일 레트로 바이러스 형질 도입에 따라). 이 단계에서, 인은 패치 클램프 녹음하여 전기적 특성에 대해 탐색 할 수 있습니다. 이 프로토콜은 기능적인 인간의 기능에 뇌 상주 혈관 주위 세포의 체외 혈통 전환에 대한 높은 재현성 절차를 제공합니다.

서론

다시 분화 가능성의 과다 부여하는 유도 만능 줄기 세포로 체세포 (유도 만능), 프로그래밍과 달리, 직접 프로그래밍은 다른에 하나의 특정 세포 유형의 연속 변환을 위해 목표로하고있다. 질병 모델링 및 잠재적 인 세포 기반 치료의 맥락에서 자신의 응용 프로그램에 대해, 모두 프로그래밍 방식은 특정 장점과 단점이 있습니다. 유도 만능 (I)에 프로그램을 다시 만들 것은 세포의 거의 무한한 소스를 제공한다; (II) 유전 공학을 허용한다; (III) 거의 무제한의 분화 가능성에 부여한다. 이러한 세포는 세포 기반 치료에 사용되어야하는 경우에는 유도 만능의 주요 단점은 미분화 세포 (생체 내에서 기형 종 형성)의 발암 및 생체 외 배양과 후속 이식을위한 필요성의 위험을 수반한다. 반대로, 직접 혈통 프로그래밍은 원하는 세포의 낮은 수율에 의해 제한됩니다출발 인구의 표적 세포의 수와 직접 관련이 있지만, 계통 - 리 프로그래밍 세포 이식 1,2에 제공된 발암 위험을 나타내지하지 나타나는 장점을 보유하는; 또한, 직접 프로그래밍도, 즉 이들 세포는 따라서 이식 필요성을 피하고, 필요한 것 장기 내에, 동일계에서 달성 될 수있다.

이 염두에두고, 우리의 실험실은 신경 퇴행성 질환의 세포 기반 치료법​​을 향한 새로운 접근 방식으로 기능에 혈통 재 프로그래밍 뇌 상주 세포의 가능성을 추구하고있다. 잠재적 혈통 프로그래밍 셀룰러 대상으로 고려 될 수있다 뇌 상주 세포는 다른 macroglia의 유형 (성상 세포, NG2 세포 및 희소 돌기 아교 세포), 미세 아교 세포 및 미세 혈관 관련 세포 (내피 세포와 혈관 주위 세포)를 포함한다. 우리는 광범위하게 대뇌 고전의 아스트로의 체외 프로그램을 다시 만들 가능성을 연구 한출생 초기 마우스 3-5 텍스. 성인의 뇌에 직접 혈통 프로그래밍에 대한 유사 적합한 세포 소스의 검색, 우리는 성공적으로 기능과 혈관 주위 세포의 전시 품질 증명으로 다시 프로그램 할 수있는 세포 인구가 발생했습니다. 여기에서 우리는 확장하고 체외에서이 세포를 풍부하게, 그리고 마지막으로 성공적으로 (25 ~ 30 % 범위)이 체외 확장 된 세포의 상당 부분을 재 프로그램하는, 성인의 뇌 조직 검사에서 이러한 세포를 수확하는 방법에 대한 프로토콜을 설명 기능. 리 프로그래밍은 두 개의 전사 인자, SOX2 및 ascl1 동시에 레트로 바이러스 - 매개의 공동 발현에 의해 달성 될 수있다. 이러한 PdiNs는 반복적 활동 전위 소성 능력을 취득하고 신경망으로 통합 그들의 능력을 나타내는 다른 뉴런뿐만 시냅스 대상 서브 밝혀졌다. 우리의 프로토콜은 기능에 성인의 뇌 혈관 주위 세포의 분리 및 혈통 전환을위한 간단한 절차를 제공합니다.

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프로토콜

1. 분리 및 성인의 뇌 세포의 배양

인체 조직과 관련된 실험은 연구 목적으로 인간 재료의 사용에 관한 모든 관련 정부 기관 및 규정에 따라 수행되어야한다. 본 프로토콜은 LMU 뮌헨의 의료 학부의 윤리위원회와 모든 환자의 서면 동의서의 승인에 따라 개발되었다.

성인의 대뇌 피질의 준비 문화의이 프로토콜은 측두엽 간질 또는 기타 뿌리 깊은 비 외상성, 비 악성 병변으로 고통받는 남녀 환자의 검체를 사용하여 설립되었습니다. 따라서 뇌 병변 액세스 채널에서만 이루어지는 수술 방으로부터 얻은 조직은 건강한 여겨진다. 환자의 연령 범위는 19-70년했다.

  1. 열 - 불 활성화 소 태아 혈청을 첨가하여 성장 배지를 준비루타 가진 DMEM 고 글루코스 행 (FCS) 20 % FCS의 최종 농도를 얻었다. 500 ㎖의 성장 매체의 총 5 ㎖ 페니실린 / 스트렙토 마이신을 추가합니다. 이것과 적절한 층류 후드에서 무균 배양 조건을 요구하는 모든 후속 단계를 수행한다.
  2. 염화칼슘 처리 될 때까지 얼음에 HEPES (10 mM의 최종 농도) 등의 MgCl2를 (HBSS) 매체와 행크스 '균형 염 용액의 수술 방에서 얻은 성인의 뇌 생검을 유지합니다. 가능한 한 빨리 처리를 시작합니다.
  3. 65mm 페트리 접시에 조직을 전송하고 두 멸균 일회용 메스를 사용하여 작은 조각으로 말하다, 단일 세포로 분리를 시작합니다. 소화 효소를 들어 15 ML 원뿔 튜브에 3-6 ML TrypLE를 사용하고 물을 욕조에 37 ° C에서 15 ~ 30 분 동안 품어.
  4. 해리를 촉진하는 예비 가온 성장 배지의 1 부피를 추가하고 온화 우선하여 상하 조직 조각을 함유하는 용액을 씹다세포 현탁액을 균질화 될 때까지 유리 파스퇴르 피펫을 사용하여 다음 5 ㎖ 일회용 피펫. 일반적으로, 대부분 흰색 물질로 구성된 일부 잔여 조직의 조각, 서스펜션에 남아 있습니다.
  5. 5 분 157 XG에 스핀 다운 및 성장 매체의 적절한 양 (코팅 T75 문화 플라스크 당 10 ml)에 펠렛을 재현 탁. 크기 5 ~ 10 mm 직경의 조직 검사에 대해 하나의 T75 문화 플라스크를 사용하여 더 큰 표본의 경우이에서 추정.
  6. 5 % CO 2 5 % O 2와 37 ° C 배양기에 세포를 놓습니다.
  7. 세포가 포화 상태에 도달 할 때까지 모든 3-4일 매체의 절반을 교체합니다. 이것은 일반적으로 (통로 0 [P0]라고 함) 최대 2 주가 소요됩니다.

성인의 뇌 세포의 2. 체외 확장 및 특성

  1. 체외 확장의 :
    1. 문화 매체를 기음과 인산염 완충 생리 식염수 (PBS)로 세척, 방 t에서 유지온도계 수, 3 ㎖의 TrypLE를 추가하기 전에.
    2. 세포의 대부분이 분리 될 때까지 5 ~ 10 분 동안 37 ° C에서 알을 품다. 부드럽게 세포의 리프팅을 용이하게하기 위해 플라스크를 살짝; 성장 배지 중에서 볼륨을 첨가 한 다음, 15 ㎖의 원뿔형 튜브에 세포를 전송하고 5 분 동안 157 XG에 스핀 다운 및 성장 배지의 적절한 양으로 세포를 재현 탁.
    3. 통로 새로운 T75 세포 배양 플라스크에 최적 수율 1:3 세포.
      참고 :이 감소 프로그래밍 효율의 흔적없이 P5 때까지이 세포를 계대 배양했다. 문화가 내피 세포의 상당한 부분을 (CD34 발현에 의해 평가)가 포함 P0에있는 동안, 다음 구절에 자신의 번호가 무시됩니다.
  2. 성인의 뇌 문화의 특성 :
    1. 면역 세포 화학 :
      1. 폴리 - D - 라이신 코팅 커버 유리 위에 세포, 씨 ~ 60,000 세포의 특성을 500 ㎕의 신선한 성장 mediu에 미끄러 져24 잘 조직 배양 접시에있는 m와 5 % CO 2 5 % O 2와 37 ° C에서 알을 품다.
      2. 배양 된 인간의 뇌 세포의 면역 세포 화학 분석 배지를 제거하고 PBS 1 ㎖로 3 회 세척 하였다.
      3. 실온에서 15 분 동안 PBS 중 4 % 파라 포름 알데히드 500 ㎕를 첨가하여 세포를 고정한다.
      4. 커버 유리가 적절한 가습 염색 챔버에 미끄러 져 이동하고 80 ㎕의 PBS 실온에서 1 시간 동안 3 % 소 혈청 알부민 (BSA) 및 0.5 % 트리톤 X-100을 함유하는 블록.
      5. 동일한 솔루션에 희석 차 항체 (희석 요인이 특정 시약 및 장비의 표를 참조하십시오) 추가하고 실온에서 4 ° C에서 또는 1 시간에서 밤새 품어.
        주 : 배양이 단계에서 세포의 상당하지만, 다른 부분은 (PDGFRβ) 혈소판 유래 성장 인자 수용체 β에 대한 면역 반응하고, 차별화 146 (CD146), NG2 콘드로이틴 황산 proteo의 클러스터글리 칸, 평활근 액틴 (SMA), 미세 혈관 관련 혈관 주위 세포의 특성 즉, 마커. 단지 소수 (<1 %)이 astroglial 마커 아교 섬유 성 산성 단백질 (GFAP)과 S100β을 표현한다. 또한,이 단계에서의 문화는 신경 세포 마커 βIII-튜 불린을 표현하는 세포의 결여해야한다. 다른 마커의 공동 표시에 대해 여러 차 항체의 조합을 사용합니다. 아교 세포, 신경 세포, 내피 세포 및 혈관 주위 세포 마커의 발현의 추가의 확인은 역전사 (이 프로토콜에서 설명하지 않음) 정량적 실시간 중합 효소 연쇄 반응에 의해 얻을 수있다.
      6. 함께 배양 한 다음 차 항체는 1 ml의 PBS로 3 회 세척하고 염색 용액에 (적절한 희석에) 해당 보조 항체를 추가하고 어둠 속에서 실온에서 1 시간을 품어. 세포를 PBS로 3 배 씻으십시오. 필요한 경우, 이전 설치에 방에서 5 분 DAPI로 염색을 포함온도.
      7. 설치 매체를 antifading 사용하여 표면 형광 현미경이나 공 초점 현미경을 사용하여 커버 전표를 분석합니다.
    2. 유동 세포 계측법 :
      1. 유동 세포 계측법을 사용하여 표면 마커의 발현 분석을 위해, 코팅 T25이나 T75 세포 배양 플라스크에 포화 상태로 세포를 성장.
      2. PBS + 0.5 % BSA로 구성된 염색 용액에 전후에 resuspend 바와 같이 TrypLE를 사용하여 세포를 분리. 염색 반응에 대해, 염색 용액 100 μL에 100,000-200,000 세포를 재현 탁. (CD146-FITC, CD140b-PE, CD34-APC, CD13-FITC, 각각의 이소 제어 항체)를 사용 항체 당 하나의 염색 반응을 준비합니다.
      3. 직접 세포 현탁액에 (희석 특정 시약 및 장비의 표를 참조하십시오) 각 염색 용액에 형광 색소 - 복합 항체를 추가하고 어둠 속에서 30 분 동안 4 ° C에서 알을 품다.
      4. 500 ㎕의 PBS로 세포를 세 번 세척하고 각각의 사이에 스핀 다운5 분 157 XG에 세척 단계.
      5. FACS 튜브에 세포 고사 (70 μM)를 통해 0.5 ml의 염색 액에 전사 세포에서 세포 펠렛을 재현 탁. 빛에 노출 샘플을 보호합니다.
      6. 이전 FACS 악기에 배치에 소용돌이 샘플.
      7. 살아있는 세포를 분석하고 파편과 세포 집합체, FSC-A에 대한 게이트와 SSC-A를 제외합니다. 휴대 duplets은 특히 FSC-A와 FSC-W에 의해 문이 있습니다. 각각의 형광 색소에 접합 이소 일치 항체 제어 게이트를 설정 세포 표면 마커에 대한 올바른 게이트 조건을 결정합니다. 그런 항체 바인딩 세포의 비율을 결정합니다.

정렬 형광 활성화 된 세포에 의한 혈관 주위 세포에서 파생 된 세포 3. 심화

  1. FACS는 70 μm의 노즐을 사용하여 선별을 통해 이전에 형질 도입 (성장 배지에 재현 탁) 주연 세포 세포 집단을 정제. C와 함께 CD34-APC를 사용D140b-PE와 CD146-FITC는 혈관 주위 세포에 선택합니다. CD34 음성, CD140b-, 및 CD146-양성 세포에 대한 정렬.
  2. 24 잘 조직 배양 플레이트에서 미끄러 져 폴리 - D - 라이신 코팅 유리 덮개에 성장 매체와 플레이트에 정렬 된 세포를 수집하고 5 % CO 2 5 % O 2와 37 ° C에서 알을 품다.
  3. 정렬 후 48 시간 신선한 성장 매체와 매체를 교체하고 프로토콜 4에 설명 된대로 전달을 수행합니다.

4. 레트로 바이러스 혈관 주위 세포에서 파생 된 세포의 형질 도입 및 유도 신경 세포로 재 프로그램

참고 : 레트로 바이러스 입자를 처리하는 지역 바이오 안전성 지침을 참조하십시오. 독일에서는 여기에 사용되는 레트로 바이러스의 사용은 바이오 안전성 레벨 2가 필요합니다. 레트로 바이러스 입자의 생산이 프로토콜 6을 참조하십시오. 프로그래밍에 사용되는 레트로 바이러스 구조의 경우, Karow 등을 참조하십시오. (2012). 레트로 바이러스는 VSV-G (수 포성 구내염 바이러스-글리코와 pseudotyped했다단백질) 5. 생산 Gavrilescu 외 여러분 6을 참조하십시오.

  1. 이전의 폴리 - D - 라이신 코팅 커버 유리 위에 레트로 바이러스 전달 씨 ~ 60,000 세포에 24 시간은 24 잘 조직 배양 플레이트에 500 ㎕의 신선한 성장 매체에 미끄러 져와 5 % CO 2 5 % O 2와 37 ° C에서 알을 품다 .
  2. 다음날, 500 ㎕의 신선한, 데워진 성장 매체로 성장 매체를 교체하고 레트로 바이러스 입자 (제어 pCAG-IRES-DsRed를, 특히 실험실에서 프로토콜을 설정하는 동안), pCAG-ascl1을 포함하는 각각의 집중 상층 액 1 μl를 추가 pCAG-SOX2-IRES-GFP-IRES-DsRed를.
  3. 어느 날 후, 세포에서 바이러스 입자를 포함하는 매체를 제거하고 신선한 1 ㎖를 추가, 루타 49 ML DMEM 높은 포도당과 1 ㎖의 B27의 혈청 보충으로 구성, B27-분화 매체를 데워진. 5에서 37 ° C에서 문화의 세포를 유지% CO 2와 기능이 성숙 반복 매체의 변화는 유해 해짐에 따라 매체를 변경하지 않고 4-8주 5 %의 O 2.

면역 세포에 의해 유도 된 신경 세포의 5. 특성

  1. 형질 세포의 세포 신원을 확인하기 위해 신경 세포의 표현형의 인수를 입증 할 특히, 특정 시약의 표를 참조 항체와 각각의 희석을 위해 (예 : 빌 - 튜 불린, MAP2 및 노이 앤 등의 신경 항원에 대한 면역 세포 화학을 수행하고 장비, 2.2.1에 표시된대로) 절차를 따릅니다.
  2. E14 마우스 대뇌 피질에서 파생 된 신경 세포와 PdiNs, 공동 문화 이들 세포의 성숙을 개선하십시오. 이를 위해, 대뇌 피질을 해부 화재 광택 유리 파스퇴르 피펫으로 기계적으로 조직을 떼어 놓다. SOX2 및 ascl1 인코딩 다시 함께 전달 다음 혈관 주위 세포에서 파생 된 세포 2~3주의 문화에 10,000-50,000 쥐의 뉴런을 추가troviruses 및 배양을 계속합니다. 형질 세포는 살아있는 표면 형광 또는 GFP와 DsRed를 위해 면역 세포를 다음 중 하나를 자신의 기자 (GFP와 DsRed를) 식으로 쥐의 뉴런과 구별 할 수 있습니다.
  3. , 쥐의 뉴런에 의해 PdiNs에 시냅스의 형성을 평가하는 등의 기공을 갖는 글루타민산 염 트랜스 포터 1 (vGluT1) 등의 기공을 갖는 신경 전달 물질 수용체에 대한 면역 형광 염색법을 수행 할 수 있습니다.
  4. 자신의 전기적 특성 (활동 전위를 생성 즉, 능력) 및 패치 - 클램프 전기 생리학 기능적인 시냅스의 설립을위한 형질 세포를 조사. 절차에 대한 자세한 내용은을 참조하십시오 하인리히 등. (2011).에게

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결과

이 프로토콜은 후 성공적으로 성인의 대뇌 피질의 표본에서 문화를 확립의 첫 번째 결과는 문화의 세포 성분의 식별로 구성되어 있습니다. 세포 유형의 특정 단백질에 대한 면역 세포 화학은 다른 환자 (그림 1A)의 표본에서 파생 된 문화 간의 이질성의 상당한 정도를 알 수있다. 흐름에 의해 정량화으로 세포 계측법 (평균 ~ 75 % 할인, 30에서 최대 99 %까지) PDGFRβ을 발현하는 세포의 상당한 부분이 항상있다; 이러한 CD146, NG2 및 CD13과 같은 혈관 주위 세포의 다른 마커는 일반적으로 낮은 범위 (그림 1B)로 표현된다. 면역 세포 (그림 1A)에 의해 결정 마찬가지로 SMA는 배양 된 세포의 작은 부분 모집단으로 표현된다. 통로 0 (P0)에서, <보통 CD34 양성 내피 세포의 10 %가, 그 수는 더 계대로 검출 아래 감소. 마찬가지로, astrocytES는 이전 구절에서만 무시할 오염을 포함한다. 또한, ...

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토론

본 프로토콜은 체외 확장과 농축 혈관 주위 세포에서 파생 된 세포의 성인 인간의 대뇌 피질에서 분리 다음과 신경성 전사의 레트로 바이러스 매개로 표현하여 기능에 후속 변환 SOX2 및 Ascl1 요인에 대해 설명합니다. 이러한 프로토콜은 궁극적으로 성인 뇌의 생체 설정으로이 직접 변환 방식을 번역하는 마음에서 목표로, 잠재적으로 glia의 신경에 두뇌 상주 세포의 혈통 변환 등을 연구하기 위해 체외 시스템에서 실험을 제공합니다.

기술적 고려 사항

우리의 연구에서 우리는 남녀 모두에서, 19 ~ 70 세 사이의 환자에서 인간의 뇌 조직을 이용했다. 우리는 성별이나 연령 7에 따라 프로그램을 다시 만들 효율의 명백한 차이를 통지하지 않았다. 그럼에도 불구하고 그것은 미묘한 차이가있을 수 있습니다 그럼에도 불구하고이 정보를 문서화하는 것이 좋습니다우리의 관심을 탈출 한...

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공개 사항

저자가 공개하는 게 없다.

감사의 글

우리는이 프로토콜을 개발하는 동안 그녀의 입력을위한 박사 막달레나 Götz가에게 감사의 말씀을 전합니다. 우리는 관대 SOX2의 코딩 서열을 저희에게 제공하는 박사의 Marius Wernig (스탠포드 대학) 감사합니다. 우리는 또한 바이러스 생산을위한 박사 알렉산드라 Lepier에 매우 감사하고 있습니다. 이 작품은 독일 Forschungsgemeinschaft (4182/2-2 BE)와 BMBF (01GN1009A) BB, 그리고 과학의 바이에른 주 정부, 연구 및 MK와 BBCS에 예술이 양국 SYSTHER-로부터받은 자금의 보조금에 의해 지원되었다 INREMOS 가상 연구소 (교육과 연구의 독일과 슬로베니아어 연방 부처) 및 DFG (SFB 824).

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
anti-CD140b-PEBD Biosciences558821 1:100
anti-CD146-FITCAbD Serotec사용 MCA2141FT 1:100
anti-CD13-FITCAbD SerotecMVA1270A488T1:100
anti-CD34-APCBD Biosciences560940사용 1:100
anti-PDGFRβ세포 신호3169S는 1:200
안티-CD146사용, AbcamAb75769사용, 1:400
안티-NG2사용, MilliporeAB5320사용, 1:400
안티-SMASigma-AldrichA2547사용, 1:400
안티-&베타 사용; III-튜불린Sigma-AldrichT8660사용 1:400
anti-MAP2Sigma-AldrichM4403사용 1:200
anti-GFAPSigma-AldrichG3893사용 1:600
anti-GFPAves LabsGFP 10-20사용 1:1,000
anti-RFPChromotek5F8사용 1:500
anti-S100βSigma-AldrichS25321:300
anti-NeuNMilliporeMAB377사용 1:200
anti-GABASigma-AldrichA2052사용 1:500
anti-CalretininMilliporeAB5054사용 1:500
anti-vGluT1SYnaptic SYstems사용 135511 1:1,000
Rat IgG1 isotype control FITCAbD Serotec11-4301-81사용 1:100
Rat IgG1 isotype control PEAbD Serotec12-4301-81사용 1:100
Rat IgG1 isotype control APCAbD Serotec17-4301-81사용 1:100
TrypLEInvitrogen12605-010
DMEM, 고포도당, GlutaMAXInvitrogen61965
B27 무혈청 보충제Invitrogen
태아 송아지 혈청Invitrogen10106-16956°C에서 배양에 의한 열 비활성화를 수행합니다. C 30분 동안
페니실린-스트렙토마이신Invitrogen15140122
HBSS (Hanks Balanced Salt Solution)CaCl
2 및 MgCl2 (D-PBS, 1x)Invitrogen14190
HEPESSigma-AldrichH3375
Poly-D-lysine 하이드로 브로마이드 (PDL)시그마 - 알드리치P0899
PFA (파라 포름 알데히드)시그마 - 알드리치P1648
소 혈청 알부민시그마 알드리치A9418
트리톤 X-100시그마 알드리치T9284
DAPI (4 ′ , 6-Diamidin -2- 페닐 린돌) 딜락 테이트 시그마 - 알드리치042M4005
아쿠아 폴리 / MountPolysciences18606-20
폴리프로필렌 라운드-바텀 튜브 BD Biosciences352063
폴리스티렌 라운드-바텀 튜브와 셀-스트레이너 캡 BD Biosciences352235
24웰 플레이트Orange Scientific5530305
75 cm2 배양 플라스크Greiner Bio-One658175
25 cm2 배양 플라스크Greiner Bio-One690175
일회용 피펫 10 mlSarstedt86.1254.001
유리 파스퇴르 피펫 (150 mm)FisherbrandFB50251
유리 커버슬립 12 mm 직경MenzelCB00120RA1
수술용 일회용 메스 B. Braun5518083
조직 배양 접시 Greiner Bio-One633180
원뿔형 튜브 15 mlBD Biosciences352095
층류 후드
원심분리기 및 스윙아웃 로터와 15 ml 및 50 ml 튜브용 어댑터Hettich Lab Technology1406
유세포 분석 세포 분류기: FACSDiva 소프트웨어가 있는 FACSAria l BD Biosciences
Humified cell culture incubatorEppendorf Galaxy 170R
Wather bath at 37 ° C
FACS플로 시스 플루이드 BD Biosciences342003
Epifluorescence microscope BX61Olympus
컨포칼 현미경 LSM710Zeiss
는 17504044는

참고문헌

  1. Caiazzo, M., et al. Direct generation of functional dopaminergic neurons from mouse and human fibroblasts. Nature. 476, 224-227 (2011).
  2. Kim, J., et al. Functional integration of dopaminergic neurons directly converted from mouse fibroblasts. Cell stem cell. 9, 413-419 (2011).
  3. Duan, B., et al. Interactions between water deficit, ABA, and provenances in Picea asperata. Journal of experimental botany. 58, 3025-3036 (2007).
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