방법 논문

호수 송어에 PCB의 동족체의 순 영양 전송 효율의 실험실 평가 ( Salvelinus namaycush) 먹이에서

DOI:

10.3791/51496

⸱

2014년 8월 29일

 ,  ,  , 
1Great Lakes Science Center, U. S. Geological Survey, 2Annis Water Resources Institute, Grand Valley State University, 3Daniel P. Haerther Center for Conservation and Research, Shedd Aquarium

이 논문에서

요약

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먹이에서 물고기를 먹는 물고기 폴리 염화 비 페닐 (PCB) 이성체의 순 영양 전달 효율의 실험실 추정하는 기술이 제시된다. 필드로 실험 결과의 적용 가능성을 극대화하기 위해 물고기를 먹는 물고기는 일반적으로 현장에서 먹을 수 있습니다 먹이 물고기를 공급해야한다.

초록

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먹이에서 물고기를 먹는 물고기 폴리 염화 비 페닐 (PCB) 이성체의 순 영양 전달 효율 (γ)의 실험실 추정하는 기술은 여기에 설명되어 있습니다. 135 일 실험실 실험 동안, 우리는 팔 실험실 탱크에 보관 부풀어 오른 송어 (Salvelinus의 namaycush)에 미시간 호수에서 잡은했다 (Coregonus hoyi)를 공급. 부풀어 오른 호수 송어 자연 먹이입니다. 탱크 사에서, 비교적 높은 유속은 낮은 유속이 다른 네 개의 탱크에 사용 된 반면, 낮은 송어 활동을 허용, 송어 의해 비교적 높은 활성을 확인하는 데 사용 하였다. 탱크 탱크 별 기준으로, 실험 하루에 송어 먹게 음식의 양을 기록 하였다. 각 송어은 실험의 시작과 끝에서 칭량 하였다. 팔 각 탱크에서 4 구에 송어은 실험의 시작에서 희생하고, 각 탱크에 남아있는 모든 10 송어는 euthan 하였다이었다실험의 끝에 집중식. 우리의 실험 끝에 송어에서, 실험의 개시시 송어 75 PCB의 이성체의 농도를 측정하고, 실험에 bloaters 동안 송어로 공급. 이러한 측정에 기초하여, γ는 팔 각 탱크의 PCB (75)의 동족체들 각각에 대해 계산 하였다. γ 활성 및 비활성 호수 송어 75 PCB의 동족체 각각에 대해 계산되었다 의미한다. 실험 8 개의 탱크에 복제 되었기 때문에,에 대한 표준 오차는 γ 추정 할 수 의미한다. 이런 유형의 실험 결과는 환경 오염의 다양한 시나리오에 따라 오염 된 물고기를 먹는 인간과 야생 동물에 대한 미래의 위험을 예측하는 위험 평가 모델에 유용하다.

서론

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물고기가 오염 물질을 축적하는 속도에 영향을 미치는 모든 요인 중에서 물고기가 먹는 음식에서 오염 물질을 보유하는 효율성은 가장 중요한1-3 중 하나입니다. 환경 오염에 대한 다양한 시나리오에서 오염된 물고기를 섭취하는 사람과 야생 동물 모두에 대한 미래 위험을 예측하기 위해 위험 평가 모델이 개발되었으며, 이러한 예측의 신뢰성은 물고기가 먹이에서 오염 물질을 보유하는 효율성 추정치의 정확성에 결정적으로 의존합니다4.

포식자가 섭취한 음식의 오염 물질이 장 벽을 통해 운반되는 효율은 총영양 전달 효율(gross trophic transfer efficiency)5로 알려져 있습니다. 포식자의 장 벽을 통해 운반되는 오염 물질의 양 중 일부는 결국 정제 및/또는 대사 변형을 통해 손실될 수 있습니다. 포식자가 섭취한 음식의 오염 물질이 포식자에 의해 유지되는 효율성은 제거 및 대사 변형으로 인한 손실을 포함하여 순 영양 전달 효율(net trophic transfer efficiency)6로 알려져 있습니다.

먹이에서 물고기로 유기 오염 물질의 총 영양 전달 효율은 옥탄올-물 분배 계수 Kow3,7로 측정된 지질 제휴를 포함하여 오염 물질의 화학적 특성에 따라 달라지는 것으로 보입니다. Thomann3에 의해 개발된 경험적 관계에 따르면, 총 영양 전달 효율은 log Kow가 5와 6 사이의 값과 같을 때 상대적으로 높습니다. Thomann3 관계에 따르면 총 영양 전달 효율은 log Kow가 6에서 10으로 증가함에 따라 log Kow 단위당 50%의 비율로 기하급수적으로 감소합니다.

그럼에도 불구하고, 먹이에서 물고기를 잡기 위한 폴리염화비페닐(PCB) 동족체의 총 영양 전달 효율은 대부분의 경우 Thomann3 관계를 따르지 않는 것으로 보입니다. 먹이에서 호수 흰살 생선 (Coregonus clupeaformis)에 대한 PCB 동족체의 영양 전달 효율은 Thomann8이 제안한 관계를 따랐지만, PCB 동족 동물의 영양 전달 효율은 대서양 연어 (Salmo salar) 9, 무지개 송어 (Oncorhynchus mykiss) 10, 코호 연어 (Oncorhynchus kisutch) 11 에 대한 log Kow와 약한 관련이 있거나 전혀 관련이 없었습니다, 북부 창꼬치(Esox lucius)11.

이 연구의 전반적인 목표는 먹이에서 물고기 물고기에 대한 PCB 동족체의 순 영양 전달 효율을 추정하기 위한 실험실 기술을 제시하는 것이었습니다. 호수 송어(Salvelinus namaycush)는 호수 송어가 실험실 탱크에서 비교적 쉽게 유지 관리할 수 있기 때문에 우리 실험을 위한 물고기로 선택되었습니다. 블로터(Coregonus hoyi)는 호수 송어가 자연 환경에서 먹기 때문에 호수 송어에게 먹이가 되는 먹이 물고기로 선택되었습니다12. 또한, 실험실 실험에서 추정한 호수 송어의 순 영양 전달 효율이 Thomann3 관계를 따르는지 여부를 확인했습니다. 우리는 또한 호수 송어의 활동 정도가 PCB 동족체의 순 영양 전달 효율(γ)에 상당한 영향을 미치는지 여부를 확인했습니다. 로렌시아 오대호(Laurentian Great Lakes)에서 호수 송어의 활동은 먹이 그물의 변화로 인해 호수 송어가 먹이를 찾는 데 더 많은 에너지를 할당하게 되었기 때문에 최근에 증가한 것으로 여겨집니다13. 호수 송어는 이 호수 송어를 상대적으로 높은 유속에 노출시켜 한 세트의 수조에서 운동하도록 강요받은 반면, 다른 호수 송어는 상대적으로 낮은 유속을 가함으로써 상대적으로 비활성 상태를 유지하도록 허용되었습니다. 마지막으로, γ 추정치에서 최고 수준의 정확성을 보장하고 실험실 결과를 해당 분야에 적용할 수 있도록 하기 위해 주의 깊게 따라야 하는 실험실 절차의 구체적인 세부 사항과 실험실 기술을 기반으로 한 연구를 위한 향후 방향에 대해 논의합니다. 순 영양 전달 효율은 실험실과 현장 모두에서 추정할 수 있으며 장점과 단점은 두 접근 방식 모두와 관련이 있습니다. γ 추정치의 정확도는 식품 소비량 추정치의 정확도에 따라 다릅니다. 실험실에서 물고기가 먹는 음식의 양은 적절한 프로토콜을 따를 때 정확하게 결정할 수 있는 반면, 현장에서 물고기가 먹는 음식의 양은 일반적으로 생물 에너지학 모델링을 통해 추정됩니다. 먹은 음식의 양을 도출하기 위해 생물 에너지학 모델링을 사용하면 식품 소비 추정치에 상당한 양의 불확실성을 도입할 수 있습니다. 어류 생물 에너지학 모델은 호수 송어의 경우 검출 가능한 편향 없이 식품 소비를 추정하는 것으로 나타났지만, 호수 흰살 물고기15,16의 경우 식품 소비에 대한 생물 에너지학 모델 추정치에서 상당한 편향이 감지되었습니다. 반면에, 실험실에서 추정된 순영양전달효율(net trophic transfer efficiency)의 추정치는 실험실과 현장(field) 사이의 섭식률(feeding rate)의 차이로 인해 현장에 적용되지 않을 수 있다17. 실험실과 현장의 증거에 따르면 섭식 속도가γ 14,17에 영향을 미칠 수 있습니다.

실험실에서 γ 추정하기 위해 본 연구에서 사용된 방법론은 포식자 물고기에게 먹이를 주고 포식자가 먹는 먹이 물고기의 양을 정확하게 추적할 수 있는 상황에 적용할 수 있습니다. 이를 달성하기 위해 실험자는 탱크에 넣기 전에 모든 음식의 무게를 측정해야 합니다. 그리고 실험자는 탱크에서 먹지 않은 음식을 모두 꺼낸 다음 먹지 않은 음식의 무게를 잴 수 있어야 합니다. 또한, 포식자와 피식자 물고기 모두의 샘플에 대한 충분한 수준의 균질화를 얻기 위해 적절한 믹서 및 블렌더 제품군을 사용할 수 있어야 합니다. 마지막으로, PCB 동족체 농도를 결정하는 데 사용되는 가스 크로마토그래피 – 질량 분석 기기는 상대적으로 낮은 농도에서 개별 PCB 동족체를 검출하고 정량화할 수 있어야 합니다.

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프로토콜

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1 실험실 실험

  1. 먹이 물고기를 구합니다 실험 기간 동안 포식자 물고기에 공급한다. 바람직하게는 이러한 먹이 물고기는 현장, 냉동에서 캡처, 약 -30 ° C에서 보관해야합니다. 먹이 물고기에 대한 잠재적 인 소스로 상업 낚시 작업을 고려하십시오.
  2. 실험실 탱크에 포식자 물고기를 소개 실험에 사용한다. 15 포식자 물고기까지 870-L의 각 탱크에 도입되었으며, 30 포식자 물고기까지 이전의 연구 (16, 18)에서 2380-L 탱크에 각각 도입되었다.
  3. 선택한 먹이 물고기의 다이어트 포식자 물고기를 적응. 적응되면, 포식자 물고기는 실험을 시작하기 전에 1-3개월이 다이어트에 남아 있어야합니다.
  4. 무작위로 먹이 물고기의 배치에서 10-20 복합 샘플을 선택하여 먹이 물고기의 샘플을 따로 설정합니다. 복합 시료 물고기의 먹이의 수 먹이의 크기에 따라 3 ~ 100의 수물고기입니다. 각 복합 샘플은 냉동 팩에 넣어 약 -30 ° C에서 보관을 두 번해야한다.
  5. 각 탱크에 물고기 30-50%을 희생하여 실험을 시작합니다.
    1. , 물고기를 안락사 큰 플라스틱 용기에 물 45 L로 Finquel의 8g을 혼합 한 후 Finquel 용액으로 용기에 물고기를 배치합니다.
    2. 일단 안락사, 처리 시간까지 약 -30 ° C에서 가방, 두 번 가방, 저장에 한 탱크에서 희생 된 물고기를 모두 넣습니다.
    3. 각 탱크 내에 남아있는 물고기의 각각의 무게를 측정하고, 가중치를 기록; 마취는 가능성이 무게를 수행 할 필요합니다.
    4. , 물고기를 마취 큰 플라스틱 용기에 물 45 L로 Finquel의 4.6 g을 혼합 한 다음 Finquel 용액으로 용기에 물고기를 배치합니다.
    5. 물고기를 계량하기 전에 적용하려면 마취에 대한 몇 분 정도 기다립니다.
  6. 각 실험 일에, 해동적절한 먹이 물고기의 양, 그리고 약 1 5g에 무게 조각으로 먹이 물고기를 잘라. 다음, 각 탱크에 배치되는 먹이 물고기의 양을 달아 각각의 탱크에 먹이 물고기 조각을 드롭하고 약 1 시간이 공급하는 포식자 물고기를 할 수 있습니다. 그런 다음, 모든 음식을 먹지 제거 약 20 분간 자연 건조 식품을하도록 한 다음 각 탱크에 먹다 남은 음식을 무게. 탱크에 넣고 음식의 양은 매일 탱크마다 먹지 음식의 양을 기록한다.
    주 : 하나의 수유 기간 매일 18시 소모하는 것처럼 대표 실험, 호수 송어가 많은 음식으로 공급 하였다. 그러나, 포식자 물고기는 고정 식량 16, 19에 배치 될 수있다.
  7. 각 탱크에 남은 포식자 물고기 모두 희생하여 실험을 종료. , 물고기를 안락사 큰 플라스틱 용기에 물 45 L로 Finquel의 8g을 혼합 한 후 Finquel 용액으로 용기에 물고기를 배치합니다. 기록 t희생 된 물고기의 각 그는 무게. 신뢰할 수있는 결과를 위해, 실험은 적어도 130일 대해 바람직하게는 최소 100 일 동안 실행한다. 처리 시간이 될 때까지 약 -30 ° C에 하나의 가방, 두 번 가방, 저장에 탱크에서 물고기를 모두 넣습니다.

2 물고기의 균질화

  1. 포식자 물고기 및 / 또는 해동을위한 먹이 물고기 복합 세트를 선택합니다. 복합 부분적으로 해동 할 수 있습니다. 각 복합 균질화 0.5 시간 일에 필요할 수 있습니다.
  2. 적합한 크기의 블렌더를 사용하여, 각 복합 재료의 균질화. 각 복합 들어, 세척, 아세톤 세척이라는 라벨을 병에 균질 (50~1백g) 샘플을 배치합니다. 그런 다음 항아리 모자와 처리 시간이 될 때까지 약 -30 ° C에서 항아리를 저장합니다.
  3. 물고기를 균질화하는 데 사용되는 모든 장비를 세척 한 다음 제대로 샘플 사이의 증류수와 메탄올로 씻어냅니다.

3 추출

  1. 20.0 g의 무게를의 200 ㎖의 비이커에 물고기 균질 조직을 해동.
  2. 황산나트륨 약 40g을 넣고 주걱으로 잘 섞는다.
  3. 추출물 20 겨 / ㎖의 최종 농도를 산출 농도 동족체 30, 61, 161, 및 166를 포함하는 대리 스파이크 스파이크 액을 합한다.
  4. 매 20 분을 혼합하면서 샘플을 실온에서 건조하도록 허용합니다.
  5. 샘플이 샘플 추출을위한 준비가되어있는 시점에서 마른 모래의 일관성을 도달 할 수 있습니다.
  6. 테프론 종기 칩, 속 슬렛, 콘덴서를 포함하는 500 ㎖의 플라스크에 속 슬렛 추출 장치를 설정합니다.
  7. 거친 프릿 디스크 바닥이나 종이 골무와 유리 골 무에 건어물 혼합물을 추가합니다.
  8. 샘플 사용을 비커에 50 % 헥산과 50 %의 디클로로 메탄 150 mL를 넣고 주걱 비이커 벽을 긁어 동안 교반 하였다.
  9. 속 슬렛을 통해에 사이클에 부착 된 플라스크 속 슬렛의 상단에 용매를 전송하고 그것을 허용플라스크.
  10. 다시 150 mL를 두 번 반복합니다.
  11. 가열 소자 상에 부착 된 플라스크에 속 슬렛를 놓고 콘덴서를 연결합니다.
  12. 가열 소자를 켜고 부드러운 종기 용매를 가지고, 다음 16 시간 차가운 물이 콘덴서에 공급되어 있는지 확인하고 최소 압축을 풉니 다.
  13. 용매를 식힌 다음 샘플 플라스크의 물을 포함하고 있는지 확인합니다. 물을 함유하는 플라스크를 들어 황산나트륨을 추가하고 물을 황산 나트륨에 의해 흡수 될 때까지 소용돌이 친다.
  14. 질소 샘플 집중 또는 온수 욕조가있는 Kaderna 덴마크어 (KD) 유리 설치 프로그램을 사용하여 샘​​플을 집중.
  15. 시료 2 이하 ㎖를 증발하고 5 ㎖의 메스 플라스크에 사용될 유리로부터 샘플을 전송할 헥산 작은 세정액을 사용하여 5 ㎖의 최종 부피로 나오게.
  16. 10 ㎖의 유리 병에 전송하고 샘플 정보와 함께 레이블을 붙입니다.

  1. 활성화 실리카 겔 100 g의 진한 황산 44g을 첨가하여 산성화시킨 실리카 겔을 준비한다.
  2. 하단 유리솜의 작은 플러그를 함유하는 작은 크로마토 그래피 컬럼으로 산성화시키고 실리카 겔 10g을 추가한다.
  3. 헥산 10 ㎖로 컬럼을 미리 세척 한 후, 컬럼에 시료 추출물 1 ㎖를 추가합니다.
  4. 헥산 20 ㎖로 칼럼을 용출하고, 20 ㎖의 테이퍼 유리관에 모은다.
  5. 질소 기류하에 질소 증발기 (N-VAP) 장치에 유리 튜브를 삽입하고 뜨거운 물에 침지.
  6. 미만 1 ml의 증발하지만 건조하지.
  7. N-VAP 장치에서 제거하고 헥산의 작은 세탁으로 1 mL 용량 플라스크에 전송합니다.
  8. 1.8 ml의 오토 샘플러 바이알 샘플 정보로 표지에 전송합니다.
  9. 유리 병에 내부 표준의 4 μl를 스파이크. 샘플은 지금 분석을위한 준비가되어 있습니다.

5 애널가스 크로마토 그래피에 의한 ysis은 - 질량 분석 네거티브 화학 이온화를 사용하여

  1. 계측기를 교정 표준을 사용하여 표준이 잘​​ 분리 이성체의 그룹으로 구성된 혼합물에서 사용할 수 있습니다. 믹스 1-5 거의 Arochlors 1016, 1221, 1232, 1242, 1248, 1254에서 발견 이성체 모두로 구성하고, 1260 믹스 1은 멀티 레벨 교정 믹스로서 사용되며, 시스템의 선형성은 적어도 제조함으로써 확인된다 이 100 ng를 / ㎖ 사이 농도의 오 보정 레벨. 믹스 2-5은 각 동족체에 대한 단일 지점 교정으로 사용됩니다.
  2. 반응물 가스 등의 캐리어 가스 (1 ㎖ / 분) 및 메탄 등의 수소와 네거티브 화학 이온화 모드에서 질량 분석 시스템 - 크로마토 그래피를 설정.
  3. 분리를위한 0.25 μm의 막 두께에 DB-XLB로 코팅 된 융합 실리카, 캐 필러 리 컬럼 (0.25 mm 내경 × 60m)를 사용합니다. 26 다음 25 ° C / 분의 60에서 212 ° C에 프로그램 오븐 온도,0 ° 1 ° C / 분 C, 다음 4 분의 최종 대기 시간, 4 ° C / 분에서 280 ° C까지. 인젝터 및 전송 라인 온도는 280 ° C로 설정해야합니다. 비분 할 분사 모드를 이용하여 시료 1-2 μl를 주입한다.
  4. 13 C 표지 decachlorobiphenyl를 사용하여 내부 표준 방법에 의해 모든 표준 및 샘플을 분석 할 수 있습니다.
  5. 두번째 소스 표준 및 Aroclors 1242 및 1260을 실행하여 초기 교정에 대한 검사를 수행 한 다음이 검사 과정에서 관찰 된 양의 Aroclor의 동족체에 대한 예측 값을 비교.
  6. 모든 샘플의 초기 교정 절차가 성공적으로 수행되면, 완전한 분석. 교정 초기 캘리브레이션으로부터 교정의 혼합물 중 하나를 사용하여 매 10 샘플 검사 실행.

순 영양 전송 효율의 6 계산

  1. 각 조합에 대해 O, γ, 그물 영양 전사 효율을 계산다음 식을 이용하여 F 탱크와 PCB의 동족체 :
    figure-protocol-1 [PCB 수 f] 실험 끝에 탱크 포식자 물고기의 평균 PCB의 동족체 농도이고, W의 f는, 실험의 끝에 탱크 포식자 물고기의 평균 중량이다 [PCB I] 전 실험의 시작에서 포식자 물고기의 평균 중량이고, 섭취 PCB의 동족체의 양의 중량을 지칭 W 실험의 시작에서 탱크 포식자 물고기의 평균 PCB의 동족체 농도이고, PCB 동족체는 실험 과정 동안 탱크 내의 각 송어로 평균적으로 섭취.
  2. 탱크 지속에 포식자 물고기 당 먹을 먹이 물고기의 평균 양 (무게)에 의해 먹이 물고기 복합에서 PCB의 동종의 평균 농도를 곱하여 상기 식의 분모를 계산실험의 전체 과정을 보내고.

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결과

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초기 호수 송어 최종 호수 송어는 무게가 853에서 1천5백66그램 (표 1)였다 의미하는 동안 무게가 694-907g 원거리 의미로 호수 송어, 실험 기간 동안 성장의 상당한 양을 보여 주었다. 135 일간의 실험 과정에서 호수 송어에 의해 소비되는 음식의 평균 금액은 641에서 2천6백49g였다. 평균 PCB 동종 농도가 원거리로 평균 PCB 동종 농도가 0.03에서 원거리 동안 호수 송어에서 PCB의 동족체 농도 평균은에 의해 29.31로 실험의 시작에 0.01에서 7.14 NG / g (습식 중량 기준)로, 실험 기간 동안 증가 실험 (표 2)의 결론. 9 월 적발 부풀어 오른의 10 복합 샘플에 걸쳐 평균 PCB의 동종 농도는 0.03에서 26.56 NG / g였다. 월 잡은 부풀어 오른의 10 복합 샘플에 걸쳐 평균 PCB의 동종 농도는 0.03에서 23.52 NG / g (표 2)였다. 참조실험에 사용 된 부풀어 오른에 대한...

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토론

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γ의 가장 정확한 추정치를 들어, 정확하게 실험자의 실험 과정에서 탱크 및 탱크의 각각에 먹지 음식의 양에 각각 배치 된 음식의 양 모두를 추적 할 수 있어야한다. 이를 달성하기 위해, 실험자는 탱크로부터 먹지 식품을 모두 제거하고 무게를 정확하게 판별 할 수 있어야한다. 실제로 포식자 물고기가 먹은 음식의 정확한 추적뿐만 아니라, γ의 정확한 추정은 실험의 충분한 기간에 따라 달라질 수 있습니다. 널리 인용 실험실 연구가 구체적으로 자신의 음식이 기간 (22, 23)에 105-224일 원거리에서 물고기의 PCB 영양 전달 효율을 평가하기 위해 설계 감안할 때, 적어도 백일의 기간, 바람직하게는 적어도 130일는 것이 좋습니다. 또한, 바이어스는 전문가의 시작에서 PCB의 판정을위한 샘플 포식자 물고기의 수가 부족하여 γ의 추정치에 도입 될 수있다eriment 14. 샘플 크기가 감소 탱크 증가 포식자 물고기의 모든 평균 PCB 농도 반영하지 PCB 농도와 포식자 물고기의 샘플을 얻는 확...

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감사의 글

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이 작업은 오대호 어업 위원회(Great Lakes Fishery Commission)와 애니스 수자원 연구소(Annis Water Resources Institute)의 일부 자금 지원을 받았습니다. 상표명, 제품명 또는 회사명의 사용이 미국 정부의 승인을 의미하지는 않습니다. 이 기사는 미국 지질조사국 오대호 과학 센터의 기고 1867입니다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
870-L 유리 섬유 탱크Frigid UnitsRT-430-1
2,380-L 유리 섬유 탱크Frigid UnitsRT-630-1
Tricaine methanesulfonate (Finquel)Argent Chemical Laboratories, Inc.C-FINQ-UE-100GEugenol은 마취제로 사용할 수도 있습니다.
Ashland 셰프 나이프시카고 칼 SKU1106336
도마Williams-Sonoma3863586
Hobart verical 믹서 (40 쿼트)Hobart Corporation
1.9-L 푸드 프로세서Robot Coupe, Inc.RSI 2Y1 
폴리에틸렌 백 (다양한 크기)Arcan Inc.
I-Chem jarsI-Chem220-0125
탑로드 전자 저울Mettler ToledoMettler PM 6000 
황산나트륨, 무수 - 과립EMDSX0760E-3
유리 추출 골무 (45mm x 130mm)Wilmad-Lab GlassLG-7070-114
테프론 끓는 칩Chemware919120
Rapid Vap 질소 샘플 농축기Labconco7910000
N-Vap 질소 농축기Organomation112
Soxhlet 추출 유리 제품 (500ml)Wilmad-Lab 유리  LG-6900-104
헥산버딕 & 잭슨 Cat. 211-4
디클로로메탄버딕 & 잭슨 Cat. 300-4
실리카겔BDHCat. BDH9004-1KG
Labl Line 5000 다중 단위 추출 히터Lab Line Instruments
Agilent 5973 GC/MS와 화학 이온화Agilent5973N
내부 표준 솔루션 Cambridge Isotope LaboratoriesEC-1410-1.2
PCB 동족체 교정 표준AccustandardC-CSQ-SET
DB-XLB 컬럼(60m x 0.25mm, 0.25미크론)Agilent/ J& 승122-1262

참고문헌

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Madenjian, C. P., Carpenter, S. R., Rand, P. S. Why are the PCB concentrations of salmonine individuals from the same lake so highly variable? Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 51 (4), 800-807 (1994).
  2. Madenjian, C. P., et al. Net trophic transfer efficiency of PCBs to Lake Michigan coho salmon from their prey. Environmental Science and Technology. 32 (20), 3063-3067 (1998).
  3. Thomann, R. V. Bioaccumulation model of organic chemical distribution in aquatic food chains. Environmental Science and Technology. 23 (6), 699-707 (1989).
  4. Calabrese, E. J., Baldwin, L. A. Performing ecological risk assessments. , Lewis. Boca Raton, Florida. (1993).
  5. Madenjian, C. P., et al. Variation in net trophic transfer efficiencies among 21 PCB congeners. Environmental Science and Technology. 33 (21), 3768-3773 (1999).
  6. Jackson, L. J., Schindler, D. E. Field estimates of net trophic transfer of PCBs from prey fishes to Lake Michigan salmonids. Environmental Science and Technology. 30 (6), 1861-1865 (1996).
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