현장 하이브리드 화 (물고기)의 형광은 세포 내에서 네이티브 환경에서의 핵산을 검출 할 수 있습니다. 우리는 여기에 마우스 배아 줄기 세포에서 X 염색체의 불 활성화를 연구하는 데 사용할 수있는 FISH에 의해 RNA와 DNA의 결합, 동시 검출을위한 프로토콜을 설명합니다.
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현장 하이브리드 화 (물고기)의 형광은 세포 내에서 네이티브 환경에서의 핵산을 검출 할 수 있습니다. 우리는 여기에 마우스 배아 줄기 세포에서 X 염색체의 불 활성화를 연구하는 데 사용할 수있는 FISH에 의해 RNA와 DNA의 결합, 동시 검출을위한 프로토콜을 설명합니다.
제자리 혼성화 (FISH)에서 형광 세포의 핵산의 검출을 가능 분자 기법이다. DNA 물고기는 종종 세포 유전학과 암 진단에 사용되며, 종종 중요한 임상 적 의미를 가지고있는 게놈의 수차를 검출 할 수있다. FISH RNA는 세포에서 RNA 분자를 검출하는데 사용될 수 있으며, 유전자 발현의 조절에 중요한 통찰력을 제공했다. DNA FISH에 적합한 조건이 깨지기 쉬운, 단일 가닥 RNA 분자에 비해 너무 가혹한 수 있습니다와 같은 세포 내 DNA 및 RNA의 물고기를 결합하는 것은 기술적으로 도전이다. 우리는 여기에서 X 염색체에 의해 인코딩 XIST RNA와 DNA의 결합을 동시에 검출 할 수 쉽게 적용 할 수있는 프로토콜을 제시한다. 이 결합 된 DNA-RNA 물고기 프로토콜 가능성이 RNA와 DNA가 탐지해야하는 다른 시스템에 적용 할 수 있습니다.
현장 하이브리드 화 (물고기)의 형광에 의해 세포와 조직을 공부하는 것은 1970 년대 후반 1 년에 소개 된 이후, 연구자들은 세포 내 수준에서 유전자 염색질 조직 및 유전자 발현을 연구 할 수있다. DNA의 FISH 자주 세포 유전학, 핵형이, 암 진단 (3) 및 착상 전 유전자 검사 (4)에 사용되고, 그것은 그 나라의 환경에서 핵산을 검출 할 수 있으므로 분자 연구 5-6에서 중요한 역할을한다. RNA FISH에 의해 단일 세포 발현 분석은 네이티브 차 전 사체를 검출 할 수 있고, 비 암호화 RNA를 염색체로부터 전사되고, 예를 들면 등 집단 수준에서 유전자 발현을 평가하는 다른 기술에 이점을 제공 정량적 RT-PCR, 게놈 넓은 발현 분석 또는 노던 블롯 . 원래 자신의 사이트에서 직접 발생하는 RNA 전 사체를 시각화함으로써, 예를 들어왔다유전자 발현 확률 7이며, 때로는 8 대립 유전자 특정 할 수 있습니다 것으로 나타났습니다. 기술의 개선도 9-11 세포 내에서 하나의 mRNA 분자의 검출과 정량을 허용했다.
FISH의 기본 원리는 ....
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1. 여성 배아 줄기 세포의 분화 유도 X 염색체의 불 활성화를 유도하기 위해
참고 : 여성 마우스 배아 줄기 세포 (요청시 제공)을 마우스 배아 섬유 아 세포 (MEFs)로 코팅 된 호화 배양 접시에 표준 ES 세포 조건에서 재배하고 있습니다. 우리는 여기에서 독자가 표준 세포 배양 기술에 39-41을 잘 알고 있다고 가정합니다. 분화를 유도하기 위하여, T25 접시에서 성장 ES 세포는 MEFs에서 분리되고, 분화 배지에서 도금 될 것이다.
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결합 된 DNA-RNA 물고기를 위에서 언급 한 프로토콜을 사용하여, 우리는 여성의 배아 줄기 세포를 분화에 X 염색체의 불 활성화를 시각화 할 수있게되었습니다. 1 우리가 XIST (인 모두 검출 DNA-RNA FISH 실험의 대표적인 예를 보여줍니다 비활성 X 염색체에 소위 XIST RNA 구름과 액티브 X 염색체에 기초 전사 핀 포인트), 그리고 핀 포인트의 신호로 볼 수있는 X 염색체의 영역으로 볼 수. 핀 포인트 신호 중 하나가되어 XIST 구름이 참으로 따라 지역화 및 X 염색체를 코팅하는 것을 보여주는, XIST 클라우드 내에 위치하고 있습니다. 세포의 99 % 이상에서, 우리는 프로토콜 올바른 DNA 신호 (데이터 미도시)를 이용하여 검출한다. RNA-FISH에 비해 XIST 구름 변성 된 DNA가 더 큰 영역을 차지하기 위해 보인다 결합 된 DNA-RNA FISH 절차가 .......
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DNA FISH에 적합한 조건이 안정적 RNA 분자에 비해 너무 가혹한 될 수있는 결합 된 DNA-RNA FISH는 기술적으로 어려울 수 있습니다. 여러 가지 방법은 DNA와 RNA를 모두 검출 프로브와 동시 배양의 필요성을 우회 동일한 셀의 DNA 및 RNA 모두를 연구에 적용되어왔다. 예를 들어, 중첩 방식으로, 첫 번째 RNA 물고기가 수행되고, 셀은 이미지하고, 좌표를 가져옵니다. 그 후, 같은 슬라이드는 RNA FISH의 신호가 손실되는 동안, DNA 물고기에 사용됩니다. DNA의 FISH 후, 균체를 다시 묘화하고, RNA 및 DNA의 FISH 모두로부터 얻어진 사진은 겹쳐있다. 고정 된 세포의 DNA가 안정적이며, 초기 RNA 물고기에 필요한 처리에 의해 영향을받지으로이 방법은 거의 모든 경우에 작동하지만,이 4 일 이상 비용이 매우 힘든 방법입니다. 또 다른 방법으로, 먼저 RNA 물고기가 수행되고, RNA 물고기 신호는 O를 추가로 고정되어DNA의 FISH를 적용한 후에 F 고정 제. 또한,이 방법도 사용할 수.......
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저자가 공개하는 게 없다.
저자는 지난 몇 년 동안 유용하고 고무적인 토론을 해준 Erasmus MC의 복제 및 개발 부서의 전현직 구성원 모두에게 감사드립니다. 또한 유용한 피드백을 제공해 주신 세 명의 익명의 검토자에게도 감사드립니다. 그리브나우 실험실에서의 연구는 네덜란드 연구 위원회(NWO-VICI)의 자금 지원과 ERC 시작 보조금으로 지원됩니다.
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| 이름 | 회사 | 카탈로그 번호 | 댓글 |
|---|---|---|---|
| 요청 시 암컷 마우스 배아 줄기세포 | 를 이용할 수 있습니다 | ||
| .마우스 배아 섬유아세포는 | E13.5 배아에서 파생되거나 상용 소스예: Millipore | ||
| ES 세포 배양 배지 | 를 통해 파생될 수 있습니다.DMEM, 15% 태아 송아지 혈청, 페니실린 100U/ml, 스트렙토마이신 100mg/ml, 비필수 아미노산, 0.1mM γ-메르캅토에탄올 및 1,000U/ml LIF. 필터는 살균하고 4 °에 보관합니다. C는 최대 2주 동안 지속됩니다. | ||
| LIF | Chemicon | ESG1107 | |
| DMEM | Invitrogen | 11960085 | |
| 태아 송아지 혈청 | Invitrogen | 10099141 | |
| 페니실린– 스트렙토마이신 (100x) | 인비트로젠 | 15140-122 | |
| 비필수 아미노산 | 인비트로젠 | 11140-050 | |
| γ-메르캅토에탄올 | 시그마-알드리치 | M7522 | |
| ES 세포 분화 매체 | IMDM-글루타맥스, 15% 열 비활성화 태아 송아지 혈청, 100 U/ml 페니실린, 100 mg/ml 스트렙토마이신, 비필수 아미노산, 37.8 μ l/L monothioglycerol 및 50 μ g/ml 아스코르브산 | ||
| IMDM-글루타맥스 | 인비트로겐 | 31980-030 | |
| 아스코르브산(50mg/ml) | 시그마-알드리치 | A4403 | |
| 모노티오글리세롤 | 시그마-알드리치 | M6145 | |
| T25 세포 배양 접시 | Greiner Bio-one | 690160 | |
| 6웰 세포 배양 접시 | Greiner Bio-one | 662160 | |
| 세포 배양 등급 PBS | Sigma-Aldrich | D8537 | |
| Trypsin-EDTA 0.25%(v/v) 트립신/0.2%(w/v) EDTA PBS | Gibco | 25200-056 | |
| Falcon 튜브 | Falcon | 352196 | |
| 24 x 24mm 커버슬립 | Menzle | 780882 | |
| 젤라틴 | Sigma-Aldrich | G1890-100G | 는 0.2% 젤라틴/세포 배양 PBS 용액을 준비하고 오토클레이브를 사용합니다 |
| Pepsin | Sigma-Aldrich | P7000 | 0.01M HCl(pH 2.0) |
| 절대 100% 에탄올 | . Sigma-Aldrich | 32221-2.5L | 은 절대 100% 에탄올 및 RNAse 무수를 사용하여 70% 및 90% 에탄올 용액을 만듭니다 |
| RNAse 무수 | Baxter | TKF7114 | |
| 멸균 필터 팁 | Rainin Bio Clean | GP-L10F, GP-L200F, RT-1000F | |
| digoxigenin 라벨링 키트 (DIG-Nick 번역) | Roche | 11745816910 | |
| biotin 라벨링 키트 (Biotin Nick 번역) | Roche | 11745824910 | |
| Sephadex G50 | Sigma-Aldrich | G5080 | |
| 2 ml 주사기 | BD Plastipak | 300013 | |
| 멸균 면 | |||
| Eppendorf 튜브 | Eppendorf 튜브 | ||
| 효모 tRNA 10 mg/ml | Invitrogen | 15401-029 | |
| 연어 정자 DNA 10 mg/ml | Invitrogen | 15632-011 | |
| 마우스 cot-1 DNA 1 mg/ml | Invitrogen | 18440-016 | |
| Eppendorf bench top microcentrifuge | Eppendorf | Model 5417R | |
| Eppendorf 냉장 원심분리기 | Eppendorf | 모델 5810R | |
| 2 M NaAc, pH 5.6 | Sigma-Aldrich | S7670 | |
| 50+ 혼성화 용액 | 50% 포름아미드, 2x SSC, 50mM 인산염 완충액 pH 7, 10% 덱스트란 설페이트 pH 7 | ||
| 포름아 | 미드 아크로스 유기물 | 3272350000 | |
| 덱스트란 설페이 | Fluka | 31403 | |
| 10mM 인산염 완충액, pH 7 | 1 M Na2HPO4 및 42.3 ml 1 M NaH2PO4 57.7 ml를 추가하십시오. DEPC 처리 된 물 및 오토 클레이브 | ||
| 변성 완충액 | 사용 70 % 포름 아미드 / 2x SSC / 10 mM 인산염 완충액 pH 7 | ||
| Tween-20 | Sigma-Aldrich | P2287 | |
| 2 M Tris pH 7.5 용액 | |||
| Tris-Saline-Tween 세척 용액 (TST) | 100 ml 10x 식염수, 50 ml 2M Tris, 500 &# 956; l Tween-20, 1 L | ||
| 10x 식염수 용액 | 1 L RNAse 무료 H2O에 85g NaCl을 용해 | ||
| Tris-saline-BSA (TSBSA) | 500 μ을 고압증기멸균합니다. l 10x 식염수, 250 μ l 2 M Tris, 1 ml 100x BSA, 3.25 ml RNAse free H2O | ||
| BSA, 정제, 100x | New England Biolabs | B9001S | |
| 양-안티-파기 항체 | Roche 진단 | 사용 1:500 TSBSA | |
| 토끼-안티 양 항체 FITC | Jackson labs | 사용 TSBSA | |
| 염소-안티 토끼 항체 FITC | Jackson 사용 실험실은 | TSBSA에 희석된 1:250 | |
| 마우스 항 비오틴 항체 | Roche 진단 | 사용 TSBSA에 희석된 1:200 | |
| 나귀 - 항 마우스 항체 Rhodamine | Jackson 실험실은 | TSBSA에 희석된 1:250 | |
| 항 마우스 항체 Rhodamine | Jackson 실험실은 | 에 희석된 1:250 사용 | |
| 10 ml 10x 식염수, 5 ml 2 M Tris, 85 ml RNAse free H2O | |||
| Vectashield 마운팅 미디어(DAPI | Vectorlabs | H-1200 | |
| 네일 바니시 | |||
| 형광 현미경 포함 |
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