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방법 논문

마우스 나이브 CD4

53.7K 조회수

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DOI:

10.3791/52739

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2015년 4월 16일

 , 

이 논문에서

요약

순진한 CD4+ T cell은 활성화 시점의 환경에 따라 다양한 subset으로 분극화합니다. naive CD4+ T cell을 다양한 effector subset으로 분화하는 것은 T cell receptor stimuli 및 specific cytokine signal의 추가를 통해 in vitro에서 달성할 수 있습니다.

초록

항원 미숙(순진) CD4+ T 세포는 MHC class II에 제시된 동족 항원의 T 세포 수용체(TCR) 인식 시 효과기 하위 집합으로 확장 및 분화를 겪습니다. TCR 활성화 시 환경에 존재하는 사이토카인 신호는 미성숙한 CD4+ T 세포의 effector 운명을 결정하는 주요 요인입니다. naive T cell 활성화 중 cytokine 환경은 복잡하고 in vivo에서 중복 및 반대 신호를 모두 포함할 수 있지만, in vitro에서 naive CD4+ T cell 활성화 중 다양한 cytokine 조합을 추가하면 특징적인 cytokine 및 transcription factor 발현을 가진 effector T helper 계통의 확립을 쉽게 촉진할 수 있습니다. 이러한 분화 실험은 특정 CD4+ T helper subset의 발달을 촉진하거나 억제하는 것으로 여겨지는 표적의 평가를 위한 첫 번째 단계로 일반적으로 사용됩니다. 분화 과정 중에 신호 작용제, 길항제 또는 기타 사이토카인과 같은 매개체를 추가하는 것도 T 세포 분화에 대한 특정 표적의 영향을 연구하는 데 사용할 수 있습니다. 여기에서는 마우스에서 naive T cell을 분리하기 위한 기본 프로토콜과 in vitro에서 naive cell을 다양한 T helper effector 계통으로 분극화하는 데 필요한 후속 단계를 설명합니다.

서론

별개의 계통 ​​또는 CD4 + T 도우미의 부분 집합의 개념 (목) 세포는 20 세기 한 후반 이후 주변왔다. 세포 증식 및 세포 목 이펙터로 최종 분화의 여러 라운드에서 공동 자극 신호 결과의 존재 동족 항원의 인식. 이 과정에서 생성되는 토륨 셀의 유형이 활성화 중에 본 사이토킨 환경에 의존한다. 우선, 토륨 나이브 T 세포는 세포 수용체 (TCR) 활성화, 보조 자극 CD28 결찰 및 사이토 카인이 다음과 같은 별개의 신호 계통에 편광 생각되었다. 1 형 헬퍼 세포 (TH1)는 사이토킨 IFNγ 그들의 이펙터 생산뿐만 아니라 분화 과정 중에 3,4- IL-12 시그널링 그들의 요건을 특징으로한다. 결국 차별화 된 Th1 세포가 가장 특유 B를 특징으로하는 유전 적 프로파일이 발견되었다Y TH1 유전 적 프로그램 (5)의 마스터 조절기 간주되는 T 상자 가족의 전사 인자의 발현, Tbx21 (T-내기). 또한, IL-12뿐만 아니라 IFNγ로는 T-내기 식 6, 7을 홍보 할 수 있습니다. 면역 응답하여, Th1 세포는 세포 내 병원체뿐만 아니라자가 면역 염증 강한 프로모터 대 숙주 방어에 중요하다. 대조적으로, 2 형 헬퍼 세포 (은 Th2)은 그 개....

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프로토콜

모든 실험 절차는 의학 및 과학의 로잘린 프랭클린 대학 환경 보건과 안전의 사무실에 의해 승인 된 프로토콜을 사용하여 수행됩니다. 이 프로토콜에 사용 (NCI에서 구입) C57BL / 6 마​​우스는 무균 상태에서 보관하고, 모든 동물 실험은 의학의 로잘린 프랭클린 대학의 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)에 의해 승인 된 프로토콜을 사용하여 수행 하였다 과학.

악기, 소모품 및 시약 1. 준비

  1. 항 CD3 및 안티 CD28와 코트 48 웰 또는 24 웰 플레이트 (표 1) 멸균 PBS, 커버 및 파라 필름으로 포장 증발과 오염을 방지하고 T 전날 C O를 4에서 O / N을 배양하기 세포 격리. 37 O C.에서 또는 코트 우물 1 시간 로 0.5-1 ml의 1μg / ㎖에서 항 CD3, 항 CD28 모두 코팅함으로써 TH0, TH1,은 Th2 및 iTreg 조건을 수행탈 볼륨 (48 웰 플레이트). Th17를 들어, 우리는 일반적으로 코트 항 CD3 1 ㎍ / ㎖의에서 ml의 항 CD28 2 ㎍ /에서.
    참고 : 우리는 더 높은 항 CD3 농도가 Th17 생성을위한 최적의 상태에서 더 낮은 항 CD3 농도가 TH1,은 Th2 및....

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결과

토륨 조건에 따라 달라질 수 분화 분석 시점은 T 세포 수용체 활성화의 강도뿐만 아니라 테스트되는. 분화 2-3 일 후, 세포를 T 세포 증식의 범위를 결정하기 위해 광학 현미경에 의해 시각화 될 수있다. 세포의 광범위한 확산과 응집을 전시 웰스 가장 가능성이 가능성이 문화 4 일 후에 미디어를 배출합니다, 외인성 IL-2, 같은 TH1과은 Th2 등의 추가에 의존하는 일 4. 분화 조건에서 분석을위한 준비가 될 것입니다. 사이토 카인 생산을 극대화하기 위해, 지친 미디어와 같은 우물 신선한 RPMI는 IL-2를 포함하는 보충 또는 계산 및 IL-2는 또 다른 하루 이틀의 차별화를 확장 포함 신선한 RPMI 잘 당 1 × 10 6 세포에 다시는 도금 될 수있다 이 방법을 사용.

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토론

비장은 순진한 목 세포를 포함하는 동안, 림프절이 인구의 비율이 훨씬 높다. 제대로이 프로토콜에 림프절을 식별하고 제거하지 않으면 순진한 세포의 수율이 열악 발생합니다. 이것은 더 많은 지방 조직이 나이가 마우스 또는 수컷 마우스에서 특히 어려울 수 있습니다. 동물의 사지와 피부의 그림 1, 적절한 고정 및 피닝 (pinning)에 나타낸 바와 같이 접근 외부 림프절 쉽게 시각화 수 있습니다. 림프절 및 비장이 처리되면, 셀 정렬은 고순도 나이브 CD4 + T 세포 집단을 수득하는 바람직한 방법이다. 순도는 나이브 세포 분화 과정에 영향을 미치는 세포로부터 또는 토륨 nTregs 이펙터와 메모리를 방지하는 것이 중요하다. 나이브 T 세포의 높은 수율을 얻는데 어려움 통상 분리 단계 동안 비효율적 조직 수집 및 프로세싱 또는 세포의 손실에 의해 야기된다. 항복 메이크들 늘리려면URE 얼음에 감기 인큐베이션 완충제를 사용하여 셀을 처리한다. 또한, 미리 추천 시약 및 분리 프로토콜.......

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공개 사항

저자는 더 경쟁 재정적 이익을 선언하지 않습니다.

감사의 글

저자는이 프로토콜의 최적화를 위해 텍사스 MD 앤더슨 암 센터의 대학에서 의학 및 과학의 로잘린 프랭클린 대학의 레이놀즈 랩의 모든 구성원, 그리고 첸 동 연구소에 감사의 말씀을 전합니다. 이 작품은 국립 보건원 (K22AI104941)에서 JMR에 부여에 의해 지원되었다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
사용 전 37 oC 수조에서 RPMI
1640 MediaLife Technologies11875119
10% FBSLife Technologies26140-079
1000X 2-머캅토에탄올Life Technologies21985023
100X Pen/StrepLife Technologies15140122
100X L-글루타민Life Technologies25030081
120 미크론 나일론 메쉬AmazonCMN-0120-10YD2cm2 사각형 및 오토클레이브로 절단
대안: 100미크론 셀 스트레이너Fisher08-771-19나일론 메쉬
autoMACS 러닝 버퍼Miltenyi130-091-221절단의 대안사용 전 37 oC 수조에서 따뜻하게
AutoMACS 헹굼 용액Miltenyi130-091-222사용 전 37 oC 수조에서 따뜻하게
CD4 비드Miltenyi130-049-201
ACK 용해 완충액Life TechnologiesA10492-01
사이토카인:
인간 (h) IL-2Peprotech200-02
재조합 마우스(rm) IL-4Peprotech214-14
rmIL-6R & D 시스템406-ML-025
rmIL-12Peprotech210-12
hTGFbR & D Systems240-B-010
항체:
2C11 (anti-CD3)BioXcellBE0001-1
37.51 (anti-CD28)BioXcellBE0015-1
11B11 (anti-IL-4)BioXcellBE0045
XMG1.2 (anti-IFNg)BioXcellBE0055
anti-CD62L-FITCBioLegend1044061:100에서 사용
anti-CD25-PEBioLegend1020081:400에서 사용
anti-CD4-PerCPBioLegend1004341:1000에서
사용 anti-CD44-APCBioLegend1030121:500에서 사용
Phorbol  12-myristate 13 acetate (PMA)Sigma-AldrichP-8139DMSO에서 0.1 mg/ml로 주식을 준비하고 -20 o에서 부분 표본을 동결합니다.C
IonomycinSigma-AldrichI-0634DMSO에서 0.5mg/ml로 스톡을 준비하고 -20에서 분취량을 동결oC
Brefeldin AeBioscience00-4506-511:1000에 사용
하기

참고문헌

  1. Mosmann, T. R., Cherwinski, H., Bond, M. W., Giedlin, M. A., Coffman, R. L. Two types of murine helper T cell clone. I. Definition according to profiles of lymphokine activities and secreted proteins. J Immunol. 136 (7), 2348-2357 (1986).
  2. Dong, C., Flavell, R. A.

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재인쇄 및 허가

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