아데노 바이러스에 감염된 정상적인 인간의 세포에서 바이러스 복제 구획 풍부한 하위 핵 분수의 분리

Summary

우리는 아데노바이러스(Ad)에 감염된 인간 세포에서 바이러스 복제 구획(RC)을 분리하는 새로운 전략을 제공합니다. 이 접근법은 바이러스 게놈 복제 및 발현을 조절하는 분자 메커니즘과 RC에서 확립된 바이러스-숙주 상호 작용의 조절을 밝히는 데 도움이 될 수 있는 무세포 시스템을 나타냅니다.

Abstract

아데노바이러스(Ad)에 의한 인간 세포의 감염 동안, 숙주 세포핵은 극적으로 재조직되어 바이러스 게놈이 차지하는 부위에 바이러스 및 세포 단백질의 동원을 통해 핵 미세환경을 형성합니다. 복제 구획(replication compartment, RC)이라고 하는 이러한 부위는 바이러스 게놈이 국소화되고 복제, 전사 및 전사 후 처리에 참여하는 바이러스 및 세포 단백질이 모집되는 바이러스 유도 핵 도메인으로 간주될 수 있습니다. 또한, 종양 억제 단백질, DNA 손상 반응(DDR) 구성 요소 및 선천성 면역 반응 인자와 같은 항바이러스 반응에 관여하는 세포 단백질도 RC에 선택됩니다. RC가 효율적이고 생산적인 복제 주기를 촉진하는 데 중요한 역할을 하는 것으로 보이지만 구성 및 관련 활동에 대한 자세한 분석은 이루어지지 않았습니다. 아데노바이러스 RC 및 세포핵에서 복제되는 다른 DNA 바이러스의 잠재적 연구에 대한 연구를 용이하게 하기 위해 속도 구배를 기반으로 하는 간단한 절차를 조정하여 Ad RC를 분리하고 이러한 바이러스 유도 핵 구조에 대한 형태학적, 기능적 및 구성 연구를 수행하고 숙주-세포 상호 작용에 미치는 영향을 연구할 수 있는 무세포 시스템을 구축했습니다.

Introduction

아데노 바이러스는 감염된 세포의 핵에서 복제하는 이중 가닥 DNA 게놈을 포함합니다. 바이러스의 DNA는 핵 진입하면 PML 핵 몸체 ^(1)에 인접하여 국소화. 바이러스 초기 유전자 발현 다음, 핵 구조는 과장 되나, 바이러스 성 미세 환경의 형성을 유도하는, 재구성 바이러스 복제 격실 (RC) ^2. 아데노 바이러스 (AD) RC는 바이러스 게놈의 복제 및 바이러스 유전자의 발현 늦은이 일어나는 부위이기 때문에, 이들은 이러한 프로세스에 참여하는 모든 필요한 바이러스 및 세포 인자의 채용을위한 환경을 제공한다. 흥미롭게도, 이러한 DNA 손상 반응으로서 세포의 항 바이러스 반응을 담당 세포 단백질의 다양성은 선천성 면역 반응 및 종양 억제는 공동하기로 이들 바이러스 ² 위치한다. 병용을 조절하면서 효율적인 바이러스 복제를 촉진 따라서, 광고 RC가 고려 될 수 규제 허브이러한 구조는 바이러스 숙주 세포 상호 작용의 이해에 중요한 것을 나타내는 응답 세포 바이러스. 그럼에도 불구하고, RC 형성의 분자 메커니즘은 그들의 조성과 연관된 활동을 제대로 이해된다.

핵에서 복제 다른 DNA 바이러스에서 아데노 바이러스 RC뿐만 아니라 RC는 세포질 RC ³ 대조적으로, 막에 관련되지 않습니다. 또한, 이러한 바이러스 - 유도 구조 단백질 및 핵산의 전체 구성 될 가능성이 높다. RNA 바이러스에 감염된 세포에서 형성 RC는 상세한 형태 적, 기능적, 생화학 적 특성 ^(4)를 촉진했다 그들의 세포질 현지화 및 막 - 결합 상태, 활용, 고립 된 (일반적으로 바이러스 성 공장을 지칭).

우리의 지식에, 핵 바이러스 성 RC는 아마도 인해 핵내 M의 핵 구조와 부재의 복잡성, 격리되지 않은자신의 분리를 용이하게 할 embranes. 이들의 연구는 대신에 면역 형광 현미경, 생선, 투과 전자 현미경에 의존하고있다. 그러나 subnuclear 구조를 분리 고유의 합병증에도 불구하고, 이러한 핵소체와 Cajal 기관과 같은 다른 핵 도메인은 ^5,6 전에 격리되었다. 핵소체 및 RC는 모두 단백질 및 핵산으로 구성하고, 직경이 0.5이되기 때문에 - 5 ㎛, 우리는 RC 역시 의무가 분리되어야한다는 가설을 세웠다. 따라서,보다 정확하게 RC 연관된 분자 조성 및 기능을 특성화하기 위해, 우리는 RC subnuclear 풍부 분획을 분리하는 새로운 방법을 확립. 이를 위해 핵소체 ⁷ 또는 다른 핵 영역 ^(6)을 분리하기 위해 사용 된 절차와 유사한 속도 구배 및 수 크로스 쿠션을 사용하는 하위 핵 분획을 제조하고, 분자 조성물의 연구 및 연관된 활동을 가능하게하는 무 세포계를 설립RC. 이 기술은 따라서 바이러스 숙주 세포 상호 작용의 이해를 발전하고 또한 핵 복제 다른 바이러스로부터 RC의 상세한 분석을 용이하게하고 adenovirus- 형성과 동일한 치수의 복제 구획 형성을 유도한다 강력한 도구를 대표한다 예, 헤르페스 바이러스, 유두종 바이러스 또는 폴리오 마 감염된 세포.

Protocol

1. HFF 세포 배양 및 광고 감염

1. 앞서 설명 된 바와 같이 ⁸ HFF 세포에 형광 형성 유닛 (FFU)로서 HEK-293 세포의 단층에서 역가의 Ad5 WT 바이러스를 전파.
2. 가습 인큐베이터에서 DMEM / 10 % 태아 소 37 ºC에서 멸균 문화 100mm 요리 혈청 (FBS) 5 % CO ₂ 10ml에 인간의 포피 섬유 아세포 (HFF)을 성장. 네 16 평방 세트에서 세포를 계산하여 노이 바 우어 챔버를 이용하여 세포 수를 결정합니다. 용액 당 세포 수는 4-16 개의 정사각형 세트 세포 수의 평균을 산출하고 (10) ^(4)에 의해이 값을 곱함으로써 얻어진다. 스텝 130에 포함 된 각 시간 후 감염, 1 × 10 ⁷ HFF 셀을 사용한다.
3. 모의 감염시킬가 형성 부 (30) 포커스의 방어에 접시 당 DMEM에서의 Ad5 1 ㎖를 사용하여 100mm 조직 배양 접시에서 아데노 바이러스 5 형 (의 Ad5) 야생형 (WT) (H5pg4100 ^8)로 HFF 세포를 감염, 또는 FFU 또는 셀 당. 아에 2 시간 동안 품어신중 요리마다 15 분간 흔들 umidified 37 ºC에서 세포 배양 인큐베이터 및 5 % CO _2, 셀 위에 바이러스 접종원 균일 분포를 보장한다. 이 시간 후, 배지를 제거하고, 추가 10 % FBS가 보충 된 신선한 DMEM 및 CO _2에서 37 ^º C 가습 세포 배양 인큐베이터에서 16, 24 또는 36 시간 동안 배양하고, 5 %. 2.1 단계로 진행합니다.

아데노 바이러스 RC이 함유 하위 핵 분수 2. 준비

1. 수확의 Ad5는 감염 또는 셀 스크래퍼와 모의에 감염된 HFF 세포와 멸균 원심 분리기 튜브에 세포를 수집합니다. 단계 1.2에서와 같이 세포 수를 결정합니다. 단계 1.3에 지정된 각 시간 후 감염 1 × 10 ⁷ 세포를 사용합니다.
2. 220 XG, 5 분 동안 4 ºC에서 세포를 원심 분리기.
3. 빙냉 PBS에서 세포 펠렛을 재현 탁 (137 mM의 염화나트륨, 2.7 mM의 KCl을을, 10 mM의 나트륨 ₂ HPO ₄ 및 1.8 mM의 KH ₂ PO _4). 세척 세포 펠렛S 세척 당 빙냉 PBS 5 mL를 이용하여 3 회. 이를 위해, 원심 분리기 (220) XG, 5 분, 4 캔트 ºC에서 세포 상등액 (SN)을 폐기하고, 부드럽게 피펫 팅하여 세포 펠렛을 재현 탁.
4. 세포막을 파괴하기 위해, 700에서 세포 펠렛을 얼음 - 냉각 된 저장성 완충액 (L) (10 mM의 HEPES pH가 7.9, 10 mM의 KCl을 1.5 밀리미터의 MgCl _2, 0.5 mM의 DTT, 20 μ g / ㎖의 페닐 메틸 설 포닐 플루오 라이드 (PMSF)를 μ 재현 탁 10 μ g / ㎖ 소 췌장 트립신 저해제 10 μ는 g / ㎖ 펩 스타틴, 10 μ g / ml의 N 아세틸 L 로이 실 - L 로이 실 - L 포함한 시스테인, 세린, 트레오닌 및 아스파 틸 프로테아제 억제제의 혼합물 -argininal)과 세포를 3 시간 동안 얼음에 팽윤.
5. 를 Lyse 헐렁한 A 형 테플론와 유 봉, 호모 게 나이저를 사용하여 세포. 스트로크와 밝은 필드 현미경으로 매 20 스트로크는 모든 세포가 용해되었는지 확인하는 모니터 샘플 다운스 (80) 수행하지만, 핵 N 가지고손상 또는 파손 된 오티.
6. 300 XG, 5 분 동안 4 ºC에서 세포 파쇄 액을 원심 분리기. 원심 분리기 튜브 -20 ºC에서 세포질 분수로 SN을 저장합니다.
7. 솔루션 1 (S1)의 750 μ L (에 재현 탁, 핵에서 펠렛을 세포 파편을 제거하려면 0.25 M 자당, 10 밀리미터의 MgCl (10)를 포함하여 _{2 ~} 20 μ g / ㎖ PMSF, 시스테인, 세린의 혼합물 쓰 레오 닌과 아스파 틸 프로테아제 억제제 μ g / ㎖ 소 췌장 트립신 저해제 10 μ g / ㎖ 펩 스타틴, 10 μ g / ml의 N 아세틸 L 로이 실 - L 로이 실 - L-argininal)과 용액 (2)의 동일 부피를 통해 층 (S2) (0.35 M 수 크로스, 0.5 밀리미터의 MgCl _2, 20 μ g / ㎖의 PMSF, 시스테인, 세린, 10 μ g / ㎖ 소 췌장 트립신 저해제 10 μ g / ㎖ 펩 스타틴, 10 μ 포함 트레오닌 및 아스파 틸 프로테아제 억제제의 혼합물 g / ㎖의 아세틸 N-L-L 로이 실 - 로이 실 - L-argininal). 하기 Centr1400 XG, 5 분 4 ºC에서 ifuge.
8. 마이크로 피펫을 사용하여 SN을 폐기하십시오. 펠렛을 방해하지 마십시오.
9. S2 750 μ 리터에 고립 핵을 함유하는 펠렛을 재현 탁.
10. 아데노 RC (RCF) subnuclear 풍부 분획을 분리하기 위해, 5 분간 두 펄스를 이용하여, 초음파 욕 핵을 재현 탁하고, 초음파 처리, 또는 명 시야 현미경으로 관찰 된 바와 같이 모든 핵을 용해 될 때까지. C에서 4 ° 이하로 샘플을 유지하기 위해 필요에 따라 초음파 욕조에 얼음을 사용합니다.
11. 용액 3 (S3)에서 3,000 XG (0.88 M 수 크로스, 0.5 밀리미터의 MgCl ₂₎ 원심 분리기, 10 분 동안 4 ºC 동량 위에 초음파 핵 층을 포함한다. -70 ºC에서 nucleoplasmic 비율 (NPL)과 1.5 ml의 상층 액을 저장합니다. -70 ºC에서 RCF와 S2의 700 μ L의 펠렛 및 저장을 재현 탁.

RCF 3. 서양 얼룩의 분석

참고 : NPL과 RCF 분수 (S)의 웨스턴 블롯 분석을위한등은 제외 (640)는 고정 이하 여신에 대한 L 단계 2.11에서 얻은 총 볼륨에서 RCF 300 μ L를 μ.

1. 5 분 95 ºC에서 15 μ 램 믈리 버퍼 2 배의 각 subnuclear 부분의 L (4 % SDS, 20 % 글리세롤, 10 % 2- 머 캅토 에탄올, 블루 0.004 % 브로 모 페놀, 0.125 M 트리스 염산의 pH 6.8)과 종기를 섞는다. 10 % 나트륨 도데 실 설페이트 - 폴리 아크릴 아미드 겔 전기 영동 (SDS-PAGE) 20 밀리 암페어 (mA)에서 1.5 시간 동안 겔 분리 단백질 변성에 샘플을 로딩.
2. 폴리 비닐 리덴 디 플루오 라이드 (PVDF) 막에 400mA에서 1.5 시간 동안 electroblotting에 의해 단백질을 전송합니다.
3. RT는 PBS에 3 % 탈지 분유를 사용에서 2 시간 동안 막을 차단합니다.
4. PBS / 0.3 % 탈지 분유 500 희석 : 1에서 바이러스 E2A의 DNA 결합 단백질 (B6-8 ^9)에 대한 일차 항체와 4 ºC에서 O / N을 품어.
5. 3 회 PBS로 세척 막 / 0.1 %의 10 분 트윈 20.
6. 마우스 항 IgG의 차와 멤브레인을 품어실온에서 2 시간 동안 PBS에서 10,000 희석 : tibody은 1에서 말 무 퍼 옥시 다제 (HRP)에 연결된다.
7. PBS로 막 3 회 반복 / 0.1 % 트윈 20을 10 분 동안.
8. 강화 된 화학 발광 및 X 선 필름을 사용하여 멤브레인을 개발한다.

RCF 4. 바이러스 DNA 검출

참고 : 두 NPL과 RCF 분수의 DNA 분리를 들어, 단계 2.11에서 얻은 총 부피의 RCF에 대한 NPL 210 μ L 100 μ L를 사용합니다.

1. 단백질 분해 효소 K의 1 ㎎ / ㎖ 및 0.5 % 트윈 20과 55 ºC에서 1 시간 동안 하위 핵 분수를 품어.
2. 95 ° C에서 10 분 동안 샘플을 배양하여 단백질 분해 효소 K 불 활성화.
3. 2 분 동안 실온에서 20,000 XG에서 샘플을 원심 분리기.
4. (SN)를 수집합니다. 4 ℃에서 3M 아세트산 나트륨 1/10 부피의 이소프로판올을 하나의 볼륨, O / N로 DNA를 침전.
5. 실온에서 10 분 동안 20,000 XG에서 원심 분리.
6. SN의 U 폐기마이크로 피펫을 노래. 20,000 XG, 5 분 동안 4 ° C에서 70 % 에탄올과 원심 분리기와 펠렛을 씻으십시오.
7. 10 mm의 10 μ 리터에서 DNA를 재현 탁 트리스 -HCl pH 7.4의
8. 260 nm에서 광학 밀도 (OD)를 측정하여 분광 광도계를 사용하여 DNA를 정량.
9. 바이러스 성 DNA를 증폭 뉴클레오티드 7273에서, 주요 늦은 전사 부 내의 영역의 증폭을 허용 프라이머 반응 부피의 25 μ 리터에서의 Taq DNA 폴리머 라제를 사용하여 표준 PCR 반응에서 각 subnuclear 분획으로부터 DNA 100 ng의를 사용하여 염기 7353 (81 BP) FW (: GAGCGAGGTGTGGGTGAGC;, 계 : GGATGCGACGACACTGACTTCA). 95 ºC에서 3 분의 초기 변성, 20 증폭 (95 ºC 72 ºC에서 30 초 62 ºC에서 1 분간 열처리 및 확장시 1 분)의 사이클에 대한 최종 확장 단계 다음에 다음주기 조건을 사용하여 72 ºC에서 3 분.
10. 티듐 90 V. 얼룩에, 2 % 아가 로스 젤에서 PCR 생성물을 실행할0.5 μ g / ml의 최종 농도 브롬화물과 RCF에서 바이러스 DNA 농축을 확증하기 위해 DNA를 시각화. 이 화합물은 강력한 돌연변이이기 때문에, 장갑을 착용해야합니다 항상 세심한주의와 에티 디움 브로마이드를 처리합니다. 제도적 지침에 따라 에티 디움 브로마이드를 폐기 할 것.

RCF 5. 늦은 바이러스 mRNA를 검출

참고 : 두 NPL과 RCF 분수에서 RNA 분리를 들어, 단계 2.11에서 얻은 총 볼륨에서 RCF에 대한 고정 이하 여신에 대한 640 μ L 300 μ L를 사용합니다.

1. 제조업체의 지침에 따라 트리 졸 사용 subnuclear 분수에서 RNA를 분리합니다. DEPC (diethilpyrocarbonate) 처리 된 물 50 μ L의 RNA를 재현 탁.
2. 260 nm에서 OD를 측정하는 분광 광도계를 사용하여 RNA를 정량화 (약 3 μ g를 얻을 수있다). 50 NG에서 RNA를 저장 / -70 ºC에서 L 씩을 μ.
3. 정제 된 RNA를 확인전체 RNA의 5 NG 단계 4.9에 기재된 사이클 조건을 이용하여, 역전사 효소 (RT)의 부재하에 제어 PCR 반응을 수행하여 DNA 오염의 부재에 대한.
   1. DNA 오염이 존재하지 않는 경우에는 증폭 물이 생성 될 수 없습니다. DNA 오염이 존재하면, 10 U의 RNase 억제제 10 U의 DNase I, 0.1 M 트리스 -HCl pH를 8.3, 0.5 M KCl을 37 ºC에서 30 분 동안 15 밀리미터의 MgCl ₂ 샘플을 배양. 단계 5.1에서와 같이 RNA를 다시 분리로 이동합니다.
4. RCF 연관 바이러스의 mRNA를 분석하기 위해, 다른 유전자 군 (표 1)에서 아데노 바이러스 후기의 mRNA를 검출하기위한 프라이머를 사용하여 RT-PCR에 의해 각각 subnuclear 분획으로부터 100 ng의 RNA를 증폭한다.
   1. 역전사 (RT)에 대해, 42 ºC에서 1 시간, 70 ºC에서 10 분 동안 반응 부피의 20 μ 리터에 M-MuLV RT 효소를 이용하여 표준 RT 반응시 각 subnuclear 분획으로부터, RNA 100 NG를 사용한다.
   2. 증폭, 1을 사용단계 4.9에서와 같이 PCR 반응에서 cDNA를 μ 리터. 증폭의 25주기 다음 95 ºC에서 3 분의 초기 변성 (95 ºC에서 1 분, 어닐링 72 ºC에서 30 초 동안 표 1 및 확장에 지정된 온도에서 1 분)와 다음주기 조건을 사용하여 72 ºC에서 3 분 최종 확장 단계.
5. μ는 0.5 g / ml의 최종 농도에 티듐 브로마이드 90 V. 얼룩 겔에서 2 % 아가 로스 젤에서 RT-PCR 산물을 실행하고 RCF로 바이러스 늦은 mRNA의 연관을 확증하기 위해 시각화. 단계 4.10에 표시된대로 에티 디움 브로마이드를 처리합니다.

RCF 6. 면역 형광 시각화

주 : 반출 절차를 층류 캐비닛 아래의 먼지 입자와 함께 샘플의 오염을 방지하고, 사용 전에 모든 솔루션을 필터링.

1. 스팟 5 단계에서 얻어진 디레 2.10 RCF 분획을 L μctly 실란 코팅 슬라이드.
2. 실온에서 약 5 분 동안 자리를 건조 보자.
3. 다시 수화물 천천히 간접적으로 RCF 지점 옆에 드롭 PBS의 500 μ 리터를 피펫 팅하고 슬라이드를 기울여 흐름 시켜서. 측면에서 초과 PBS를 배출합니다.
4. RT에서 2 시간 동안 PBS / 5 % 소 혈청 알부민의 500 μ 리터 (BSA) 시료를 피복하여 블록.
5. 부드럽게 간접적 샘플에 PBS 500 μ L을 피펫 팅하여 슬라이드 3 회 반복한다. 초과 PBS를 배출 슬라이드를 기울.
6. 실온에서 2 시간 동안 PBS에 희석 500 : 1에서 바이러스 E2A의 DNA 결합 단백질 (B6-8 ^9)에 대한 일차 항체와 샘플을 품어. 항체 용액의 20 μ 리터와 발견 샘플을 커버하고 건조를 방지하기 위해 습한 챔버에서 배양한다.
7. 부드럽게 간접적 샘플에 PBS 500 μ L을 피펫 팅에 의해 PBS / 0.02 % 트윈 20 샘플을 3 회 반복한다. 전 오프 드레인 슬라이드를 기울운 세척 솔루션입니다.
8. 4 ºC에서 1 시간 동안, PBS에서 2,000 희석 : 1에서 488 nm에서 여기되는 형광체에 결합 된 마우스 항 IgG를 이차 항체로 샘플을 품어. 항체 용액의 20 μ 리터와 발견 샘플을 커버하고 건조를 방지하기 위해 습한 챔버에서 배양한다.
9. 부드럽게 간접적 샘플에 PBS 500 μ L을 피펫 팅에 의해 PBS / 0.02 % 트윈 20 샘플을 3 회 반복한다. 초과 세척 용액을 배출 슬라이드를 기울.
10. 중간 장착 2- μ L PBS / 10 % 글리세롤을 사용하여 커버 슬립으로 슬라이드 발견 샘플을 커버. 명확한 매니큐어 및 저장 등 -20 ºC와 인감.
11. 63X 대물 렌즈 및 488 nm의 파장에서 1.4 NA를 (NA)와, 형광 현미경을 이용하여 샘​​플을 분석한다.

Results

바이러스 복제 용 구획 (RC)는 단백질과 다른 핵 도메인 유사한 핵산 이루어지는 subnuclear 바이러스 - 유도 된 구조이기 때문에, 그들은 생화학 적 특징에 기초하여 속도 구배에 의해 분리 의무가 것을 알았다. 분별 프로토콜의 중요한 단계는 샘플이 다른 서브 세포 분획의 무결성을 보장하기 위해 명 시야 현미경으로 관찰 할 필요가 각 단계에서,도 1에 도시되어있다. 세포를 팽창 할 때 예를 들어, 저장성 완충액 배양 시간은 핵의 손상을 방지 세포질을 팽창하기 위해 표준화 될 필요가있다. 소포체 막 포함 세포질 구성 요소를 무료로 휴대 균질화 그대로 핵, 후, 획득해야합니다. 또한, 초음파 처리 시간은 RC 중단없이 모든 세포의 핵막을 파열시키기 위해 표준화 될 필요가있다.

하위 핵 분획을 얻은 후, 키컨트롤은 RCF에서 협회와 선의의 RC 마커의 농축을 결정하기 위해 포함 할 필요가있다. 아데노 바이러스는 통상적으로 RC ...

Discussion

바이러스 감염에 의한 세포 활동의 조절을 지배하는 분자 메커니즘을 밝히기 위해서는 RC와 관련된 구성 및 활동을 이해하는 것이 도움이 될 것입니다. 따라서 RC에 대한 자세한 분석을 위해 우리는 이러한 바이러스 유도 구조의 크기와 생화학적 조성을 이용하는 무세포 시스템을 구축하여 자당 쿠션을 사용한 속도 구배에 의존하는 간단한 절차를 사용하여 RC가 풍부한 핵 이하 분획을 분리했습니다. 사용된 세포 유형에 따라 표준화가 필요한 절차의 중요한 단계는 다음과 같습니다: i) 핵의 파괴를 피하기 위해 세포 팽종에 사용되는 시간의 표준화; ii) 분획이 적절하게 분리될 수 있도록 자당 구배의 형성; iii) 명시야 현미경에 의한 절차 전반에 걸쳐 샘플의 지속적인 모니터링; iv) 모든 핵이 용해되지만 RC가 중단되지 않도록 초음파 처리 시간 및 강도; v) 모든 분획 단계는 핵 구조의 파괴를 피하기 위해 얼음 위에서 수행되어야 합니다.

접할 수 있거나 예상할 수 있는 기술의 한계는 다...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
DMEM	Gibco	12100-046	37 º에서 따뜻한; C 사용 전 수조
Fetal Bovine Serum	Gibco	12484-028
Sucrose, Ultra Pure	Research Organics	0928S	2.55M 재고 용액을 준비하고 4 º에 보관하십시오. C
Dounce 균질화기	Kontess Glass Company	884900-0000
Branson 1800 초음파 욕조	Branson	Z769533  SIGMA	사용 15분 전에 전원을 켜십시오.
Goat anti-Mouse IgG1 2차 항체, Alexa Fluor 488 conjugate	Life Technologies	A-21121	에서 1:2,000 희석으로 사용
	Sigma	S4651-72EA	층류 캐비닛에서 열기
SuperSignal West Pico 화학발광 기판	Pierce ThermoScientific	34080