Method Article

쥐의 눈으로 인간 망막 안료 상피 세포의 트랜스 scleral Subretinal 이식에 대 한 세련 된 프로토콜의 개발

DOI:

10.3791/55220

August 12th, 2017

* These authors contributed equally

In This Article

Summary

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Subretinal 주입은 나이 관련 황 반 변성에 대 한 줄기 세포 대체 요법의 전 임상 연구에 널리 적용 되었다. 이 시각화 된 문서에서는, 우리 쥐 눈 세포를 제공 하는 트랜스 scleral 접근을 통해 덜 위험 하 고, 재현 고 정확 하 게 수정 subretinal 주입 기술을 설명 합니다.

Abstract

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연령 관련 황 반 변성 (AMD) 등 퇴행 성 망막 질환 전세계 돌이킬 수 없는 시력 상실의 주요 원인입니다. AMD는 기능적으로 지원 하 고 해부학 신경 망막 주위 세포의 단층 망막 안료 상피 (RPE) 세포의 변성에 의해 특징입니다. 비 신생 AMD (건식 AMD)에 대 한 현재 약물 치료는 질병의 진행을 느리게만 겨냥 한 새로운 치료 전략을 식별 하는 연구를 필요로 하는 비전을 복원할 수 없습니다. 건식 AMD를 미래에 치료 건강 한 세포 파악 약속 퇴행 성 RPE 세포를 교체. AMD에 대 한 줄기 세포 대체 요법의 광범위 한 전 임상 연구 참여 subretinal 사출 기술을 적용 동물 모델의 subretinal 공간으로 줄기 세포 유래 RPE 세포의 이식. 이러한 전 임상 동물 연구에서 가장 자주 사용 하는 접근 어려운 바늘 끝의 직접적인 시각화의 부족에 의해 만들어지고 종종 망막 손상 될 수 있습니다 트랜스 scleral 경로입니다. 유리 체를 통해 다른 접근 바늘 끝 위치의 직접 관찰에 대 한 수 있지만 더 많은 눈 조직 방해로 수술 외상의 높은 위험을 운반. 덜 위험 하 고 재현할 수 수정된 트랜스 scleral 주입 방법 정의 바늘 각도 깊이 사용 하 여 성공적으로 하 고 일관 되 게 쥐 subretinal 공간으로 RPE 세포를 제공 하 고 과도 한 망막 손상을 방지를 개발 했습니다. 이 방식으로 전달 하는 세포는 2 개월 이상에 대 한 외과 의사의 왕 대학 (RCS) 쥐에 효능 되도록 이전 입증 되었습니다. 이 기술은 세포 이식 뿐만 아니라 작은 분자 또는 유전자 요법의 배달을 위해 사용할 수 있습니다.

Introduction

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인간의 망막 눈 기능 뒤 가벼운 감각 조직으로 있으며 비전 인식에 중요 한 역할을 한다. 망막 세포 역 기능 또는 세포 죽음 따라서 시력 문제 또는 영구적인 실명을 발생합니다. 변성 또는 망막의 다른 층에 있는 세포의 기능 장애와 관련 된 장애 퇴행 성 망막 질환, 중 AMD는 가장 일반적인 유형 및 선진국 노인에 돌이킬 수 없는 실명의 주요 원인으로 알려져 있습니다. 1,2. AMD의 병 적인 과정은 관련 RPE 레이어와 차례로 손상의 포토 리셉터 생리학, 신경 망막 위축 및 비전 손실3, RPE 지원 기본 Bruch 막 사이 "드루" 축적 된 4,5. 지금까지, 치료법은 고급 건조 (비 신생) AMD. 재생 의학의 새로운 패러다임으로 줄기 세포 치료의 출현 줄기 세포 유래 건강 한 세포 기능 장애 또는 죽은 RPE 세포 교체의 희망을 제공 합니다. 실제로, 이식의 광범위 한 전 임상 연구 줄기 세포 (예를들면, 인간 배아 줄기 세포)-RPE 퇴행 성 동물 모델에 파생 된 RPE 세포 수행된6,7, 일부는에 진행 되었습니다 임상 시험8,9 (NCT01344993, ClinicalTrials.gov). 최근, 줄기 세포 인간의 RPE 레이어, 인간의 RPE 줄기 세포 (hRPESCs)에서의 대안 소스 우리의 실험실에 의해 확인 되었다와 amd hRPESC 파생 된 RPE 세포 (hRPESC-RPE) 이식 치료의 임상 연구에서 현재 사용 되 고 10 , 11 , 12 , 13.

Subretinal 주입 기술은 우리의 그룹을 포함 하 여 여러 그룹에 의해 위에서 언급 한 전 임상 연구에 적용 됩니다. 동물에서 subretinal 주입을 위한 일반적인 방법은 두 가지: 트랜스 vitreal 및 트랜스 scleral. 트랜스-vitreal 접근 앞쪽 눈 침투, 십자가 전체 vitreal 구멍 렌즈에 인접 하 고 침투는 subretinal 도달 하 눈 뒤에 망막 바늘 끝을 직접 관찰할 수 있는 외과 의사의 이점이 있다 공간14,,1516. 그러나, 그것은 렌즈, 손상의 위험 전달 하 고 바늘을 철회 하는 때 유리 체로 셀의 역류에서 발생할 수 있습니다 (앞쪽에 및 사후), 두 개의 위치에 망막을 방해를 요구 한다. 반면, 트랜스 sclera 접근의 원칙, 망막 및 유리 체의 관련을 방지 하 고 역류 눈을 종료 합니다. 안료 설치류에서 외과 의사 처음 sclera의 침투를 관찰할 수 있다 하지만 안료 맥락 막에 통로, 후 바늘 끝은 더 이상 표시. 직접 관찰 없이 망막 위배 일반적 이며 망막 해 부 및 세포 혈액의 유리 체에 배달 될 수 있습니다. 또한, 눈 표면 곡선 때문에 그것은 매우 어떤 바늘 각도 깊이 트랜스 scleral 주사에 대 한 가장 효과적인 알고 어렵다.

이 시각화 된 문서에서 정보를 가진 광학 일관성 단층 촬영 (OCT), 사출 사이트의 상세한 검사를 수 있는 수술 후 평가의 사용에 의해 트랜스 scleral subretinal 주입 방법을 소개 합니다. 우리의 트랜스 scleral 주입 기술 정의 위치, 각도, 그리고 매우 낮은 수술 외상 및 높은 신뢰성을 주사 바늘에 대 한 깊이 사용 합니다. 여기, 우리가 구체적으로 RCS 쥐, 인간의 AMD의 전 임상 모델의 subretinal 공간으로 hRPESC-RPE 세포의 주입을 보여 줍니다. 이 주입 방법으로 우리가 성공적으로 일관 되 게 배달 hRPESC-RPE 세포 RCS 쥐 눈 매우 높은 성공률의 subretinal 공간으로. 세포의 주입 이전13주입 후 최소 2 개월 RCS 대뇌의 보존을 발견 했다. 이 절차는 해 현미경 아래 수행 되 고 배우기 쉽습니다. 그것은 두 사람 (한 의사와 보조) 주사를 수행 요구 하 고 각 동물에 대 한 주입의 평균 시간은 5 분 미만 이다. 정의 된 각도 깊이 주사 바늘에 대 한 실험실, 10 월은 성공적인 subretinal 주입을 달성 하기 위해 사용할 수 없습니다에 대 한 가능 하 게. 그것은 높은 재현성 subretinal 액세스를 허용 하 고 세포 이식, 뿐만 아니라 약물 전달 및 유전자 치료에 사용할 수 있습니다.

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Protocol

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동물 관련 된 모든 절차는 기관 동물 관리 및 사용 위원회 (IACUC)에 뉴욕 주립 대학의 알바 니에 의해 승인 되었습니다.

1. 사전 사출 준비

  1. HRPESC-RPE 세포 현 탁 액의 준비
    참고: 모든 다음 단계 살 균 조직 문화 후드에서 수행 됩니다 및 기본적인 살 균 기술 가진 친밀 필요 합니다.
    1. 기본 hRPE 세포 격리 인간 기증자에서 눈 세 50-90 년과 24-잘 접시12문화 셀. 통로 1에 셀 cryopreserve, 필요에 따라 해 동 및 문화 통로 2 (P2) 세포 주입에 대 한 4-5 주 (그림 1A).
    2. 12 문화 매체 제거 하 고 부드럽게 린스 우물 500 µ L로 두 번 미리 Dulbecco의 인산 염 버퍼 염 분 칼슘 및 마그네슘 없이 X 1을 예 열 (1 DPBS CMF x) 1을 추가 하 여 1000 µ L 피 펫을 사용 하 여 고 진공을 사용 하 여 그것을 제거 하는 것은 우물에 X DPBS CMF.
    3. 각 우물에 300 µ L 트립 신/DNAse를 추가 합니다. 트립 신/DNAse (4 구 0.25 %trypsin-EDTA의 1 mL 당 DNase) 셀 해리를 37 ° C에서 4 분에 hRPESC-RPE 세포를 품 어.
    4. 그들은 반올림 있는지 현미경 셀을 확인 합니다. 계속 그들은 아직 둥근 하지 경우 트립 신/DNase를 추가 2 분 동안에 세포를 품 어.
    5. 셀 반올림 됩니다, 일단 1000 µ L 피 펫을 사용 하 여 triturate 우물에서 분리 된 세포를 트립 신/DNase 비활성화를 미리 데워 진된 문화 매체의 동일한 볼륨 15 mL 원뿔 튜브로 분리 된 셀을 포함 하는 트립 신/DNase 전송.
    6. 미리 데워 진 1 우물 린스 부드럽게 위아래로 잘;의 가장자리의 주위에 특히 pipetting으로 X DPBS CMF 그런 다음 이전 원뿔 관에 이러한 셀을 추가 합니다.
    7. 286 x g 작은 셀을 4 ° C에서 5 분에 원뿔 튜브 원심
    8. 제거는 상쾌한 고 1 mL 문화 매체와 셀 resuspend.
    9. hemocytometer를 사용 하 여 셀을 계산 합니다.
    10. 작은 셀을 4 ° C에서 5 분에 대 한 286 x g에서 원심.
    11. 상쾌한을 제거 하 고 셀에 살 균 균형 소금 솔루션 (BSS) 50, 000 셀 / µ L에서 (subretinal 주입 중 1 µ L 볼륨에 50, 000 셀을 제공)을 resuspend.
    12. 1.7 mL microcentrifuge 튜브와 얼음 물 혼합물에 주입 사용까지 최종 세포 현 탁 액 (CS)를 전송 합니다.
  2. 셀 인젝터의 준비
    1. 주입 주사기와 인젝터를 밀접 하 게 나사에 메 마른 33-게이지 경사진된 바늘을 삽입 합니다.
    2. 5-6 번 100% 에탄올과 인젝터를 플러시.
    3. 5-6 번 70% 에탄올과 인젝터를 플러시.
    4. 플러시 BSS와 인젝터 5-6 시간.
    5. 인젝터 바늘 메 마른 검은 마커 펜 (그림 1B) 해 현미경 바늘의 팁에서 600 µ m의 위치에 표시 합니다.
    6. 인젝터 주입 micromanipulator 놓습니다.

2. subretinal 주입

  1. 외과 영역 및 동물 준비
    1. 그리고 4-5 주 오래 된 RCS 쥐 (60-100 g)를 무게 isoflurane 증기 전달 시스템을 사용 하 여 anesthetize.
      참고: 유도 마 취 5%에서 isoflurane 유량을 유지 합니다. 발을 눌러 마 취의 깊이 확인 하 고 수술 시 마 취 유지 보수에 대 한 2-3% 유량을 줄일 수 있습니다.
    2. 메 마른 외과 영역을 설정 해 현미경의 스테이지 밑,가 열 패드와 멸 균 수술 드 레이프를 놓습니다.
    3. 외과 영역에 쥐를 전송 및 마 취 유지 isoflurane 시스템에 연결 된 코 콘 쥐 장소.
    4. 거 즈와 쥐의 시체를 커버. 전체 마 취를 확인 하는 쥐의 발가락을 꼬집어.
  2. 트랜스 scleral subretinal 주사 현미경
    1. 쥐의 unoperated 눈에 한 방울 눈 윤 활 유를 적용 합니다.
    2. 주입, 외과 의사의 오른손 쪽으로 그것의 머리 및 외과 의사를 향해 다시 천장에 직면 하는 왼쪽된 눈과 쥐의 오른쪽 면에 위치.
    3. 작은 위로 눈을 커버 하는 어떤 수염을 잘라 주세요.
    4. 왼쪽된 눈의 시간적 측면에서 눈 세척의 작은 금액을 똑 똑 하 고 눈을 씻어 하 면 주걱으로 비 강 측에 초과 수집 합니다.
    5. 각각의 한 방울을 적용 하 여 주입 후 10 월 시험에 대 한 1 %tropicamide 및 2.5 %phenylephrine (갓 수술 당일 무 균 0.9% 식 염 수에 희석 하 여 10 %phenylephrine 만든)와 학생 같은데요.
    6. 4-6 시간 눈 주위의 피부를 살짝 당겨 눈은 약간 proptosed 지역에서 limbus 후부에 쉽게 액세스할 수 있도록 눈 꺼 풀을 열고.
    7. 눈 세척의 방울을 적용 하 고 눈을 촉촉한 유지.
    8. 부드럽게 (준비 단계 1.1.12) CS를 triturate 하 고 1.2 µ L CS와 인젝터를 로드 합니다. 여분의 0.2 µ L 주입 역류에 대 한 보상 하는 데 사용 됩니다.
      참고: 에 대 한 우리의 측정에 따라 5000-8000 셀 50, 000 셀 / µ L 셀 손실의 약 10-16%에 그의 주사와 역류에 손실 됩니다 및 0.2 µ L CS의 추가이 셀 손실 보상을 주입 했다.
    9. 인젝터는 micromanipulator에 CS로 가득 놓습니다 (또는 그것을 잡고 보조) 세로로 RPE 세포에에서 쉽게 침 몰 경향이.
    10. 눈에 방울 0.5 %proparacaine (지역 국 소 마 취 제)를 적용 하 고 초과 면 주걱으로 제거.
      참고: 이 단계는 각 막 반사를 억제 하 고 깜박이 후속 단계에서 눈을 방지 해야 합니다.
    11. 집게를 사용 하 여를 후부는 limbus 결 막, 눈 nasally, 회전 리프트 "텐트"를 만들려고 결.
    12. 가 위를 사용 하 여 결 막에 작은 개통을 확인 하 고 기본 sclera를 노출 하는 "천막"의 상단을 잘라.
    13. 집게를 사용 하 여 나머지 결 한계는 limbus 옆의 가장자리 회전 눈 nasally 동 공 축 테이블 위쪽 (그림 1C)을 기준으로 약 30도의 각도에서를. 결 막의 지속적인 창과 바늘 삽입 하는 동안 카운터 힘을 제공 하 고 최적의 각도에서 눈을 유지 하기 위해 필요 합니다.
    14. 세포 주입 안내 하는 구멍을 향하도록 팁의 개막과 함께 limbus를 후부 1200-1500 µ m에서 메 마른 경사진된 31 게이지 인슐린 바늘의 끝을 놓습니다.
    15. 그것은 10-15도 sclera (의도 된 주사 사이트에서 가상 평면에 접선) 위에 인슐린 바늘의 각도 조정 합니다. 천천히 sclera 맥락 막 복잡 한 약 500 µ m의 바늘 깊이 침투. 색칠 한 쥐에서 바늘 끝 사라질 것 이다 '' 안료 맥락 막 아래. 여기에서 사용 하는 인슐린 바늘의 브랜드에 대 한 경사에 바늘 끝에서 거리 500 µ m입니다.
    16. 신중 하 게 철수 인슐린 바늘 (혈액의 아주 작은 유출을 볼 수 있습니다).
    17. 과도 한 출혈, 지적 필요한 경우 눈 창 구멍, 취소를 적용할 수 있습니다. 지속적인 출혈 후 창 응용 프로그램 나타냅니다 선박 수 있습니다 손상 되었을.
    18. 오프닝, 그리고는 공 막의 지역 표면에 상대적으로 약 10-15도 각도 직면 하 고 안내 하는 구멍으로 RPE 세포 로드 인젝터 바늘을 안내.
    19. 부드럽게 subretinal 공간에 액세스를 약 500 µ m의 깊이를 안내 하는 구멍에 인젝터 바늘을 삽입 합니다. 검은 펜 마크의 가장자리와 바늘 (그림 1C1d) 안료 맥락 막에 의해 덮여 있다 지점 사이의 100 µ m 여백에 대 한 이어야 한다.
    20. 부드럽게 셀 (약 1.2 µ L)의 적절 한 볼륨을 주입 하는 인젝터 주사기의 플런저를 우울 하 게 보조를 요구 하십시오. 플런저 프레스는 조수로 일부 카운터 힘을 제공 하기 위해 준비가 되어있습니다.
      참고: 도우미와 사전 모의 연습 의사와이 단계는 필요한 경험을 가진 보조를 제공할 수 있습니다.
    21. 시각적으로 펜에 집중 하는 동안 가장자리를 표시, 인젝터 25-30에 대 한 장소에서를 누른 다음 천천히 인젝터를 철회 합니다. 역류의 작은 금액은 일반적으로 관찰 된다.
      참고: 없는 혈 류 관찰 되는 경우 수 있었다 intravitreal 주사. 인감 또는 공 막 엔 아래 작성 하는 셀을 통해 역류 하십시오 경우 주사 너무 얕은 했다.
    22. 3 번에 메 마른 눈 세척과 사출 사이트에서 셀 경과 헹 구 고 면 주걱으로 초과 수집 합니다.
    23. 운영된 눈에 한 방울 눈 윤 활 유를 적용 하 고 10 월 역 이식된 세포의 위치와 subretinal bleb의 크기를 검사 하는 쥐를 전송.

3. 포스트 주입 치료

  1. 항 염증 및 통증 진통제 치료
    1. 고통을 감소를 피하 염 분에 0.1 mg/kg 몸 무게에서 buprenorphine 주사.
    2. 염 분에 1.6 mg/kg 몸 무게에서 dexamethasone 염증 제어용 복 주사 (I.P.) 주사.
  2. 동물 복구
    1. 체온을 유지 하기 위해 열 램프 아래 복구 케이지를 쥐를 반환 합니다.
    2. 출혈의 징후에 대 한 운영된 눈을 관찰 합니다.
    3. 마 취 나올 수 있도록 쥐를 관찰 합니다.
    4. 신선한 케이지를 복구 된 동물을 반환 하 고 수술 카드 케이지를 플래그 조 난, 안구 출혈, 또는 각 막 불투명도의 어떤 표시 든 지를 위한 매일 모니터링. 문제가 있다면 수 의사를 즉시 통보.

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Results

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

이 문서에서 설명 하는 기술을 사용 하 여, 우리가 일관 되 게 배달 hRPESC-RPE 세포 RCS 쥐의 subretinal 공간으로 정확 하 게 위치, 각도, 그리고 조직 (그림 1B-D에 인젝터 바늘 삽입의 깊이 조절 하 여 ). 즉시 다음 이식, 10 월 시험 사출 사이트와 이식된 세포에 의해 만들어진 subretinal bleb을 수행 했다. 수술 후 10 월 평가 주사 및 망막 손상이 나 출혈에 대 한 모니터링의 품질을 평가 하기 위한 검사 도구 역할을 합니다. 모두 subretinal bleb (그림 2A, CD)과 사출 사이트 (그림 2A , B) 스캔 하는 10 월에서 명확 하 게 볼 수 있었다. Subret...

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Discussion

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이 기사에서 묘사 된 subretinal 주입 기술은 트랜스 scleral 통로, 인젝터 바늘 신경 망막 손상 또는 유리 구멍을 방해 하지 않고 눈 벽의 바깥 레이어 (sclera-맥락 막-RPE 복잡 한)를 침투를 통해 이다. 대체 트랜스-vitreal 접근 설치류 렌즈 유리 구멍의 대부분을 차지 하는 때문에, 백 내장, 이어지는 렌즈 손상의 잠재적인 위험이 있다. 이 방법에 비해, 우리의 기술 덜 위험 하 고 인젝터 바늘 subretinal 공간을 도달 하는 전체 유리 캐비티를 통해 갈 필요가 없습니다으로 최소한의 외상의 원인. 사실, 우리의 연구에서 10 월 시험 행사, 매우 드문 망막 침투 것 고, 동물에 따라 시험에는 없는 영구적인 망막 분리. 또한, 사출 사이트는 매우 작은 (< 200 µ m 직경에서) 때 33-게이지 인젝터를 사용 하 여 바늘 sclera 맥락 막 RPE 복잡 한 구조적 장애는 매우 제한 된 그래서. 바늘 철회 후 주입 구멍 자체 자동으로 그렇게 스티치 물개 또는 조직 접착제 필요 하다.

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Disclosures

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저자는 공개 없다.

Acknowledgements

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패티 Lederman RPE 세포 준비에 대 한 수술과 수잔 보든에 그녀의 지원에 대 한 감사 하 길. 우리는 또한이 프로젝트에 대 한 자금에 대 한 NYSTEM C028504를 인정 합니다. 저스틴 디 밀러 NIH에서 지원 되는 F32EY025931를 부여 합니다.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
0.25% 트립신-EDTA (1x)라이프 테크놀로지스25200-072
DNAse I시그마DN-25
1xDulbecco' 칼슘 & 마그네슘 (1xDPBS-CMF)Corning Cellgro431219
멸균 균형 염 용액 (BSS)Alcon00065079550
멸균 안세Moore Medical75519
멸균 0.9 % 식염수Hospira488810
Proparacaine Hydrochloride 안과 용액 (0.5 %)Akorn17478026312
트로피카미드 점안액, USP(1%)Bausch & Lomb24208058559
Phenylepherine Ophtalmic Solution, USP (10%) 주식Bausch & Lomb42702010305이것은 2.5% 페닐에페린
부프레넥패터슨433502
덱사메타손APP 제약63323051610
100% 에탄올Thermo Scientific615090040
70% 에탄올Ricca Chemical Company2546.70-5
멸균 GenTeal 윤활제 아이 젤을 만드는 데 사용됩니다.Novartis78042947
Sterile Systane Ultra Lubricant Eye DropsAlcon00065143105
hRPESC-RPE cells시판되지세포 분리 및 유지 보수에 대해서는 "Reference #12"를 참조하십시오.
24웰 플레이트Corning3526
코니컬 튜브(15 ml)Sarstedt62554002
마이크로 원심분리기 캡, O-링 LPSincL233126
캡리스 마이크로 원심분리기 튜브(1.7 ml),LPS incL233041
원심분리기Eppendorf5804R
멸균 알코올 닦아내기McKesson58-204
멸균 면 팁 애플리케이터McKesson24-106-2S
멸균 Weck-Cel 창Beaver-Visitec International 
멸균 수술용 드레이프 McKesson25-515
거즈McKesson16-4242
나노필 주사기(10ul)세계 정밀 기기Nanofil
나노필 비스듬한 33게이지 바늘세계 정밀 기기NF33BV-2
인슐린 주사기 바늘 31게이지Becton Dickinson328418
쥐 이빨 집게세계 정밀 기기555041FT
Vannas Micro Dissecting Spring ScissorsRobozRS-5602
순환수 T 펌프 스트라이커TP700
가열 패드Kent ScientificTPZ-814
동물 마취 시스템세계 정밀 기기EZ-7000
밸런스오하우스PA1502
스테레오 현미경ZeissStemi 2000
현미경 광원SchottACE 시리즈
Bioptigen Envisu 스펙트럼 도메인 안과 이미징 시스템BioptigenR2210
멸균 블랙 마커 펜Viscot Industries1416S-100
미니어처 측정 스케일Ted Pella Inc13623
적외선 바스킹 스포트 램프 EXO-TERRAPT2144이것은 수술 후 회복 단계에서 동물을 위한 난방 램프로 사용됩니다.
스 않음 , , 0008680

References

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