방법 논문

태아 알코올 스펙트럼 장애의 쥐 모델에서 Hippocampal 기능 장애를 평가 하기 위해 추적 Eyeblink 클래식 컨디셔닝의 사용

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DOI:

10.3791/55350

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2017년 8월 5일

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1Department of Psychology, East Carolina University, 2Multidisciplinary Studies Program in Neuroscience, East Carolina University

이 논문에서

요약

추적 eyeblink 클래식 컨디셔닝 (ECC) 평가 하는 데 사용 되었다 hippocampal 종속 연관 학습 했다 성인 쥐에 투여 초기 신생아 두뇌 개발 하는 동안 알코올의 높은 농도 (11.9 %v / v). 일반적으로, ECC 절차는 많은 심리적, 생물 의학 설정을 통해 뇌 기능 장애를 탐지 하기 위한 사운드 진단 도구입니다.

초록

신생아 쥐 관리 되었다 4-9, 산 후 시절 에틸 알코올 (11.9 %v / v)의 상대적으로 높은 농도 태아 뇌 조직의 급속 한 변화를 겪 습 비슷합니다 시간 가속 인간의 세 번째 임신 기간 중 발생 하는 뇌 변경. 태아 알코올 스펙트럼 장애 (FASDs)의이 모델 생산 양과-술자리 일부 임산부 알콜에 나타나는 패턴을 흉내 낸 심각한 뇌 손상. 우리 추적 eyeblink 클래식 컨디셔닝 (ECC), 일반적으로 알코올 노출 성인 자손에 본 장기 hippocampal 기능 장애를 평가 하기 위해 연관 학습의 더 높은 순서 이체를 사용 하 여를 설명 합니다. 나이의 90 일, 설치류 수술 기록 준비 되었고 자극 전극 측정 시 (EMG) 왼쪽된 눈 꺼 풀 근육에서 활동을 깜박 하 고 가벼운 충격 후부 왼쪽된 눈에 각각 전달. 5 일 복구 기간 후, 그들은 추적 연관 학습의 차이점 알코올 노출와 쥐 제어를 결정 하는 ECC의 6 회를 받았다. 추적 ECC 수정할 수 있는 쉽게 같은 장비 및 소프트웨어를 사용 하 여 서로 다른 신경 시스템 평가 될 수 있다 그래야 많은 가능한 ECC 절차 중 하나입니다. ECC 절차 일반적으로 서로 다른 뇌 시스템 및 두뇌를 모욕 하는 다른 조건에 신경 병리학을 탐지 하기 위한 진단 도구로 사용할 수 있습니다.

서론

오늘날과 같이 의료 서비스에 대한 접근성과 의료 수준이 향상된 시대에도 알코올 남용이 여전히 전 세계적으로 주요한 보건 문제로 남아 있다는 사실은 상상하기 어렵습니다. 불행히도, 고용량의 알코올을 섭취한 임신부는 태아 알코올 증후군(fetal alcohol syndrome, FAS) 환자들에게서 나타나듯, 평생 지속되는 심각한 뇌 손상 및 신경 발달 장애를 가진 아이를 출산할 수 있다는 것이 밝혀졌습니다1,2,3. 모체의 알코올 사용 이력이 확인된 여성의 경우, 발달 중인 태아는 소량의 알코올이나 혈중 알코올 농도에 다양한 차이를 만드는 서로 다른 알코올 섭취 패턴에도 영향을 받기 쉽습니다. 후자의 경우, 아이들이 FAS 환자만큼 심각한 형태학적 또는 신경 행동학적 장애를 보이지는 않을 수 있으나, 경증에서 중증까지 다양한 범위의 평생 지속되는 인지 장애와 정서적 불안을 나타낼 수 있습니다3,4. 종합적으로 FAS와 이보다 덜 심각한 형태의 태아기 알코올 매개 장애들을 통칭하여 태아 알코올 스펙트럼 장애(fetal alcohol spectrum disorders, FASDs)라고 합니다. FASDs를 완전히 예방할 수 있다는 점은 놀랍지 않으나, 알코올 남용이 흔한 인구 집단에서 FASDs가 여전히 신경 및 인지 장애의 주요한 비유전적 원인으로 남아 있으며, 미국 및 프랑스, 스웨덴과 같은 유럽 국가의 아동 중 약 2%에서 5%에게 영향을 미치고 있다는 추정치는 매우 놀라운 결과입니다. 미국 내 FAS 단독 발생률의 경우, 유효 출생 1,000건당 2~7건의 유병률을 보이며5, 이는 FASDs의 전체 발생률이 FAS보다 훨씬 더 높음을 시사합니다.

FASD 아동을 대상으로 한 신경영상 연구에 따르면, 이들은 얇은 뇌량6, 더 작은 전소뇌충부7, 그리고 더 작은 해마8와 같은 뇌 이상을 보이는 것으로 나타났습니다. 이러한 뇌 이상은 FASD 아동에게서 관찰되는 일부 장기적인 신경인지적 장애의 근저에 있습니다. 모체의 알코올로 인한 뇌 변화의 변이와 특정 신경인지적 손상의 프로필(즉, 유형, 정도) 변이 사이의 정확한 연결 고리는 아직 명확하게 밝혀지지 않았습니다. 하지만 시작 단계로서, 해마는 태아기 알코올 영향에 대한 민감도를 결정하기 위한 매우 적절한 대상입니다. 실제로 FASD 아동은 장소 학습9,10 및 지연된 대상 회상11과 같은 해마 매개 행동에서 결손을 보입니다.

FASD(태아알코올스펙트럼장애)의 설치류 모델은 FASD 아동에게서 나타나는 신경인지 장애를 유발하는 기전을 규명하는 데 매우 유용한 것으로 입증되었습니다. 본 연구진이 채택한 잘 정립된 폭음 노출 모델은 생후 4~9일 동안 쥐에게 알코올을 투여하는 방식입니다.12,13뇌가 인간의 태아기 24주와 유사하게 시냅스 및 수지상 돌기 접촉이 급격히 형성되는 시기로, 3주 차까지 이어지며연구개발(R&D) 삼분기14,15,16,17이 특정 모델은 해마 뉴런의 상당한 손실을 유도합니다.18,19 및 소뇌와 같은 많은 다른 뇌 영역의 뉴런들12,13,14,15,16,17,18,19,20,21,22,23이와 더불어 다양한 영역에 걸친 심각한 인지 기능 저하가 동반되며21,24,25쥐의 초기 알코올 노출로 인한 인지 기능 장애는 다양한 방법으로 평가할 수 있으며, 특히 다음과 같은 방법을 통해 가능합니다. 안구 깜빡임 고전적 조건형성 (ECC). ECC는 학습의 근본적인 기초를 과학적으로 조사하기 위해 한 세기 넘게 활용되어 온 패러다임입니다.26,27 따라서 이는 태아기 알코올 노출로 인한 부정적인 신경인지적 결과를 더 잘 이해하기 위한 유용한 방법을 제공합니다. 이는 매우 유연한 패러다임으로, 연구자가 다양한 ECC 절차를 사용할 수 있게 하며, 이 모든 절차는 계통학적 척도에 따라 상승하는 여러 포유류 종(생쥐부터 인간까지)과 뇌 발달의 서로 다른 과정 전반에 걸쳐 조사될 수 있습니다.28,29,30,31또한, 이 패러다임에서 연합 학습을 매개하는 기본적인 신경 회로는 동일한 종에 대한 실험 및 신경심리학적 보고에 의해 뒷받침됩니다.26,32,33,34,35,36,37.

ECC의 한 형태인 trace ECC가 이 논문(그림 1)에서 설명됩니다. 이해를 돕기 위해 보다 전통적인 형태인 delay ECC와 비교합니다. ECC 패러다임은 노벨상 수상 생리학자인 Ivan Pavlov가 처음 수행한 개를 이용한 고전적 조건형성을 모델로 하였습니다. Pavlov는 톤과 같은 특정 자극이 자연스럽게 타액 분비를 유발하지는 않지만, 톤이 음식 제공보다 앞서며 겹쳐질 때, 톤-음식 수반성이 유지된다면 두 자극의 반복적인 제시를 통해 타액 반응이 강화될 수 있음을 발견했습니다. 이는 두 자극 사이의 즉각적인 시간적 인접성에 의해 연합 강도가 매개되어 동물이 학습하기에 최적의 조건이 된다는 개념의 delay ECC 사례입니다. 그는 또한 톤을 끄고 음식을 제공하기 전까지 "trace(흔적)" 기간을 두는 것과 같은 톤-음식 수반성의 다른 변형들을 테스트했습니다. 이 두 자극이 충분히 불연속적일 때, 개들이 음식 제공 전에 타액 분비 반응을 보이는 것이 훨씬 더 어려워졌습니다. 이처럼 톤이 꺼지는 것과 음식 제공 사이의 불연속성은 trace ECC의 사례입니다. 설치류는 음식의 존재에 대해 자연적으로 타액을 분비하지 않으므로, 대신 약한 전기 충격과 같은 종-적합 자극이 사용됩니다. 또한 설치류는 톤에 대해 자연적으로 방어적 눈깜빡임 반응을 보이지 않습니다. 이러한 배경 하에, 설치류 ECC 절차는 특정 데시벨 수준의 톤을 제시하고, 이를 눈꺼풀 근육(orbicularis oculi) 또는 temporalis 근육에 가해지는 약한 전기 충격과 특정 방식으로 짝지어 눈깜빡임 반응을 유도하는 과정을 포함합니다. 이때 톤은 조건 자극(CS)으로, 전기 충격은 무조건 자극(US)으로 간주됩니다. delay ECC에서는 CS가 먼저 제시되며, 이 자극은 일정 시간 동안 유지됩니다. 그 후 US가 제공됩니다. 이 두 자극은 일정 시간 동안 겹치며, 이후 동시에 종료됩니다. US로 인해 유발된 눈깜빡임 반응은 무조건 반응(UR)으로 간주됩니다. 이 절차에서 설치류는 혐오 자극을 예측하기 위해 CS가 제시된 후 어느 시점, 즉 US가 제공되기 직전에 눈깜빡임 반응을 보이도록 학습합니다. 이렇게 학습된 눈깜빡임 반응을 조건 반응(CR)이라고 합니다. trace ECC의 경우, CS와 US는 trace 간격이라고 알려진 자극이 없는 시간적 간격으로 분리됩니다. 이들은 delay ECC에서처럼 시간적으로 겹치지 않습니다. 이 간격 동안 동물은 자극 간의 연합적 요구 사항을 해결해야 합니다. delay ECC와 마찬가지로, 동물이 CS가 꺼진 후 그러나 US가 제공되기 직전에 일관되게 깜빡임 반응을 보일 때 학습이 일어납니다. 일정량의 습득 훈련(CS와 US를 짝지음)을 거치면 학습 곡선(즉, 서로 다른 CR 측정치 기반)이 형성됩니다. 병변 및 신경 영상 연구에 따르면, delay ECC의 성공적인 학습은 소뇌-뇌줄기 신경 회로가 온전한 상태여야 하는 반면38,39,40, trace ECC는 해마41,42,43,44 및 기타 피질 구조45,46의 추가적인 신경 참여가 필요한 고차원적 절차입니다. trace CR을 성공적으로 습득하기 위해 필요한 타이밍 관련 요구 사항 때문에, 이 과제는 (정상 피험자에게조차) 학습하기가 더 어렵습니다.

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그림 1: 흔적 안구 깜빡임 고전 조건형성. 비삽관 대조군(UC)에 속한 성체 쥐의 대표적인 실제 파형이 나타나 있다. 먼저 톤 CS(85 dB, 2.8 kHz)가 380 ms 동안 제시된다. 이어 자극이 없는 500 ms의 흔적 간격이 뒤따른다. 그 후 충격 US(1.6 mA)가 100 ms 동안 전달된다. 이 과제에서 학습이 성공적으로 이루어지면 조건 반응(CR) 시간 창(Total CR period) 동안 안구 깜빡임의 빈도(%) 또는 진폭(V)이 여러 번의 훈련 세션을 거치며 증가한다. 특히 해마가 온전한 설치류는 일반적으로 충격 US 시작 직전(200-ms 창 이내)에 적절한 타이밍의 CR(Adaptive CRs)을 더 많이 나타낸다. 톤 CS 시작 후 첫 80 ms 동안의 놀람 반응(SRs)과 무조건 반응(URs) 또한 측정된다. 잘 훈련된 설치류에서 비연합적 SRs는 일반적으로 낮거나 나타나지 않으며, URs는 빈도와 진폭이 높을 것으로 예상된다. 이 과제는 설치류가 CS 종료와 US 시작 사이의 연관성을 (흔적 간격 동안) 연결하도록 학습해야 하므로, 지연 ECC에 비해 습득하기가 본질적으로 더 어렵다. 이 그림의 더 큰 버전을 보시려면 여기를 클릭하십시오.

본 연구에서는 85 dB 톤 CS (2.8 kHz)를 380 ms 동안 제시하고, 500 ms의 trace 간격을 둔 후 1.6 mA 쇼크 US를 100 ms 동안 제시하는 trace ECC 절차를 통해, 폭음 형태(binge-like manner)로 전달된 신생아기 알코올 노출이 가져오는 부정적인 기능적 결과들을 입증합니다. 우리는 신생아기 알코올 노출의 영향을 완화하는 콜린 중재 및 철 보충을 조사한 이전 연구들에서 이 행동 분석법의 유용성을 보고한 바 있습니다18,47. 실제로 trace ECC는 신생아기 알코올로 유도된 해마 병리를 평가하는 진단 도구로 사용될 수 있습니다. delay ECC와 비교했을 때의 장점은 FASD 환자에게서 손상되는 해마 기능의 장애를 탐지하는 데 더 민감하다는 점입니다.

ECC의 입증은 태아 알코올 증후군 분야를 훨씬 넘어 확장됩니다. 다양한 ECC 변형(예: 지연, 추적, 복합, 반전)은 발달 과정 전반에 걸친 학습의 개체발생적 차이, 정상 포유류의 연합 학습에 대한 신경생물학적 기초, 그리고 기형 유발 물질, 환경 독소, 외상성 뇌 손상, 신경퇴행성 질환 및 정신 질환을 포함한(이에 국한되지 않는) 여러 도전 요인에 대한 서로 다른 뇌 시스템의 취약성을 규명하는 데 사용될 수 있습니다.

프로토콜

참고: 모든 절차는 East Carolina University IACUC가 설정한 정책에 따라 승인 및 수행되었습니다. Long-Evans 랫드는 암컷을 수컷 번식용 랫드와 교배시켜 생성하였습니다. 세 가지 처리군(1.1 참조)의 모든 새끼는 동일한 어미의 한 배 태아(litter) 내에서 생성되었습니다. 총 다섯 배의 새끼가 태어났으며, 생후 3일(PD 3)에 각 배당 8마리로 수를 조절하였습니다. 각 배에서 남은 두 마리의 새끼는 서로 다른 실험에 배정되었습니다. 수컷과 암컷 자손(노출군당 한 마리씩)이 모두 연구에 포함되었습니다. 본 연구에서는 총 N = 27마리의 성체 자손을 조사하였으며, ECC 훈련 1일 차에 수리가 불가능한 3T 와이어 리드 단선(3.1.1 참조)이 발생한 랫드 3마리는 제외되었습니다.

1. 그룹, 재료 및 용액의 준비

  1. 생후 3일(PD 3)에 새끼 쥐를 어미 쥐로부터 분리하여 온도가 조절되는 수조 가열 패드 위에 올려 따뜻하게 유지하십시오. 무작위 선정 절차를 통해 새끼 쥐를 다음 세 그룹 중 하나에 배치하십시오: (1) 알코올 삽관군(AI), (2) 가짜 삽관 대조군(SI), 또는 (3) 비삽관 대조군(UC). 번호 부여 체계에 따라 30G x 1/2인치 바늘을 사용하여 발에 [무독성] 잉크 문신을 새기는 등 승인된 식별 절차를 수행하십시오. 문신 작업이 끝나면 새끼 쥐를 어미 쥐에게 되돌려 보내십시오.
  2. 폴리에틸렌(PE) 크기 50 및 10을 사용하여 위내 삽관 튜브를 준비하십시오. 이 튜브의 전체 길이는 사용자 설정에 따라 결정되며, 그에 맞게 조절할 수 있습니다.
    1. 미세 해부 가위를 사용하여 3인치 길이의 PE-50 튜브와 6인치 길이의 PE-10 튜브를 각각 자릅니다.
    2. PE-50 튜빙을 멸균된 22 G x 1인치 피하 주사 바늘에 조심스럽게 부착하십시오.
    3. PE-10 튜빙의 한쪽 끝을 PE-50 튜빙의 열린 끝부분에 삽입하십시오. PE-10 튜빙을 PE-50 튜빙 내부로 쉽게 유도하기 위해 PE-10 튜빙의 끝부분을 사선으로 절단해야 할 수도 있습니다.
    4. PE-50 튜브를 작게(약 2-3mm) 자른 후, PE-10 튜브의 열린 끝부분에 끼워 넣습니다. 이는 시각적 마개 역할을 하게 됩니다.
    5. 멸균 상태를 유지하기 위해 완성된 위내 삽관 튜브를 신선한 70% 이소프로필 알코올에 보관하십시오.
  3. 50mL 병에 스톡 우유 용액을 준비하기 위해 무균 조작을 수행합니다. 이 스톡 우유 용액은 West 등(1984)이 처음 확립한 식이 처방을 기반으로 합니다.48병을 - 온도에서 보관하십시오.18 °C 사용 시까지 보관하십시오. 사용 전 따뜻한 물을 이용하여 우유 두 병을 해동하십시오.
    1. 멸균 주사기를 사용하여 95% 에틸 알코올(USP) 7.16 mL를 취해 50 mL 우유 병 하나에 넣습니다. 이를 통해 11.9% v/v 알코올 용액이 만들어지며, 이는 하루 첫 두 차례의 수유를 통해 새끼 쥐에게 투여됩니다(2.1.1 참조). 알코올의 총 일일 투여량은 5.25 g/kg/day입니다. 이는 강화 우유 용액 내의 특정 부피(회당 0.0278 mL/g)로 알코올을 투여하도록 설계된 것입니다.
      참고: 이 양은 한 배의 자손 수와 3~4일 동안의 예상 사용량에 따라 조절할 수 있습니다. 또한 11.9% v/v 용액을 만들기 위해 첨가하는 알코올의 양도 함께 조절해야 합니다.
    2. 이 병을 충분히 흔들어 섞고 적절하게 라벨을 부착하십시오 (즉., 우유 내 11.9% v/v 에틸 알코올).
    3. 알코올을 첨가하지 않은 두 번째 우유 병에 적절한 라벨을 부착하십시오.예:, 우유 전용)을 준비하고, 2.1.1에 명시된 대로 보충 급여에 사용한다.
    4. 두 우유 병을 모두 냉장고에 보관하십시오.

2. 신생아 알코올 노출 (생후 4-9일)

  1. PD 4부터 AI 및 SI 새끼 쥐에게 하루 총 4회의 삽관을 실시한다. 각 삽관 사이에는 2 h의 간격을 둔다. AI 새끼 쥐는 실제 용액을 삽관하므로, 모든 삽관을 급식으로 간주한다.
    1. 하루의 처음 두 번의 급식 시에는 AI 새끼 쥐에게 11.9% v/v Ethyl Alcohol in Milk 용액을 삽관하고, 이후 성장을 보충하기 위해 마지막 두 번의 급식 시에는 Milk-Only 용액을 삽관한다.
    2. SI 새끼 쥐에게는 2시간마다 용액 없이 4회 삽관하여 AI 새끼 쥐와 동일한 시간 동안 PE-10 튜브에 노출되도록 한다. UC 그룹은 삽관을 실시하지 않는다.
  2. 새끼 쥐를 어미 쥐로부터 분리하여 온도 조절 수중 가열 패드 위에 올려 체온을 유지한다. 각 새끼 쥐의 체중(g)을 측정하여 기록한다. 미리 작성된 급식표를 참조하여 각 AI 새끼 쥐의 삽관 부피를 결정하고 기록지에 기입한다.
    1. 11.9% v/v Ethyl Alcohol in Milk 용액을 온수 배스(water bath)에 넣고 잘 흔들어 섞는다.
    2. 위내 삽관(Intragastric intubation) 절차:
      1. 70% isopropyl alcohol에 보관했던 위내 삽관 튜브를 온수로 충분히 세척한다.
      2. 멸균된 1 mL 시린지를 사용하여 정확한 양의 용액을 추출한다.
      3. 삽관 튜브의 팁(PE-10 끝부분)을 신선한 corn oil에 담근다(삽입을 용이하게 하기 위함).
      4. 새끼 쥐의 입에서 위까지의 PE-10 튜브 길이를 측정한다. PE-50 스토퍼를 조정하여 정지 지점으로 가이드한다.
      5. PE-10 튜브를 새끼 쥐의 입속으로 조심스럽게 삽입하여 식도를 따라 내려가게 한 뒤, 위식도 괄약근을 살짝 지나 위장까지 진입시킨다. 새끼 쥐의 상태를 확인하고 고정한 뒤, 시린지 플런저를 눌러 용액을 투여한다. 이때 천천히 투여한다.
        참고: 튜브가 기도에 잘못 삽입되는 것을 방지하려면, 앞으로 진행하기 전에 튜브를 곡선 모양으로 유도하여 연구개(soft palate)에 닿게 한다. 연구개를 가이드로 사용하면 튜브가 자연스럽게 이 부위에서 굴절되어 식도로 안내된다. 그렇지 않고 팁이 복측으로 크게 치우치면 기도로 진입할 수 있다. 진입 위치가 확실하지 않은 경우 튜브를 제거하고 삽관을 진행하지 않는 것이 좋으며, 다음 시도 시 튜브를 올바르게 다시 삽입한다.
      6. PE-10 튜브를 조심스럽게 제거하고, 용액의 역류, 혈흔 또는 물리적 손상이 있는지 새끼 쥐를 확인한다. 이상이 없으면 새끼 쥐를 형제들과 함께 둔다. 전체 삽관 절차는 새끼 쥐 한 마리당 약 1분 미만이 소요되며, 한 배의 삽관 처리군 새끼 쥐 4마리(AI 2마리, SI 2마리)를 모두 처리하는 데 총 약 4분이 소요된다.
      7. SI 새끼 쥐를 위한 위내 삽관 절차: AI 새끼 쥐와 동일한 PE-10 삽입 절차를 따르되, 동일한 시간(1분) 동안 용액 없이 수행한다.
      8. 한 배의 마지막 새끼 쥐에 대한 절차를 마친 즉시 모든 새끼 쥐를 어미 쥐에게 돌려보낸다. 어미 쥐를 다음 급식 세션(2 h 후)까지 사육실(vivarium)로 복귀시킨다.
      9. 위내 삽관 튜브를 멸균 온수로 세척한 후 70% isopropyl alcohol에 넣어 보관한다. 매 급식 세션 전에 튜브를 물로 충분히 세척한다.
      10. 두 번째 급식 세션을 위해 2.2(체중 측정 제외)부터 2.2.2.9까지의 과정을 반복한다. 마지막 두 번의 급식 시에는 2.2에서 결정된 것과 동일한 삽관 부피를 사용하여 AI 새끼 쥐에게 Milk-Only 용액을 삽관한다.
  3. 대표적인 성장 곡선을 얻기 위해 PD 15(개안 시), PD 21(이유 시), PD 30, PD 60, PD 90(수술 시) 등 정기적인 간격으로 쥐의 체중을 측정한다.

3. 전극의 제작 및 수정

  1. 각 쥐를 위해 하나의 근전도(EMG) "헤드스테이지"를 제작합니다(그림 2). 헤드스테이지를 통해 안구깜박임 시스템으로 안구깜박임 반응을 기록할 수 있습니다(그림 4).
    1. 두 개의 3T 크기 폴리테트라플루오로에틸렌(PTFE) 코팅 스테인리스 스틸 와이어(각 5 cm), 하나의 10T 크기 PTFE 코팅 스테인리스 스틸 와이어(5 cm), 세 개의 수형 접촉 핀, 그리고 3개 구멍으로 절단된 하나의 마이크로 스트립 소켓 절연체로 헤드스테이지를 구성합니다(3.1.4 참조).
    2. 톱니 모양의 고정밀 핀셋으로 10T 와이어의 중앙을 잡고, 매끄러운 고정밀 핀셋으로 양방향의 코팅을 제거하여 PTFE 코팅을 벗겨냅니다. 이 와이어에서 모든 코팅 흔적이 제거되었는지 확인하십시오.
      1. 톱니형 플랫폼 치과용 플라이어를 사용하여 10T 와이어의 한쪽 끝을 접촉 핀에 압착합니다. 이것은 접지선 역할을 합니다. 매끄러운 고정밀 핀셋으로 3T 와이어의 한쪽 끝에서 1~1.5 mm 지점을 조심스럽게 잡습니다. 나머지 코팅은 그대로 둔 채 1~1.5 mm의 PTFE 코팅을 벗겨냅니다. 노출된 3T 와이어 끝에 접촉 핀을 압착합니다.
      2. 두 번째 3T 와이어에 대해서도 동일한 절차를 수행합니다. 두 와이어는 EMG 기록 전극의 양극 및 음극 리드 역할을 하게 됩니다.
    3. 모든 와이어에 대해 당김 테스트를 수행하여 핀에 단단히 고정되었는지 확인합니다. 와이어가 굽거나 손상되지 않도록 주의하십시오.
    4. 와이어 스트리퍼의 절단 날을 사용하여 소켓 절연체 스트립의 일부를 3.5개 구멍 크기로 자릅니다(네 번째 구멍의 중간을 자름). 이 세그먼트를 정확히 3개의 전체 구멍 크기로 줄이고, 필요한 경우 양면을 샌딩합니다. 이는 3개의 전체 구멍을 사용할 수 있도록 하기 위함입니다. 압착된 끝부분이 절연체 세그먼트의 하단 가장자리와 수평이 될 때까지 핀-와이어 유닛을 마이크로 스트립의 세 구멍에 삽입합니다. 10T 조립체는 마이크로 스트립의 중앙이 아닌 바깥쪽 구멍에 위치해야 합니다.
  2. 양극 자극 전극을 수정합니다(그림 2).
    1. 각 쥐에게 하나의 양극 자극 전극을 할당합니다. 이 전극은 ECC 동안 충격 US로서 자극 절연기(안구깜박임 시스템 참조)를 통해 소량의 전류를 가합니다. 전극은 제조사로부터 꼬여 있는 차폐된 형태로 구입합니다.
    2. 두 금속 리드를 2~3회 풀어 V자 모양(5 mm 간격)으로 만든 다음, 매끄러운 고정밀 핀셋을 사용하여 각 "프롱"을 최대한 곧게 폅니다. 면도날을 사용하여 각 프롱 끝의 차폐재를 1 mm(전체 둘레) 긁어냅니다. 각 프롱에 불규칙한 부분이나 휨이 있는지 검사하고, 추가로 차폐재를 긁어내지 않고 필요한 경우 이를 교정합니다.
  3. 95% 에틸 알코올로 세척하여 EMG 헤드스테이지와 양극 전극에서 제조 오일 및 이물질을 제거합니다. 건조시킨 후 오토클레이브 멸균합니다.

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그림 2: 근전도(EMG) 기록 전극 및 양극 전극.완성된 EMG 헤드스테이지(오른쪽, 주황색)는 3개의 수형 접점 핀, 2개의 3T PTFE 코팅 와이어, 1개의 10T PTFE 코팅 와이어 및 수정된 마이크로 스트립으로 제작되었습니다. 세 가닥의 와이어는 각각 약 5 cm이며 접점 핀에 압착되어 있습니다. 완성된 양극 전극(오른쪽, 흰색)은 꼬임을 풀고 다시 펴서 V자 모양(5 mm 간격)으로 성형되었습니다. 두 가지 끝부분의 차폐재는 제거되었습니다. 여기를 클릭하여 이 그림의 확대 버전을 확인하십시오.

4. 눈꺼풀 수술 절차 (생후 90일)

  1. 재료(상세 공급 정보는 재료 항목 참조), 동물, 수술 및 비수술 구역의 준비:
    1. 수술 도구 및 소모품을 오토클레이브로 멸균한다. 괄호 ( ) 안의 숫자는 성체 쥐 한 마리당 필요한 대략적인 양 또는 측정값을 나타낸다: 수술 도구(ECU IACUC 승인 기준, 쥐 4마리당 1세트), 거즈 패드(3-4개), 면봉(5-6개), 20 x 20 랩(수술 세션당 4개), 자기 도가니(1개), 스테인리스 스틸 마이크로 스파출라(1개), 0.9% 식염수(세척병 1개), 페트리 접시(1개), 0-80 스테인리스 스틸 나사(쥐당 3개).
    2. 필요한 기타 멸균 소모품: 10번 수술용 메스(쥐 4마리당 1개), 수술용 드레이프(쥐 1마리당 1개), 동물용 안연고, 포비돈-요오드(세척병 1개), 26G x 3/8" 피하 주사 바늘(2), #55 드릴 비트가 장착된 니켈 도금 핀 바이스, 니켈 도금 평두 주얼러 스크루드라이버(블레이드 1.8-2 mm).
    3. 승인된 연구용/의료용 소독제를 사용하여 모든 수술 도구 및 소모품을 위한 멸균 보관 구역을 준비하십시오. 구역 준비가 완료되면 해당 공간에 재료를 배치하십시오.
    4. 승인된 연구용/의료용 소독제를 사용하여 멸균된 수술 공간을 준비하십시오. 이 공간에는 온도 조절 수분 가열 패드, 랫 전용 마취 마스크가 장착된 정위 고정 장치, 유리 구슬 멸균기 및 이소플루란 가스 기화기(마취용)가 포함되어 있습니다. 기화기에는 마취 마스크와 비멸균 동물 준비 절차를 위해 별도의 공간에 위치한 유도 챔버로 연결되는 튜브가 있으며, 각 튜브는 개별 밸브로 제어됩니다.
    5. 손과 팔을 철저히 세척하십시오. 항균 비누로 세척하십시오. 멸균 파우치나 랩으로 포장된 품목들은 내부를 만지지 않은 상태에서 미리 개봉하십시오. 무균 조작법을 사용하여 멸균 장갑을 착용하고, 모든 관련 물품을 수술 구역으로 옮기십시오. 핀 바이스(pin vise)에 드릴 비트를 적절한 깊이(~2mm)로 설정하고 드라이버를 준비하십시오. 수술 시작 전까지 멸균 재료들을 멸균 랩으로 덮어 두십시오.
    6. 저울, 전기 모발 트리머, 26G x 3/8인치 바늘이 장착된 멸균 1mL 주사기(쥐당 1개), 수술 기록지, 그리고 100g당 0.1mL를 투여하는 부프레노르핀(농도 0.03mg/mL)을 갖춘 비멸균 공간을 준비하십시오.
      주의: Buprenorphine은 DEA schedule III에 해당하는 반합성 오피오이드이므로, 반드시 적절하게 잠금 보관하고 기록 관리해야 합니다.
    7. 이소플루란 기화기의 가스 잔량을 확인하고, 부족할 경우 가스를 보충하십시오. 가스 유량 조절 밸브와 혼합 노브는 현재 닫힌 상태로 두십시오. O2를 켭니다.2 가스 탱크를 확인하여 모든 수술에 충분한 가스가 있는지 확인하십시오.
    8. 각 쥐의 무게를 측정하여 수술 기록지에 체중을 기록하십시오. buprenorphine 주사 도표를 사용하여 적절한 주사량을 결정하십시오.
    9. 유도 챔버로 연결되는 기화기 밸브를 열고, 수술용 마스크로 연결되는 밸브는 닫힌 상태로 둡니다. 혼합 비율을 3으로, 유량을 3으로 설정합니다 (100% O2에 이소플루란 3% 혼합).2 운반 가스로 3 L/min의 유량으로 사용하였다).
    10. 쥐를 유도 챔버에 넣고 적절한 마취 단계(느린 호흡, 발 반사 소실, 눈 깜빡임 반사 소실)에 도달할 때까지 기다립니다. 마취 단계에 도달하면 쥐를 챔버에서 꺼냅니다.
    11. 털 트리머를 사용하여 머리 부분을 면도하여 절개 부위와 왼쪽 눈꺼풀의 피부가 충분히 노출되도록 합니다. 필요한 경우, 트리밍을 재개하기 전 유도 챔버에 다시 넣어 마취 평면에 다시 도달하게 합니다.
    12. 이소프로필 알코올과 포비돈-아이오딘을 번갈아 가며 3회 문질러 노출된 피부를 소독합니다. 필요한 경우, 수술대로 옮기기 전에 유도 챔버에 다시 넣어 마취 수준을 다시 확보하십시오.
  2. 수술
    1. 마취 마스크로 연결되는 기화기 밸브를 열고 도입 챔버로 연결되는 밸브를 잠급니다. 혼합 비율을 2.5로, 유량을 2로 조절합니다(100% $\text{O}_2$에 이소플루레인 2.5%).2 운반 가스로 2 L/min의 유량으로 사용하였습니다). 쥐를 정위 고정 장치로 옮긴 후, 절치 바와 귀 바에 머리를 고정하는 표준 절차를 따릅니다(Geiger et al., 2008 참조).49 (예를 들어).
    2. 쥐에게 부프레노르핀(buprenorphine)을 피하(SC) 주사하고, 사용한 바늘(캡을 씌우지 않은 상태)은 손상성 폐기물 전용 용기에 주의하여 폐기하십시오. 쥐에게 멸균 수술 포를 덮어 수술 부위만 노출시키고 신체의 나머지 부분과 격리하십시오.
    3. 수술용 마스크, 수술용 모자, 수술용 가운, 고글 및 IACUC에서 요구하는 기타 모든 개인 보호 장구를 착용하십시오. 항균 비누를 사용하여 손과 팔을 철저히 씻고 문지르십시오. 멸균법에 따라 멸균 장갑을 착용하십시오.
    4. 안구가 건조해지는 것을 방지하기 위해 면봉을 사용하여 양쪽 눈에 소량의 안연고를 도포하십시오.
    5. 쥐가 적절한 마취 단계에 도달하면 수술을 진행하십시오. 수술 전 과정 동안 쥐를 지속적으로 모니터링하고 이소플루란 농도를 주기적으로 확인하십시오. 마취에 대한 쥐의 반응에 따라 수술 중 유량 및 혼합 노브를 적절히 조절하십시오.
    6. 메스 날을 사용하여 두개골 정중선을 따라 전후 방향으로 절개하십시오. 이 절개는 안구 앞쪽(즉, 전두골이 노출되도록)과 람다 봉합선 약간 뒤쪽까지 충분한 영역이 노출되어야 합니다.
    7. 과도한 출혈이 발생하지 않도록 주의하며 두개골 상단의 골막을 긁어 제거합니다. 면봉을 사용하여 과도한 결합 조직과 혈액을 닦아냅니다.
    8. 핀 바이스를 사용하여 드릴 비트로 구멍을 뚫는데, 한쪽 두정골의 관상봉합선 바로 뒤쪽부터 시작합니다. 면봉을 사용하여 혈액과 뼈 파편을 제거합니다. 스플린터 포셉으로 0-80 나사의 나사산을 잡아 잡고, 정밀 드라이버로 구멍에 고정합니다. 뇌 피질 조직이 손상되지 않도록 나사를 적당히 조입니다(보통 3~4바퀴).
    9. 4.2.8에 기술된 것과 동일한 절차에 따라 0-80 나사 2개를 두개골에 추가로 고정하십시오. 하나는 반대쪽 두정골의 관상봉합선 바로 뒤에, 다른 하나는 오른쪽 시상봉합선 바로 앞에 고정합니다. 치과용 시멘트(4.2.18 참조)를 두개골에 고정하는 데는 나사 3개면 충분한 것으로 밝혀졌으며, 네 번째 나사(왼쪽 시상봉합선 앞쪽)를 사용할 경우 양극 전극의 배치를 방해할 수 있습니다.
    10. 페트리 접시에서 EMG 헤드스테이지를 꺼냅니다. 10T 와이어가 쥐의 오른쪽으로 향하도록 헤드스테이지의 방향을 맞춥니다. 10T 와이어를 위쪽으로 구부려 마이크로 스트립의 하단 가장자리와 평행하게 만듭니다. 와이어가 전후방 0-80 나사를 둘러쌀 수 있도록 오른쪽으로 약간 구부립니다. 손이 닿는 가까운 곳에 따로 둡니다.
    11. [오른손잡이라는 가정하에] 왼손에는 3인치 드레싱 포셉을, 오른손에는 4인치 드레싱 포셉을 잡습니다. 4인치 드레싱 포셉으로 왼쪽 눈 절개 부위의 상단 피부를 잡고, 3인치 드레싱 포셉을 해당 눈의 구석 방향으로 향하게 하여 그 구석의 피부를 잡습니다. 3인치 드레싱 포셉으로 잡은 상태를 유지하면서 4인치 드레싱 포셉을 놓습니다.
    12. 26G x 3/8인치 바늘 하나를 집어 눈꺼풀 구석을 통해 삽입하고, 바늘의 사면(beveled side)이 위를 향하도록 회전시킵니다. 플랫폼이 달린 미세 해부 핀셋을 사용하여 중간 3T 와이어를 바늘 구멍에 삽입합니다. 와이어가 완전히 들어가지 않도록 주의하며 구멍을 통해 수 센티미터 정도 밀어 넣습니다. 이 와이어가 음극 리드선이 됩니다.
    13. 4.2.11 및 4.2.12에 기술된 절차를 수행하여 외부 3T 와이어를 눈꺼풀의 중간 부분에 삽입하십시오. 이 와이어가 양극 리드입니다.
    14. 한 손으로는 두 바늘을 잡고, 다른 손(또는 포셉)으로는 헤드스테이지를 잡습니다. 헤드스테이지를 같은 방향으로 안내하며 한 번의 연속적인 동작으로 바늘을 눈꺼풀에서 멀어지게 당깁니다. 필요한 경우, 10T 와이어가 동물의 오른쪽 눈을 향하도록 헤드스테이지를 회전시키되, 3T 와이어들이 서로 교차하지 않도록 주의하십시오. 끝이 뾰족한 포셉을 사용하여 양극 리드가 눈꺼풀 중앙에 위치해 있는지 다시 한번 확인합니다.
    15. 헤드스테이지가 양안 사이에 중심이 오도록 조절하고, 양측으로 삽입된 나사 앞쪽의 전두골 상단 최적의 위치에 놓이게 합니다. 한 손으로 헤드스테이지를 잡고 다른 한 손으로는 3인치 드레싱 포셉(dressing forceps)을 잡습니다. 10T 와이어를 10T 측에 있는 하나 또는 양쪽 나사에 감습니다.
    16. 한 손에는 3인치 드레싱 포셉을, 다른 손에는 4인치 드레싱 포셉을 잡습니다. 3인치 드레싱 포셉을 사용하여 왼쪽 관자놀이 쪽 절개 부위의 피부를 잡습니다. 4인치 드레싱 포셉을 사용하여 작은 "포켓" 피부(즉, 표층 근막)를 측두근으로부터 분리합니다. 아이리스 가위를 사용하여 왼쪽 눈 구석 방향으로 결합 조직을 더 절제함으로써 포켓의 크기를 넓힙니다. 이때 너무 깊게 들어 가거나 혈관을 절단하지 않도록 주의하십시오.
    17. 바이폴라 전극(bipolar electrode)을 사용하여 전극 리드가 측두근(temporalis muscle)의 곡선을 따라 맞도록 모양을 잡으십시오. 이때 두 개의 프롱(prong)은 왼쪽 눈 뒤쪽(등쪽 및 배쪽)에 위치해야 하며(비디오 참조), 바이폴라 전극의 하단부는 두개골 바로 위에 위치할 수 있도록 합니다. 헤드스테이지(headstage)와 이 전극 사이에 코뮤테이터 케이블 플러그(commutator cable plugs)가 들어갈 수 있도록 충분한 거리를 두십시오.그림 3) 방해 없이 부착되도록 합니다.
    18. 치과용 시멘트 분말을 도가니에 붓습니다. 처음에는 도가니의 약 1/3 정도를 채운 후, 필요에 따라 양을 조절하십시오. 액상 성분을 넣어 점도가 낮아질 때까지 추가하고, 스패출러로 이 성분들을 혼합합니다. 시멘트의 점도가 높아지면 절개 부위에 도포하되, 피부의 모든 가장자리를 최소 1/8인치 너비로 덮어줍니다.
      1. 쥐가 양쪽 눈을 모두 감는 것을 방해하지 않는 범위 내에서, 헤드스테이지와 양극 전극을 고정하기에 충분한 양의 시멘트를 도포하십시오. 쥐의 털 중 원치 않는 부위에 흘러내린 시멘트는 빠르게 닦아내십시오.
    19. 바이폴라 플러그를 돌려서 끼울 수 있도록 바이폴라 전극의 나사산 중 최소 4-5개는 시멘트로 밀봉되지 않은 상태로 남겨두십시오.그림 3헤드스테이지에서 과잉 시멘트를 제거하십시오. 마이크로 스트립의 상단과 3개의 접촉 핀은 깨끗해야 합니다. 시멘트는 빠르게 경화되므로, 이 전극 중 어느 하나라도 커뮤테이터 케이블 플러그에 완전히 결합되는 것을 쉽게 방해할 수 있습니다. 부분적으로 건조된 과잉 시멘트를 제거하려면 스플린터 포셉(splinter forceps)을 사용하십시오.
    20. 시멘트가 투명해질 때까지 경화될 때까지 기다립니다. 미세 해부 가위를 사용하여 두 개의 3T 와이어에서 수 센티미터의 여유 길이를 남기고 초과분을 잘라냅니다.
    21. 왼손으로 플랫폼이 있는 미세 해부용 핀셋을 잡고, 오른손으로 미세 팁(fine points)이 있는 미세 해부용 핀셋을 잡습니다. 왼손 핀셋으로 눈꺼풀 약간 앞쪽에 위치한 3T 와이어 하나를 잡습니다. 오른손 핀셋으로 눈꺼풀을 밀어 올려 3T 와이어가 더 많이 드러나게 한 뒤 그 상태를 유지합니다. 왼손 핀셋을 놓고 왼손으로 헤드스테이지(headstage)를 잡습니다(이 시점에서 헤드스테이지가 단단히 고정되었는지 확인하십시오). 오른손 핀셋을 사용하여 PTFE 차폐재의 일부를 벗겨내어 와이어가 다음 부분에 접촉할 수 있게 합니다. 안륜근 근육
      참고: 3T 와이어를 너무 세게 당기면 접촉 핀(contact pin)에서 분리될 수 있으므로 주의하십시오. 와이어가 분리되면, 경화된 시멘트가 골절을 유발하지 않고는 두개골에서 쉽게 떨어지지 않으므로 접촉 핀을 교체하는 것이 불가능해집니다.
    22. 4.2.21의 단계를 수행하여 두 번째 3T 와이어에서 과잉 PTFE를 제거합니다.
    23. 4.2.21에 명시된 대로 두 개의 미세 해부용 핀셋(플랫폼형을 왼쪽으로, 미세 끝형을 오른쪽으로)을 준비합니다. 왼쪽 핀셋을 3T 와이어 하나보다 약간 앞쪽에 배치하고, 오른쪽 핀셋이 눈꺼풀 바로 앞에 위치할 수 있도록 공간을 둡니다. 두 핀셋으로 와이어를 잡습니다.
      1. 생성하십시오 "후크(hook)" 오른쪽 포셉은 그대로 고정한 상태에서 왼쪽 포셉을 위쪽으로 회전시켜 눈꺼풀 방향으로 돌리십시오. 이 과정은 한 번의 동작으로 수행해야 합니다. 오른쪽 포셉을 조심스럽게 놓은 다음, 왼쪽 포셉을 놓으십시오.
        참고: 전극을 눈꺼풀에 걸어 고정하면 전극이 각막에 마찰될 가능성을 최소화하는 데 도움이 됩니다. 이는 또한 행동 테스트 단계의 어느 시점에서든 전선이 끊어질 가능성을 최소화합니다. 전극을 거는 방법이 모든 동물에서 전선과 각막의 마찰을 완전히 방지하지는 못하지만, 일반적으로 높은 깜빡임 진폭(5.1.7의 디지털 오실로스코프로 측정)과 수술 후 매일 실시하는 건강 관찰(과도한 눈물 흘림, 부분적인 눈꺼풀 폐쇄, 안구 손상으로 인한 가동성 부족)을 통해 눈 손상의 징후가 나타나지 않음을 확인할 수 있습니다. 쥐가 초기 불편함의 징후를 보이면 이소플루레인(4.1.10 참조)으로 마취시킨 후 전극을 재검사하거나 위치를 재조정합니다. 각막 건조를 방지하기 위해 안연고를 도포합니다. 시술 후 안구 합병증 발생 여부를 매일 관찰하며, 합병증이 지속될 경우 수의학적 조치를 취해야 합니다. 전극 위치 조정이나 수의학적 치료로 교정할 수 없는 심각한 안구 합병증을 보이는 쥐는 ECU IACUC의 표준 작업 절차에 따라 인도적으로 안락사시킵니다.
    24. 두 번째 3T 와이어에 대해 4.2.23의 단계를 수행하십시오. 마이크로 해부 가위를 사용하여 남은 와이어를 잘라냅니다.
    25. 한 손으로 쥐의 몸을 지탱하면서 다른 한 손으로 이어바(ear bars)에서 쥐를 풀어줍니다. 머리에 혈흔이나 이물질이 있는지 확인하고 필요시 이를 제거한 후, 수술 후 진통제인 부프레노르핀(buprenorphine)을 주사합니다.
    26. 회복을 돕기 위해 열원(온도 조절 수조 가열 패드 등)이 있는 회복함에 쥐를 넣습니다. 수술 기록지에 수술 종료 시간을 기입하고, 수술 중 쥐의 상태에 관한 특이 사항을 기록합니다. 쥐의 호흡 상태를 관찰하고, 쥐가 흉곽 거상 자세(sternal recumbency)를 취하거나 움직임을 보이면 홈 케이지로 돌려보냅니다.
    27. 비드 멸균기를 사용하여 기구들을 다시 멸균하고(손상될 수 있는 미세 해부용 핀셋은 제외), 수술 부위가 무균 상태로 유지되도록 하며, 여러 건의 눈꺼풀 수술을 수행하는 경우에는 무균 절차를 반복하십시오.

5. 안구 깜빡임 고전 조건 형성 절차

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그림 3: 안구 깜빡임 조건화를 위해 수정된 조작적 조건화 상자. 쥐는 자유롭게 이동하는 포유류이므로, 머리에 부착된 EMG 및 양극 플러그로부터 전기 신호 접촉을 유지하기 위해 회전형 정류기(commutator)가 사용됩니다. 정류기는 쥐에 가해지는 압력을 완화하기 위해 카운터웨이트가 설치된 지지대 암(arm)에 부착되어 있습니다. 피에조 트위터(스피커)는 85 dB의 2.8 kHz 톤을 출력하며, 이 값들은 정기적으로 보정됩니다. 음향 폼은 주변 소음을 감쇄시키는 역할을 합니다. 여기를 클릭하여 이 그림의 더 큰 버전을 확인하십시오.

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그림 4: 안구 깜빡임 조건화 시스템. 이 맞춤 제작 시스템은 쥐로부터 들어오는 신호를 필터링하고 증폭하는 EMG 적분기 유닛, 톤과 전기 충격 외에 다양한 자극을 전달하는 자극 제어 유닛, EMG 신호 이득을 높이기 위한 각 조작 박스용 프리앰프, 그리고 각 조작 박스용 자극 격리기로 구성되어 있으며, 다양한 수준의 전기 충격(mA 단위)을 제공합니다. 습관화 및 습득 단계의 진단 목적으로 디지털 오실로스코프(표준 안구 깜빡임 시스템에 포함되지 않음)가 사용됩니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

  1. 수술 5일 후 순응 및 습득 훈련을 시작하십시오. 각 쥐에게 더 큰 방음실 내에 배치된 수정된 조작성 조건화 상자로 구성된 훈련 장치에 대해 하루 동안의 핸들링 및 순응 과정을 거치게 하십시오.그림 3) - 이후 6일간의 습득 훈련을 실시합니다. 맞춤 제작된 안구 깜빡임 시스템을 사용하여 습관화 및 습득 세션을 수행합니다. (그림 4).
    1. 훈련 로그 파일을 생성하고 이를 출력하여 일일 기록 보관용으로 사용하십시오. 이 로그에는 쥐 무리가 가pseudo-random(의사 무작위) 방식(또는 기타 무작위 배정 방법)으로 훈련 박스에 미리 배정되어 있어야 합니다.
    2. eyeblink 시스템과 컴퓨터의 전원을 켜고 eyeblink 소프트웨어를 실행하십시오. 이 버전의 소프트웨어에는 독립적으로 작동하는 서로 다른 모듈(또는 애플리케이션)이 있습니다. Animal 모듈을 실행하여 피험자 정보(세션 번호, 동물 ID, 성별, 체중 및 박스 번호)가 포함된 *.RAT 파일을 생성하십시오. 하나의 RAT 파일은 최대 4마리의 쥐를 관리하며, 이는 피험자 한 그룹(squad)을 구성합니다. 해당 값을 입력하고 파일을 저장하십시오. 훈련시킬 쥐의 각 그룹별로 별도의 RAT 파일을 생성하십시오.
    3. 쥐들을 사육실에서 실험실로 이동시킨 후 문을 닫으십시오. 각 쥐를 5분 동안 핸들링하십시오.
    4. 쥐를 지정된 상자로 옮기고, 코뮤테이터 케이블의 EMG 및 바이폴라 플러그를 머리에 부착된 해당 EMG 헤드스테이지와 바이폴라 전극에 연결하십시오.
      참고: 커뮤테이터 케이블에 처음 노출되었을 때, 쥐가 저항하며 스트레스 징후를 보일 수 있습니다. 쥐를 조심스럽게 다루고, 부착에 실패했을 때는 스트레스를 완화할 수 있도록 중간에 휴식 시간을 가지십시오.
    5. 회전하는 정류자를 사용하십시오. 360° 쥐가 박스 내에서 자유롭게 움직이는 동안 전기 신호의 전달 및 수신 상태를 유지합니다. 이 장치는 5개의 채널(EMG 전극용 3개, 양극 전극용 2개)을 통해 raw 신호를 필터링하고 증폭하는 EMG 적분기(EMG Integrator) 장치로 연결됩니다.
    6. 쥐가 자유롭게 움직이는지, 그리고 커뮤테이터 케이블 어셈블리나 스탠션 암(stanchion arm)의 무게로 인해 움직임에 방해를 받지 않는지 확인하십시오. 필요한 경우 스탠션 후면의 카운터 웨이트(counter weight)를 조정하십시오. 모든 플러그가 확실하게 연결되었는지 확인한 후 상자 문을 닫으십시오. 모든 쥐에 대해 동일한 연결 및 확인 절차를 수행하십시오.
    7. 오실로스코프를 사용하여 비정상적 신호(예: 고주파 및/또는 고진폭 전기 활동)가 있는지 EMG 활성도를 관찰하고, 사용 가능한 경우 비디오 감시 시스템을 통해 상태(예: 운동 활동, 환경 민감도, 통증 징후)를 확인하십시오. 관찰된 모든 문제는 훈련 기록지에 기록하십시오.
    8. 래트가 챔버에 10분 동안 적응하도록 한 다음, 홈케이지로 돌려보냅니다.
    9. 오퍼런트 박스를 세척 및 소독하고, 바닥을 쓸고, 테이블을 청소하십시오. 매 세션이 끝난 후 이 절차들을 수행하십시오.
  2. 습득 훈련은 6일 연속(세션)으로 진행됩니다.
    1. 1일 차: 쥐를 지정된 상자로 옮기고, 커뮤테이터 케이블의 EMG 및 바이폴라 플러그를 머리에 부착된 해당 EMG 헤드스테이지 및 바이폴라 전극에 연결합니다. 5.1.6 및 5.1.7에 명시된 것과 동일한 절차를 수행합니다.
    2. 자극 격리기를 켜고 전달 전류를 0.4mA로 설정합니다(비디오에 표시된 대로 10mA의 4%). 격리기는 양극 전극의 배측 및 복측 프롱 사이에서 교대로(즉, 시행마다) 전류를 전달합니다. 이는 반복적인 자극 전달 시 (각 근육 부위의) 근섬유 피로를 줄이는 데 도움이 됩니다.
    3. 모든 쥐에 대해 매 시행마다 나타나는 모든 눈깜빡임 반응과 내성을 관찰하십시오. 매 두 번째 시행 후, 각 쥐의 충격 무조건 자극(US) 강도를 1.6 mA에 도달할 때까지(제7 및 8시행) 0.4 mA씩 증가시키십시오. 모든 쥐가 각자의 케이지 내에서 정상적으로 반응하는지, 모든 증폭 및 이득 설정이 일정하게 유지되는지, 그리고 전기 신호(즉, EMG 노이즈가 낮거나 적은지)가 적절하게 전달되는지 다시 한번 확인하십시오. 습득 훈련의 모든 일차에 걸쳐 1.6 mA의 충격 무조건 자극 강도를 사용하십시오.
      참고: 쥐가 특정 전기 충격 수준에서 통증 반응(예: 바닥에서 높이 뛰어오름, 벽을 타고 올라감, 주변을 뛰어다님)을 보이면, 해당 시험을 일시 중단하고 이전 mA 설정값(0.4 mA 낮은 값)으로 돌아가 두 차례의 시험을 진행합니다. 그 후, 쥐에게 이전에 견디지 못했던 더 높은 충격 값을 다시 가하며, 이를 견뎌내면 1.6 mA에 도달할 때까지 값을 점진적으로 높입니다. 만약 어떤 값도 견디지 못하는 경우에는, 훈련 전반에 걸쳐 쥐가 견딜 수 있는 그다음 낮은 값(0.4 단위 증분)을 사용합니다.
    4. 오실로스코프를 사용하여 EMG 활동에서 비정상 신호가 있는지 관찰하십시오.예:, 고주파 및/또는 고진폭 전기 활동) 및 상태 확인을 위한 비디오 감시 시스템)예:, 운동 능력, 환경 민감도, 통증 징후).
      참고: Trace ECC 설명: 캡처된 EMG 파형이 포함된 대표적인 시험 에포크(epoch)가 다음의 ~에 예시되어 있습니다. 그림 1 그리고 추적 외현적 조건 형성(trace ECC) 절차는 비디오에서 자세히 설명됩니다. 추적 조건 형성 훈련 파일은 매 10회마다 100회의 시행(쌍을 이룬 CS-US 시행 90회 및 CS 전용 시행 10회)을 제공하도록 설정되어 있습니다.th (시행)하며, 시행 간 평균 간격은 30초입니다. 전체 훈련 세션은 약 52분간 지속됩니다(중단이 없다고 가정할 때). 모든 쥐는 세션 1에서는 경험이 없는 상태이며, 며칠간의 훈련이 진행됨에 따라 (조건반사(CR)의 발현으로 결정되는) 차별적인 학습 곡선을 나타내게 됩니다.
    5. 훈련 시작: Blink 소프트웨어 모듈을 실행하십시오. 요청 메시지가 나타나면 적절한 RAT 파일과 다음을 위한 훈련 파일을 선택하십시오. "추적" 눈깜빡임 조건형성
    6. 훈련 로그에 시작 시간과 실험자의 이름을 기입하십시오. 이 시점에서 모든 활동을 모니터링하십시오: 적절한 EMG 신호, 전기 충격 US에 대한 양호한 깜빡임 반응(즉, 높고 빈번한 UR), 동물의 건강 상태 및 하드웨어의 정상 작동 여부를 확인하십시오. 특이 사항은 훈련 로그에 기록하십시오.
    7. 데이터 수집은 소프트웨어에 의해 RAW 파일(쥐 한 마리당 하루 한 개)로 자동 저장됩니다. RAW 파일에는 놀람 반응(SR), 무조건 반응(UR) 및 조건 반응(CR)(전체 및 적응성)에 대한 EMG 진폭(V), 빈도 수, 잠복기 및 면적 데이터가 포함되어 있습니다. 전기 충격 아티팩트가 UR 기간의 처음 100ms를 가리기 때문에, UR 기간의 마지막 140ms에만 UR 데이터가 포함됩니다.
    8. 훈련이 종료되면 소프트웨어가 자동으로 종료됩니다. 모든 쥐를 훈련 박스에서 꺼내어 다음으로 돌려보내십시오. 비바리움.
    9. 이후 모든 훈련일에 대해 5.2.5단계에서 5.2.6단계를 반복하십시오. 특정일의 Blink 모듈을 시작하기 전, RAT 파일 내의 세션 번호를 업데이트하십시오. 이를 통해 해당 날짜의 모든 쥐에 대한 새로운 RAW 파일을 생성할 수 있습니다. 훈련에서 제외된 쥐가 없다고 가정할 때, 각 쥐당 6개의 RAW 파일이 생성되어야 합니다.
  3. RAW 파일을 처리하여 통계 분석을 위해 필터링된 파일을 생성하십시오.
    1. 분석 모듈을 실행하십시오. 각 쥐의 각 세션을 시행별로 검토하여 문제가 있는 시행이 있는지 확인하십시오. 이는 다양한 이유로 손상되었을 가능성이 있는 시행을 선별하기 위해 수행됩니다.예:, 과도한 CS 전 기저 활동, 과도한 움직임, 전극 탈락, 케이블/와이어 문제). 해당 소프트웨어에는 실험자가 이를 탐지하고 제거하는 것을 돕는 알고리즘이 포함되어 있습니다. "실패한 시험" 필터링된 데이터 세트에서 제외됩니다.
    2. 필터링된 데이터를 스프레드시트 프로그램으로 가져와 적절한 통계 분석을 수행하십시오.

결과

Eyeblink 소프트웨어는 다양 한 유형의 측정 데이터의 크고 포괄적인 세트를 제공 수 있습니다. 간결, 우리는이 연구에서 보고 대표 결과 학습 및 성능에 대 한 적응형 CR 비율, 적응형 CR 진폭, UR 비율 및 UR 진폭을 포함 하는 측정. 적응형 CR 기간 추적 ECC50,,5152중 해 마에서 향상 된 시 냅 스가 소성의 결과로 반복된 훈련을 통해 잘 초과 eyeblink 응답의 인수를 나타내는 선택 되었다. 통해 UR 대책 여부에 신생아 알코올 유발 학습 적자 추적 ECC 동기 또는 모터 차이 보다는 학습 치료 그룹 간의 차이 알 수 있습니다-우리 연관 학습 중단 또는 충격에 응답 중단 했다 명료 하 선정 됐다. 각 측정값에 대 한 데이터 반복 측정 요소로 세션 ANOVAs 혼합 2 (섹스) x 3 (Neonatal 그룹) x 6 (세션)을 사용 하 여 분석 되었다. 신생아 치료 위한 중요 한 주요 효과 했다 Tukey의 포스트 hoc 테스트를 사용 하 여 분석 하 고 중요 한 상호 작용은 간단한 효과 테스트를 사용 하 여 분석 되었다. 모든 통계 분석 0.05의 최소한 알파를 사용 하 여 실시 했다 및 그래프에 결과 평균 ± SEM.

적응형 CR 비율 측정부터, ANOVA 신생아 그룹, F(2,21)의 중요 한 주요 효과 표시 11.69, p = < 0.001, 하지만 섹스의 중요 한 주요 효력이 없다 (p = 0.71) 또는 이러한 요소 사이의 중요 한 상호 작용 (p = 0.20). CR 비율 적응 훈련, F(5, 105)의 6 개의 세션에 걸쳐 증가 예상 대로 81.15, p = < 0.001, 그리고 신생아 그룹 간의 차이 일정 수준의 세션, F(10, 105)에 의존 했다 4.58, p = < 0.001. 전혀 다른 중요 한 상호 작용 세션 요소를 포함 했다. 마찬가지로 적응 CR 진폭, 거기 했다 다시 신생아 그룹, F(2,21)의 중요 한 주요 효과 22.32, p = < 0.001, 하지만 섹스의 중요 한 주요 효력이 없다 (p = 0.21) 또는 이러한 요소 사이의 중요 한 상호 작용 (p = 0.48). CR 진폭 또한 훈련, F(5, 105)의 6 개의 세션에 걸쳐 크게 증가 59.27, p = < 0.001, 그리고 신생아 그룹 간의 차이 일정 수준의 세션, F(10, 105)에 의존 했다 4.31, p = < 0.001. 전반적으로, 두 CR 조치 그룹 의미와 훈련의 다른 세션에서 크게 구분이 의미 간의 중요 한 차이 보였다. 확인 하려면 그룹 크게 달랐다, Tukey의 포스트 hoc 테스트는 알코올 intubated (AI) 쥐 수행 크게 악화 (UC) unintubated-제어 및 가짜 intubated (SI) 쥐 보다 두 CR 조치에 나타났다 (p < 0.01 CR 비율; p < CR 진폭 0.001)는 서로 다를 하지 않았다 (p> 0.05). 간단한 효과 테스트 AI 쥐 CRs 세션 2에서 시작 하 고 세션 6 들고 UC와 시 쥐에 비해 인수에 더 크게 손상 되었다 확인 두 CR 조치에 대 한 상호 작용 세션 x 상당한 Neonatal 그룹에 수행 (모든 p< 0.05)는 6 개의 세션에 걸쳐 서로 다 하지 않았다. 유일한 예외는 적응형 CR 진폭 시 쥐 세션 3까지 AI 쥐에서 크게 다를 시작 하지 않았다 했다. 이러한 결과 그림 5A, 5B에 표시 됩니다.

섹스, 신생아 그룹, 또는 세션 요소와 이러한 요소의 상호 작용 통해 UR 대책에 상당한 차이가 있었다. 이러한 부정적인 결과 표시 각 그룹은 동등 하 게, 충격 eyeblink 응답 우리 방출할 수 동기 또는 모터 차이 (그림 6A, 6B) 점멸에 의해 영향을 학습 적자 AI 쥐에서 관찰 되지 않았습니다.

figure-results-1
그림 5 : 추적의 인수 조건 응답 (평균 ± SEM). 초기 알콜 노출 (AI 그룹) 적합 조건 반응 (CR) 비율 (A)와 (B) 진폭의 인수를 크게 영향을 받습니다. 추적 ECC는 본질적으로 얻기 어렵다, 따라서 조치는 모든 그룹-지연 ECC에 대 한 상대적으로 낮은, 백분율 FASD21,53의 설치류 모델에서 80-85%에 도달할 수 있습니다. 그럼에도 불구 하 고, 추적 ECC 절차는 쉽습니다 알코올 효과 초기 두뇌 발달 동안에 해 마, 부담 스러운 더 많은입니다. p 를 = < 0.05, * * p = < 0.01, * * * = p < UC 및 AI 쥐; 사이 0.001 샘플 크기는 괄호에 제공 됩니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

figure-results-2
그림 6 : Unconditioned 응답 (± SEM을 의미)의 인수. Eyeblink 성능 (UR 비율과 UR 진폭) 그룹 중 크게 다른 아니었다. 차이의 부족 수집 훈련 중에 사용 하는 충격 강도 차동 AI 쥐 동기 부여를 변경 하지 않았다 또는 그들의 생산 능력을 방어 깜박 모두 제어 그룹 (UC 및 SI)에 비해 충격에 대 한 응답을 나타냅니다. 샘플 크기는 괄호에 제공 됩니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

토론

출생 후 일 4-9 중 에틸 알코올을 받은 신생아 쥐 새끼 추적 eyeblink 성인에서 장애를 컨디셔닝 전시. 이러한 연구 결과 알코올 hippocampal 기능에 해로운 효과 지속으로 기형 발생 물질은 아이디어를 지원 합니다. 전반적으로, 조건 응답 추적 절차에 있던 두 컨트롤 그룹에 있는 쥐에 비해 알코올에 노출 된 쥐를 위해. 알코올에 노출 된 쥐에 연관 학습 장애 동기 또는 모터 차이 의해 영향을 받지 했다 (즉., 깜박이 충격 미국 강도 차이가).

추적 ECC elucidating 도전 유도 hippocampal neuropathology에 대 한 유용한 진단 도구입니다, 하는 동안이 메서드의 결과 적절 한 문맥에 배치 되어야 합니다. 첫째,이 데모의 핵심 절차 요소 개발 두뇌 하 시 활동의 기록을 허락 한다 충격, 위에서 언급 한 하드웨어, 그리고 관심의 인지 기능을 평가 하는 학습 패러다임을 사용 하 여 후속 동물 테스트의 외과 이식 전극 하드웨어의 제작에 대 한 취약성의 알려진된 창 동안 알코올의 대상된 배달 관련. 과정에서 각 단계에서 해야 합니다 주의 쥐 주제에 의도 하지 않은 불필요 한 피해를 발생 하지 하 고 그들의 건강 징후를 정기적으로 모니터링 합니다. 그들의 행동 결과 인지 "창"을 제공, 정확 하 게는 심리적 구조 설명 때 그들의 건강 알코올 주입, 하드웨어 결함, 또는 수술 주입을 포괄 하는 실험적인 오류에 의해 손상 되지. 따라서, 연구 과정에서 절차 상의 각 요소 간에 발견에 ECC에서 결과 추정 수 있도록 사운드 방식으로 구현 되어야 합니다. 둘째, ECC 패러다임 연관 학습의 본질에 통찰력을 제공 하지만 해야 합니다 주의 하지이 접근을 사용 하 여 결과 확장 하 고 광범위 하 게 다른 인지 도메인-작업 메모리, 단기/장기 기억, 의식-등을 돌리다 한 실험적인 디자인으로 ECC 연구 내에서이 도메인의 일부 일 면을 통합 했다 하지 않는 한. 예를 들어이 데모 추적 ECC 학습의 수집 단계를 검사 하지만 그들은 훈련을 완료 한 후 쥐에 메모리 보존을 조사 하지 않았다. 메모리는 이렇게 학습 이외에 평가 해야 하는 독립적인 심리적 프로세스입니다. 디자인, 하나 중 단기 또는 장기 메모리 능력을 평가 하기 위해 메모리 보존 간격을 통합할 수 있습니다. 셋째, 병렬 메모리 시스템54 동작을 동기, 경험, 그리고 호르몬 요인 함께 동시에 작동 하지 않을 수 있습니다 인정 (ECC) 동안 연관성은 이해 하지만 "좋은" 또는 "가난한" 학습에 대해 공개 하는 많은 프로세스 중 하나에 대 한 필수적입니다. 마지막으로, 추적 ECC 아니다 순전히 hippocampal 종속 작업, 다른 뇌 영역 크롬의 몇 가지 구성 요소를 중재할 수 있습니다. 따라서, 다른 신경 회로 및 자극 매개 변수를 연구에 활용, 의미 개별 결과에 따라 때에 고려 한다 유형 사이 상호 작용의 이해. 소 뇌, 예, 또한 추적 ECC, 어디 그것 영향 CR와 타이밍, 특히 ISI는 짧은 기간에 크롬의 지형 특성에 기여. 추적 ECC 긴 추적 간격 (1000 ms), 테스트는 인간 소 뇌 손상에 영향을 받지 않습니다 하지만 그는 짧은 추적 간격 (400 ms)34에 영향을. 또한, 마우스에 이전 대상 및 중간 agranular 영역을 대상으로 등 쪽 내측 전 두 엽 피 질 (mPFC)의 양측 병 변 비슷한 결과46를 생산 하는 토끼에서 꼬리 mPFC의 파괴 하는 동안 추적55, CRs 인수를 방지 합니다. 이러한 연구 결과 또한 고려 소 뇌-뇌 전 두 엽 기여에 종 차이 줄기 추적 ECC와 같은 구동된 연관 학습의 중요성을 강조. 성인 500 ms 추적 CRs의 PD 4-9에 부정적인 영향을 중 신생아 알코올 노출 쥐이 연구 등에서47,56, 이것은 하지 알콜 (5 g/kg)57, 알코올에 노출 된 쥐에 추적 장애 추적 간격의 기간에 따라 달라 집니다 제안의 상대적으로 높은 복용량에 도전 하는 경우에 300 ms 추적 간격을 경험 하는 신생아 알코올에 노출 된 쥐에 대 한 같은 경우.

본이 연구에서는 해 마 신경 관련 손상 장애 추적 CRs의 취득에 의해 반영 된 전시 vitally 중요 추적 ECC, 중재에 대 한 신생아 알콜 노출에 의해 도전 되 고 강조 했다. 그러나 그것은,, 소 뇌-뇌 줄기 회로, 특히 interpositus 핵, ECC, 수집, 식, ECC 작업 포함 추적 ECC36,40,55,,5859의 종류에 따라 CR의 지형 기능 등의 다양 한 측면에 대 한 필수적입니다 경고 해야 합니다. 실제로,이 신경 회로 추적 ECC60등 ECC의 더 높은 순서 형태 동안 CRs의 식 구동을 위한 해 마와 상호 작용 합니다. 여부 알코올 노출 초기 두뇌 발달 동안 구체적으로 영향을 미치는 hippocampal 기능 추적 ECC에에서 완전히 명확 하지 않습니다. 많은 다른 두뇌 지구는 mPFC, 소 뇌, 그리고 해 마18,19,23,47,,6162를 포함 하 여 초기 알코올 모욕에 취약 하 고 알코올 많은 ECC 절차에 걸쳐 이러한 구조를 다양 한 각도 변화, 하지만 기능적으로 중요 한 차이의 기능 방해 매우 높습니다. 추적 ECC 연구에서 결과의 해석에 관한 함정, 불구 추적 CRs의 성공적인 인수 표시 되었습니다 적어도 그대로 해 마에 의존 하는 동물 병 변 연구42,44,63,,6465에 의해 지원. 이 프로시저는 추적 조건 때문에, 기본 신경 회로 훨씬 더 나은 응답을 발달 알코올 노출 사이의 링크 모리스 물 미로에 장소 학습 등 다른 hippocampal 종속 작업 보다 소설 개체 인식, 이해 위한 매우 귀중 한 접근에 따라서 남아 있다 및 콘텐츠 및 컨디셔닝 공포 추적.

"시험" 인식, 행동 방법으로 ECC 발달 neuroteratology의 분야에서 광범위 한 적용을 있다. 실제로, 우리의 실험실에서 최근 연구 결과 개발 해 마는 다른 중재 전략18,47에 의해 완화 될 수 있습니다 알코올 효과에 매우 민감한 개념 지원. 여기에 주요 장점은 그 알코올 유발 추적 ECC 학습 적자의 더 나은 이해, 그들은 수 있습니다 연관 학습-외부 기반 hippocampal 기능에서 다른 문제의 예측 같은 hippocampal neurocircuitry에 의해 중재 될 것으로 알려져 특히 그입니다.

응용 프로그램 추적 ECC 및 그것의 다른 변종 (예를 들어, 지연, 반전, 차별, 복합) neurobiological 메커니즘 및 신경 시스템 연관 학습에 관련 된 명료 하의 태아 알코올 연구의 분야를 넘어 확장할 수 있습니다. 예를 들어이 패러다임에 인간의 경우 정신 분열 증66,67같은 정신 조건, 알 츠 하이 머 병68,69, 같은 신경 퇴행 성 질환의 동물 모델 및 약물 남용70,,7172의 많은 관심을 받았습니다. Neurocognitive 기능 부전을 평가 하는 연구 방법으로 그 혜택은 따라서 신경 과학을 비롯 한 많은 심리적, 생물 의학 분야에 걸쳐 분명 있습니다.

공개 사항

저자는 공개 없다.

감사의 글

이 작품은 지원 교부 금에 의해 TDT에서는 알콜 음료 의료 연구 재단 (ABMRF).

재료

NameCompany카탈로그 번호CommentsEMG Headstage Fabrication and Bipolar Electrode 로 . 사이에 어떤 든 개 포함Roboz 수술 기구 우유 Roboz 수술 NC9358575 [Fisher Scientific]은 는 는 , PC 컴퓨터, MS Windows OS를 실행하는 모든
이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
<강한>신생아 알코올 노출
190 증명 에틸 알코올 (USP)Pharmco-AAPER225-36000 [ECU 의료 저장실]로 대체할 수 있으며; USP여야 합니다; 200 proof 에틸 알코올
용기/바구니를 강아지용으로
어떤 옥수수 기름어떤 음식 등급
의 가열 물 치료 펌프가 있어야 합니다. 패드GaymarTP-500강아지를 따뜻하게 유지하기 위해; 대체될 수 있습니다.
하이포더믹 바늘 22G x 1 인치, 멸균모든
피하 주사 바늘 30G x 1/2 인치, 멸균이
소프로필 알코올 70%EMD MilliporePX1840-4 [Fisher Scientific]로 대체할 수 있습니다; 시약 등급
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Long-Evans Rats (Female and Male Breeders)Charles River LaboratoriesN/A [ECU Dept. of Comparative Medicine]나이와 체중을 지정해야 합니다. 가격은 이러한 요인에 따라 다릅니다
www.criver.com
Micro Dissecting Scissors, 3.5 in, 23 mm BladesBiomedical Research Instruments11-2200PE 튜빙 절단용
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폴리에틸렌 10 튜빙(0.011인치) 신분증; 0.024 에. O.D.)BD 진단 시스템22-204008 [Fisher Scientific]대체 가능
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Polyethylene 50 Tubing (0.023 in. 신분증; 0.038 에. O.D.)BD 진단 시스템22270835 [Fisher Scientific]대체 가능
www.fishersci.com
조절 온수기 또는 아기 우유 병 워머모든선택 사항; 차가운 우유 용액을 따뜻하게 도와줍니다
투베르쿨린 주사기, 멸균, 1.0 ml모든
투베르쿨린 주사기, 멸균, 10 ml모두에틸 알코올을 추출하거나 적절한 크기의 마이크로 파이프 계
해상도가 좋아야 합니다 (그램 단위)
개질
양극 전극, 2채널 SS 트위스트플라스틱 One, Inc.MS303/2-B/SPC  SS 선출  2C TW .008"반드시 받침대 아래 20mm의 사용자 정의 길이를 지정해야 합니다
www.plastics1.com
Centi-Loc 스트립 소켓 절연체(즉, 마이크로 스트립)ITT Cannon / ITT Interconnect SolutionsCTA4-IS-60* 또는 CTA4-1S-60**공급업체에 따라 다름; www.onlinecomponents.com 또는 www.avnetexpress.avnet.com
치과 플라이어, 톱니CMF Medicon390.20.05 참조대체될 수 있습니다; 남성 접촉 핀에 와이어를 압착하는 데 사용하십시오
www.medicon.de
마이크로 해부 가위, 3.5 인치, 23 mm 블레이드생물의학 연구 기구11-22003T 와이어를 절단하는 데만 사용하십시오; 10T 와이어를 절단하면 블레이드가 손상됩니다 - 대신 와이어 스트리퍼의 블레이드를 사용하십시오
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PTFE 코팅 스테인리스 스틸 와이어, 10T (베어 직경 .010 in)Sigmund Cohn-Medwire316SS10T
www.sigmundcohn.com
PTFE 코팅 스테인레스 스틸 와이어, 3T (베어 직경 0.003 in)Sigmund Cohn-Medwire316SS3T
www.sigmundcohn.com
Razor BladeAnyTo strip 1 mm from prongs of bipolar electrode
Relia-Tac Socket Contact Pin, MaleCooper Interconnect220-P02-100See Allied Electronics Cat # 70144761
www.alliedelec.com
트위저, 고정밀, 톱니 모양, 4 3/4 인치전자 현미경 과학78314-00D부드러운 핀셋으로 PTFE를 벗겨내면서 10T 와이어를 단단히 잡으려면
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트위저, 고정밀, 매끄러운, 4 3/4 인치전자 현미경 과학78313-00B
www.emsdiasum.com
트위저, 초미세 팁, 4 3/4 인치전자 현미경 과학78510-03T 와이어의 한쪽 끝에서 1mm의 PTFE를 벗겨냅니다. 부드러운 핀셋으로 차폐 부분을 잡으십시오
www.emsdiasum.com
와이어 스트리퍼, 16-26 AWG모든블레이드 끝을 사용하여 마이크로 스트립을 절단하십시오
Name<strong>Company카탈로그 번호Comments
>Eyelid Surgery
수술 기구 (고품질 스테인리스 스틸)
2 x 드레싱 집게, 4 인치 톱니 모양의생물 의학 연구 기기30-1205대체 할 수 있습니다. 수술 트레이 외부의 전극 / 나사를 잡기위한 여분의 집게
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드레싱 집게, 3 인치 톱니 모양의생물 의학 연구 기기30-1200대체 가능
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Instrument TrayBiomedical Research Instruments24-1355대체 가능
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Knife Handle No. 3, 5 inBiomedical Research Instruments26-1000대체 가능
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Micro Dissecting Forceps, 3.5 in, Fine PointsBiomedical Research Instruments10-1630대체 가능
brisurgical.com
Micro Dissecting Forceps, 3.5 in, Smooth Platform (0.3 x 5 mm)Biomedical Research Instruments10-1720
brisurgical.com
마이크로 해부 가위, 3.5 인치, 매우 섬세한, 15 mm 블레이드생물 의학 연구 도구11-2000교체 가능
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Plain 스플린터 펜치, 3.5 인치 생물 의학 연구기구30-1600대체 가능
brisurgical.com
#10 스테인리스 스틸 수술용 블레이드 #3 핸들, 멸균모든것으로 대체 가능
0-80 x 0.125 in 스테인리스 스틸 나사Plastics One, Inc.0-80 x 0.125대체 가능
www.plastics1.com
Alcohol Prep Pads, SterileFisher Scientific22-363-750 [Fisher Scientific대체 가능
www.fishersci.com
Betadine Povidone-IodinePurdue Frederick Co.6761815101 [Fisher Scientific]대체 가능
www.fishersci.com
Betadine Povidone-Iodine Prep PadsMoore Medical19-898-946 [Fisher Scientific]대체 가능
www.fishersci.com
Cotton-Tipped Swabs,AnyAutoclavable일반적으로 7.6 cm 또는 15.2 cm 길이의
핀 바이스용 드릴 비트, #55 (0.052 인치)모든금속은 부식 및 부식에 저항해야 합니다
거즈 패드, 2 인치 x 2 인치Fisher Scientific22-362-178 [Fisher Scientific]대체 가능
www.fishersci.com
범용 라텍스/니트릴/비닐 장갑모두
유리 구슬 살균기수술살균 기구
가열된 물 치료 펌프 w/ 패드 x 2GaymarTP-500대체 가능; 별도의 펌프가 권장됩니다 - 수술용 1개, 회복용 1
피하 주사 바늘 26G x 3/8 인치, 멸균모든
이소플루란VedcoNDC 50989-150-12Manfacturer를 대체할 수 있습니다. 수의사 승인이 필요할 수 있습니다
. Isoflurane 기화기 시스템, 탁상, 비호흡Parkland ScientificV3000PK대체 가능
www.parklandscientific.com
Jewelers 스크루드라이버 w/ 1.8-2 mm 블레이드모든금속은 녹과 부식에 저항해야 합니다
. Ortho-Jet BCA 패키지(치과용 시멘트)Lang DentalB1334분말 (1 lb) 및 액체 < br / > < href = "http://www.langdental.com/">www.langdental.com< / a >
압력 조절기가있는 산소 탱크, 대형현지 공급 업체
도자기 도가니, 고형, 유약, 10 mlCoorsTek, Inc.07-965C [Fisher Scientific]Fisher FB-965-I Wide-Form Crucible
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Puralube Veterinary Ophthalmic Ointment, SterileHenry Schein CompanyNC0144682 [Fisher Scientific]로 대체 가능
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Quatricide PV-15로 대체 가능PharmacalPV-15항균 소독제; 대체 가능
www.pharmacal.com
Rat 가스 마취 마스크 스테레오택시 수술용 Stoelting Company51610
www.stoeltingco.com
Rat 스테레오택시 장치 w/ 이어바 (45도)고막 손상을 방지하기 위해 어떤 45도 바도 사용이 권장됩니다.
대체할 수 있습니다. 오토 클레이브 중 윤활 기기
www.fishersci.com< / A >
설치류 헤어 트리머모든
염화나트륨Fisher ScientificS641-500 [Fisher Scientific]0.9 % 식염수를 만들기 위해; 시약 등급; USP
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스테인리스 스틸 마이크로스패튤라 (블레이드: 0.75 L x 0.18 in. W)Fisher Scientific21-401-15 [Fisher Scientific]대체 가능
www.fishersci.com
Starrett Pin Vise, 0.000 인치 - 0.055 인치모든니켈 도금 또는 이에 상응하는 것으로 녹과 부식을 저항하는 것이 좋습니다
. 멸균 수술용 장갑모든
멸균 랩, 20 인치 x 20 인치, 오토클레이브 가능Propper Manufacturing11-890-8C [Fisher Scientific]수술 중 멸균 가능한 물품 및 멸균 현장을 포장하는 데 유용합니다
www.fishersci.com
수술용 드레이프, 멸균/오토클레이브 가능모든쥐를 위해 크기를 잘라야 할 수 있습니다.
수술 가운*Any*IACUC 수술 마스크에 의해 필요한 경우
모든
투베르큘린 주사기, 멸균, 1.0ml모든
계량 저울해상도가 좋아야 합니다(그램 단위)
NameCompany카탈로그 번호Comments
Eyeblink 시스템 및 구성 요소(4-설치류 시스템을 가정)
5 채널 정류자 x 4Plastics One, Inc.SL2 + 3C
www.plastics1.com
양극 전극 케이블, 이중 305 x 4플라스틱 One, Inc.305-305 80CM TT2 (C)쥐와 정류자에 양극 전극에 플러그 끝을 제공합니다; 수정해야합니다
www.plastics1.com< / a>
Cable, 5 채널, 차폐, 26 AWG x 4정류 케이블을 제조하려면; 이것은
조작 테스트 상자 (내부 : 24 H x 23 W x 14 D in) x 4Med-Associates대체될 수 있습니다; 내부 치수는 음향 폼을 위한 공간이 있는 조작 테스트 박스에 편안하게 맞아야 합니다; 팬과 함께 맞습니다 - 55-60 dB
www.med-associates.com
Eyeblink 시스템 및 소프트웨어JSA 디자인N/A독점 및 연구 실험실
을 위해 맞춤화되었습니다.열 수축 튜빙 (3/16 인치, 1/4 인치, 3/8 인치, 1/2 인치 직경)Any수정된 정류자 케이블 납땜 끝과 접합을 보호하기 위해
멜라민 트리플 피크 음향 폼 w/블랙 하이팔론 (24 x 48 인치)McMaster-Carr9162T5대체 가능; 4개의 하우징 챔버에 맞게 잘라내기
www.mcmaster.com
작동 테스트 박스(외부 12.5 L x 10 W x 13.5 in H), 완전한 x 4Med-AssociatesENV-007 맞춤형 패키지, 스테인리스 스틸 그리드 바닥 및 맞춤형 상단 포함(정류자 케이블용 중앙에 3인치 구멍)
www.med-associates.com
오실로스코프(옵션)Any권장 최소 사양: 200MHz 아날로그 대역폭, 1GS/s 실시간 샘플링, 4채널; 참조 www.picotech.com
/td>
Piezo Tweeters (Speakers) x 4 (7 x 3 in)MCM Electronics53-805eyeblink system (2500 Hz - 25 KHz)의 주파수 범위 사양과 일치해야 합니다
www.mcmelectronics.com
납땜 스테이션, 땜납, 플럭스, 틴너없음26 AWG 케이블을 여성 소켓(남성 relia-tac 접촉 핀에 맞음) 및 바이폴라 플러그에 납땜하기 위해
Stimulus Isolators x 4WPI InternationalA365이 장치는 16-9V 알카라인 배터리로 작동하며, 적합한 충전식 버전(A365R)을 사용할 수 있습니다
www.wpiinc.com
Tripolar 전극 케이블 SL3C 정류자 x 4플라스틱 1개, 주식회사335-335 80cm TT3 C쥐와 정류자의 EMG 헤드스테이지에 플러그 끝을 제공합니다; 수정해야 합니다
www.plastics1.com
USB LED 라이트 x 4모든USB 기반 조명은 쥐로부터의 EMG 신호로 전기 "잡음"을 일으키지 않습니다
www.plastics1.com
웹캠 x 4, 감시 소프트웨어모든
컴퓨터
사용하지 마십시오. 이든 . 량 저울을 사용하는 데 사용할 수 있습니다. 모든

참고문헌

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