이 콘텐츠를 보려면 JoVE 구독이 필요합니다. 로그인하거나 오늘 무료 평가판을 시작하세요.

방법 논문

끄 덕 임에서 부분 Hepatectomy 후 Hepatocytes의 intrasplenic 이식 SCID 마우스

14K 조회수

DOI:

10.3791/56018

2018년 2월 10일

이 논문에서

요약

우리는 끄 덕의 부분 hepatectomy (PHx) 및 비장을 통해 세포 이식 수행을 위한 프로토콜을 설명 했습니다. SCID (끄 덕 임. CB17-Prkdcscid/J) 쥐. 이 프로토콜에서 절 개 노출 하 고 셀의 intrasplenic 이식에 대 한 또 다른 절 개에 의해 따라 간 좌 엽 resect 이루어집니다.

초록

부분 hepatectomy 간 재생 및 다양 한 병 적인 조건에서 세포 기반 치료제의 효과 공부 하는 다양 하 고 재현할 수 방법입니다. 또한 부분 hepatectomy에 간 쪽으로 가속 neovascularization 및 셀에 의해 증가 engraftment와 이식된 세포의 증식 촉진 한다. 여기, 우리 immunodeficient 끄 덕을 결합 하 여 비만 아닌 당뇨병/심한의 비장에 30 %hepatectomy 이식 세포의 수행에 대 한 간단한 프로토콜을 설명 합니다. SCID (끄 덕 임. CB17-Prkdcscid/J) 마우스.

이 절차에서는 두 개의 작은 절 개 만들어집니다. 첫 번째 절 개 노출 하 고, 간 좌 엽을 resect 하는 것입니다 그리고 또 다른 작은 절 개 비장 세포의 intrasplenic 이식에 대 한 폭로 이루어집니다. 이 절차는 어떤 전문된 외과 기술이 필요 하지 않습니다 그리고 그것은 5-7 분 더 적은 스트레스와 고통, 빠른 복구, 및 더 나은 생존에에서 완료 될 수 있다. 우리 마우스 (유전자 변형 C57BL/6-Tg (UBC-GFP) 30Scha/J), 뿐만 아니라 부분적으로 hepatectomized 끄 덕에에서 인간의 기원 (NeoHep)의 세포 처럼 hepatocyte 표현 녹색 형광 단백질 (GFP)에서 절연 hepatocytes의 이식 설명 했다. SCID 쥐입니다.

서론

현재, hepatocyte 이식 데 심한 간 장애 환자 치료에 대 한 전체 장기 이식의 대 안으로 제시 된다. 그것은 전체 장기 이식1환자 다리 수 믿 었 다. Allogenic hepatocytes2뿐만 아니라 xenogenic hepatocytes3 및 줄기 세포4 에서 파생 된 hepatocytes는 또한 되 고 조사 동물 모델에서. 이 컨텍스트, 추적 및 engraftment 받는 사람에서 이식된 세포의 잠재력 급성 간장 장애 (AHF)에 따라 셀 치료에 대 한 중요 한 기준입니다.

조사 hepatocytes 또는 hepatocyte 같은 셀5의 이식, AHF 수술6 또는 약리학7 절차, 뒤에 세포 이식 동물 모델에서 만들어집니다. 약리학 적인 시 약, 많은 hepatotoxins d galactosamine8, 아 세트 아미노 펜9, 사염화 탄소10, thioacetamide11, Concanavalin A12, lipopolysaccharide13 AHF 동물 모델을 , ., 사용 되었습니다. 이 목록에서 모든 시 약 AHF, 독특한 기능 집합이 생성 하지만 불행히도 아무 단일 시 약 인간의 AHF 모방. 또한, hepatotoxins에 의해 유도 된 AHF는 시간이 오래 걸립니다, 만성 스트레스는 동물을 박 았, 그리고 재현성 결과 얻기 어렵다.

다른 한편으로, 부분 hepatectomy (PHx)의 수술은 기술 종속, 고 재현성 결과 필요한 능력 개발 후 얻을 쉽습니다. 혼자 외 과적으로 AHF을 유도, 간 70% 이상의 절제가 필요; 그러나, 70 %hepatectomy 여전히 engraftment의 확산을 공부 하 고 이용 될 수 있다 보다는 더 적은 셀 간 손상14동안 그들의 치료 용량을 분석 하기 위한 간 이식. Hepatocytes의 이식 복15, 꼬리 정 맥16,17간 정 맥 또는 비장18통해 수행된 게시물 hepatectomy 되었습니다. 현재, 간 정 맥 주입 및 hepatocytes의 intrasplenic 이식으로 재현 하기 쉬운 기본 절차입니다.

이 문서에 우리는 30% 부분 hepatectomy 끄 덕에 대 한 절차를 설명 했습니다. SCID (끄 덕 임. CB17-Prkdcscid/J) 마우스의 왼쪽된 엽 excised입니다. 그것은 이식의 0.2 백만 GFP 표현 마우스 (C57BL/6-Tg (UBC-GFP) 30Scha/J) hepatocytes 인간의 기원 NeoHep19 비장에 옵니다. 이 절차에에서 이식된 세포의 engraftment 이끌어 낸다. 이 절차는 최소한 침략 적 및 최소한 고통 스러운 기술.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

프로토콜

이 프로토콜에서 제시 하는 절차는 면역학, 뉴델리의 국립 연구소의 기관 동물 윤리 위원회에 의해 승인 되었습니다. 승인의 직렬 참조 번호는 IAEC #319/13.

참고: 일반 외과 절차20 및 설치류 수술21에 대 한 특정 프로토콜에 우수한 자원 있습니다. 그는 처음으로 동물 수술을 하 고,이 좋습니다 광범위 하 게 연습을 인형에 수술 동물에 작동 하기 전에.

1입니다. 준비

  1. 실험, 계속 하기 전에 멸 균 인산 염 버퍼 식 염 수 (PBS) 또는 염 분 준비.
  2. 가 위, 톱니 모양의 집게, 집게를 조직, 면, 면봉, 나일론 스레드, 그리고 다른 마이크로 바늘 홀더 수술 키트를 조립 한다. 압력솥 수술 키트입니다. 특별 한 주의 경우는 면역 손상 끄 덕 취해야 한다. SCID 마우스 프로토콜에 포함 됩니다.
  3. 수술의 끝에 준비에서 완전 한 실험 절차를 수행, 생물 안전에서 캐비닛 클래스 I.
  4. 무게는 끄 덕 임. 수술 하기 전에 오래 된 6-8 주간의 SCID 마우스. 14-18 g 사이 무게 쥐가이 연구에 사용 됩니다.
  5. 헤어 트리머 마우스의 상단 중앙과 증 복 부 영역을 면도. 머리 잘린된 머리카락을 완전히 제거 하려면 주걱으로 크림 지역에 걸쳐 균등 하 게 제거를 적용 합니다. 2-5 분 후 젖은 메 마른 목화의 조각의 도움으로 부드럽게 머리카락을 제거 합니다.
  6. Isoflurane 챔버에 마우스를 놓고 산소 실린더의 밸브를 잠금 해제 합니다. 4 L/min의 속도로 산소 흐름 및 마 취 유도를 4%에서 isoflurane 증발을 유지 합니다.
    1. 마우스는 부드러운 발가락 곤란 하 여 제대로 anesthetized 되었습니다 확인 하십시오.
  7. 장소는 biosafety 내부 수술 보드 장. 마우스의 복 부 부분 직면 하 고 마우스의 앞쪽 부분 isoflurane 및 산소 공급 장치에 연결 하는 코 콘 내부 배치는 그런 동물 수술 보드에 놓습니다.
  8. 2%, isoflurane 증발을 감소 하 고 수술을 통해 그것을 유지.
  9. 마우스의 피부를 소독 하 고 절 어 70% 에탄올 소독 면으로 닦아 하 여 소독.

2. 수술

  1. 부분 Hepatectomy
    1. 칼 과정을 바로 운영가 위의 도움으로는 흉 곽에 평행한 수직, 흉 골 바로 아래 피부에 약 1 ㎝의 가로 절 개를 확인 합니다.
    2. 부드럽게 집게 또는 피부와 복 부 근육 층 사이 구별을 무 균 moistened 면 팁 베인된 지역 주변 복 부 근육 층으로 연결 된 피부를 구분 합니다. 건조를 피하기 위해 메 마른 면 팁을 사용 하 여 PBS를 가진 피부 영역을 만끽해 보세요.
    3. 바로 아래에 칼 복 층 가로 절 개를 하 여 원활 하 게 왼쪽된 엽의 영역을 노출. 폭로 하 고 들어 간 좌 엽 두 moistened 면 팁을 사용 합니다.
    4. 컷의 복 부 측에 면화 팁 중 하나를 배치 하 고 격 막에 다른 면 팁을 배치. 부드럽게 팁, 횡 경 막 쪽으로 배치를 누르고 들어 간 좌 엽에 다른 팁으로 슬라이딩 밀어 줄.
    5. 슬립 해제 왼쪽된 엽 통해 루프와 나일론 스레드를 마이크로 포 셉 또는 면 팁의 도움으로 고 hilum 가까이 왼쪽된 엽의 기지를 향해 루프. 부드럽게 왼쪽된 엽의 기지에 나일론 스레드 루프 아래로 밀어.
    6. 미세 바늘 홀더 및 마이크로 집게를 사용 하 여 왼쪽된 엽 위에 나일론 스레드의 두 끝을 묶어. 다른 쪽에 두 개의 추가 노트를 확인 합니다.
    7. 가 위의 도움으로 묶인된 엽 개 해 부. 스레드 가까이 매우 잘라 하지 마십시오. 경우에 절차는 5 분 이상 지속, 계속 복 막 구멍 및 장기 액체 손실로 인해 건조를 피하기 위해 무 균 PBS와 촉촉한.
    8. 연속 봉합을 사용 하 여 4-0 다 봉합 복을 바느질. 그 후, 최대한 빨리 불연속 봉합 하 여 피부를 닫습니다.
  2. 세포 이식
    참고: GFP 표현 hepatocytes 유전자 변형 GFP 마우스에서 고립 되었다 (C57BL/6-Tg (UBC-GFP) 30 Scha/J),이 에 의해 설명 된 절차에 따라. 22 와 쉔 . 23 hepatocyte 같은 셀 (NeoHep) 인간의 기원 monocytes24 에서 분화의 이식도 사용 되었다. 그러나, 다른 소스에서 파생 된 세포 프로토콜에도 사용할 수 있습니다.
    1. 약 50 µ L의 Iscove의 수정 Dulbecco의 매체 (IMDM), 0.2 백만 가능한 셀을 일시 중단 하 고 1 mL 인슐린 주사기 30 G 바늘 출장에서 발음. 얼음에 그것을 배치 하 여 주사기 차가운 유지.
    2. 왼쪽된 측면 부분에 수술을 수행 하는 사람을 향해 직면 하는 방식으로 마우스를 놓습니다. 비장 영역을 식별 하 고 transversely 노출 비장을 복 층을 통해 짧은 절 개 뒤 증 지역 근처 피부를 해 부.
    3. 부드럽게 비장 들어올린 두 PBS의 도움으로 구멍 밖에 서 면 팁을 습 하 게 잡고.
    4. 한 손에 두 면 팁으로 신중 하 게 비장을 누른 주사기의 바늘을 비장에 정확 하 게 수직 배치 합니다. 부드럽게 비장을 관통 하 고 바늘을 밀어 안으로 매우 느리게; 바늘 2 m m 보다 더 받아야 하지.
    5. 비장 세포를 주입 하 천천히 주사기의 피스톤을 아래로 밀어. 이식 후 주사기의 바늘을 안정적으로 유지 하 고 천천히 출혈 방지 하려면 비장 또는 셀의 손실에서 그것을 제거 합니다.
    6. 면 팁으로 복 막 구멍으로 비장을 배치 후 연속 4-0 다 봉합으로 봉합 하 여 복 층을 닫습니다. 바느질 같은 봉합으로 불연속으로 피부. 닫는 피부;에 대 한 상처 클립을 사용 하지 마십시오 대신, 4-0 봉합 하 여 그것을 닫습니다. 상처 클립 마우스의 자연 스러운 움직임을 제한 하 고 종종 클립 느슨하게 되 고 신속 하 게 밖으로 나와.

3. 수술 치료

  1. 피부를 닫은 후 주변을 요오드 솔루션 (betadine) 살 균 면 팁을 사용 하 여 두 봉합 사이트 닦아냅니다.
  2. 600 mg/kg 몸 무게 (일반적으로 염 분/마우스의 100 µ L에서 12 mg cefotaxime) intraperitoneally cefotaxime 항생제의 복용량을 주사 1 mL 주사기를 사용 하 여.
  3. 진통 Meloxicam의 매일 복용량으로 줄 1 mg/kg 몸 무게 (일반적으로 12 µ g Meloxicam의 식 염 수/마우스 100 µ L에서) 동물에 intraperitoneally, 수술 후 최대 3 일 동안.
  4. 수술의 완료 후 isoflurane 가스의 흐름을 중지 하 고 개별적으로 통풍이 장에 다시 마우스를 놓습니다.

4. euthanization 및 Characterizations

  1. 실험적인 종점 (1 일 및 10 일 후 수술) 후 기관 동물 윤리 지침에 따라 마우스를 안락사.
  2. 말기 출혈 눈 터미널 총 puncturing 동물에 의해 혈액을 수집 합니다.
  3. 혈액에서 혈 청을 분리.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

결과

30% 부분 hepatectomy 후 hepatocyte 확산: 간 30 %hepatectomy 후 남은 hepatocytes의 확산 immunohistochemical (IHC) 세포 확산 표식 기-67에 대 한 얼룩에 의해 시험 되었다. 하루 게시물 hepatectomy 쥐 했다 안락사, 나머지 간 엽 excised 했다, 및 파라핀 섹션 가져온. 섹션은 뒤에 양 고추냉이 과산화 효소 (HRP) 활용 된 이차 항 체와 라벨 기-67 항 체와 스테인드 했다. 디 아미노 Benzidine (한 덩어리)으로 사용 되었다 기판 HRP에 대 한 갈색 색상의 개발에 대 한 스테인드 셀을 식별 하기 위해. 핵 카운터 되며 물과 20 X 객관적인 현미경 아래에서 본 했다. 그림 1 간 섹션의 대표적인 IHC 이미지를 보여준다. 약 13% 셀 (13.66 ± 0.317, N = 3)의 기-67 했다 30 %hepatectomy 마우스 간에서 hepatocyt...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

토론

부분 hepatectomy 조사 간 재생에 대 한 설립된 기술 이며 과도 한 hepatectomy AHF 모델을 모방 하기 위해 보고. AHF의 동물 모델 중 특히 쥐, 설치류는 가장 연구 모델입니다. 최대 70 %hepatectomy 쥐에서 간 상해 모델을 얻기 위해 좋은 생존 율25,26보고 되었습니다. 그러나 누드 및 다른 immunodeficient 마우스, 70 %hepatectomy 치명적으로 알려졌다 고 동물2724 시간 안에 죽 었 다.

미첼과 Willenbring28 2/3 부분 hepatectomy 쥐에 대 한 재현 하 고 잘 용납 방법 설명 했다. 에 끄 덕 임. SCID 쥐는 우리는 hepatectomy 총 간 질량의 30%는 왼쪽된 간 엽 절제술까지 제한 되었다 때 1...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

공개 사항

저자는 공개 없다.

감사의 글

이 작품은 학과 생명 공학, 면역학, 뉴델리의 국립 연구소에 인도 정부에서에서 받은 코어 그랜트에 의해 지원 되었다. 박사 Bhattacharjee의 현재 주소는 사단의 위장, 간장 학과 및 영양, 아동 병원 로스 앤젤레스.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
가스 마취 시스템Ugo Basile; 이탈리아211000
계량 기계Goldtech; 인도현지 조달
생물 안전 캐비닛 (클래스 I)카르토스 국제;   인도현지 조달
헤어 트리머파나소닉;   일본 ER-GY10 
날카롭고 날카로운 칼날이 있는 직선 작동 가위주요 외과; 인도현지 조달
집게, 톱니 모양,주요 외과 용품; 인도현지 조달
마이크로 니들 홀더  스트레이트 & 커브 메르시안 ;   영국 BS-13-8
1 ml 인슐린 주사기와 30G *5/16 바늘 디스포 밴; 인도
1 ml 주사기 26 G * 1/2 바늘BD; 미국 REF 303060
나일론 실   힘센; 인도(1-0) 현지 조달
MERSUTURES 4-0 멸균 외과 바늘 봉합Ethicon, Johnson & Johnson, IndiaNW 5047
TRUGUT 76cm 4-0 흡수성 외과 봉합봉합사 India Pvt. Ltd; 인도SN 5048멸균 외과 바늘 봉합사 Catgut 크롬
면봉순수 면봉 Pvt Ltd;   인도현지 조달
수술 테이프3M 인도 ; 인도1530-1Micropore 수술 테이프
MicrotomeHisto-line Laboratories, 이탈리아MRS3500
Shandon Cryotome E CryostatThermo Electron Corporation ; 미국
컨포칼 레이저 스캐닝 현미경Carl Zeiss ; 독일 LSM 510 META
명시야 현미경올림푸스, 일본LX51
자동 분석기튤립, 알토 산트라크루즈, 인도Screen Maaster 3000간 기능 테스트 용 생
화학 분석기 유세포 분석기BD ; 미국 BD FACSverse이식 후 세포의 존재 평가
Veet 제모 크림 Reckitt Benckiser , 인도
FORANEAbbott ; 미국이소플루란 USP 99.9% 
탁심알켐 ; 인도세포탁심 나트륨 주입
포비돈-요오드 용액 윈 메디 케어;   인도베타딘
파라포름알데히드히메디아; 인도GRM 3660
Iscove의 IMDM(Modified Dulbecco's Medium)Life technologies, Thermo Fisher scientific ; US12200-036
설탕시그마 ; USS0389
티슈 텍사쿠라; 미국25608-930O.C.T 화합물
DAPIHimedia; 인도MB 097
항알부민 염소 PolyclonalThermo Scientific,Pierce, USPA126081
anti-connexin 32/GJB1 Polyclonalabcam, 영국ab64609-500
항GFP 토끼 다클론 산타 크루즈 생명 공학; USSC 8334
Alexa Fluor 594 당나귀 안티-염소  분자 프로브, Thermo Fisher Scientific ;   USA11058
Alexa Fluor 488 당나귀 안티-양  분자 프로브, Thermo Fisher Scientific ;   USA11015
Alexa Fluor 594 치킨 안티 토끼  분자 프로브, Thermo Fisher Scientific ;   USA21442
염소 안티 토끼 IgG HRPInvitrogen, Thermo Fisher Scientific; 미국 65-6120
anti-Ki67 항체abcam, 영국ab15580
항원 마스킹 해제 용액, 구연산 염기벡터 실험실, USH-3300
ProLong 다이아몬드 퇴색 방지 마운트런Life technologies, Thermo Fisher scientific ; USP36966
SGOT(ASAT) KIT산호 임상 시스템, 인도
SGPT (ALAT)KIT 산호 임상 시스템, 인도
알칼리성 인산분해효소 키트(DEA)산호 임상 시스템, 인도
Hematoxylin Solution, Mayer'sSigma ; USMHS16
Eosin Y 용액, 알코올 시그마 ; 미국HT110132
DPX 마운트앤트 시그마; US6522
Melonex(진통제)Intas Pharmaceuticals Ltd; 인도Meloxicam 주사 
DAB 강화 액체 기판 시스템 테트라 하이드로 클로라이드시그마; 미국D3939
, 사 사 트

참고문헌

  1. Nussler, A., et al. Present status and perspectives of cell-based therapies for liver diseases. J. Hepatol. 45 (1), 144-159 (2006).
  2. Ponder, K. P., et al. Mouse hepatocytes migrate to liver parenchyma and function indefinitely after intrasplenic transplantation. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 88 (4), 1217-1221 (1991).
  3. Kokudo, N., Horimoto, H., Ishida, K., Takahashi, S., Nozawa, M. Allogeneic hepatocyte and fetal liver transplantation and xenogeneic hepatocyte transplantation for Nagase's analbuminemic rats. Cell Transplant. 5 (5 Suppl 1), S21-S22 (1996).
  4. Christ, B., Bruckner, S., Stock, P. Hepatic transplantation of mesenchymal stem cells in rodent animal models. Methods Mol. Biol. 698, 315-330 (2011).
  5. Fox, I. J., Roy-Chowdhury, J. Hepatocyte transplantation. J. Hepatol. 40 (6), 878-886 (2004).
  6. Glanemann, M., et al. Transplantation of monocyte-derived hepatocyte-like cells (NeoHeps) improves survival in a model of acute liver failure. Ann. Surg. 249 (1), 149-154 (2009).
  7. Rahman, T. M., Hodgson, H. J. Animal models of acute hepatic failure. Int. J. Exp. Pathol. 81 (2), 145-157 (2000).
  8. Zhang, L., et al. Granulocyte colony-stimulating factor treatment ameliorates liver injury and improves survival in rats with D-galactosamine-induced acute liver failure. Toxicol. Lett. 204 (1), 92-99 (2011).
  9. Gardner, C. R., et al. Role of nitric oxide in acetaminophen-induced hepatotoxicity in the rat. Hepatology. 27 (3), 748-754 (1998).
  10. Nardo, B., et al. Successful treatment of CCL4-induced acute liver failure with portal vein arterialization in the rat. Transplant Proc. 38 (4), 1187-1189 (2006).
  11. Sathyasaikumar, K. V., et al. Fulminant hepatic failure in rats induces oxidative stress differentially in cerebral cortex, cerebellum and pons medulla. Neurochem. Res. 32 (3), 517-524 (2007).
  12. Wu, J., et al. Laennec protects murine from concanavalin A-induced liver injury through inhibition of inflammatory reactions and hepatocyte apoptosis. Biol. Pharm. Bull. 31 (11), 2040-2044 (2008).
  13. Kaur, G., Tirkey, N., Chopra, K. Beneficial effect of hesperidin on lipopolysaccharide-induced hepatotoxicity. Toxicology. 226 (2-3), 152-160 (2006).
  14. Rupertus, K., et al. Major but not minor hepatectomy accelerates engraftment of extrahepatic tumor cells. Clin. Exp. Metastasis. 24 (1), 39-48 (2007).
  15. Selden, C., Casbard, A., Themis, M., Hodgson, H. J. Characterization of long-term survival of syngeneic hepatocytes in rat peritoneum. Cell Transplant. 12 (6), 569-578 (2003).
  16. Tang, T. H., et al. The role of donor hepatocytes and/or splenocytes pre-injection in reducing islet xenotransplantation rejection. Hepatobiliary. Pancreat. Dis. Int. 2 (3), 344-350 (2003).
  17. Goto, Y., Ohashi, K., Utoh, R., Yamamoto, M., Okano, T. Hepatocyte transplantation through the hepatic vein: a new route of cell transplantation to the liver. Cell Transplant. 20 (8), 1259-1270 (2011).
  18. Gabelein, G., et al. Intrasplenic or subperitoneal hepatocyte transplantation to increase survival after surgically induced hepatic failure? Eur. Surg. Res. 41 (3), 253-259 (2008).
  19. Bhattacharjee, J., et al. Autologous NeoHep Derived From Chronic Hepatitis B Virus Patients' Blood Monocytes by Upregulation of cMET Signaling. Stem Cells Transl. Med. , (2016).
  20. Basic surgical skills. Emergency and Essential Surgical Care (EESC) programme. , http://www.who.int/surgery/publications/s16383e.pdf (2017).
  21. Pritchett-Corning, K. R., Luo, Y., Mulder, G. B., White, W. J. Principles of rodent surgery for the new surgeon. J. Vis. Exp. (47), (2011).
  22. Lee, S. M., Schelcher, C., Demmel, M., Hauner, M., Thasler, W. E. Isolation of human hepatocytes by a two-step collagenase perfusion procedure. J. Vis. Exp. (79), (2013).
  23. Shen, L., Hillebrand, A., Wang, D. Q., Liu, M. Isolation and primary culture of rat hepatic cells. J. Vis. Exp. (64), (2012).
  24. Bhattacharjee, J., et al. Autologous NeoHep Derived from Chronic Hepatitis B Virus Patients' Blood Monocytes by Upregulation of c-MET Signaling. Stem Cells Transl. Med. 6 (1), 174-186 (2017).
  25. Hori, T., et al. Simple and sure methodology for massive hepatectomy in the mouse. Ann. Gastroenterol. 24 (4), 307-318 (2011).
  26. Hori, T., et al. Simple and reproducible hepatectomy in the mouse using the clip technique. World J. Gastroenterol. 18 (22), 2767-2774 (2012).
  27. Vidal, I., Richert, L. The nude mouse as model for liver deficiency study and treatment xenotransplantation. Int. J. Hepatol. , 1400147(2012).
  28. Mitchell, C., Willenbring, H. A reproducible and well-tolerated method for 2/3 partial hepatectomy in mice. Nat. Protoc. 3 (7), 1167-1170 (2008).
  29. Ahmed, S. U., et al. Generation of subcutaneous and intrahepatic human hepatocellular carcinoma xenografts in immunodeficient mice. J. Vis. Exp. (79), e50544(2013).
  30. Krikri, A., et al. Laparoscopic vs. open abdominal surgery in male pigs: marked differences in cortisol and catecholamine response depending on the size of surgical incision. Hormones (Athens). 12 (2), 283-291 (2013).

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재인쇄 및 허가

태그

간세포 이식간 재생GFP 간세포NeoHep 세포Ki-67 염색인간 알부민 검출알칼리성 인산분해효소 분석