방법 논문

뿔과 긴 Cervid에 대 한 신체 성장에 환경 및 유전학의 상대적 효과 평가 하기 위한 프로토콜

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DOI:

10.3791/56059

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2017년 8월 8일

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1Department of Wildlife, Fisheries and Aquaculture, Mississippi State University, 2Department of Natural Resource Management, South Dakota State University, 3Mississippi Department of Wildlife, Fisheries and Parks

이 논문에서

요약

Cervid 인구 가운데 phenotypic 차이 관련이 있을 수 있습니다 인구 수준 유전학 또는 영양; 분별 있는 야생에서 어렵습니다. 이 프로토콜은 우리가 영양 변형 삭제 되었다 제어 연구를 설계 하는 방법을 설명 합니다. 우리는 남성 흰 꼬리 사슴의 phenotypic 변이 유전학 보다 영양에 의해 더 제한 되었다 발견.

초록

Cervid 형 두 가지 범주 중 하나에 배치 될 수 있습니다: 효율, 사치 스러운 형태학 성장, 및 큰 무기와 몸 크기의 성장을 촉진 럭셔리 생존을 승진 시키는. 같은 종족의 인구는 환경 조건에 따라 각 표현 형을 표시합니다. 남성 흰 꼬리 사슴 (Odocoileus virginianus)의 몸과 뿔 크기 미시시피, 미국에서에서 지형 지역 다릅니다 영양 품질에 지역 편차와 강한 상관 관계가 있지만, 기본 주식 및 이전 re-stocking 노력에서 인구 수준 유전학의 효과 무시 수 없습니다. 이 프로토콜은 우리가 나이 및 영양, 같은 표현 형에 영향을 주는 다른 요인 제어 됩니다 제어 연구를 설계 하는 방법을 설명 합니다. 우리는 미시시피, 미시시피 주립 대학 녹슨 도킨스 기념 사슴 단위를 미국에서에서 3 가지 지형 지역에서 야생 임신 암컷과 6 개월 마리의 가져왔다. 같은 지역에서 사슴 세대 반응과 모성 효과 평가 하기 위해 수 있도록 자손의 2 세대 생산 자란 했다. 모든 사슴 같은 높은-품질 (20% 조 단백질 사슴 펠 릿) 다이어트 광고 libitum먹었다. 우리는 유일 하 게 각 신생아를 표시 하 고 몸 질량, 뒷 발, 그리고 몸 전체 길이 기록. 각 연속적인가, 우리 개인 원격 사출을 통해 진정 하 고 동일한 morphometrics 플러스 성인의 뿔 샘플링. 우리는 모든 morphometrics 뿔 크기 (지역 변이 이상 존재)의 완전 한 보상 및 신체 질량 (일부 지역 변이의 증거) 2 세대에서 분명 부분 보상 2 세대에 첫 번째에서 크기가 증가 발견. 2 세대에서 우리의 가난한 품질 남성 뿔 크기에서 40% 증가 신체 질량 그들의 야생 수확에 비해 25% 증가 대해 표시 하는 지역 토양. 우리의 결과 야생 남성 흰 꼬리 사슴 미시시피에서의 phenotypic 변이 더 인구 수준 유전학 보다 영양 품질 차이에 관련 된 것이 좋습니다.

서론

어머니는 임신과 수 유 하는 동안 경험 하는 환경 요인 그녀의 자손의 표현 형, 유전자 형1,2,3의 독립에 영향을 미칠 수 있습니다. 고품질 환경에 서식 하는 어머니는 효율 형 (작은 뿔과 신체 크기4) 하는 자손을 생산 수 있습니다 반면 가능성이 높은-품질 환경에 서식 하는 어머니는 럭셔리 형 (큰 몸과 뿔 크기4), 자손을 생산할 예정 이다. 따라서, 높은-품질 환경에서 유지는 자손의 생식 기회5,6,,78 에 직접 영향을 미칠 수 있습니다 그리고 어머니의 포함 피트 니스를 직접 영향 큰 phenotypic 특성을 가진 남성 자손을 생산 하는 어머니를 허용할 수 있습니다.

비록 영양 taxa (우수 스 있습니다, 우수 스 arctos9;에 걸쳐 직접 영향을 phenotypic 특성 Liasis fuscusI 10; Larus michahellis 11), 여러 가지 요인 미시시피, 미국에서에서 흰 꼬리 사슴 고기에 영향을 미칠 수 있습니다. 뿔과 몸 크기는 약 1 / 3 일부 집단에 대 한 더 큰12다른 사람에 비해. 이 변화는 사료 품질13,14;와 강한 상관 관계가 가장 큰 남성은 마 초의 최고의 품질을 가진 지역에서 발견 된다. 그러나, 미시시피에 흰 꼬리 사슴의 역사 복원 노력 수 있습니다 끌고있다 유전자 병목 또는 창시자 효과15,16을 또한 부분적으로 흰 꼬리 사슴 표현 형에서 관찰된 지역 변이의 일부를 설명할 수 있습니다.

우리는 우리가 야생 흰 꼬리 사슴, 남성 표현 형 유전자 인구 수준에 의해 제한 됩니다 여부를 평가 하는의 영양 품질을 제어 하는 데 사용 하는 프로토콜을 제공 합니다. 이 프로토콜 모성 효과 후행을 봐도 우리의 인구에 참석 했다. 우리의 제어 디자인 연구는 영양 제한3,17에 대 한 프록시 환경 변수를 사용 하 여 제한 됩니다 무료 이르기까지 인구에 게 우선 이다. 우리의 제어 디자인 또한 수 있습니다 다른 변수 같은 잠재력 만성 스트레스와 관련 된 사회적 상호 작용 모든 개인 비슷한 주택 및 농업 관행을 복종 된다 지속적인 개최 되. 또한, 영양 직접 영향을 미치는 다른 생활 역사 측면 때문에 복제에서 생존18,에 이르는19, 영양 제어 수 있습니다 포유류 생활 역사 측면에 영향을 주는 다른 변수를 평가 하는 조사. 비슷한 프로토콜 (예를 들어, 20,21) 북미 지역에 걸쳐 다른 ungulates 위한 생활사 측면에 관련 된 질문을 평가 하기 위해 설명 했습니다.

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프로토콜

윤리 성명: 미시시피 주립대학교(Mississippi State University) 동물실험위원회(Institutional Animal Care and Use Committee)는 프로토콜 04-068, 07-036, 10-033 및 13-034에 따라 모든 포획, 처리 및 표식 기술을 승인하였습니다.

1. 포획 지점 설정, 야생 흰꼬리사슴 고정 및 운송

  1. 사슴 관리 지원 프로그램(Deer Management Assistance Program)22에 등록된 공공 및 사유지를 확인하고, 미국 미시시피주의 3개 소스 지역 전역에 29개 이상의 포획 지점을 설정합니다.
    1. 지역 개체군에 존재하는 유전적 변이의 범위를 확보할 수 있도록 각 소스 지역 내에서 여러 포획 위치를 선정합니다.
    2. 참고: 여기서 소스 지역에는 미국 미시시피주 전체 육지 면적의 약 17%를 차지하며 농업이 주요 토지 이용 용도인 고품질 토양 지역으로 간주되는 델타(Delta) 지역이 포함됩니다23,24. 모든 연구 동물은 O. v. virginianus의 분포 범위 내인 이 지역에서 포획되었습니다25. 다른 지역으로는 미국 미시시피주 전체 육지 면적의 약 14%를 차지하며 중간 품질 토양 지역으로 간주되는 씬 로에스(Thin Loess) 지역(상부 및 하부 Thin Loess 통합)이 포함됩니다. Thin Loess 지역에서도 농업이 주요 토지 이용 용도이지만, 델타 지역만큼 일반적이지는 않습니다23,24. 모든 연구 동물은 O. v. virginianus의 분포 범위 내인 이 지역에서 포획되었습니다21. 마지막으로, 하부 해안 평원(Lower Coastal Plain, LCP) 토양 지역은 미시시피주의 약 22%를 차지하며 저품질 토양 지역으로 분류됩니다. LCP의 주요 토지 이용 용도는 소나무 목재 생산 및 가축 방목입니다23,24. 또한 LCP는 O. v. osceola의 지리적 분포와 겹치며, 6개의 소스 개체군 중 4개가 이 분포 지역의 21 km 이내에 위치했습니다25. 이 아종은 O. v. virginianus보다 크기가 작은 것으로 기술되었습니다26.

토양 기원 지역 지도; 델타, 하부 해안 평야, 얇은 황토; 지리 도표.
그림 1: 기원 집단. 미국 미시시피주에서 임신한 어미와 새끼 사슴을 포획한 지형적 지역. 이 그림은 참고문헌31을 수정하여 작성되었습니다. 여기를 클릭하여 이 그림의 확대 버전을 확인하십시오.

  1. 다음 기준을 충족하는 잠재적 포획 지점을 선정하십시오: 사슴의 이동에 유리한 서식지 특성, 접근을 위한 도로와의 근접성, 그리고 조사 지역 전반에 걸친 분포.
    참고: 포획 지점은 포획 기술자가 몸을 숨길 수 있는 곳이어야 합니다.
    1. 약 10 kg의 껍질을 벗긴 옥수수로 미끼 지점을 조성하여 사슴을 유인하고, 미끼 소비량과 동작 감지 카메라에 촬영된 사슴을 기반으로 사용 여부를 평가합니다. 5-7일 이내에 사슴이 미끼 지점에 나타나지 않으면 대체 지점으로 이동하십시오.
  2. 포획 시에는 은폐된 "스탠드"에 앉아 대기하십시오.
    1. 미끼 더미에서 바람 아래 방향으로 약 20 m 지점에 스탠드를 배치하되, 미끼로 다가오는 사슴이 포획 기술자의 냄새를 덜 맡을 수 있도록 주풍향을 고려하십시오.
      참고: 고지대 스탠드가 강력히 권장되며, 안전 하네스 착용이 필수적입니다. 스탠드는 상업적 공급처에 따라 여러 변형 모델이 있으며 사용법은 개인의 선호도에 따라 다릅니다. 예를 들어, 고정식 스탠드는 나무에 스트랩으로 고정된 접근용 사다리와 좌석을 포함합니다. 휴대용 클라이밍 스탠드는 포획 기술자가 직접 운반할 수 있어, 포획 지점에 도착한 후 특정 나무를 선택할 수 있으므로 이동성이 뛰어납니다. 휴대용 클라이밍 스탠드는 선택한 높이까지 가지가 없는 곧은 나무에서만 사용할 수 있습니다.
  3. 3 cc 무선 텔레메트리 다트가 장착된 다트건을 사용하여 teletamine HCl (4.4 mg/kg)과 xylazine HCl (2.2 mg/kg) 혼합액을 투여하십시오.
    1. 사슴의 전형적인 박명 활동 주기27에 맞춰 포획 일정을 계획하십시오. 각 포획 시도는 일몰 2-3 h 전에 시작합니다.
    2. 낮 시간 동안 사슴을 포획하지 못한 경우, 야간 투시경과 조준을 위한 레드 닷 레이저를 사용하여 일몰 후 2-3 h 동안 포획 활동을 계속하십시오.
    3. 사슴이 측면을 보이고 정지해 있을 때 발사하십시오.
      참고: 뒷다리 부위는 근육 조직이 풍부하고 심장 및 폐와 떨어져 있으므로 목표 지점으로 설정합니다.
    4. 다트가 투여된 대상 동물(암수 구분 없는 6개월령 새끼 또는 임신한 성체 암컷)이 완전히 부동화될 때까지 약 15 min 동안 기다린 후, 방향성 무선 텔레메트리 장비로 위치를 찾으십시오.
    5. 안구 반사(깜빡임)를 확인하여 개체가 진정되었는지 확인합니다. 그런 다음 안연고를 눈에 바르고 안대를 씌워 스트레스를 줄여주십시오.
      참고: 부동화의 결과로 체온 조절 능력이 상실됩니다.
    6. 회복 후 직장 온도계로 체온을 측정하십시오. 동물의 체온이 37.7 °C 미만인 경우 가열 담요로 체온을 높여주십시오. 동물의 체온이 40.0 °C 초과인 경우 아이스 팩으로 체온을 낮춰주십시오.
    7. 사슴을 군용 들것 위에 엎드린 자세(sternal position)로 눕히고, 포획 지점에서 밀폐형 트레일러로 운반하십시오.
    8. 사슴을 트레일러에 넣은 후, 0.125 mg/kg yohimbine HCl28을 투여하여 xylazine HCl의 효과를 역전시키십시오.
    9. 포획된 모든 사슴을 지정된 사육 시설(예: Mississippi State University Rusty Dawkins Memorial Deer Unit; MSU Deer Unit)로 운반하고, 출처 지역별로 분리하여 관리하십시오.

2. 연구 동물의 사육 시설 및 일반 사육 관리 방법

참고: MSU Deer Unit은 0.4에서 0.8 ha 크기의 펜 5개로 세분화되어 있습니다.

  1. 각 펜의 모든 면을 차광포로 덮어 펜 사이의 시각적 및 물리적 장벽으로 활용합니다. 차광포는 부상을 줄이는 데 도움이 되며 여름철에 그늘을 제공합니다.
  2. 데이터 수집 중 다트 투사 작업을 용이하게 하기 위해 각 펜의 한쪽 끝에 1-2개의 높은 박스 블라인드를 설치합니다.
  3. 사슴 간의 먹이 경쟁을 줄이기 위해 각 펜의 서로 다른 끝부분에 두 개의 트러프형 급이기를 배치합니다. 또한 각 펜에 급수조를 제공합니다.
  4. 사슴에게 고품질 식단(조단백질 20% 사슴 펠릿)을 ad libitum으로 제공합니다.
    참고: 여기서 펜 내에 추가로 제공된 사료에는 (Trifolium spp)와 페스큐(Festuca spp) 및 자생 풀과 잡초가 포함되었습니다.
  5. 펜 내에 가용 사료가 있는 경우, 각 제품 라벨에 기재된 혼합 비율에 따라 광엽 잡초와 풀을 제어하기 위한 제초제 혼합물을 사용하여 관리합니다.
    참고: 5.5개월 이상의 수컷을 수용하기 위해 교외 시설을 사용할 필요가 있을 것입니다. 이 시설들은 세 곳의 부지에 각각 0.7 ha 크기의 펜 두 개로 구성되었으며, MSU Deer Unit과 유사한 사육 방식으로 관리되었습니다.

미시시피주 카운티를 강조한 미국 주 지도; 지리적 분포도.
그림 2: 사육 시설 위치. 위성 시설과 미시시피 주립대학교(MSU) 사슴 유닛이 위치한 연구 지역. 음영 처리된 영역은 미국 미시시피주의 Oktibbeha (A), Noxubee (B), Attala (C), Scott (D), Copiah (E) 카운티를 나타냄. 이 그림은 참고문헌34에서 수정됨. 여기를 클릭하여 이 그림의 더 큰 버전을 확인하십시오.

3. 기생충 및 질병 제어

  1. 회충 기생충 감염 여부를 확인하기 위해 연구 동물을 모니터링하십시오 (Strongyloides spp.) 분변 부유법을 사용하여 기생충을 g당 충란 수(EPG)로 측정함.
    1. 기생충 수치가 높을 경우, 5월 한 달 동안 사료 22.7 kg당 펠렛형 구충제(유효 성분 fenbendazole) 약 0.77 kg의 비율로 투여하여 기생충을 제어하십시오.
    2. 초기 치료 후에도 기생충 수치가 높게 유지된다면, 이베르멕틴 주입제(5 mg/mL)를 사용하여 치료하십시오.29, 2 mL/0.45 kg의 비율로 혼합하고, 동물 체중 45.4 kg당 처리된 사료 0.45 kg의 비율로 동물에게 투여하십시오.
      참고: 가축 전염성 출혈성 질환은 흡혈 파리에 의해 전파되는 때때로 치명적인 바이러스성 질환입니다.Culicoides spp.여름과 가을철 동안에 실시합니다. 매개체의 유병률을 낮추기 위해, 7월 1일부터 10월 1일까지 주 2~3회 연구 시설에 살충제(5% 초저용량 살충제)를 처리하십시오. 공식 일몰 약 90분 전에 포거(fogger)를 사용하여 각 우리 내부와 시설 외곽 주변에 이 살충제를 살포하십시오. 기생충 및 질병을 제어하기 위한 선호 방법은 각 사육 시설마다 다릅니다. 동물의 건강과 안전을 보장하기 위해 모든 야생동물 사육 연구 시 반드시 수의사와 상의해야 합니다.

4. 데이터 수집

사슴 해부학 연구, 줄자로 다리 길이 측정, 현장 연구, 야생 동물 생물학.
그림 3: 신생 새끼 사슴의 데이터 수집. 미국 미시시피주 옥티베하 카운티에 위치한 미시시피 주립대학교 Rusty Dawkins Memorial Deer Unit에서 신생 새끼 사슴의 뒷발 길이를 측정하는 모습. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

  1. 분만기 동안 매일 사육 시설 내 새끼 사슴의 유무를 확인하십시오.
    1. 감염 가능성을 방지하기 위해 태그의 수컷 끝부분에 항생제를 도포한 이어 태거(ear tagger)를 사용하여 신생 새끼 사슴에게 중간 크기의 플라스틱 이어 태그를 부착해 개별 식별 표시를 하십시오. 이어 태그는 새끼 사슴 귀의 중앙 부근에 부착하십시오.
    2. 디지털 매달기 저울로 체중(0.01 kg 단위)을 측정하고, 뒷발 길이와 전체 몸길이(mm 단위)를 측정하십시오.
    3. 털 샘플을 채취하여 친자 확인을 위해 원격 분석 기관으로 보내십시오(재료 표 참고).
      참고: 친자 확인은 독자적인 비통계적 맞춤형 구조화 질의 언어(SQL) 데이터베이스 기반의 DNA를 사용하여 수행되었습니다. 쌍별 대립유전자 비교 시, 원격 친자 확인 기관은 테스트한 모든 로커스(loci)에서 각 부모로부터 공유된 대립유전자를 바탕으로 단 한 마리의 아비와 암컷 외의 모든 개체를 제외했을 때 친자 관계를 할당했습니다 (B. G. Cassidy, 개인 통신). 이 친자 확인 방법은 이전에 사육된 흰꼬리사슴을 대상으로 수행된 연구에서도 사용되었습니다30,31.
    4. 각 새끼 사슴에게 Clostridium perfringens C형 및 D형 톡소이드와 Clostridium perfringens C형 및 D형 항독소를 2 cc 피하 투여하고, 프로필렌 글리콜에 용해된 ivermectin (Mississippi State University Veterinarian School, Mississippi, USA) 0.3 cc/kg을 경구 투여하십시오.
  2. 데이터 수집을 위해 10월과 11월 중에 성체 수컷(≥1.5세)을 화학적으로 제압하십시오.
    1. 야생 동물 포획에 사용된 것과 동일한 teletamine HCl 및 xylazine HCl 조합을 사용하여 우리에 갇힌 성체 사슴를 제압하십시오(단계 1.4).
    2. 진정 과정 동안, 다트를 쏠 기술자를 높은 가림막이 설치된 우리의 끝으로 안내하십시오. 두 개의 가림막에 각각 한 명의 기술자를 배치하십시오.
    3. 기술자를 가림막으로 안내한 사람은 우리의 반대편 끝으로 다시 걸어가십시오.
      참고: 사슴들은 이 기술자들로부터 멀어져 기술자들이 각 사슴에게 윤리적인 각도로 사격할 수 있는 위치인 가림막 앞으로 이동하게 됩니다.
    4. 사슴이 측면을 향하고 정지해 있을 때 사격하십시오(섹션 1.4).
    5. 다트를 맞은 동물이 완전히 제압될 때까지 약 15분 정도 기다린 후 접근하십시오.
    6. 안구 반사(눈 깜빡임)를 확인하여 개체가 진정되었는지 확인하십시오. 스트레스를 줄이기 위해 눈에 안연고를 바르고 안대를 씌우십시오.
    7. 다트 사격자가 개별 사슴을 성공적으로 진정시킨 후, 사슴의 활력 징후를 모니터링하십시오.
      1. 직장 체온계를 사용하여 회복 후 체온을 평가하십시오. 동물의 체온이 37.7 °C 미만이면 가열 담요로 체온을 높여주십시오. 동물의 체온이 40.0 °C 초과이면 아이스팩으로 체온을 낮춰주십시오.
    8. 사슴을 군용 들것에 싣고, 다목적 작업 차량(UTV)을 통해 미리 정해진 데이터 수집 구역으로 운반하십시오.
    9. 운반 후, 출생 시 기록한 것과 동일한 형태 측정값을 기록하십시오(단계 4.1).
      1. 디지털 매달기 저울로 체중(0.01 kg 단위)을 측정하고, 뒷발 길이와 전체 몸길이(mm 단위)를 측정하십시오.
        참고: 개별 사슴마다 진정 과정에서 사용된 약물 조합에 다르게 반응하므로, 데이터 수집이 완료되기 전에 진정 상태에서 깨어나는 개체가 있다면 teletamine HCl 및 xylazine HCl 혼합액을 약 0.1-0.3 cc(개별 사슴의 체중에 따라 다름) 투여하십시오.
    10. 사슴을 데이터 수집 구역으로 운반한 후, 모든 사슴에게 크기에 적절한 양의 항생제, ivermectin, 클로스트리디움 백신 및 레프토스피라 백신을 투여하십시오(섹션 1 및 3 참고).
  3. 동물이 진정된 동안 뿔 측정 테이프를 사용하여 성체 수컷의 뿔을 세 군데 측정하십시오.
    1. 뿔을 제거하기 전에 내부 폭(주 가지 사이의 가장 넓은 거리), 기저 둘레(버(burr)와 G1 가지 사이에 위치한 가장 작은 직경) 및 주 가지 길이(뿔 기저부에서 주 가지 끝까지의 거리)를 측정하십시오.
    2. 왕복 톱을 사용하여 버(burr)에서 약 3 cm 위 지점에서 뿔을 제거하십시오. 3 cm 미만의 뿔은 제거하지 마십시오.

뿔 제거를 위해 전동 도구를 사용하는 야생동물 수의학 절차, 보존 방법.
그림 4: 성체 수컷의 데이터 수집. 사육 중인 성체 수컷 흰꼬리사슴에서 왕복 톱을 이용하여 뿔을 제거하는 과정. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

  1. 진정 상태의 개체로부터 모든 데이터 수집이 완료되면, 사슴을 적절한 우리에 넣고 0.125 mg/kg의 yohimbine HCl을 투여하십시오.28 또는 4.0 mg/kg의 tolazoline HCl32 xylazine HCl의 효과를 역전시키십시오. 진정 상태에서 벗어나 완전히 깨어날 때까지 대상자가 흉골 자세(sternal position)를 유지하는지 모니터링하십시오.
    참고: 합병증이 발생하여 동물을 안락사시켜야 하는 경우, 볼트 스터너를 이용한 뇌 탈구 및 경정맥 절단은 동물을 처치하는 윤리적인 안락사 방법입니다.
  2. 뿔의 크기 측정을 완료하기 위해 지정된 구역으로 뿔을 가져옵니다.
    1. 메인 빔에서 돌출된 각 개별 갈래(G1, G2, G3, 등.) 및 와이어를 이용한 추가적인 비정상 지점.
      참고: 반대편 주가지(main beam)에 대응하는 지점이 없거나 전형적인 뿔 세트의 정의와 일치하지 않는 지점들은 Boone and Crockett Club의 정의를 따릅니다.33.
    2. 와이어를 틴(tine)과 메인 빔(main beam)이 교차하는 지점에 감고, 해당 지점을 참조용으로 표시하십시오.
    3. 이 기준점부터 갈래 끝까지의 거리를 측정하고, 각 갈래에 대해 이 과정을 반복하십시오.
    4. G1과 G2 틴 사이의 가장 작은 지점(H2 둘레), G2와 G3 틴 사이의 가장 작은 지점(H3 둘레), 그리고 G4 틴이 있는 경우 G3와 G4 틴 사이의 가장 작은 지점(H4 둘레)을 확인하여 나머지 둘레 측정값을 수집하십시오.
    5. G4 갈래가 없는 경우, G3 갈래의 중간 지점부터 주 빔(main beam) 끝단까지의 거리를 측정하고, 중간 지점에서 H4 둘레를 측정하십시오.
    6. 뿔의 가지(tine) 수가 3개 미만인 경우, 둘레 측정 횟수를 4회 미만으로 합니다.
      참고: 예를 들어, 두 개의 일반적인 지점이 있는 메인 빔(main beam)의 경우 둘레 측정값은 세 개만 포함됩니다. 뿔의 크기를 계산하기 위해 다른 가이드라인(Safari Club International)을 사용할 수도 있으나, 유효한 비교를 위해서는 각 동물에 대해 일관된 방법을 사용해야 합니다.
    7. 모든 측정을 마친 후, Boone and Crockett의 총 비전형(gross nontypical) 점수와 유사한 방식으로 뿔 점수를 산출하십시오.33.
    8. 과학용 디지털 저울을 사용하여 뿔의 무게를 0.1g 단위까지 측정하고, 뿔의 길이가 3cm 미만인 1년생 동물의 경우 최소 임계 뿔 질량을 1g으로 지정합니다.
  3. 약 5.5개월령의 가두어 키운 치어를 성어와 동일한 방법(섹션 4.2)으로 화학적 고정시키고, 대형 플라스틱 이표(단계 4.1.1)를 사용하여 치어를 표지하십시오.
    1. 야생 사슴의 제압에 사용된 것과 동일한 약물 혼합 비율을 사용하여 사육 성체 사슴을 제압하십시오(섹션 1).
    2. 출생 시에 측정했던 것과 동일한 항목들을 측정하고(단계 4.1.2), 성체와 동일한 예방제를 투여하십시오(섹션 4.2).
      참고: 모든 데이터 수집이 완료된 후, 각 어린 수컷을 트레일러를 통해 무작위로 배정된 위성 시설로 운반하십시오.

5. 1세대 및 2세대 자손 생산

  1. 야생에서 포획된 생후 6개월 된 새끼 사슴과 야생 포획 모로부터 사육 시설에서 태어난 새끼들을 1세대 개체로 분류하십시오.
  2. 번식기 동안 수컷 2마리를 암컷 7~16마리와 함께 배치하여, 평균 번식 성비가 수컷 1마리당 암컷 8마리가 되도록 합니다.
    참고: 위성 시설의 번식용 수컷은 외형을 기준으로 선택하십시오. 가장 건강한 수컷(뿔과 체구가 가장 큰 개체)이 번식기 동안 수컷의 공격적인 성향으로 인한 부상 없이 번식기 전체에 걸쳐 암컷과 교미할 가능성이 가장 높기 때문입니다.
    1. 사슴이 동일한 유입 지역 출신의 다른 개체와만 교배하도록 제한하십시오 (예:Delta 수컷은 Delta 암컷과 교배하고, Thin Loess 수컷은 Thin Loess 암컷과 교배하며, LCP 수컷은 LCP 수컷과 교배합니다).
  3. 1세대 부모로부터 잉태된 사슴을 2세대 자손으로 분류하십시오. 이 개체들을 출생 시부터 사육하며, 부모와 동일한 고품질의 사료를 급여하십시오.
    참고: 암컷은 여러 해에 걸쳐 새끼를 낳을 수 있으나, 일반적으로 매년 다른 수컷과 교배합니다. 2세대 후손에 대해서도 1세대 및 야생 포획 개체와 동일한 데이터를 수집하십시오.

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결과

개인 나이, 영양 질, 그리고 유전학 남성 흰 꼬리 사슴 표현 형에 영향. 우리의 연구 우리가 영양 사슴의 품질 제어를 소모 했다 디자인과 비교 년 클래스 내에서 각 사슴의 나이 식별할 수 있었습니다. 제어 함으로써 영양 및 우리의 연구 설계와 나이, 우리 더 이해 여부 인구 수준 유전학 두 연구 인구에서 남성의 표현 형을 제한 했다 수 있었다. 향상 된 영양 3.5 세 남성 흰 꼬리 사슴 우리 세대 변수 (표 1;의 중요 한 효과 의해 대표 지역 각 소스에서에서에 모든 형태학 측정에 긍정적인 영향을 미쳤다 그림 5 및 6). 뿔 질량과 크기 하지 향상 된 영양 (그림 6), 뿔 크기 인구 수준 유전학에 의해 제한 되지 않습니다 제안의 2 세대 이후 3 소스 지역 마다 다 않았다. 몸 질량 크게 증가 첫 번째에서 두 번째 세대,...

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토론

우리의 프로토콜;와 관련 된 몇 가지 단계가 그러나,이 프로토콜 성공을 보장 하기 위해 수행 해야 하는 4 개의 중요 한 단계가 있다. 첫째, 야생 사슴의 캡처, 동안 단일 소스 (1.1.1 단계)의 지역에 걸쳐 여러 캡처 위치 되어야 합니다. 여러 개의 캡처 위치를 갖는 소스 영역과 관련 된 모든 유전 가변성 사슴 중에서 대표 될 것 이다 보장 합니다. 둘째, 사슴 유지 되어야 한다 분리 된 소스 지역별 사육 시즌 (1.4.9 및 5.2.1 단계). 동물 소스 구분 됩니다 보장 동안 사육 지역 제한 사슴 사육에만 다른 사슴 그들의 같은 소스에서. 정확한 나이 결심 (단계 4.1.1)에 대 한 허용 하 고 고유 하 게 식별 각 사슴 수 있는 중요 한 단계 또한 이다. 마지막으로, 영양 모든 인구 (단계 2.4)에 대 한 지속적인 개최 해야 합니다.

조임 흰 꼬리 사슴을 공부 하 여 평가 및 야생에서 다를 수 없는 몇 가지 변수를 제어할 수 있었습니다. 예를 들어 치아 교체 및 착...

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공개 사항

저자는 공개 없다.

감사의 글

우리 야생 동물 복원 법 (W-48-61)에 연방 원조에서 리소스를 사용 하 여 재정 지원에 대 한 야생 동물의 미시시피 부, 수 산업 및 공원 (MDWFP) 감사 합니다. 우리는 데이터 수집에서 MDWFP 생물학자를 W. 매킨리, A. Blaylock, A. 게리, 그리고 L. Wilf 그들의 광범위 한 참여에 대 한 감사합니다. 우리는 또한 시설 코디 네이 터로 터 커 미와 여러 대학원 학생 및 기술자 데이터를 수집 하는 그들의 도움에 대 한 감사 합니다. 이 원고는 미시시피 주립 대학 숲과 야생 동물 연구 센터의 기여 WFA427 있습니다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
Shelled Corn
Elevated Stand
Safety Harness
Ground Blind
Model 196 프로젝터Pneu-Dart, Pennsylvania, USA
3cc Radio-TelemetryDarts(Pneu-Dart, Pennsylvania, USA)다양한
크기 다트 (Pneu-Dart, Pennsylvania, USA)
텔레타민 HCl (Telazol, Fort Dodge Animal Health, Iowa, USA)
자일라진 HCl (West Texas Rx Pharmacy, Amarillo, Texas, USA)
Yhoimbine HCl
Tolazoline HCl
군사 스타일 Gurney
직장 온도계
그늘 천
20% 원유 단백질 사슴 펠릿 (Purina AntlerMax Professional High Energy Breeder 59UB, Purina, Missouri, USA)
트로프 스타일 피더
상업용 클로버 (Durana Clover, Pennington Seed Co., Georgia, USA)
커머셜 페스큐 (Max-Q Fescue, Pennington Seed Co., Georgia, USA)
담요
얼음 팩
넓은 잎 잡초 방제 (2, 4-DB Herbacide, Butyrac 200)
잔디 방제 (Poast Herbacide, BASF Co.)
펠릿 웜머세이프가드 주식회사, 활성 성분 fenbendazole
기생충 푸어온 트리트먼트 (Ivomec, Merial Co.)
살충제Riptide, McLaughlin Gormley King Co.) 
중형 및 대형 플라스틱 귀 태그 (Allflex, Texas, USA)
혈통DNA Solutions Animal Solutions Manager (DNA Solutions, Oklahoma, USA)
Digital Hanging Scale (Moultrie, 엡스코 인더스트리, Inc.) 
테이프 측정기
Clostridium Perfringens 타입 C 및 D 톡소이드 필수 3 (콜로라도 세럼 컴퍼니)
클로스트리듐 퍼프린젠스 타입 C 및 D 항독소 말 기원(Colorado Serum Co.)
프로필렌 글리콜
항생제(Nuflor, Schuering-Plough Animal Health Corp., New Jersey, USA)
이버멕틴 (Norbrook Labratories, LTD., Down, Northern Ireland, UK)
클로스티드리아 백신(Vision 7 with SPUR, Ivesco LLC, Iowa, USA)
렙토스피라증 백신 (Leptoferm-5, Pfizer, Inc., New York, USA)
운송
왕복 톱 (DEWALT, Maryland, USA)
과학적 디지털 스케일 (Global Industrail, Global Equipment Company Inc)
앤틀러 측정 테이프
포거
플라스틱 귀 태그 (Allflex, Texas, USA)Plastic
Ear Tagger(Allflex, Texas, USA)
의 이버멕틴용 트레일러

참고문헌

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