방법 논문

뿔과 긴 Cervid에 대 한 신체 성장에 환경 및 유전학의 상대적 효과 평가 하기 위한 프로토콜

DOI:

10.3791/56059

2017년 8월 8일

이 논문에서

요약

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Cervid 인구 가운데 phenotypic 차이 관련이 있을 수 있습니다 인구 수준 유전학 또는 영양; 분별 있는 야생에서 어렵습니다. 이 프로토콜은 우리가 영양 변형 삭제 되었다 제어 연구를 설계 하는 방법을 설명 합니다. 우리는 남성 흰 꼬리 사슴의 phenotypic 변이 유전학 보다 영양에 의해 더 제한 되었다 발견.

초록

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Cervid 형 두 가지 범주 중 하나에 배치 될 수 있습니다: 효율, 사치 스러운 형태학 성장, 및 큰 무기와 몸 크기의 성장을 촉진 럭셔리 생존을 승진 시키는. 같은 종족의 인구는 환경 조건에 따라 각 표현 형을 표시합니다. 남성 흰 꼬리 사슴 (Odocoileus virginianus)의 몸과 뿔 크기 미시시피, 미국에서에서 지형 지역 다릅니다 영양 품질에 지역 편차와 강한 상관 관계가 있지만, 기본 주식 및 이전 re-stocking 노력에서 인구 수준 유전학의 효과 무시 수 없습니다. 이 프로토콜은 우리가 나이 및 영양, 같은 표현 형에 영향을 주는 다른 요인 제어 됩니다 제어 연구를 설계 하는 방법을 설명 합니다. 우리는 미시시피, 미시시피 주립 대학 녹슨 도킨스 기념 사슴 단위를 미국에서에서 3 가지 지형 지역에서 야생 임신 암컷과 6 개월 마리의 가져왔다. 같은 지역에서 사슴 세대 반응과 모성 효과 평가 하기 위해 수 있도록 자손의 2 세대 생산 자란 했다. 모든 사슴 같은 높은-품질 (20% 조 단백질 사슴 펠 릿) 다이어트 광고 libitum먹었다. 우리는 유일 하 게 각 신생아를 표시 하 고 몸 질량, 뒷 발, 그리고 몸 전체 길이 기록. 각 연속적인가, 우리 개인 원격 사출을 통해 진정 하 고 동일한 morphometrics 플러스 성인의 뿔 샘플링. 우리는 모든 morphometrics 뿔 크기 (지역 변이 이상 존재)의 완전 한 보상 및 신체 질량 (일부 지역 변이의 증거) 2 세대에서 분명 부분 보상 2 세대에 첫 번째에서 크기가 증가 발견. 2 세대에서 우리의 가난한 품질 남성 뿔 크기에서 40% 증가 신체 질량 그들의 야생 수확에 비해 25% 증가 대해 표시 하는 지역 토양. 우리의 결과 야생 남성 흰 꼬리 사슴 미시시피에서의 phenotypic 변이 더 인구 수준 유전학 보다 영양 품질 차이에 관련 된 것이 좋습니다.

서론

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

어머니는 임신과 수 유 하는 동안 경험 하는 환경 요인 그녀의 자손의 표현 형, 유전자 형1,2,3의 독립에 영향을 미칠 수 있습니다. 고품질 환경에 서식 하는 어머니는 효율 형 (작은 뿔과 신체 크기4) 하는 자손을 생산 수 있습니다 반면 가능성이 높은-품질 환경에 서식 하는 어머니는 럭셔리 형 (큰 몸과 뿔 크기4), 자손을 생산할 예정 이다. 따라서, 높은-품질 환경에서 유지는 자손의 생식 기회5,6,,78 에 직접 영향을 미칠 수 있습니다 그리고 어머니의 포함 피트 니스를 직접 영향 큰 phenotypic 특성을 가진 남성 자손을 생산 하는 어머니를 허용할 수 있습니다.

비록 영양 taxa (우수 스 있습니다, 우수 스 arctos9;에 걸쳐 직접 영향을 phenotypic 특성 Liasis fuscusI 10; Larus michahellis 11), 여러 가지 요인 미시시피, 미국에서에서 흰 꼬리 사슴 고기에 영향을 미칠 수 있습니다. 뿔과 몸 크기는 약 1 / 3 일부 집단에 대 한 더 큰12다른 사람에 비해. 이 변화는 사료 품질13,14;와 강한 상관 관계가 가장 큰 남성은 마 초의 최고의 품질을 가진 지역에서 발견 된다. 그러나, 미시시피에 흰 꼬리 사슴의 역사 복원 노력 수 있습니다 끌고있다 유전자 병목 또는 창시자 효과15,16을 또한 부분적으로 흰 꼬리 사슴 표현 형에서 관찰된 지역 변이의 일부를 설명할 수 있습니다.

우리는 우리가 야생 흰 꼬리 사슴, 남성 표현 형 유전자 인구 수준에 의해 제한 됩니다 여부를 평가 하는의 영양 품질을 제어 하는 데 사용 하는 프로토콜을 제공 합니다. 이 프로토콜 모성 효과 후행을 봐도 우리의 인구에 참석 했다. 우리의 제어 디자인 연구는 영양 제한3,17에 대 한 프록시 환경 변수를 사용 하 여 제한 됩니다 무료 이르기까지 인구에 게 우선 이다. 우리의 제어 디자인 또한 수 있습니다 다른 변수 같은 잠재력 만성 스트레스와 관련 된 사회적 상호 작용 모든 개인 비슷한 주택 및 농업 관행을 복종 된다 지속적인 개최 되. 또한, 영양 직접 영향을 미치는 다른 생활 역사 측면 때문에 복제에서 생존18,에 이르는19, 영양 제어 수 있습니다 포유류 생활 역사 측면에 영향을 주는 다른 변수를 평가 하는 조사. 비슷한 프로토콜 (예를 들어, 20,21) 북미 지역에 걸쳐 다른 ungulates 위한 생활사 측면에 관련 된 질문을 평가 하기 위해 설명 했습니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

프로토콜

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

윤리 선언문: 미시시피 주립 대학교 기관 동물 관리 및 사용 위원회는 프로토콜 04-068, 07-036, 10-033 및 13-034에 따라 모든 포획, 취급 및 표시 기술을 승인했습니다.

1. 포획 장소 설정, 야생 흰꼬리사슴 이동 불가 및 수송

  1. 사슴 관리 지원 프로그램22에 등록된 공공 및 사유 재산을 식별하고 미국 미시시피의 3개 소스 지역에 걸쳐 ≥29개의 포획 장소를 설정합니다.
    1. 각 소스 지역 내에서 여러 포획 위치를 식별하여 지역 개체군에 존재하는 유전적 변이의 범위를 포획합니다.
    2. 참고: 여기서 소스 지역에는 미국 미시시피 주 전체 토지 면적의 약 17%를 차지하는 삼각주가 포함되며, 농업을 주요 토지 이용으로 하는 고품질 토양 지역으로 간주됩니다23,24. 모든 연구 동물은 O. v. virginianus25의 분포 내에서 이 지역에서 포획되었습니다. 다른 지역으로는 미국 미시시피 주 전체 토지 면적의 거의 14%를 차지하는 Thin Loess 지역(상부 및 하부 Thin Loess 포함)이 있으며 중간 품질의 토양 지역으로 간주됩니다. 농업은 또한 Delta23,24만큼 널리 퍼져 있지는 않지만 Thin Loess 지역의 주요 토지 이용입니다. 모든 연구 동물은 O. v. virginianus21의 분포 내에서 이 지역에서 포획되었습니다. 마지막으로, LCP(Lower Coastal Plain) 토양 지역은 미시시피의 거의 22%를 차지하며 품질이 낮은 토양 지역으로 분류됩니다. LCP의 주요 토지 용도는 소나무 목재 생산 및 가축 방목입니다23,24. LCP는 또한 O. v. osceola의 지리적 분포와 겹칩니다. 6개의 소스 개체군 중 4개는 이 분포에서 21km 이내에 있었습니다25. 이 아종은 O. v. virginianus26보다 작은 것으로 설명되었습니다.

figure-protocol-1
그림 1: 소스 모집단. 미국 미시시피주에서 임신한 댐과 새끼 사슴이 잡힌 지형학적 지역. 이 그림은 reference31에서 수정되었습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

  1. 다음 기준을 충족하는 잠재적 포획 장소를 선택하십시오. 사슴의 이동에 도움이 되는 서식지 특성, 접근을 위한 도로와의 근접성 및 연구 지역 전체에 걸친 분포.
    참고: 포획 현장은 포획 기술자의 은폐를 허용해야 합니다.
    1. 사슴이 방문하도록 유인하기 위해 약 10kg의 껍질을 벗긴 옥수수가 있는 미끼 사이트와 움직임에 민감한 카메라로 촬영한 사슴을 기반으로 사용을 평가합니다. 사슴이 5-7일 이내에 미끼 사이트에 참석하지 않으면 다른 장소로 이전합니다.
  2. 포획 이벤트 중에는 숨겨진 "스탠드"에 앉으십시오.
    1. 미끼 더미에서 바람이 부는 방향으로 약 20m 떨어진 곳에 서서 미끼에 접근하는 사슴이 포획 기술자의 냄새를 맡을 수 없도록 우세한 바람 방향을 고려하십시오.
      알림: 높은 스탠드를 강력히 선호하며 안전 장치가 필요합니다. 다양한 상업적 출처를 가진 스탠드에는 여러 가지 변형이 있으며 사용은 개인 취향에 따라 다릅니다. 예를 들어, 잠금 스탠드에는 끈이 있는 나무에 부착된 접근을 위한 사다리가 있는 좌석이 포함됩니다. 휴대용 등반 스탠드는 포획 기술자가 휴대할 수 있으며 기술자가 포획 장소에 도착하면 특정 나무를 선택할 수 있으므로 이동성을 높일 수 있습니다. 휴대용 등반 스탠드는 선택한 높이까지 가지가 없는 곧은 나무에서 사용하도록 제한됩니다.
  3. 3cc 무선 텔레메트리 다트와 결합된 다트 건을 사용하여 텔레타민 HCl(4.4mg/kg)과 자일라진 HCl(2.2mg/kg)의 혼합물을 전달합니다.
    1. deer27의 일반적인 crepuscular 활동 주기와 일치하도록 캡처 작업을 예약합니다. 각 점령 시도는 일몰 2-3시간 전에 시작하십시오.
    2. 낮 시간에 사슴을 포착하지 못한 경우 야간 투시경과 레드 도트 레이저를 사용하여 일몰 후 2-3시간 동안 촬영 이벤트를 계속 캡처합니다.
    3. 사슴이 옆구리에 있고 정지해 있을 때 사슴을 쏘세요.
      참고: 사슴의 뒷부분은 상당한 근육 조직을 가지고 있고 심장과 폐에서 멀리 떨어져 있기 때문에 표적이 됩니다.
    4. 다트된 표적 동물(암수 또는 임신한 성인 암컷의 6개월 된 새끼 사슴)이 완전히 움직일 수 없을 때까지 약 15분 정도 기다렸다가 지향성 무선 원격 측정 장비로 위치를 파악합니다.
    5. 눈 반사 신경(깜박임)을 확인하여 개인이 진정되었는지 확인합니다. 그런 다음 눈과 눈을 가린 사슴에 안과 연고를 바르면 스트레스를 줄일 수 있습니다.
      참고: 체온 조절 상실은 고정의 결과입니다.
    6. 직장 체온계를 사용하여 회복 후 체온을 평가합니다. 사슴의 체온이 37.7 °C 미만인 경우 따뜻한 담요로 사슴을 따뜻하게 해주세요.사슴의 체온이 40.0 °C 이상인 경우 얼음 팩으로 사슴을 식히십시오.
    7. 사슴을 군용 거니에 흉골 위치에 놓고 포획 위치에서 밀폐된 트레일러로 사슴을 운반합니다.
    8. 사슴을 트레일러에 넣은 후 0.125mg/kg yohimbine HCl28로 자일라진 HCl의 효과를 역전시킵니다.
    9. 포획된 모든 사슴을 원하는 포획 시설(예: Mississippi State University Rusty Dawkins Memorial Deer Unit; MSU Deer Unit)을 사용하여 소스 지역별로 분리하여 보관합니다.

2. 연구 동물의 사육 시설 및 일반 사육 관행

참고: MSU 사슴 유닛은 5개의 0.4-0.8ha 펜으로 세분됩니다.

  1. 각 펜의 모든 면을 차양 천으로 덮어 펜 사이의 시각적, 물리적 장벽 역할을 합니다. 차양 천은 부상을 줄이는 데 도움이 되며 여름철에 그늘을 제공합니다.
  2. 데이터 수집 중 다팅 이벤트를 용이하게 하기 위해 각 펜의 한쪽 끝에 1-2개의 높은 박스 블라인드를 배치합니다.
  3. 사슴 사이의 먹이 경쟁을 줄이기 위해 각 펜의 별도 끝에 두 개의 물마루 스타일 모이통을 놓습니다. 또한 각 펜에 물통을 제공하십시오.
  4. 사슴에게 고품질 식단(조단백질 사슴 알갱이 20%)을 자유자재로 제공하십시오.
    참고: 여기에서 우리 내에서 추가로 사용할 수 있는 마초에는 자원 잔디 및 forbs와 함께 (Trifolium spp) 및 fescue (Festuca spp)가 포함됩니다.
  5. 존재하는 경우 각 라벨에 있는 혼합 비율을 사용하여 활엽수 잡초와 풀을 방제하기 위해 제초제를 혼합하여 우리 내에서 사용 가능한 사료를 유지하십시오.
    참고: ≥5.5개월 된 남자를 수용하기 위해 캠퍼스 밖 시설을 사용하는 것이 필요할 수 있습니다. 이 시설은 MSU 사슴 부대와 유사한 축산 관행을 가진 3개의 부지 각각에 2개의 0.7ha 펜으로 구성되었습니다.

figure-protocol-2
그림 2: 캡티브 시설 위치. 위성 시설과 미시시피 주립 대학(MSU) 사슴 부대가 위치한 연구 지역. 음영 처리된 영역은 미국 미시시피주 카운티인 Oktibbeha(A), Noxubee(B), Attala(C), Scott(D) 및 Copiah(E)를 나타냅니다. 이 그림은 reference34에서 수정되었습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

3. 기생충 및 질병 통제

  1. 그램당 난자(EPG)로 측정된 기생충과 함께 분변 부유를 사용하여 회충 기생충(Strongyloides spp)에 대한 연구 동물을 모니터링합니다.
    1. 높은 수준으로 존재하는 경우, 5월 한 달 동안 사료 22.7kg당 약 0.77kg의 펠릿 구충제(활성 성분 fenbendazole)를 투여하여 기생충을 방제합니다.
    2. 초기 처리 후에도 기생충 수치가 높게 유지되면 이버멕틴 푸어온 처리제(5mg/mL)29를 2mL/0.45kg의 비율로 혼합하고 동물 질량 45.4kg당 처리된 사료 0.45kg의 비율로 동물에게 투여합니다.
      참고: 유행성 출혈성 질병은 여름과 가을에 무는 갯지렁이(Culicoides spp)에 의해 전파되는 치명적인 바이러스성 질병입니다. 존재하는 경우 7 월 1 일부터 10 월 1 일까지 일주일에 2-3 회 살충제 (5 % 초저용량 살충제)로 연구 시설을 처리하여 연구 동물의 매개체 유병률을 줄이십시오. fogger를 통해 공식 일몰 약 90분 전에 각 펜과 시설 주변에 이 살충제를 살포합니다. 기생충 및 질병을 통제하기 위해 선호되는 방법은 각 포획 시설에 고유합니다. 동물의 건강과 안전을 보장하기 위해 포획 야생 동물 연구 중에 수의사와 상담해야 합니다.

4. 데이터 수집

figure-protocol-3
그림 3: 갓 태어난 새끼 사슴의 데이터 수집. 미국 미시시피주 옥티베하 카운티에 있는 미시시피 주립대학교 러스티 도킨스 기념 사슴 부대에서 새로 태어난 새끼 사슴의 뒷발 길이를 측정합니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

  1. 분만 시즌 동안 새끼 사슴을 찾기 위해 매일 사육 시설을 수색하십시오.
    1. 잠재적인 감염을 방지하기 위해 태그의 수컷 끝에 항생제가 도포된 귀 태그를 사용하여 중간 플라스틱 귀 태그로 신생아 새끼 사슴을 고유하게 표시합니다. 새끼 사슴의 귀 중앙에 귀표를 놓습니다.
    2. 디지털 걸이 저울로 신체 질량(가장 가까운 0.01kg)을 측정하고 뒷발 길이와 총 몸 길이(가장 가까운 mm)를 측정합니다.
    3. 모발 샘플을 수집하여 혈통 지정을 위해 원격 사이트로 보냅니다(재료 표 참조).
      참고: 혈통 할당은 독점적이고 비통계적인 맞춤형 구조화된 쿼리 언어 데이터베이스를 기반으로 하는 DNA를 사용하여 이루어졌습니다. 쌍별 대립유전자 비교에서, 원격 혈통 할당 부위는 테스트된 모든 유전자좌에서 각 부모의 공유 대립유전자를 기반으로 하나의 씨수말과 하나의 댐을 제외한 모든 유전자를 제외했을 때 혈통을 할당했습니다(B. G. Cassidy, personal communication). 이 친자 관계 지정 방법은 포획된 흰꼬리사슴에 대해 수행된 이전 연구에서도 사용되었습니다30,31.
    4. Clostridium perfringens type C 및 D 톡소이드 및 Clostridium perfringens type C 및 D 항독소 2cc를 피하투여하고 프로필렌 글리콜(미국 미시시피주 미시시피 주립 대학 수의과 대학)에 함유된 이버멕틴 0.3cc/kg을 각 새끼 사슴에게 경구 투여합니다.
  2. 데이터 수집을 위해 10월과 11월에 성인 남성(≥1.5세)을 화학적으로 고정시킵니다.
    1. 야생 동물을 포획하는 데 사용되는 것과 동일한 텔레타민 HCl과 자일라진 HCl의 동일한 조합을 사용하여 우리에 갇힌 성인을 고정시킵니다(1.4단계).
    2. 진정 행사가 진행되는 동안, 높은 블라인드가 있는 펜 끝까지 달려갈 기술자를 데려가십시오. 두 블라인드 각각에 한 명의 기술자가 있습니다.
    3. 기술자를 블라인드에게 데려간 사람이 펜의 반대쪽 끝으로 다시 걸어가도록 합니다.
      참고: 사슴은 이 기술자에게서 멀어지고 기술자가 각 사슴에게 윤리적인 사격을 가할 수 있는 위치에 있는 블라인드 앞에 위치합니다.
    4. 사슴이 옆구리가 넓고 정지해 있을 때 사슴을 쏘십시오(섹션 1.4).
    5. 다트한 동물이 완전히 움직일 수 없을 때까지 약 15분 정도 기다렸다가 접근하십시오.
    6. 눈 반사 신경(깜박임)을 확인하여 개인이 진정되었는지 확인합니다. 눈과 눈을 가린 사슴에 안과 연고를 바르면 스트레스를 줄일 수 있습니다.
    7. 다터가 개별 사슴을 성공적으로 진정시킨 후 사슴의 생명 속도를 모니터링합니다.
      1. 직장 체온계를 사용하여 회복 후 체온을 평가합니다. 사슴의 체온이 37.7 °C 미만인 경우 따뜻한 담요로 사슴을 따뜻하게 해주세요.사슴의 체온이 40.0 °C 이상인 경우 얼음 팩으로 사슴을 식히십시오.
    8. 사슴을 군용 거니에 싣고 다용도 작업 차량을 통해 미리 지정된 데이터 수집 구역으로 운반합니다.
    9. 일단 운송되면 출생 시 기록된 것과 동일한 형태 측정 값을 기록합니다(4.1단계).
      1. 디지털 교수형 체중계로 신체 질량(가장 가까운 0.01kg)을 측정하고 뒷발 길이와 총 몸 길이(가장 가까운 mm)를 측정합니다.
        참고: 개별 사슴은 진정 행사 중에 사용된 약물의 조합에 다르게 반응하므로 데이터 수집이 완료되기 전에 개체가 진정제에서 나올 경우 약 0.1-0.3cc의 텔레타민 HCl과 자일라진 HCl 혼합물(개별 사슴의 체질량에 따라 다름)을 투여합니다.
    10. 모든 사슴을 데이터 수집 구역으로 이송한 후 적절한 양의 항생제, 이버멕틴, 클로스티드리아 백신 및 렙토스피라증 백신을 투여합니다(섹션 1 및 3 참조).
  3. 동물이 진정되는 동안 뿔 측정 테이프를 사용하여 성인 수컷의 뿔을 세 번 측정합니다.
    1. 뿔을 제거하기 전에 뿔의 내부 퍼짐(메인 빔 사이의 가장 넓은 거리), 기저 둘레(버와 G1 타인 사이에 위치한 가장 작은 직경) 및 메인 빔 길이(뿔 바닥에서 메인 빔 끝까지의 거리)를 측정합니다.
    2. 왕복 톱을 사용하여 버 위 약 3cm 높이의 뿔을 제거합니다. 3cm 미만의 뿔을 제거하지 마십시오.

figure-protocol-4
그림 4: 성인 남성의 데이터 수집. 포획 된 성인 수컷 흰 꼬리 사슴의 왕복 톱을 통한 뿔 제거. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

  1. 진정제를 투여한 개인으로부터 모든 데이터를 수집한 후 사슴을 적절한 우리에 넣고 0.125mg/kg yohimbine HCl28 또는 4.0mg/kg tolazoline HCl32를 투여하여 자일라진 HCl의 효과를 역전시킵니다. 개인이 진정제에서 벗어나 완전히 깨어날 때까지 흉골 자세를 유지하도록 개인을 모니터링합니다.
    참고: 합병증이 발생하여 동물을 안락사시켜야 하는 경우, 볼트 스터너를 통한 뇌 탈구와 경정맥 절단에 의한 안락사는 동물을 파견하는 윤리적 수단입니다.
  2. 뿔을 지정된 장소로 가져와 뿔 크기 측정을 마칩니다.
    1. 메인 빔(G1, G2, G3 )에서 돌출된 각 개별 타인과 와이어를 사용하여 추가 비정상 지점을 측정합니다.
      참고: 반대쪽 메인 빔에 일치하는 해당 요소가 없거나 일반적인 뿔 세트의 정의와 일치하지 않는 점은 Boone and Crockett Club33에 의해 정의됩니다.
    2. 타인이 메인 빔과 교차하는 지점 주위에 와이어를 감고 참조를 위해 해당 지점을 표시합니다.
    3. 이 기준점에서 타인 끝까지 측정하고 각 타인에 대해 반복합니다.
    4. G1 및 G2 타인(H2 둘레), G2 및 G3 타인(H3 둘레), G3 및 G4 타인(존재하는 경우) 사이의 가장 작은 지점(H4 둘레)을 식별하여 나머지 둘레 측정값을 수집합니다.
    5. G4 타인이 없는 경우 G3 타인의 중간점과 메인 빔의 끝 사이의 거리를 측정하고 중간 지점에서 H4 둘레를 측정합니다.
    6. 뿔에 갈래가 3개 미만인 경우 둘레가 4개 미만으로 측정됩니다.
      참고: 예를 들어, 두 개의 일반적인 점이 있는 메인 빔에는 세 개의 원주 측정만 포함됩니다. 개인은 뿔 크기를 계산하기 위해 다른 지침(Safari Club International)을 사용할 수 있습니다. 그러나 유효한 비교를 위해 각 동물에 대해 일관된 방법을 사용해야 합니다.
    7. 모든 측정을 수행한 후 총 비정형 Boone and Crockett score33과 유사한 뿔 점수를 계산합니다.
    8. 과학용 디지털 저울을 사용하여 뿔의 무게를 가장 가까운 0.1g으로 측정하고 뿔이 3cm 미만인 1년생 동물의 경우 최소 임계 뿔 질량 1g을 할당합니다.
  3. 성인과 동일한 방법(섹션 4.2)을 사용하여 약 5.5개월령에 우리에 갇힌 청소년을 화학적으로 고정시키고 큰 플라스틱 귀표로 청소년을 표시합니다(단계 4.1.1).
    1. 포획된 성인을 움직이지 못하게 하는 데 사용되는 것과 동일한 약물 혼합 비율을 사용하여 야생 사슴을 움직이지 못하게 하는 데 사용됩니다(섹션 1).
    2. 출생 시 수집된 것과 동일한 측정값을 수집하고(4.1.2단계) 성인과 동일한 예방약을 투여합니다(섹션 4.2).
      참고: 모든 데이터가 수집된 후 트레일러를 통해 각 청소년 수컷을 무작위로 할당된 위성 시설로 이송합니다.

5. 1세대 및 2세대 자손 생산

  1. 야생에서 포획된 어미에게서 포획 시설에서 태어난 6개월 된 자연산 새끼 사슴과 자손을 1세대 개체로 분류합니다.
  2. 번식기 동안 2 마리의 수컷과 7-16 마리의 암컷을 배치하여 평균 번식 성비는 수컷 1 마리 대 암컷 8 마리입니다.
    참고: 가장 건강한 수컷(가장 큰 뿔과 몸 크기)이 번식기 동안 수컷의 공격적인 성격으로 인해 부상을 입지 않고 번식기 내내 암컷에게 서비스를 제공할 가능성이 가장 높기 때문에 신체적 외모를 기준으로 위성 시설에서 번식 수컷을 선택합니다.
    1. 사슴은 동일한 출처 지역의 다른 개체와만 번식할 수 있습니다(: 델타 수컷은 델타 암컷, 얇은 황토 수컷은 얇은 황토 암컷, LCP 수컷은 LCP 수컷을 번식
    2. ).
  3. 1세대 부모가 잉태한 사슴을 2세대 자손으로 분류합니다. 이 개체들을 태어날 때부터 포로 상태로 키우고 부모와 동일한 고품질 식단을 먹이십시오.
    참고: 암컷은 여러 해에 걸쳐 자손을 낳을 수 있지만 일반적으로 매년 다른 씨수말을 낳습니다. 2세대 자손에서 1세대 및 야생 포획 개체에서 수집된 것과 동일한 데이터를 수집합니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

결과

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

개인 나이, 영양 질, 그리고 유전학 남성 흰 꼬리 사슴 표현 형에 영향. 우리의 연구 우리가 영양 사슴의 품질 제어를 소모 했다 디자인과 비교 년 클래스 내에서 각 사슴의 나이 식별할 수 있었습니다. 제어 함으로써 영양 및 우리의 연구 설계와 나이, 우리 더 이해 여부 인구 수준 유전학 두 연구 인구에서 남성의 표현 형을 제한 했다 수 있었다. 향상 된 영양 3.5 세 남성 흰 꼬리 사슴 우리 세대 변수 (표 1;의 중요 한 효과 의해 대표 지역 각 소스에서에서에 모든 형태학 측정에 긍정적인 영향을 미쳤다 그림 5 6). 뿔 질량과 크기 하지 향상 된 영양 (그림 6), 뿔 크기 인구 수준 유전학에 의해 제한 되지 않습니다 제안의 2 세대 이후 3 소스 지역 마다 다 않았다. 몸 질량 크게 증가 첫 번째에서 두 번째 세대,...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

토론

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

우리의 프로토콜;와 관련 된 몇 가지 단계가 그러나,이 프로토콜 성공을 보장 하기 위해 수행 해야 하는 4 개의 중요 한 단계가 있다. 첫째, 야생 사슴의 캡처, 동안 단일 소스 (1.1.1 단계)의 지역에 걸쳐 여러 캡처 위치 되어야 합니다. 여러 개의 캡처 위치를 갖는 소스 영역과 관련 된 모든 유전 가변성 사슴 중에서 대표 될 것 이다 보장 합니다. 둘째, 사슴 유지 되어야 한다 분리 된 소스 지역별 사육 시즌 (1.4.9 및 5.2.1 단계). 동물 소스 구분 됩니다 보장 동안 사육 지역 제한 사슴 사육에만 다른 사슴 그들의 같은 소스에서. 정확한 나이 결심 (단계 4.1.1)에 대 한 허용 하 고 고유 하 게 식별 각 사슴 수 있는 중요 한 단계 또한 이다. 마지막으로, 영양 모든 인구 (단계 2.4)에 대 한 지속적인 개최 해야 합니다.

조임 흰 꼬리 사슴을 공부 하 여 평가 및 야생에서 다를 수 없는 몇 가지 변수를 제어할 수 있었습니다. 예를 들어 치아 교체 및 착...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

공개 사항

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

저자는 공개 없다.

감사의 글

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

우리 야생 동물 복원 법 (W-48-61)에 연방 원조에서 리소스를 사용 하 여 재정 지원에 대 한 야생 동물의 미시시피 부, 수 산업 및 공원 (MDWFP) 감사 합니다. 우리는 데이터 수집에서 MDWFP 생물학자를 W. 매킨리, A. Blaylock, A. 게리, 그리고 L. Wilf 그들의 광범위 한 참여에 대 한 감사합니다. 우리는 또한 시설 코디 네이 터로 터 커 미와 여러 대학원 학생 및 기술자 데이터를 수집 하는 그들의 도움에 대 한 감사 합니다. 이 원고는 미시시피 주립 대학 숲과 야생 동물 연구 센터의 기여 WFA427 있습니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
Shelled Corn
Elevated Stand
Safety Harness
Ground Blind
Model 196 프로젝터Pneu-Dart, Pennsylvania, USA
3cc Radio-TelemetryDarts(Pneu-Dart, Pennsylvania, USA)다양한
크기 다트 (Pneu-Dart, Pennsylvania, USA)
텔레타민 HCl (Telazol, Fort Dodge Animal Health, Iowa, USA)
자일라진 HCl (West Texas Rx Pharmacy, Amarillo, Texas, USA)
Yhoimbine HCl
Tolazoline HCl
군사 스타일 Gurney
직장 온도계
그늘 천
20% 원유 단백질 사슴 펠릿 (Purina AntlerMax Professional High Energy Breeder 59UB, Purina, Missouri, USA)
트로프 스타일 피더
상업용 클로버 (Durana Clover, Pennington Seed Co., Georgia, USA)
커머셜 페스큐 (Max-Q Fescue, Pennington Seed Co., Georgia, USA)
담요
얼음 팩
넓은 잎 잡초 방제 (2, 4-DB Herbacide, Butyrac 200)
잔디 방제 (Poast Herbacide, BASF Co.)
펠릿 웜머세이프가드 주식회사, 활성 성분 fenbendazole
기생충 푸어온 트리트먼트 (Ivomec, Merial Co.)
살충제Riptide, McLaughlin Gormley King Co.) 
중형 및 대형 플라스틱 귀 태그 (Allflex, Texas, USA)
혈통DNA Solutions Animal Solutions Manager (DNA Solutions, Oklahoma, USA)
Digital Hanging Scale (Moultrie, 엡스코 인더스트리, Inc.) 
테이프 측정기
Clostridium Perfringens 타입 C 및 D 톡소이드 필수 3 (콜로라도 세럼 컴퍼니)
클로스트리듐 퍼프린젠스 타입 C 및 D 항독소 말 기원(Colorado Serum Co.)
프로필렌 글리콜
항생제(Nuflor, Schuering-Plough Animal Health Corp., New Jersey, USA)
이버멕틴 (Norbrook Labratories, LTD., Down, Northern Ireland, UK)
클로스티드리아 백신(Vision 7 with SPUR, Ivesco LLC, Iowa, USA)
렙토스피라증 백신 (Leptoferm-5, Pfizer, Inc., New York, USA)
운송
왕복 톱 (DEWALT, Maryland, USA)
과학적 디지털 스케일 (Global Industrail, Global Equipment Company Inc)
앤틀러 측정 테이프
포거
플라스틱 귀 태그 (Allflex, Texas, USA)Plastic
Ear Tagger(Allflex, Texas, USA)
의 이버멕틴용 트레일러

참고문헌

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Bernardo, J. Maternal effects in animal ecology. Amer Zool. 36 (2), 83-105 (1996).
  2. Forchhammer, M. C., Clutton-Brock, T. H., Lindstrom, J., Albon, S. D. Climate andpopulation density induce long-term cohort variation in a northern ungulate. J Anim Ecol. 70 (5), 721-729 (2001).
  3. Freeman, E. D., Larsen, R. T., Clegg, K., McMillan, B. R. Long-lasting effects of maternal condition in free-ranging cervids. PLoS ONE. 8 (3), 5873(2013).
  4. Geist, V. Environmentally guided phenotype plasticity in mammals and some of its consequences to theoretical and applied biology. Alternative life-history styles of animals. Burton, M. N. , Kluwer Academic Publishers. Dordrect. 153-176 (1989).
  5. Clutton-Brock, T. H., Guinness, F. E., Albon, S. D. Reproductive success in stags. Red Deer: Behavior and ecology of two sexes. , The University of Chicago Press. Chicago. 151-152 (1982).
  6. Coltman, D. W., Festa-Bianchet, M., Jorgenson, J. T., Strobeck, C. Age-dependent sexual selection in bighorn rams. Proc R Soc Lond B Biol Sci. 269 (1487), 165-172 (2002).
  7. Festa-Bianchet, M. The cost of trying: Weak interspecific correlations among life-history components in male ungulates. Can J Zool. 90 (9), 1072-1085 (2012).
  8. Kie, J. G., et al. Reproduction in North American elk Cervus elaphus.: Paternity of calves sired by males of mixed age classes. Wildlife Biol. 19 (3), 302-310 (2013).
  9. Welch, C. A., Keay, J., Kendall, K. C., Robbins, C. T. Constraints on frugivory by bears. Ecology. 78 (4), 1105-1119 (1997).
  10. Madsen, T., Shine, R. Silver spoons and snake body sizes: Prey availability early in life influences long-term growth rates of free-ranging pythons. J Anim Ecol. 69 (6), 952-958 (2000).
  11. Saino, N., Romano, M., Rubolini, D., Caprioli, M., Ambrosini, R., Fasola, M. Food supplementation affects egg albumen content and body size asymmetry among yellow-legged gull siblings. Behav Ecol Sociobiol. 64 (11), 1813-1821 (2010).
  12. Strickland, B. K., Demarais, S. Age and regional differences in antlers and mass of white-tailed deer. J Wildl Manage. 64 (4), 903-911 (2000).
  13. Jones, P. D., Demarais, S., Strickland, B. K., Edwards, S. L. Soil region effects on white-tailed deer forage protein content. Southeast Nat. 7 (4), 595-606 (2008).
  14. Strickland, B. K., Demarais, S. Influence of landscape composition and structure on antler size of white-tailed deer. J Wildl Manage. 72 (5), 1101-1108 (2008).
  15. DeYoung, R. W., Demarais, S., Honeycutt, R. L., Rooney, A. P., Gonzales, R. A., Gee, K. L. Genetic consequences of white-tailed deer (Odocoileus virginianus) restoration in Mississippi. Mol Ecol. 12 (12), 3237-3252 (2003).
  16. Sumners, J. A., et al. Variable breeding dates among populations of white-tailed deer in the southern United States: The legacy of restocking. J Wildl Manage. 79 (8), 1213-1225 (2015).
  17. Mech, D. L., Nelson, M. E., McRoberts, R. E. Effects of maternal and grandmaternal nutrition on deer mass and vulnerability to wolf predation. J Mammal. 72 (1), 146-151 (1991).
  18. Therrien, J. F., Còtê, S., Festa-Bianchet, D. M., Ouellet, J. P. Maternal care in white-tailed deer: trade-off between maintenance and reproduction under food restriction. Anim Behav. 75 (1), 235-243 (2008).
  19. Parker, K. L., Barboza, P. S., Gillingham, M. P. Nutrition integrates environmental responses of ungulates. Funct Ecol. 23 (1), 57-69 (2009).
  20. Monteith, K. L., Schmitz, L. E., Jenks, J. A., Delger, J. A., Bowyer, R. T. Growth of male white-tailed deer: consequences of maternal effects. J Mammal. 90 (3), 651-660 (2009).
  21. Tollefson, T. N., Shipley, L. A., Myers, W. L., Keisler, D. H., Nairanjana, D. Influence of summer and autumn nutrition on body condition and reproduction in lactating mule deer. J Wildl Manage. 74 (5), 974-986 (2010).
  22. Guynn, D. C., Mott, S. P., Cotton, W. D., Jacobson, H. A. Cooperative management of white-tailed deer on private lands in Mississippi. Wildl Soc Bull. 11 (3), 211-214 (1983).
  23. Pettry, D. E. Soil resource areas of Mississippi. Mississippi Agricultural and Forestry Experiment Station. , Mississippi State. Information Sheet 1278 (1977).
  24. Snipes, C. E., Nichols, S. P., Poston, D. H., Walker, T. W., Evans, L. P., Robinson, H. R. Current agricultural practices of the Mississippi Delta. Office of Agricultural Communications. , Mississippi State. Bulletin 1143 (2005).
  25. Baker, R. H. Origin, classification, and distribution of the white-tailed deer. White-tailed deer: ecology and management. Halls, L. K. , Stackpole, Pennsylvania. 1-18 (1984).
  26. Barbour, T., Allen, G. M. The white-tailed deer of eastern United States). J Mammal. 3 (2), 65-80 (1922).
  27. Rouleau, I., Crête, M., Ouellet, J. P. Contrasting the summer ecology of white-taileddeer inhabiting a forested and an agricultural landscape. Ecoscience. 9 (4), 459-469 (2002).
  28. Kreeger, T. J. Handbook of wildlife chemical immobilization. , International Wildlife Veterinary Services. Laramie. (1996).
  29. Pound, J. M., Miller, J. A., Oethler, D. D. Depletion rates of injected and ingested Ivermectin from blood serum of penned white-tailed deer, Odocoileus virginianus (Zimmermann) (Artiodactyla: Cervidae). J Medl Entomol. 41 (1), 65-68 (2004).
  30. Jones, P. D., Demarais, S., Strickland, B. K., DeYoung, R. W. Inconsistent relation of male body mass with breeding success in captive white-tailed deer. J Mammal. 92 (3), 527-533 (2011).
  31. Michel, E. S., Flinn, E. B., Demarais, S., Strickland, B. K., Wang, G., Dacus, C. M. Improved nutrition cues switch from efficiency to luxury phenotypes for a long-lived ungulate. Ecol Evol. 6 (20), 7276-7285 (2016).
  32. Miller, B. F., Muller, L. I., Doherty, T., Osborn, D. A., Miller, K. V., Warren, R. J. Effectiveness of antagonists for tiletamine-zolazepam/xylazine immobilization in female white-tailed deer. J Wildl Dis. 40 (3), 533-537 (2004).
  33. Nesbitt, W. H., Wright, P. L., Buckner, E. L., Byers, C. R., Reneau, J. Measuring and scoring North American big game trophies. 3rd edn. , Boone and Crockett Club. Missoula. (2009).
  34. Michel, E. S., Demarais, S., Strickland, B. K., Smith, T., Dacus, C. M. Antler characteristics are highly heritable but influenced by maternal factors. J Wildl Manage. 80 (8), 1420-1426 (2016).
  35. Severinghaus, C. W. Tooth development and wear as criteria of age in white-tailed deer. J Wildl Manage. 13 (2), 195-216 (1949).
  36. Gee, K. L., Webb, S. L., Holman, J. H. Accuracy and implications of visually estimating age of male white-tailed deer using physical characteristics from photographs. Wild Soc Bull. 38, 96-102 (2014).
  37. Storm, D. J., Samuel, M. D., Rolley, R. E., Beissel, T., Richards, B. J., Van Deelen, T. R. Estimating ages of white-tailed deer: Age and sex patterns of error using tooth wear-and-replacement and consistency of cementum annuli. Wild Soc Bull. 38 (1), 849-865 (2014).
  38. Montero, D., Izquierdo, M. S., Tort, L., Robaina, L., Vergara, J. M. High stocking density produces crowding stress altering some physiological and biochemical parameters in gilthead seabream, Sparus aurata., juveniles. Fish Physiol Biochem. 20 (1), 53-60 (1999).
  39. Charbonnel, N., et al. Stress demographic decline: a potential effect mediated by impairment of reproduction and immune function in cyclic vole populations. Physiol Biochem Zool. 81 (1), 63-73 (2008).
  40. Crews, D., Gillette, R., Scarpino, S. V., Manikkam, M., Savenkova, M. I., Skinner, M. K. Epigenetic transgenerational inheritance of altered stress responses. Proc Natl Acad Sci. 109 (23), 9143-9148 (2012).
  41. Maher, J. M., Werner, E. E., Denver, R. J. Stress hormones mediate predator-induced phenotypic plasticity in amphibian tadpoles. Proc R Soc Lond B Biol Sci. 280 (1758), 20123075(2013).

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재인쇄 및 허가

이 JoVE 논문의 텍스트 또는 그림 재사용 허가 요청

허가 요청

태그

White tailed DeerAntler SizeBody MassNutritional QualityPopulation GeneticsControlled EnvironmentMorphometric MeasurementsSedation ProtocolAntler RemovalData Collection

관련 논문