방법 논문

마우스에 트랜스 상피 이온 수송 계량 비 전위차

DOI:

10.3791/57934

2018년 7월 4일

이 논문에서

요약

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여기, 선물이 쥐에서 코 전위차를 측정 하는 프로토콜. 테스트는 낭 성 섬유 증 막 횡단 전도성 레 귤 레이 터 및 상피 나트륨 채널 같은 막 횡단 이온 전송기의 기능을 단정. 그것은 낭 성 섬유 증에 대 한 새로운 치료의 효능을 평가 하기 위해 중요 합니다.

초록

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비 강 잠재적인 차이 테스트 낭 성 섬유 증 (CF)의 진단에 도움을 거의 3 수십 년 동안 사용 되었습니다. 그것은의 경우에 도움이 될 감쇠, 일반적으로 나중에 진단 하는 CF와 CF 관련 장애 vas deferens, 특 발성 만성 췌 장 염, 알레르기의 선 천 성 양측 부재 등의 oligo 또는 모노 증상 형태 입증 bronchopulmonary aspergillosis, 그리고 기관지 확장 증입니다. 임상 및 전 임상 설정에서 테스트로 cf. Adapting 마우스를 테스트에 대 한 타겟된 치료 전략에 대 한 응답을 측정 하는 바이오 마커 도전 이며 관련된 사망률을 수반할 수 있습니다 사용 되었습니다. 이 문서는 비 강 카 테 터에 현장에서 지속적인 관류에 대 한 유지 하는 데 필요한 마 취의 적절 한 깊이 설명 합니다. 그것을 코에 끼얹는다 솔루션의 broncho-열망을 피하기 위해 조치를 나열 합니다. 그것은 또한 빠르게 반전 하는 전체 복구는 동물의 마 취로 이어지는 마 취 약의 해독의 조합의 관리를 포함 하 여 테스트의 끝에서 동물 관리를 설명 합니다. 대표적인 데이터는 CF와 CF와 CF 비 사이 차별 테스트 야생-타입 마우스 쇼에서 가져온. 모두, 여기에 설명 된 프로토콜 신뢰할 수 있는 측정 가능 줄이면서 동일한 동물에 여러 테스트로 서 저절로 호흡 쥐, 트랜스 상피 나트륨과 염화 물 전송기의 기능 상태의 테스트 관련 사망입니다.

서론

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거의 3 년간 전기 잠재적인 차이 (PD) 측정 원심 항공1의 대표로 서 비 강 점 막에 표현 하는 막 횡단 이온 전송기의 기능 상태를 평가 하기 위해 사용 되었습니다. 둘 다의 꼭대기 막에 지역화 다단계 동적 테스트2,3, 코 PD 수 있습니다 낭 성 섬유 증 막 횡단 전도성 레 귤 레이 터 (CFTR)과 상피 나트륨 채널 (ENaC) 활동의 기능 해 부 상피 세포 하 고 기도 표면 수 분에 중요 한 역할을 발휘. 비 강 PD 테스트의 주요 임상 응용 프로그램은 CF, 유럽 국가에 1 개 2500 라이브 출생의 평균 발생률과 백인 인구에 있는 가장 일반적인 치명적인 유전 질환의 진단에 도움을. 테스트는 오랫동안 감쇠, oligo 또는 모노 증상 형태 일반적으로 나중에 진단 하는 CF와 CF 관련 장애 vas deferens, 특 발성 만성 췌 장 염, 알레르기의 선 천 성 양측 부재 등의 진단에 도움이 입증 bronchopulmonary aspergillosis, 그리고 기관지 확장 증4. 더 최근에, 기본적인 CFTR의 치료 변조의 clinometric 평가5,6,7,,89,10,11 결함 ,12,,1314,,1516 새로운 CF 치료의 임상 시험에서 비 강 PD의 사용 했다. 전 임상 설정에서 테스트 새로운 CF 대상 치료18,19,,2021의 bioactivity의 조사 수 있도록 마우스17 에 적응 되었습니다. 마우스에는 기술은 이다 섬세 한, 설치류와 인간 사이 코 영역의 크기에 종 관련 해 부 차이 설치류에 nasofacial 지역에서 감각 입력의 필수적인 역할에 주로 기반으로. 그것은 훈련 되 고 숙련 된 운영자, 전용된 장비 및 공급을 요구 한다.

CF는 전 샘의 다중 조직 장애는 만성 호흡기 질환에서 임상 그림을 지배 하고있다. 질병은 인코딩 순환 아데노신 monophosphate (캠프) 유전자에 돌연변이 의해 발생-규제 CFTR 염화 물 채널22. 날짜 하려면, 2000 개 이상의 CFTR 돌연변이 발견된23되었습니다. 가장 일반적인 돌연변이24,25, CF 대립 유전자의 거의 90%에서 발견 위치 508 (F508del-CFTR) 단백질의 polypeptide 사슬에서에서 페닐알라닌의 삭제에 해당 합니다. CFTR 단백질은 순전히 저항 작은 전도성 염화 물 채널 이다. CFTR 다른 전송 메커니즘, 특히 ENaC26,27을 조절 하는 상당한 증거가 있다. 결함이 전해질 수송, CFTR 종속 염화 전도도 감소 등 증가 ENaC 종속 나트륨 전도성, CF epithelia의 특징 이다. 전 결함 감소 또는 폐지 repolarization 전기 그라데이션 좋아하는 염화 경과 isoprenaline (는 β-아드레날린 길 항 제는 세포내 cAMP를 증가) 또는 산림 (는 adenylate의 추가에 의해 반영 된다 있고 주 작동 근, 임상 사용을 위해 승인 되지). 후자의 결점은 비 강 점 막 (더 부정적인 PD)와 amiloride, ENaC28을 차단 하는 뇨 제 약물에 대 한 증가 응답의 기저 hyperpolarization에 의해 반영 됩니다.

CF 마우스 모델 자주 CF 연구에 사용 되 고 CF 병 리 해 부에 귀중 한 되었습니다. 요즘, 적어도 15 모델 설명된29, 중 3 개는 되는 가장 임상 관련 F508del 돌연변이30,,3132homozygous 되었습니다. 이 세30, 로테르 담의 에라스무스 대학에서 개발 중 대학교 catholique 드 루 뱅 (UCL) 실험에서 거의 20 년 동안 사용 되었습니다. Cftrtm1Eur 모델30 CF 질병의 multiorgan 이상 공부 하 고 새로운 치료 전략18,,1920의 효능을 테스트 하는 매우 유용한 것으로 입증 되었습니다. 21. 동안 또는 후 초기 수많은 문제가 발생할 수 있습니다 (< 24 h) 쥐에서 비 강 PD 테스트. 이 논문에서는, broncho-코에 끼얹는다 솔루션의 포부를 피하는 비 강 카 테 터에 현장에서 지속적인 관류 및 측정값에 대 한 유지에 필요한 마 취의 적절 한 깊이 설명 되어 있습니다. 테스트의 끝에 동물 보호, 빠르게 반전 하는 완전 한 복구는 동물의 마 취로 이어지는 마 취 약물의 해독의 조합의 관리를 포함 하 여 설명 이기도 합니다. 이러한 절차 자발적 호흡 마우스, 감소 테스트 관련 사망률과 같은 동물에 테스트 반복에 신뢰성 높은 측정을 허용 합니다. 비 강 PD 테스트와 야생-타입 마우스는 CF에서에서 가져온 대표적인 데이터는 표시 하 고 논의.

Murine 코 PD 테스트 프로토콜은 3 개의 회의에 보고: 평가 및 관리 하기 전에, 하는 동안, 그리고 테스트 후. 사전 테스트 평가 및 관리, 지속적인 비 강 관류에 대 한 사용 되는 솔루션의 이중 루멘 비 강 카 테 터의 준비의 프로토콜 자세히 설명 되어 있습니다. 평가 시험의 관리 부분 동안 실험 설정 및 마우스의 처리는 일 분 해 부. 마지막으로, 전체 동물 복구를 향상 시키기 위해 테스트의 끝에 동물의 관리를 설명 합니다.

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프로토콜

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연구 및 절차 연구 (시 n ° 86/609)에서 동물 사용에 대 한 유럽 공동체 규정 동의 UCL (2017/UCL/MD/015)의 동물 연구에 대 한 윤리 위원회에 의해 승인 되었다. 조사 지침 2010/63/유럽 유럽의 회의 2010 년 9 월 월 22 일의 위원회의 과학적인 목적을 위해 사용 하는 동물의 보호에 따라 동물 실험에 대 한 정규화 됩니다.

1. 테스트 전 평가 및 관리

  1. 더블 루멘 비 강 카 테 터를 준비 합니다.
    참고: 비 강 카 테 터는 더블 루멘 모 세관 튜브, 한 루멘 솔루션의 지속적인 관류에 대 한 사용 되 고 다른 하나는 측정 채널.
    1. 폴 리 에틸렌 관 (2.0 m m 내경, 3.0 m m 외경;의 조각, 길이, 약 20 m의 중앙 단면도 열 그림 1 ) (10-15 s)를 당기기를 위한 충분히 부드러운 때까지 가스 버너의 화 염에서.
    2. 적절 한 길이 (~ 15 cm)와 코 프로브 (그림 1b)에 대 한 외부 직경 (~0.1 m m)의 매우 얇은 모 세관 튜브를 떨어져 두 끝을 당겨.
    3. 청소 하 고 degrease 순수 에탄올과 같은 두 개의 모세 혈관, 테이프그림 1(c) 그들을 함께 cyanoacrylate 접착제를 사용 하 여 함께 그들을 접착제.
    4. 면도날 또는 약 8 cm (그림 1d) 더블 루멘 카 테 터의 최적의 길이 메스 프로브의 초과 길이 멀리 잘라.
    5. 주사 투과 하는 것을 확인 하 두 루멘을 통해 물.
    6. 끝에서 5 mm 거리에서 마크를 적용 합니다.
      참고: 프로브 삽입 됩니다, 콧구멍에 마크까지 모든 측정은 비 강 내부 같은 사이트에 있도록.
    7. 건조 한 상자에 더블 루멘 카 테 터를 저장 합니다.
      참고: 수 있습니다 사용된 6-10 번 적절 하 게 테스트 후 즉시 청소 하는 경우.
  2. 크림 믹스를 준비 합니다.
    1. 부드럽게 혼합 전해질 크림과 포화 3m KCl 해결책 1:1 비율 (볼륨/볼륨), 작은 기포의 형성을 방지.
      참고: 크림 믹스 사용 됩니다 구축 측정 및 참조에 대 한 전극 교량 Ag/AgCl 전극, 그림 1에서 볼 수 있듯이.

figure-protocol-1
그림 1 : 전극과 교량 프로브. 그림 (a) 전후 난방 그리고 (b), (c)는 더블 루멘 카 테 터 (d), 실리콘 튜브 커넥터 (e)와 전극 (f)의 두 모 세관 부분에 합류 하는 테이프 폴 리 에틸렌 튜브를 보여 줍니다. 사진 선명도, 커넥터 크림 혼합으로 가득 하지는. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

솔루션 레이블솔루션 설명
A기초 버퍼링 소금 솔루션
B소금 솔루션 버퍼링 염화-무료
C10-2 M amiloride 재고 솔루션
D10-3 M 산림 재고 솔루션

표 1: 주식 쥐에서 코 PD 테스트를 위한 솔루션.

소금mM분자량g/L
염화 나트륨 (NaCl)13558.447,889
염화 칼슘이 수화물 (CaCl2.2H2O)2 월 25 일1470.331
마그네슘 염화 물 hexahydrate (MgCl2.6H2O)1.2203.30.244
Dipotassium 인산 염 (K2HPO4)2.4174.20.418
Monopotassium 인산 염 (KH24)0.4136.10.054

표 2: 기저의 버퍼링 소금 솔루션 (솔루션 주식).

  1. 솔루션을 준비 합니다.
    1. 실험 프로토콜 (표 1)에 필요한 4 개의 재고 솔루션을 준비 합니다.
      1. 준비 하는 기저 버퍼 솔루션 (재고 솔루션; 표 2) 그리고 염화 무료 버퍼 솔루션 (재고 솔루션 B; 표 3) 실내 온도에서 순수한 물에 있는 소금 혼합 하 여 PH, 낮은 pH에 1 N HCl 인상 1 N NaOH를 사용 하 여 pH 7.4 (범위 7.0-7.6)를 조정 합니다. 솔루션 (275 mOsm/L)의 osmolarity를 확인 하십시오.
      2. 최대 6 개월까지 최대 3 개월 또는 냉동된에 플라스틱 병에 대 한 4 ° C에서 레이블이 유리병에 저장 합니다.
      3. 순수한 물 10 mL를 amiloride 염의 26.6 mg을 추가 하 여 10-2 M amiloride 솔루션 (재고 솔루션 C)를 준비 합니다. 70 ° c.에 5 ~ 10 분을 위한 혼합물이 열 Amiloride 빛에 민감한으로, 어두운 컨테이너에서 솔루션 C를 유지. 컨테이너 분류 하 고 최대 3 개월까지 4 ° C에서 저장.
      4. 순수한 물 24.36 mL에 산림의 10 밀리 그램을 추가 하 여 10-3 M 산림 솔루션 (재고 솔루션 D)를 준비 합니다. 0.1 mL aliquots 산림 재고 솔루션의 분류 하 고 최대 6 개월 동안-20 ° C에서 저장.
  2. 신선한 솔루션 A1, B1, b 2를 준비 (표 4).
    1. 신선한 솔루션 a 1을 준비 (기저 버퍼링된 소금 솔루션 플러스 10-4 M amiloride) 기저 소금 솔루션 (재고 솔루션 A)의 10 mL 한 10-2 M amiloride 솔루션 (재고 솔루션 C)의 0.1 mL을 추가 함으로써. 컨테이너 분류 하 고 준비의 24 시간 이내에 사용.
    2. 신선한 솔루션 B1 준비 (염화 버퍼링 솔루션 플러스 10-4 M amiloride) 염화 무료 버퍼링된 소금 솔루션 (재고 솔루션 B) 10 mL 및 10-2 M amiloride 솔루션 (재고 솔루션 C)의 0.1 mL를 추가 하 여. 컨테이너 분류 하 고 준비의 24 시간 이내에 사용.
    3. 신선한 솔루션 B2 준비 (염화 무료 버퍼링된 소금 솔루션 플러스 10-4 M amiloride, 10-5 M 산림) 염화 무료 버퍼링된 소금 솔루션 (재고 솔루션 B) 10 mL 및 10-2 M의 0.1 mL를 추가 하 여 amiloride 솔루션 (재고 솔루션 C) 그리고 10-3 M 산림 솔루션 (재고 솔루션 D)의 0.1 mL. 컨테이너에 레이블을 고 준비의 2 시간 이내에 사용 합니다.
소금mM분자량g/L
글 루 콘 산 나트륨 (monosodium 소금)135218.129,444
글 루 콘 산 칼슘 (무수 분말)2.2430.40.947
마그네슘 황산 염 heptahydrate (MgCl2.6H2O)1.2246.50.296
Dipotassium 인산 염 (K2HPO4)2.4174.20.418
Monopotassium 인산 염 (KH24)0.4136.10.054

표 3: 염화 무료의 버퍼 솔루션 (재고 솔루션 B).

figure-protocol-2
그림 2 : 비 강 점 막의 관류 동안 마우스의 위치. 그림에서는 (a)가 열 패드, 전압계 (b), 뒷 다리 (c)는 인접 (d), 연동 펌프는 베개 (f)의 원심 (e) 매장에서 피하 공간에 삽입 참조 전극 그리고 침대 시트 (g). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

2. 평가 및 테스트 기간 동안 관리

  1. 실험적인 체제를 준비 합니다.
    1. 측정 설치 (18.8 x 37.5 cm; 한 생리 적인 온도에서 유지 두 난방 패드를 사용 하는 동안 그리고 테스트 후 저체온증을 방지 하기 위해 그림 2 ), 그리고 다른 하나 (15.5 x 15.5 c m)는 동물 시험의 끝에 복구에 대 한 배치 됩니다 상자.
    2. 데이터 캡처 데이터 메모리 높은 입력된 임피던스에 연결 된 소프트웨어와 함께 로드 된 컴퓨터에서 전환 (> 1012Ω)와 고해상도 (0.1 mV) 전압계 (그림 2b).
    3. 전극은 전압계에 연결 합니다. 그림 2c와 같이 긍정적인 측정 전극 비 강 카 테 터와 뒷 다리에 피하 공간에 삽입 된 카 테 터를 부정적인 참조 전극에 연결 합니다.
    4. 딥 크림 믹스에서 함께 전극의 팁. 초기 전극 오프셋된 값을 확인 합니다. 값 (±) 2 mV 보다 크면 전극 거부 (이상적으로 0 mV).
    5. 연동 펌프에 전환 하 고 그림 2에서 볼 수 있듯이 위치, 펌프 튜브를 삽입 합니다.
    6. 비 강 관류 (그림 2d)에 대 한 선택 된 솔루션에 포함 된 유리병에 펌프 튜브의 인접 콘센트를 연결 합니다. (그림 2e) 비 강 카 테 터의 관류 루멘에 펌프 관의 원심 콘센트를 연결 합니다.
    7. 비 강 카 테 터의 한 루멘 전해질 크림 믹스 10 µ L 피 펫 팁을 통해에 채우십시오. 적응을 실리콘 튜브 커넥터 (그림 1e) 카 테 터, 커넥터 크림 믹스와 커넥터 (그림 1f)에 긍정적인 전극 삽입. 측정 전극 브리지 오프셋된 값을 확인 합니다. 값이 (±) 2 mV 보다 큰 다리를 거부 (이상적으로 0 mV).
    8. 신선한 솔루션 a 1 비 강 카 테 터의 두 번째 루멘을 채우십시오. 유리병을 포함 하는 솔루션 10에 해당 하는 코 카 테 터의 길이 채우기 위해 A. 반대로 연동 펌프의 방향에서 비 강 카 테 터의 끝을 찍어 관류의 s.
      참고:이 허용 기저 PD 값 10에 대 한 기록 amiloride를 적용 하기 전에 s. (그림 1) 참조 전극의 커넥터 안에 크림 믹스에서 비 강 카 테 터의 끝을 찍어.
  2. 마우스 처리를 시작 합니다.
    1. 마우스 무게를 계산 하는 복 (ip) 노선17에 의해 주입에 마 취약의 정확한 복용량을 기록 합니다.
    2. 26 G (0.45 x 10 m m) 바늘을 사용 하 여 주사 마 취의 유도 홍보 하는 intraperitoneally premedication: 5 mg/mL midazolam의 50 µ L의 고정된 복용량. 5 분 기다립니다.
    3. 마 취 믹스를 준비 (각각, 펜타닐, medetomidine, droperidol 0.05, 0.40, 및 20 mg/kg의 최종 농도에 몸 무게와 0.375 µ g의 고정 된 복용량에서 clonidine) 최적의 고 안정적인 깊이 마 취 (단계 III, 비행기 2)17 수 있도록 . Intraperitoneally, 마 취 믹스의 볼륨을 주입 하 고 clonidine의 볼륨을 주입.
      참고: 15 분 후 마우스 자 고 마 취 30 분 이상 지속 될 수 있습니다.
    4. 3 cm 넓은 '베개' (그림 2f) 마우스 머리에 대 한 지원으로 (그림 2) 난방 패드의 상단 부분을 다룰 것입니다 수 있도록 조직 흡수의 시트를 접어.
    5. 생리대 흡수 하는 조직 ('침대 시트';의 시트와 커버 그림 2 g). 난방 패드에 그것의 뒤에 마우스를 놓는다. 테이프는 사지 및 꼬리 (그림 2).
    6. 뒷 다리의 피하 공간에서 참조 정 맥 카 테 터 (그림 1g)을 삽입 합니다. 바늘을 제거 하 고 실리콘 튜브 커넥터 (그림 12 c e) 적응.
    7. 카 테 터와 커넥터 크림 믹스 및 커넥터 (그림 1f)에서 부정적인 전극 삽입.
    8. 카 테 터 및 전극으로 어떤 변위를 방지 하는 데 필요한 테이프와 수정. 기준 전극과 다리의 배치, 후 IV 카 테 터의 커넥터 내부 전극 크림 믹스에서 비 강 카 테 터의 끝을 담거 서 측정 전극 브리지 오프셋된 값을 다시 확인 합니다. (이상적으로 보다는 더 적은 (±) 2 mV) 안정적인 최종 오프셋된 값을 기록 합니다.
    9. "부드러운" 테이프에 흡수 하는 조직 ('베개' (그림 2f)과 '침대 시트';의 2 개 조각 사이 공간에서가 열 패드와 마우스 귀를 수정 (그림 2g)). 눈을 건드리지 않고 털 (뻣 뻣 한 머리카락 콧구멍 근처 성장)을 수정.
    10. 구강에서 액체를 흡수 하는 혀 옆으로 (그림 3) 이동 하 고 필터 종이 ('파이프';의 뾰족한 심지를 삽입 그림 3 b) 입에 약 1 cm. 유동성 부족 perfused 콧구멍을 흡수, 필터 종이 ('손수건';의 두 번째 조각 장소 그림 3 c) 코 끝에서 개최.
    11. 입의 내부와 접촉 하 여 비 강 카 테 터의 끝을 배치 하 여 상피 잠재력의 긍정적인 제어 값을 확인 합니다.
      참고: 읽기 해야 안정적이 고-10 사이의 범위 mV와-20 mV.
    12. 좋은 직접 조명 아래 좋은 집게와 그것을 잡고, 섬세 하 게 비 강 카 테 터에 소개 4-까지 한 콧구멍 mm 코에서에서 6 팁.
      참고: 비 강 PD 카 테 테 르는 최대한 안정 기준선 PD 값17,20를 주는 위치에 중간 비 강 외에 있습니다.
    13. 마 취 약물의 주입 후 5 분 부드럽게 동물 머리 아래쪽으로 약 30 °에 의해가 열 패드를 기울기. 최대한 기초 PD 값을 모니터링 합니다.
    14. 때 그것은 약 30의 기간 동안 안정적인 s, 시작 10 µ L의 일정 한 속도로 비 강 점 막 perfusing / 분, 4 버퍼 솔루션 (A, A1, B1, B2) 연속에서. 10에 대 한 첫 번째 솔루션 (단계 1.3.1.1) perfuse s 고 각 다음 솔루션 (1.4 단계) 5 분 또는 때까지 안정적인 값에 도달 했습니다. 산림 (B2) 과도 산림 응답 추락 시작 될 때 perfusing 중지 합니다.
    15. 기록 데이터에 대 한 1 s 간격을 선택 합니다. 관류 시작의 시간에 데이터를 기록 하는 시작 합니다. 컴퓨터 화면에 시간의 기능으로 데이터를 표시 합니다.
    16. 중지 데이터 캡처 솔루션 B2 관류의 끝에. 스프레드시트 파일로 데이터를 저장 합니다.
    17. 마지막 오프셋된 값을 빼서 올바른 데이터입니다.

figure-protocol-3
그림 3 : 비 강 카 테 터와 필터 종이 생리대에 마우스의 장소에 위치. 그림 옆으로 (a)는 파이프 (b), 손수건 (c)를 넣어 혀를 보여 줍니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

3. 테스트 후 평가 및 관리

  1. 난방 장치 패드에서 마우스를 놓습니다.
  2. '침대 시트'와 마우스 코를 닦아 (그림 2g).
  3. Intraperitoneally 주사 마 취 적 믹스 naloxone, 경쟁력 있는 모 르 핀 길 항 제, atipamezole, medetomidine 특정 해독 제 (2 mg/kg 체중)의 고정 된 복용량 (4 µ g)의 구성.
  4. 일반적으로 1 ~ 2 시간 후 관찰 하는 전체 복구까지 복구 상자에서 작은 손 난로에 마우스를 놓는다.
    참고: UCL 실험실에서 약 10% 사망률, 주로 bronchoaspiration, 테스트 기간 동안 비 강에 끼얹는다 솔루션의 관련은 관찰 성별 또는 유전자 형에 관계 없이.

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결과

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CF에서 특성 이온 수송 이상을 설명 하기 위해 비 강 PD 측정 수행한 다음 위에서 설명한 F508del CF 마우스와의 브뤼셀 식민지의 유전 배경 FVB/129의 야생 유형 제어 프로토콜 Cftrtm1Eur 마우스30. 가장 일반적인 및 가장 심각한 F508del CFTR 돌연변이23,,2425, 중 하나를 품고이 임상 관련 모델은 최고의 현재 CF 마우스 모델30,31, 32.

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토론

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이 문서의 목적은 이온 운송업 자, 주로 CFTR 그리고 ENaC의 무결성을 테스트 하는 데 필요한 시간의 길이 대 한 자발적 호흡 생쥐에서 솔루션의 지속적인 관류에서 비 강 PD를 측정 하기 위한 적절 한 프로토콜을 설명 하는 것입니다. 프로토콜의 모든 단계 완전 동물 복구 및 좋은 품질 및 재현성 데이터도 최적화 되었습니다. 특히, 중요 한 단계는 마 취 평가 및 관리, 그리고 적절 한 동물 위치 그리고 시험 동안에 관심.

비행기 2 단계 III 칵테일 혼합물을 적용 하 여 얻을 수 있는 마 취 노출의 사용17, 여기 보여 이전 연구는 일반 호흡과 부정적인 inotropic 효과 블 링크, 동 공 및 페달의 부재와 관련 철수의 반사 마 취 깊이의이 수준, 비 강 카 테 터 좋은 공차와 제자리에서 연속 관류 비 강에의 한 측정 전극의 교량으로 사용 하기 위해 보관 수 있습니다. 또한, 기준 전극의 다리 역할 피하 공간에...

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공개 사항

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저자는 공개 없다.

감사의 글

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저자는 비판적 원고 편집에 대 한 교수 J. Lebacq 감사 합니다. Cftrtm1Eur (homozygous F508del-CFTR (FVB/129) 마우스는 에라스무스, 로테르 담, 네덜란드, 낭 성 섬유 증 EU FP6 연구를 위한 유럽 경제 공동체 유럽 조정 작업의 지원에 의해 개발 되었다 LHHM-CT-2005-018932입니다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
Portex 폴리에틸렌 튜브 Smiths Medical, Hythe, Kent, England CT21 6JLPortex 800/100/500; 2.0mm ID, 3.0 mmOD비강 프로브용 모세관 준비
전극 크림Parker, Fairfield, NJ, USARedux 크림전극 다리
Ag/AgCl 전극Biomedical, Clinton Township, MI, USAJNS131-1,0측정 및 참조 전극
아밀로라이드 염산염Sigma, St Louis, MI, USAA7410관류 용액 준비
forskolin시그마, 세인트루이스, 미시건, 관류 용액F6886
; 게르&아우믈; te, Berlin, GermanyPortavo 904 pH로 전위차 측정
Paraly SW 112 소프트웨어 Elektronisch Meβ 게르&아우믈; 테, 베를린, 독일Paraly SW112 소프트웨어는전위차 데이터
미다졸람을 캡처합니다 Mylan, Hoeilaart, BelgiumDormicum 15mg/3ml는 마취제 사전 약물로 사용됩니다
Janssen Cilag, Berchem, BelgiumFentanyl-Janssen 0.05 mg/ml는 마취제로 사용됩니다
MedetomidineOrion Pharma, Espoo, FinlandDomitor 1 mg/ml는 마취제로 사용됩니다
droperidol 얀센  Cilag, Berchem, BelgiumDehydrobenzperidol 2.5 mg/ml마취제 clonidine으로 사용
 Boehringer Ingelheim Pharma KG, Ingelheim am Rhein, GermanyCatapressan 0.15 mg/ml,마취제
참조 IV 카테터역할을 하는 Becton Dickinson, Sandy, UT, USA24 GA x 0.75 IN, BD Insyte-W는 전극 브리지를 구축하기 위해
집게 Fine science Tools, 하이델베르크, 독일Dumont #5,비강 카테터 naloxone을 배치하는
 Braun Medical, 벨기에 브뤼셀Narcan, 0.4 mg/ml, 마취 길항제
아티파메졸 역할 Zoetis, Bloomberg, BelgiumAntisedan, 5 mg/ml, 메데토메딘 특정 해독제 역할을 합니다 
발열 패드 Harvard Apparatus, Holliston, MA, USA18,8x37,5 cm; 15,5x15,5 cm테스트 중 및 테스트 후 저체온증을 피하기 위해
연동 펌프 P1GE Life Sciences, Uppsala, Sweden18111091마우스 코에 용액을 관류하기 위해
시아 노 아크릴 레이트 접착제Loctite, Henkel, D ü 독일 셀도르프 코 프로브
NaClSigma, St Louis, MI, USARES0926S-A7Pharma-Grade, USP
CaCl2.2H2OSigma, St Louis, MI, USAM7304Pharma-Grade, USP
MgCl2.6H2OSigma, St Louis, MI, USA1551128Pharma-Grade, USP
K2HPO4Sigma, St Louis, MI, USA1551139제약 등급, USP
Na 글루코네이시그마, 세인트루이스, 미시건, 미국S2054제약 등급, USP
캘리포니아 글루코네이시그마, 세인트루이스, 미시건, 미국C8231제약 등급, USP
MgSO4.7H2O시그마, 세인트루이스, 미시건, 미국RES0089M-A7제약 등급, USP
BD 바늘 Becton Dickinson, Franklin Lakes, 미국BD 26G(0.45x10mm)복강내 주사
Knick Portamess 전압계 Elektronisch Me&beta를 준비하는 미국 . . . Fine science Tools트 트

참고문헌

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  1. Knowles, M., Gatzy, J., Boucher, R. Increased bioelectric potential difference across respiratory epithelia in cystic fibrosis. New England Journal of Medicine. 305 (25), 1489-1495 (1981).
  2. Middleton, P. G., Geddes, D. M., Alton, E. F. W. Protocols for in vivo measurement of the ion transport defects in cystic fibrosis nasal epithelium. European Respiratory Journal. 7 (11), 2050-2056 (1994).
  3. Knowles, M. R., Paradiso, A. M., Boucher, R. C. In vivo nasal potential difference: techniques and protocols for assessing efficacy of gene transfer in cystic fibrosis. Human Gene Therapy. 6 (4), 445-455 (1995).
  4. Paranjape, S. M., Zeitlin, P. L. Atypical cystic fibrosis and CFTR-related disorders. Clinical Reviews in Allergy & Immunology. 35 (3), 116-123 (2008).
  5. Wilschanski, M., et al. A pilot study of the effect of gentamicin on nasal potential difference measurements in CF patients carrying stop mutations. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 161 (3), Pt 1 860-865 (2000).
  6. Clancy, J. P., et al. Evidence that systemic gentamicin suppresses premature stop mutations in patients with CF. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 163 (7), 1683-1692 (2001).
  7. Wilschanski, M., et al. Gentamicin-induced correction of CFTR function in patients with CF and CFTR stop mutations. New England Journal of Medicine. 349 (15), 1433-1441 (2003).
  8. Sermet-Gaudelus, I., et al. In vitro prediction of stop-codon suppression by intravenous gentamicin in patients with CF: a pilot study. BMC Medicine. 5, 5(2007).
  9. Clancy, J. P., et al. No detectable improvements in CF transmembrane conductance regulator by nasal aminoglycosides in patients with CF with stop mutations. American Journal of Respiratory and Cell Molecular Biology. 37 (1), 57-66 (2007).
  10. Kerem, E., et al. Effectiveness of PTC124 treatment of CF caused by nonsensemutations: a prospective phase II trial. Lancet. 372 (9640), 719-727 (2008).
  11. Sermet-Gaudelus, I., et al. Ataluren (PTC124) induces CF transmembrane conductance regulator protein expression and activity in children with nonsense mutation CF. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 182 (10), 1262-1272 (2010).
  12. Wilschanski, M., et al. Chronic ataluren (PTC124) treatment of nonsense mutation cystic fibrosis. European Respiratory Journal. 38 (1), 59-69 (2011).
  13. Accurso, F. J., et al. Effect of VX-770 in persons with CF and the G551D-CFTR mutation. New England Journal of Medicine. 363 (21), 1991-2003 (2010).
  14. Clancy, J. P., et al. Results of a phase IIa study of VX-809, an investigational CFTR corrector compound, in subjects with cystic fibrosis homozygous for the F508del-CFTR mutation. Thorax. 67 (1), 12-18 (2012).
  15. Leonard, A., Lebecque, P., Dingemanse, J., Leal, T. A randomized placebo-controlled trial of miglustat in cystic fibrosis based on nasal potential difference. Journal of Cystic Fibrosis. 11 (3), 231-236 (2012).
  16. De Boeck, K., et al. CFTR biomarkers: time for promotion to surrogate end-point. European Respiratory Journal. 41, 203-216 (2013).
  17. Leal, T., et al. Successful protocol of anaesthesia for measuring transepithelial nasal potential difference in spontaneously breathing mice. Laboratory Animals. 40 (1), 43-52 (2006).
  18. Lubamba, B., et al. Preclinical evidence that sildenafil and vardenafil activate chloride transport in cystic fibrosis. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 177 (5), 506-515 (2008).
  19. Lubamba, B., et al. Airway delivery of low-dose miglustat normalizes nasal potential difference in F508del cystic fibrosis mice. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 179 (11), 1022-1028 (2009).
  20. Lubamba, B., et al. Inhaled PDE5 inhibitors restore chloride transport in cystic fibrosis mice. European Respiratory Journal. 37 (1), 72-78 (2011).
  21. Vidovic, D., et al. rAAV-CFTRΔR Rescues the Cystic Fibrosis Phenotype in Human Intestinal Organoids and Cystic Fibrosis Mice. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 193 (3), 288-298 (2016).
  22. Stutts, M. J., et al. CFTR as a cAMP-dependent regulator of sodium channels. Science. 269 (5225), 847-850 (1995).
  23. Lubamba, B., Dhooghe, B., Noel, S., Leal, T. Cystic fibrosis: insight into CFTR pathophysiology and pharmacotherapy. Clinical Biochemistry. 45 (15), 1132-1144 (2012).
  24. Kerem, B., et al. Identification of the cystic fibrosis gene: genetic analysis. Science. 245 (4922), 1073-1080 (1989).
  25. Riordan, J. R., et al. Identification of the cystic fibrosis gene: cloning and characterization of complementary DNA. Science. 245 (4925), 1066-1073 (1989).
  26. Stutts, M. J., Rossier, B. C., Boucher, R. C. Cystic fibrosis transmembrane conductance regulator inverts protein kinase A-mediated regulation of epithelial sodium channel single channel kinetics. Journal of Biological Chemistry. 272 (22), 14037-14040 (1997).
  27. Ismailov, I. I., et al. Regulation of epithelial sodium channels by the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator. Biological Chemistry. 271 (9), 4725-4732 (1996).
  28. Althaus, M. ENaC inhibitors and airway re-hydration in cystic fibrosis: state of the art. Current Molecular Pharmacology. 6 (1), 3-12 (2013).
  29. Wilke, M., et al. Mouse models of cystic fibrosis: phenotypic analysis and research applications. Journal of Cystic Fibrosis. 10, Suppl 2 152-171 (2011).
  30. Van Doorninck, J. H., et al. A mouse model for the cystic fibrosis delta F508 mutation. The EMBO Journal. 14 (18), 4403-4411 (1995).
  31. Colledge, W. H., et al. Generation and characterization of a delta F508 cystic fibrosis mouse model. Nature Genetics. 10 (4), 445-452 (1995).
  32. Zeiher, B. G., et al. A mouse model for the delta F508 allele of cystic fibrosis. Journal of Clinical Investigation. 96 (4), 2051-2064 (1995).
  33. Ghosal, S., Taylor, C. J., McGray, J. Modification of the nasal membrane potential difference with inhaled amiloride and loperamide in the cystic fibrosis (CF) mouse. Thorax. 51 (12), 1229-1232 (1996).
  34. Ghosal, S., Taylor, C. J., Colledge, W. H., Ratcliff, R., Evans, M. J. Sodium channel blockers and uridine triphosphate: effects on nasal potential difference in cystic fibrosis mice. European Respiratory Journal. 15 (1), 146-150 (2000).
  35. Leonard, A., et al. Comparative Variability of Nasal Potential Difference Measurements in Human and Mice. Open Journal of Respiratory Disease. 2, 43-56 (2012).
  36. Tannenbaum, J., Bennett, B. T. Russell and Burch's 3Rs then and now: the need for clarity in definition and purpose. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 54 (2), 120-132 (2015).
  37. Pritchett-Corning, K. R., et al. AALAS/FELASA Working Group on Health Monitoring of rodents for animal transfer. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 53 (6), 633-640 (2014).
  38. Salinas, D. B., et al. CFTR involvement in nasal potential differences in mice and pigs studied using a thiazolidinone CFTR inhibitor. American Journal of Physiology. Lung Cell Molecular Physiology. 287 (5), 936-943 (2004).
  39. Fisher, J. T., et al. Comparative processing and function of human and ferret cystic fibrosis transmembrane conductance regulator. Journal of Biological Chemistry. 287 (26), 21673-21685 (2012).
  40. Kaza, N., et al. Use of ferrets for electrophysiologic monitoring of ion transport. PLoS One. 12 (10), 0186984(2017).
  41. Leal, T., Beka, M., Panin, N., Mall, M. A., Noel, S. Nasal potential difference in βENaC-overexpressing mouse reveals pH-sensitive channel hyperactivity and shift of subunits stoichiometry. Journal of Cystic Fibrosis. 16 (S1), 72(2017).
  42. Mall, M., Grubb, B. R., Harkema, J. R., O'Neal, W. K., Boucher, R. C. Increased airway epithelial Na+ absorption produces cystic fibrosis-like lung disease in mice. Nature Medicine. 10 (5), 487-493 (2004).
  43. Shah, V. S., et al. Airway acidification initiates host defense abnormalities in cystic fibrosis mice. Science. 351 (6272), 503-507 (2016).

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