조직화 학적인 얼룩과 겨울 휴면 중 달콤한 체리의 난소 Primordia에서 전 분을 계량 하기 이미지 분석

온화한 우 디 사계절 그들의 성장과 발전을 변조 하 여 계절에 적응. 그들은 봄, 여름 동안 개발 하는 동안 그들은 휴면 겨울¹에 서가 동안 성장 하 고 중지 합니다. 휴면 낮은 겨울 온도에서 살아남을 수 있습니다, 재미는 적절 한 budburst 봄²에 대 한 전제 조건. 온대 과일 생산 및 임업에 휴면의 중요 한 의미를 확인 하 고 예측 하는 휴면 기간³다양 한 노력을 끌고있다. 과일 나무 종에 경험적 실험 조건 및 꽃의 데이터를 기반으로 하는 통계 예측 강제 촬영 전송 가지 현재 추정 하는 연구를 수 있는 휴면의 날짜를 결정 하는 각 품종에 대 한 요구 사항을 재미 그러나, 생물 학적 과정에 따라 휴면 상태를 확인 하는 방법 불분명³남아 있습니다.

달콤한 체리 (벚나무 avium L.), 등 온대 과일 나무에 꽃이 피는 일년에 한 번 발생 하 고 보름 정도 지속. 그러나, 꽃을 차별화 하 고 이전 여름⁴기간 동안 약 10 개월 이전에 개발 시작. 꽃 primordia 겨울 동안 휴면 새싹 안에 남아가 동안 성장 하 고 중지 합니다. 이 기간에 각 품종 축적 적절 한 꽃⁴에 대 한 특정 재미 요구 해야 합니다. 겨울 동안 싹에서 phenological 변화의 부족에도 불구 하 고 꽃 primordia 순수 활성화 휴면, 동안 되며 온도 재미의 축적 최근 전 분 축적의 동적으로 연결 하거나 감소 난소 primordium의 세포 내에서 휴면 결정⁵에 대 한 새로운 접근을 제공합니다. 그러나, 작은 크기와 난소 primordium의 위치는 특별 한 방법론을 필요합니다.

전 분 우 디 식물 종⁶주요 저장 탄수화물 이다. 따라서, 변경 전 분에서 꽃 조직, 그들의 개발^7,8을 지원 하기 위해 탄수화물을 필요의 생리 적 활동에 관련 되어있다. 생식 과정에서 다른 키 이벤트 또한 녹말 함유량 다른 꽃 구조, 꽃 밥 감수 분열 등⁹, 스타일이 나 난 수정¹⁰통해 꽃가루 관의 성장에에서 있는 변이 관련 됩니다. 조직화 학적인 기법 휴면 중 꽃 primordia의 각 특정 조직에 녹말의 검출을 허용합니다. 그러나, 어려움은 조직, 재배, 또는 년 중 콘텐츠 시간 또는 비교 전 분 축적/감소의 패턴에 따라 허용 하는 전 분을 측정에 남아 있습니다. 이것은 작은 양의 분석 기법¹¹에 사용할 수 있는 조직입니다. 대신, 이미지 분석 현미경¹² 에 연결 된 식물 조직¹³의 아주 작은 샘플에서 전 분의 정량화를 수 있습니다.

현미경 및 이미지 분석을 결합 하는 접근 계량 식물 조직, callose¹⁴,¹⁵, microtubes 등 다른 부품의 콘텐츠 또는 특정 하 여 염색 하는 영역의 크기를 측정 하 여¹⁶, 전 분을 사용합니다 얼룩. 전 분, 대 한 그것은 검출 될 수 있다 쉽게 요오드 화 칼륨 요오드를 사용 하 여 (나₂기) 반응¹⁷. 이 메서드는 매우 구체적인; 내가₂기 내에서 전 분 곡물의 구조는 intercalates 및 전 분¹⁸amylose 내용에 따라 어두운 파란색 또는 붉은 갈색 색상, 형태. 섹션 I로 얼룩진₂기 얼룩이 보여 전 분 및 이미지 분석 시스템¹⁹애매 녹말 검출 및 후속 정량화를 허용 하는 배경 조직 사이의 적절 한 대조. 이 염료는 화학 량 론, 요오드의 축적은 매우¹⁷을 변화할 수 있는 전 분 분자의 길이에 비례 합니다. 따라서, 픽셀 수로 표현 된 스테인드 영역의 크기 수 있습니다 반영 하지 정확 하 게 전 분의 내용 때문에 비슷한 크기의 스테인드 영역 필드 사이 녹말 함유량에서 높은 차이 찾을 수 없습니다. 대신, 녹말 함유량 살구^8,13 에 다른 조직에 보고 되는 현미경에서 얻은 흑백 이미지에 묻은 알갱이의 광학 밀도 측정 하 여 평가 될 수 있습니다. ^{, 19},²⁰, 아보카도^10,그리고 올리브²¹.

여기, 우리가 설명 달콤한 체리에 봄가 난소 primordium 조직에 녹말 함유량의 정량화와 휴면 상태의 실험 결정을 결합 하는 방법 이해 및 예측을 위한 새로운 도구를 제공 하 고 생물 학적 메커니즘의 연구에 따라 휴면 휴면 연결.

1. 휴면 결정과 식물 자료를 수집

1. 예제 필드에 꽃 봉 오리. 휴면 연구 장기 실험 하 고 필요 성인 싹 수집 하 큰 만큼 나무와 나무의 개발 다음 봄 동안 손상 없이 모든 겨울을 쏘고. 특별 한 과수원 관리 훈련 시스템;에 따라 필요한 수 있습니다. 따라서, 가지 치기 과일 생산 목적 보다 덜 심각한 수 있습니다.
   1. 새싹 틈의 발병까지가 시작에서 매주 수집 하 고 10 꽃 봉 오리를 무게.
   2. 모자와 함께 10 mL 유리 튜브에 그들을 배치 하 여 꽃 봉 오리를 수정 하 고 샘플 4 ° c.에 24 h 이상 에탄올/아세트산 산 (3:1)의 통 솔루션에 흠뻑 젖어 그리고는 정착 액을 버리고 75% 에탄올, 넉넉한 샘플 포함 보장을 추가 합니다. 샘플 사용까지 4 ° C에서이 솔루션에 보존 될 수 있습니다.
      참고: 꽃 봉 오리 안에 기포를 제거 하 고 부동에서 그들을 방지 하는 진공 침투를 사용할 수 있습니다. 이 조직에는 정착 액의 침투를 용이 하 게 하지만 조직의 구조를 손상 될 수 있습니다. 필요 하지 않은 경우 그것을 방지 하려고 합니다.
2. 필드에서 촬영 샘플.
   1. 각 주, 버드 휴식의 발병까지가 시작에서 15-30 cm 길이 직경, 10 꽃 싹을 포함 된 5 m m의 3 개의 촬영을 가져가 라. 22 ± 1 ° C 12 h 빛 photoperiod에 성장 챔버에 물에 젖은 꽃 거품에 넣어.
   2. 10 일 후에 성장 챔버, 선택 하 고 무게는 촬영에서 10 꽃 봉 오리.
3. 새싹 성장 평가 하 고 휴면 상태를 결정 합니다. 샘플링 기간 위치 조건에 조정 될 수 있다. 과수원 조건에서 (사라고사, 스페인, 41 ° 44'30 "N, 0 ° 47'00" W, 그리고 해발 220 m), 쏘고의 샘플링에서 11 월 30 일 2 월 말 또는 3 월 초까지 실시 되었다.
   1. 주간 평가 꽃 봉 오리의 응답 챔버의 적당 한 성장 조건까지 budburst 봄,가 시작 부분에서 필드에서 고른 10 싹의 무게를 비교 하 여.
   2. 차이가 없거나 그 차이 30% 미만, 새싹 재미 그들의 요구를 실현 하지가지고 고 endodormant²²는 고려 하십시오. 차이가 있다면 30% 이상, 새싹 재미 그들의 요구를 충족 하 고 ecodormant²²는 고려 하십시오.

2. 식물 재료 준비 전 분 정량화에 대 한

1. 각 샘플링에서 선택에 대해 6 개의 고정된 싹 날짜 (단계 1.1 참조). 재배, 따라 각 달콤한 체리 꽃 봉 오리에는 최대 5 개의 꽃 primordia를 포함 되어 있습니다.
   1. 외부 버드 비늘을 제거 하 고 밖으로 건조에서 그것을 방지 하기 위해 75% 에탄올과는 시계 유리에 꽃 봉 오리를 놓습니다.
   2. 꽃 봉 오리를 해 부하 고 정밀 집게의 도움과 입체 현미경 안과 메스 새싹 당 적어도 하나의 꽃 primordium 추출 합니다. 꽃 primordium 4 ° C에 75% 에탄올 10 mL 유리 튜브에 보존 될 수 있습니다 또는 다음 단계로 바로 진행 합니다.
2. 제 3 부 틸 알코올 시리즈에서 샘플 탈수.
   1. 75 %3 차 부 틸 알콜 아낌없이 샘플을 커버 하 고 1.5 h에 대 한 그들을 품 어 (미정)의 10 mL에 75% 에탄올 솔루션을 바꿉니다. 파스퇴르 피 펫 솔루션 삭제 하도록 유용할 수 있습니다.
   2. 이후 순수 미정 실내 온도 (< 20 ° C)에서 crystalizes와 매우 휘발성 이며 독성 공기 추출, 30 ° C에서 건조 난로에 단계 2.2.1, 상승 농도 (85%, 95%, 및 100 %v / v, 및 순수한 미정 3 x)와 함께 TBA를 추가 반복 합니다. 미정 샘플 crystalizes, 그것은 조직 손상 것입니다.
3. 파라핀¹⁸에 샘플을 포함 합니다.
   1. 공기 추출 전날 60 ° C에서 건조 하는 난로 있는 파라핀 진주를 도입 하 여는 파라핀을 녹여. 파라핀 진주 또한, 열판에 녹아 수 있습니다 하지만 액체 파라핀 60 ° C에 그리고 조직 손상을 방지 하기 위해 높은 온도에 아닙니다 확인 하십시오.
   2. 미정 미정과 파라핀 오일 (1:1)의 혼합으로 대체 하 고 60 ° c.에 건조 난로 내부 24 h에 대 한 품 어 그런 다음, 미정의 믹스를 대체 하 고 순수한 파라핀 오일 파라핀을 녹여 및 60 ° c.에 건조 난로 안에 적어도 6 h에 대 한 품 어 반복 2 x 적어도 4-6 d에 대 한 마지막 변경 품 어 고.
   3. 열 표면에 작은 기본 금형에 각 샘플 배치 포함 카세트 속도 파라핀 왁 스에 포함 된. 차가운 표면 위에 그것을 배치 하 고 왁 스가 고형화 되 면 블록을 제거 합니다.
4. 섹션 하 고 준비를 rehydrate.
   1. 준비 하는 Haupt의 접착제: 30 ° C에 증류수 100 mL에 일반 녹 스 젤라틴의 1 g을 분해 다음, 2 세대의 페 놀 느슨한 (C₆H₅오)와 글리세롤의 15 mL를 추가 합니다. 브러시와 유리 슬라이드에 걸쳐 Haupt의 접착제 하 고 1% 포름알데히드 용액 한 방울을 추가 합니다.
   2. 섹션 각 파라핀와 톰에 10 µ m에서 차단 하 고 유리 슬라이드에 섹션을 배치 Haupt의 접착제로 덮여.
   3. 건조;까지 단면도 유리 슬라이드를 35-40 ° C에서 열 표면에 놓으십시오 그런 다음 유리 슬라이드 슬라이드 랙 이동 합니다.
   4. Dewax 및 리하이드레이션 솔루션을 준비 합니다. 3 유리 얼룩 요리, Histoclear II:ethanol (1:1, v/v)로 또 하나, 에탄올 시리즈 Histoclear II의 200 mL를 배치 (100%, 70%, 40%, v/v), 그리고 최종 증 류 물 세척.
   5. 3 세척, 각 5 분, Histoclear II 및 Histoclear II:ethanol (1:1, v/v)와 섹션 dewax 슬라이드 랙 보장 솔루션 완전히 슬라이드, 커버 유리 얼룩 요리를 내 놓고, 다음, 다음을 하나의 솔루션에서 슬라이드 랙 이동 합니다.
   6. 2 민 세척의 다음 시리즈에 의해 섹션을 rehydrate: 에탄올 시리즈 (100%, 70%, 40%, v/v) 및 최종 증 류 물 세척. 마지막으로, 실내 온도에 유리 슬라이드 건조.
5. 섹션¹⁸얼룩.
   1. 나에 게₂기 얼룩을 준비: 요오드 화 칼륨 (KI), 요오드의 0.2 g 2 세대 분해 (나₂) 100 mL의 증류수에. 신선한 방울 적용 나₂기 5 분에 대 한 섹션을 통해, 다음, 얼룩의 과잉 압 지와 그것을 흡수 하 여 삭제 하 고. 신속 하 게 다음 단계를 진행 합니다.
   2. 합성 설치 미디어의 작은 방울을 적용, 작은 커버 유리 상단에 놓고 하드를 누릅니다. 일단 장착 미디어 건조, 난소 전 분의 예비 평가 대 한 밝은 분야 현미경으로 관찰 합니다.
      참고:이 단계는 비록 전 분와 배경 사이의 더 나은 대조를 얻은 없는 필수. 섹션 전 분 정량화 후 다른 얼룩 다시 사용할 경우, 커버 유리 위에 얼룩의 드롭 놓고 압 지와 그것을 흡수 하 여 과잉을 삭제 (2.5.1 참조). 다음, 전 분 정량화, 후 씻어는 밖으로₂기는 증류수와 장소는 열 이상의 준비 건조까지 35-40 ° C에 표면 얼룩.

3입니다. 녹말 함유량의 정량화

1. 보정 광학 조건.
   참고: 이미지 분석기 스테인드 녹말을 검출 하는 데 사용 검출 레벨은 직접 현미경;의 확대 및 조명 조건에 따라 따라서, 이러한 조건을 평가 하는 모든 준비에 대 한 수정. 조정 가능한 현미경 및 조명 조건에 여기 제안 된 적응.
   1. 확대 및 밝기 제어 또는 빛의 강도 X 20에 조리개 다이어 프 램을 조정 합니다.
   2. 필터 홀더에 필터가 되어 있는지 확인 하 고 현미경에서 밝은 필드 조건을 선택 합니다. (예를 들어, 40 X 달콤한 체리 난소 primordium) 적합 한 확대를 선택 합니다.
2. 이미지 수집 조건을 제어 합니다. 조직을 통해 이미지 없이 스테인드 준비 카메라 설정을 조정 | 수집 | 사전 보기.
   1. 50%, 1.0에서 이득에 밝기를 수정 x, 그리고 감마 1.00 및 0-명암 값 히스토그램 지표 100, 밝기 분포 히스토그램의 한계와.
   2. 과도/노출 부족 기능을 활성화 하 고 노출 과도의 한계에 노출 시간을 조정 합니다.
   3. 화이트 밸런스 기능 수정 및 균질 이미지를 만드는 완전 한 이미지를 어떤 색조와 음영 보정 없이 이미지의 모든 중립 착 색 구성 요소를 표시 하려면 전체 이미지에 적용 됩니다.
3. 투과율 (T) 값으로 얻을 수 있습니다 다른 광학 밀도 (OD)의 회색 레벨 (0, 검정, 255, 흰색)의 컨트롤 값을 가져올 이미지 분석 시스템 보정.
   1. 제어, 간주 조직 없이 스테인드 준비의 이미지를 수집 하 고는 흑인과 백인 이미지를 통해 측정의 회색 수준을 측정 | 회색 측정 | 회색 보정 | 참조 값 = 0 | 측정 | 보정 | 확인. 이 100% 투과율;과 해당 따라서, 0 세에 따라 광학 밀도 = 2-티 로그
   2. 4 빛의 양을 줄여 4N 필터와 동일한 준비의 이미지를 취득, 및 측정은 흑인과 백인 이미지를 통해 측정의 회색 수준 | 회색 측정 | 회색 보정 | 참조 값 0.6 = | 측정 | 보정 | 확인. 이 25% 투과율;과 해당 따라서, 외경에 따라 0.6의 광학 밀도 = 2-티 로그
   3. 빛, 고려 검정 없이 동일한 준비의 이미지를 취득 하 고는 흑인과 백인 이미지를 통해 측정의 회색 레벨을 측정 | 회색 측정 | 회색 보정 | 참조 값 = 1 | 측정 | 보정 | 확인. 이 0% 투과율;과 해당 따라서, 외경에 따라 1의 광학 밀도 = 2-티 로그
4. 전 분을 감지 합니다.
   1. 적어도 300 dpi (인치당 도트 수) 해상도와 TIFF 형식에서 측정 필드의 컬러 이미지를 취득 합니다.
   2. 스테인드 지역에 해당 하는 이진 이미지를 만듭니다. 세 가지 색 임계값 설정 (값 0-사이 각 255) 바이너리 이미지 정확 하 게 반영 하는 관찰을 통해 이미지 묻은 전 분 알갱이 | 검색 | 빨강, 파랑 및 녹색의 임계값을 선택 | 확인. 다양 한 준비와 조직 최종 감지 수준을 조정 하에서 반복적으로 시각적 비교를 확인 합니다. 저장 하 고 모든 준비가이 수준을 사용 합니다.
   3. 전 분을 계량. 이미지 분석 시스템으로 흑백 이미지에 원본 컬러 이미지를 변환 합니다. 이진 이미지는 흑백 이미지를 통해 이미지에 겹쳐 마스크로 사용 하 여 | 바이너리 편집. 모든 픽셀은 마스크 를 통해 측정에서의 광학 밀도의 합을 측정 | 회색 수준 | 확인 측정된 분야에 전 분 내용으로이 값을 고려 하십시오.
   4. 반복 단계 3.4.1-꽃 primordia의 난소에서 녹말 함유량의 대표 값을 가져오는 난소 primordia의 3.4.3 4 장소.
   5. 3.4.3 3.4.1-단계를 반복 하 고 각 수집 날짜의 다른 꽃에 3.4.5 단계.

휴면 연구 재미 요구 사항이 충족 되는 때 순간의 결정을 해야 합니다. 필드 조건 (그림 1A)에서 겨울 동안 phenological 변화의 부족에도 불구 하 고 벚꽃 복구할 수 없습니다 적당 한 조건에서 성장의 용량 낮은 온도에서 일정 기간을 통과할 때까지. 겨울 시간 동안 제어 조건 약 실 (그림 1B)에 촬영의 정기 전이 꽃 봉 오리의 휴면 상태의 평가 허용. 꽃 봉 오리 성장의 평가 버드 체중 증가 측정 하 여 이루어졌다. 반면, 휴면, 동안 변경 관찰 될 수 있었다 적당 한 조건 (그림 1C)의 10 일 후 일단 휴면 극복, 새싹 늘어났다 고 성장 챔버 (그림 1D)에 버스트. 이 분석의 결과 허용을 싹의 휴면 상태. 겨울 동안 발생 하는 다른 온도 때문 휴면 올해에 따라 다른 날짜에 극복 했다. 반면, 연구의 1 년 동안 휴면의 1 월에 발생, 2 년 제시 온화한 겨울; 따라서, 재미 행 약 3 주 후, 2 월에 발생 했습니다.

달콤한 체리 박차, 어디 꼭대기 새싹 식물 새싹 이며 옆 꽃 봉 오리는 꽃 봉 오리 (그림 1C 및 1d)에 꽃 봉 오리를 맺는 다. Undifferentiated 싹 여름의 끝에 꽃 이나 식물 새싹으로 분화 하기 시작 하 고 그들은 겨울에 휴면을 입력, 여러 꽃 primordia 꽃 봉 오리, 수많은 녹색 비늘에 의해 보호 되 고 갈색 외부 비늘 (적용 안에 남아 그림 1C 와 그림 2A). 꽃 봉 오리의 해 부 (그림 2A) 안에 작은 꽃 primordia 보였다. 각 꽃 봉 오리 포함 1-5 개별 꽃 primordia (그림 2B). 각 꽃 primordium의 작은 크기에도 불구 하 고 꽃의 모든 부분을 구별 하는 하 고 구분할 수 있습니다:는 암 꽃 술는 anthers, 꽃잎 및 sepals (그림 2C). 조직화 학적인 방법 사용 (알코올: 아세트산 [3:1] 기정, 파라핀 왁 스를 포함, 톰 단면, 그리고 녹말 요오드 기반 얼룩) 허용 꽃 내 전 분의 분포 (그림 2D관찰 primordium 조직 ).

난소 primordium에 전 각 섹션에서 정량 했다. 1337 µ m2, 40 x 확대, 4 개의 측정 달콤한 체리 난소 primordium (그림 3A)에 있는 전 분의 일반적인 레이아웃을 표현. 전 분 알갱이 했다 후 배경에서 명확 하 게 고유2기 얼룩 (그림 3B). 전 분은 빨간색, 녹색 및 파랑의 임계값 정의 된 색상 매개 변수 (그림 3C)에 따라 시스템에 의해 만들어진 바이너리 이미지에 의해 덮여 있었다 모든 전 분 알갱이 관찰 될 때까지 색상을 조정 하 여 이미지 분석 시스템에 의해 확인 되었다. 얻은 녹말 함유량의 값 (그림 3D) 흑백 이미지에 마스크 아래 모든 픽셀의 광학 밀도의 측정의 결과 이었다.

전 분의 정량화 겨울 (그림 4) 동안 동적 전 분의 일관 된 패턴을 공개 했다. 최대 두 년에 120, 000와 140000 사이 값을 도달 하는 동안 일관 되 게, 이른 겨울에 있는 전 분의 금액 미만 400003의 광학 밀도 값 제시. 최대 값 (그림 4A) 1 년 동안 1 월에서 도달 되었다, 그러나 그것은 2 년 (그림 4B) 2 월에 발생 했습니다. 휴면의 안 색이이 결과 대조, 전 분의 최대 금액 발생 수반 두 년에 놀 아 요 행.

이 방법은 프레임 휴면 관련 전 분 내용에 변경 하기 위해서는 난소 조직 (그림 5B)에 전 분 정량화와 수반 휴면 상태 (그림 5A)의 결정이 필요 합니다.

그림 1: 달콤한 벚꽃의 꽃 봉 오리의 휴면 상태의 결정에 대 한 실험 설정. (A) 분 지, 겨울 동안 휴면 싹 폐쇄 하 고 어두운 갈색 비늘으로 덮여 표시. (B)이이 패널 성장 챔버로 촬영을 보여줍니다. 1 월 중순에 일부 cultivars 싹 휴면 남아 여전히 폐쇄 (흰색 화살표), 다른 성장, 수 있었다 하는 동안 치명적된 싹 (검은색 화살표)를 보여주는. (C)이이 패널 옆에 있는 휴지 꽃 봉 오리와 단일 식물 새싹 박차 꼭대기 위치에 촬영의 세부 정보를 보여줍니다. (D)이이 패널 보여줍니다 촬영의 세부 사항을 일단 휴면 성장 챔버에 10 일 후에 극복 했다 새싹 붓기를 보여주는. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

그림 2: 식물의 전 분 정량화에 대 한 재료 준비. (A)이이 패널 표시 횡단 부분의 꽃 봉 오리, 두 꽃 primordia (fp)를 보여주는 수많은 비늘 (sc)에 의해 보호 됩니다. (B) 3 꽃 primordia (fp)는 꽃 봉 오리에 모입니다. (C)이이 패널 표시 꽃 primordium 횡단 부분의 모든 whorls와 분화: sepals (se), 꽃잎 (pe), anthers (한), 그리고 암 꽃 술 (pi). 난소 primordium 암 꽃 술 (화살표)의 기지에서 수훈이 있다. (D) A 중간 부분의 꽃 primordium 수집 및 1 월에 고정, 파라핀 왁 스에 포함 된, 구분, 되었고 나 물 전 분을 위한2기 (짙은 갈색). 이 패널에서는 난소 primordium (화살표)를 보여 줍니다. 스케일 바 패널 A 와 B 에 500 µ m 및 패널 C 와 D의 200 µ m입니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

그림 3: 달콤한 체리 난소 primordium 부 량 전 분. (A)이이 패널 난소 primordium의 중간 부분을 보여줍니다 난 물2기, 콘텐츠는 전 분에 4 개의 프레임을 보여주는 측정 했다. (B)이이 패널 난소 primordium의 세부 사항을 표시합니다. 전 분 알갱이 짙은 갈색에 물 들 다. (C)이이 패널 표시는 전 분에 모조 색상 이미지에 파랑의 다른 그늘에 해당 합니다. (D)이이 패널 흑백 원본 이미지에 (파란색) 나2기 묻은 전 분을 취재 하는 바이너리 이미지 마스크를 보여 줍니다. 광학 밀도 마스크에 의해 포함 하는 원본 이미지의 픽셀에만 측정 됩니다. 스케일 바 패널 A 에서 100 µ m와 20 µ m B - D패널에 있습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

그림 4: 달콤한 체리 난소 primordia에서 전 분 정량화의 대표적인 결과 다른 겨울 온도 조건의 2 년 동안 봄가 매월 수집. (A)이이 패널 표시 결과 2010-2011 년에서 추운 겨울을 했다 합니다. 놀 아 요 행 (눈송이) 1 월, 전 분의 최대 크기와 수반에 발생 했습니다. (B)이이 패널 했다 온화한 겨울 2011-2012 년에서 결과 표시 합니다. 놀 아 요 행 (눈송이) 2 월, 전 분의 최대 크기와 수반에 발생 했습니다. 값은 평균 ± 표준 오차의 의미. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

그림 5: 새싹과 달콤한 체리에서 난소 primordia에서 전 분 정량화의 휴면 상태를 평가 하기 위해 실험 디자인의 계획. (A)이이 패널의 휴면 상태 결정의 워크플로 보여 줍니다: 식물 소재 준비, 과정, 그리고 얻은 결과. (B)이이 패널 전 분 정량화의 워크플로 보여 줍니다: 전 분, 전 분의 이미지 분석 탐지 및 전 분 정량화의 현미경 관찰을 위한 새싹의 조직화 학적인 준비. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

저자는 공개 없다.