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진공 혈액 수집 시스템 및 안경 돋보기와 비 취 쥐의 꼬리 정 맥에서 혈 수정된

Research Article

진공 혈액 수집 시스템 및 안경 돋보기와 비 취 쥐의 꼬리 정 맥에서 혈 수정된

DOI: 10.3791/59136

February 2, 2019

Xiaoyan Liu*1, Huanhuan Li*1, Jie Wu1, Yijun Yu1, Mingjing Zhang1, Wusong Zou1, Ye Gu1

1Heart Center, Wuhan Fourth Hospital, Puai Hospital Affiliated to Tongji Medical College,Huazhong University of Science and Technology

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

In This Article

Summary Abstract Introduction Protocol Representative Results Discussion Disclosures Acknowledgements Materials References Reprints and Permissions

Erratum Notice

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Retraction Notice

The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice

Summary

이 연구 보고 안경 돋보기와 진공 추출 튜브 시스템을 사용 하 여 쥐에서 꼬리 정 맥에서 혈액 샘플링 합니다. 우리의 방법은 연습을 쉽게 이며 쥐에 반복 혈액 샘플링에 사용 될 수 있었다.

Abstract

혈액 샘플 컬렉션은 실험 동물 연구의 기초입니다. 그것은 다양 한 연구 목적에 대 한 적절 한 혈액 샘플을 얻기 위해 중요 합니다. 쥐의 꼬리 정 맥은 작은, 그리고 그것이 때로는 기존의 펑크 메서드에서 필요한 혈액 볼륨을 얻기 어렵다. 이 연구 조사는 진공 혈액 수집 시스템 및 안경 돋보기 (실험 그룹) 기존의 혈액 샘플링 방법 (기존의 그룹)에 비해의 사용을 통해 쥐의 꼬리 정 맥에서 반복 된 혈액 샘플 컬렉션의 우수성 각각 초보자와 전문가 의해 수행. 안경 돋보기의 도움으로, 나비 바늘 팁 실험적인 그룹에 있는 각 마우스의 꼬리 정 맥에 삽입 됩니다. 정 맥은 성공적으로 침투 하 고 때 혈액 샘플은 진공 혈액 컬렉션 튜브에 나비 바늘의 고무 끝의 삽입에 의해 진공 컬렉션 튜브에 수집 됩니다. 플런저 다음 기존의 그룹에 안경 돋보기의 도움 없이 혈액을 수집 하는 데 사용 됩니다. 초보자와 전문가 의해 혈액 샘플 컬렉션의 성공률 100% (p < 0.01) 대 70% 실험 그룹과 기존 그룹에서 85% (p < 0.01) 35%에서 보였다. 초보자와 전문가 모두에 대 한 펑크 시간 필요한 혈액 샘플을 얻기 위해 필요한 실험 그룹 (2.40 ± 0.75 2.90 ± 0.31 대, p < 0.05; 1.15 ± 0.37 1.55 ± 0.76, p < 0.05 대) 전통적인 그룹에 비해 훨씬 낮은 했다. 결론적으로, 제시 혈액 샘플링 기법 가능 하 고 연습을 쉽게 이며 비 취 쥐에서 적절 한 혈액 볼륨의 자주 샘플링을 가능 하 게.

Introduction

동물 실험에 관련 된에서 혈액 샘플링 기초 연구 기술입니다. 사용할 수 있는 몇 가지 기술이 있다 쥐에서 혈, 꼬리 자르는 등 및 심장, 역 궤도 총, 경 정 맥, 꼬리 정 맥, 그리고 베 나 정 맥의 puncturing. 이상적으로, 혈액 동물의 건강에 미치는 영향을 최소화와 최소 침 습 방식으로 수집 한다. 그러나, 가장 일반적으로 사용 되는 기술을 종종 동물에 스트레스를가 하 고 연구 결과1에 영향을 줄 수 있습니다. 복고풍 궤도 총에서 혈 쥐2에서 충분 한 혈액 량을 얻기 위해 사용할 수 있습니다. 그러나, 그것은 심각한 조직 손상 될 수 있습니다 하 고 짧은 시간 간격3에서 반복 해 서 혈액을 얻기 위해 허용 하지 않습니다.

꼬리 정 맥 행 쥐 시 최소한의 부상 혈액 컬렉션에 대 한 우수한 위치 이다. 그러나, 쥐의 꼬리 정 맥은 얇은, 그리고 그것이 때로는 기존의 펑크 기술을 통해 충분 한 혈액을 얻기 어렵다. 경우에 따라 반복된 자국 원하는 혈액 볼륨을 얻기 위해 필요 합니다. 마 취는 또한 일반적으로 쥐의 꼬리 정 맥에서 혈액 샘플링을 촉진 하기 위하여 권장 됩니다.  또한, 메스, 똑 바른 가장자리 면도기, 또는 날카로운가 위 필요한 혈액 샘플4를 꼬리의 끝을 제거 하려면 필요할 수 있습니다. 우리 혈액 오염의 위험을 감소 하 고 반복된 구멍5에 대 한 필요성을 피할 수 있는 진공 혈액 샘플 수집 시스템에 의해 이전 비 anaesthetized 쥐의 꼬리 정 맥에서 성공적인 혈액 컬렉션을 보고 있다. 이 연구는 비 취 쥐에 있는 유사한 혈액 수집 방법을 보고합니다.

Protocol

1입니다. 축산

  1. 12 주 오래 된 쿤밍 마우스를 사용 합니다.
    참고: 우리가 사용 하는 마우스 (n = 40, 20 남성, 37-46 g 의미 42.38 ± 2.39 g) 실험 동물 센터 Tongji 의학 대학에서.
  2. 식품 및 식 수와 표준 조건 하에서 쥐를 집. 계속 나무 면도을 530 cm2 장에 두 마우스 침구.
  3. 21-23 °C 사이 실내 온도 유지
  4. 일반 소금 다이어트로 쥐를 피드 (0.3 %NaCl) 연구를 통해.

2. 혈액 샘플 컬렉션

  1. 다음 장비 준비: 진공 튜브 (1 mL), 나비 바늘, 돋보기 안경, 그리고 플라스틱 금지 홀더. 멸 균 표면 (그림 1)에 넣어.
  2. 플라스틱 금지 홀더에 마우스를 놓고 따뜻한 물 (20-30 °C)로 꼬리를 세척 합니다. 70% 에탄올 포화 면봉 정 맥을 확장 하는 꼬리를 닦아냅니다. 오른쪽 또는 왼쪽 꼬리 정 맥 혈액 샘플링을 선택 합니다. 부드럽게 꼬리의 아래 부분을 파악 하 고 혈액 샘플 컬렉션 중에 바로 꼬리를 계속.
  3. 혈액을 수집 합니다. 두 그룹에서 혈액을 수집 하는 방법, 비교 하는 경우: "실험적인" 그룹 개발 했습니다, 아래 절차를 사용 하 여 및 "전통적인" 그룹 아래 제시 또한 전통적인 방법을 사용 하 여.
    1. 실험적 컬렉션:
      1. 꼬리 정 맥의 펑크에 대 한 보기를 개선 하기 위해 안경 돋보기를 착용. 22 G 나비 바늘 팁 하나는 천사 약 10°, 꼬리의 기지에 쪽으로 이동 하는 여러 개의 샘플에 대 한 꼬리의 위치 distally 끝에서에서 약 절반 거리에 측면 꼬리 정 맥에 삽입 합니다.
      2. 진공 혈액 컬렉션 튜브를 수집 혈액 (그림 2)에 나비 바늘의 고무 끝을 삽입 합니다.
        참고: 경우에 혈액 혈액 수집 하는 동안 밖으로 흐르는 중지, 바늘 각도 수 신속 하 게 조정 한다. 바늘에 혈액 응고를 방지 하려면 다른 빵 꾸 위치를 선택 해야 합니다 15 후 밖으로 흐르는 혈액 중지 하는 경우 s.
    2. 전통적인 방법:
      1. 연결 된 주사기에는 거리의 측면 혈관 약 1 / 3의 하나로 distally 꼬리의 끝에서 바늘을 삽입 합니다.
      2. 피는 허브에 표시 하는 때, 혈액 (그림 3)7수집을 천천히 플런저를 후퇴.
        참고: 추가 혈액 컬렉션으로 다양 한 경험의 효과 명료 하 게, 하는 초보자와 전문가 선정 됐다 실험 및 전통적인 방법을 사용 하 여 동시에 혈액 샘플을 수집 하.
  4. 혈액 수집 후 바늘을 제거 하 고 출혈을 막으려고 펑크 포인트를 누릅니다. 다음, 플라스틱 금지 홀더에서 마우스를 해제 하 고 그것의 감 금 소를 마우스를 반환 합니다.
    참고: 그것은 알려졌다는 최대 총 혈액의 10% 볼륨 수 안전 하 게 2 주 간격으로8에서 건강 한 동물에서 제거, 그래서 약 175 µ L 혈액의 윤리적 원칙에 따라 각 시간 수집 된.
  5. EDTA와 튜브를 사용 하 여 플라즈마를 수집 하 여 응고 하지 않고 튜브를 사용 하 여 혈 청을 수집. 부드럽게 여러 번 튜브를 반전 하 고 수직으로 얼음에 넣어.
  6. 혈액 샘플 컬렉션 튜브 플라스마와 혈 청을 10 분 1000 x g에서 냉장된 원심 분리기에 원심
    참고: 성공적인 혈액 컬렉션 얻기 175 µ L의 각 시간으로 정의 됩니다. 3 개 이상 구멍을 시도해 야 하 고 실패 한 혈 세 번째 찔린 후 총 혈액 양의 미만 175 µ L로 정의 됩니다. 샘플링 기간 후 혈액 컬렉션 바늘의 제거를 꼬리 정 맥 빵 꾸에서 시간으로 정의 됩니다.
  7. 두 번 간격 2 주8의 혈액을 수집 합니다.

3. 통계 분석

  1. 상업적으로 이용 가능한 통계 소프트웨어를 사용 하 여 분석을 위해. 사용 하 여 p < 0.05 컷오프 통계적 의미에 대 한 평균값이 ± 표준 편차로 데이터를 제시.

Representative Results

신체 질량, 혈액 컬렉션 볼륨, 및 두 그룹의 샘플링 기간
혈액 샘플은 각 그룹에서 2 주 간격 두 번 20 쥐 (10 컷)에서 수집 했다. 쥐의 평균 몸 질량 각각 초보자를 위한 실험 및 기존 단체와 전문가 사이 유사 했다 (42.40 g ± 42.65 g ± 1.14 g 대 1.42 g, p > 0.05; 42.55 g ± 2.91 g 대 43.20 g ± 2.69 g p > 0.05). 수집 된 혈액 볼륨 및 샘플링 기간 전문가 (171.75 µ L ± 25.61 µ L, p > 0.05 대 184.25 µ L 11.95 ± µ L, 1.85 분 ± 2.17 분 ± 0.80 분, p > 0.05 대 0.68 분)에 두 그룹 사이 유사 했다. 그러나, 더 높은 수집된 혈액 볼륨 및 더 짧은 샘플링 기간 초보자 (148.50 µ L ± 30.22 µ L, p < 0.01 대 172.00 µ L ± 15.17 µ L, 3.11 분 ± 4.08 분 ± 0.61 분, p < 0.01 대 0.44 분)에서 전통적인 그룹에 비해 실험적인 그룹에서 보였다. 초보자에 비해, 전문가 들은 더 높은 혈액 볼륨 수집과 낮은 샘플링 (184.25 µ L 11.95 ± µ L 172.00 µ L ± 15.17 µ L, p < 0.01 대 148.50 µ L ± 30.22 µ L, p < 0.05 대 171.75 µ L ± 25.61 µ L, 1.85 분 ± 0.68 실험 하 고 기존의 방법을 사용 하 여 시간을 보여주었다 3.11 분 ± 0.44 분, p < 0.01; 대 분 2.17 분 ± 4.08 분 ± 0.61 분, p < 0.05 대 0.80 분) (표 1).

두 그룹의 펑크 시간과 성공률
초보자와 전문가 사이 성공률의 비교에서에서 100% (20/20) (p < 0.01) 실험적인 그룹 및 35% 대 70% (14/20) 했다 (7/20) 85% (17/20) (p < 0.01) 전통적인 그룹에 대. 높은 성공률 또한 초보자에서 전통적인 그룹에 비해 실험적인 그룹에서 보인 [35% 대 70% (14/20) (7/20), p < 0.05]. 초보자와 전문가 모두에 구멍의 수 실험 그룹 (2.40 ± 0.75 2.90 ± 0.31 대, p < 0.05; 1.15 ± 0.37 1.55 ± 0.76, p < 0.05 대) 전통적인 그룹에 비해 훨씬 낮은 했다. 초보자에 비해, 전문가 대 한 낮은 펑크 시간 실험 하 고 기존의 방법을 사용 하 여 관찰 되었다. (1.15 ± 0.37 2.40 ± 0.75 대, p < 0.01; 2.90 ± 0.31, p < 0.01 대 1.55 ± 0.76) (표 1)입니다.

버퍼 및 챔버를 사용한 전기영동 설정; DNA 분리 방법; 실험실 장치 배치.
그림 1: 장비. 1 mL 진공 혈액 컬렉션 튜브와 22 G 나비 바늘 (왼쪽), 안경 돋보기 (중간), 그리고 플라스틱 금지 홀더 (오른쪽)은입니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

수술 절차 설정, 동물 해부 실험, 메스 및 주사기를 사용하는 연구원.
그림 2: 실험 그룹에서 성공적인 혈. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

조직 샘플에 주사기 주입, 실험실 실험, 근접 촬영, 의학 연구 방법.
그림 3: 기존 그룹에 성공적인 혈. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

실험 그룹 기존 그룹
초급 전문가 초급 전문가
신체 질량 (g) 42.4±1.42 42.55±2.91 42.65±1.14 43.20±2.69
수집 된 혈액 볼륨 (µ L) 172.00±15.17 184.25±11.95# 148.50±30.22* 171.75±25.61#
샘플링 기간 (분) 3.11±0.44 1.85±0.68# 4.08±0.61* 2.17±0.80#
혈액 컬렉션 시간 20 20 20 20
구멍의 평균 수 2.40±0.75 1.15±0.37# 2.90±0.31* 1.55±0.76# # *
한 번 빵 꾸 3 17 0 12
두 번 펑크 6 3 2 5
세 번 펑크 5 0 5 0
실패 6 0 13 3
성공률 70% 100%# 35%* 85%#

표 1: 실험과 기존 그룹 사이 결과의 비교. * p < 0.05 * * p < 0.01, 종래의 방법 대 실험 방법. #p < 0.05, ##p < 0.01, 초급 전문가 대.

Discussion

저자는 공개 없다.

Disclosures

이 연구 보고 안경 돋보기와 진공 추출 튜브 시스템을 사용 하 여 쥐에서 꼬리 정 맥에서 혈액 샘플링 합니다. 우리의 방법은 연습을 쉽게 이며 쥐에 반복 혈액 샘플링에 사용 될 수 있었다.

Acknowledgements

이 작품은 지원 [보조금 번호 2018CFB761] 후베이 성, 중국의 자연 과학 재단 부여에 의해.

Materials

를 위한 1.5x 일반 소금 식단 통계 분석을위한
양심 바늘Shanghai Kang Nong medical instrument co., LTD, China2016315171822G (0.7 mm x 25 mm)
안경 돋보기Vergroberung
생쥐생쥐는 연구 기간 동안 일반 소금 식단(0.3% NaCl)을 받았습니다.
플라스틱 홀더상하이 강 Nong 의료 기기 유한 공사, 중국35-45 g 쥐 hoder
SPSS 소프트웨어SPSS Inc, 시카고; 미국버전 17.0.
주사기산동 wego 의료 고분자 제품 유한 회사, 중국20160911A1 mL (일치하는 바늘 크기 : 0.45 × 16RW LB)
진공 혈액 수집 시스템Wuhan Zhi Yuan, Medical Science and Technology co., LTD, China201712221 mL (Φ 12.4&회; L75)

References

  1. Grouzmann, E., et al. Blood sampling methodology is crucial for precise measurement of plasma catecholamines concentrations in mice. European Journal of Physiology. 447 (2), 254-258 (2003).
  2. Heimann, M., Roth, D. R., Ledieu, D., Pfister, R., Classen, W. Sublingual and submandibular blood collection in mice: a comparison of effects on body weight, food consumption and tissue damage. Lab Animal. 44 (4), 352-358 (2010).
  3. Heimann, M., Kasermann, H. P., Pfister, R., Roth, D. R., Burki, K. Blood collection from the sublingual vein in mice and hamsters: a suitable alternative to retrobulbar technique that provides large volumes and minimizes tissue damage. Lab Animal. 43 (3), 255-260 (2009).
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  5. Zou, W., et al. Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System. Journal of Visualized Experiments. (130), (2017).
  6. Kilkenny, C., Altman, D. G. Improving bioscience research reporting: ARRIVE-ing at a solution. Lab Animal. 44 (4), 377-378 (2010).
  7. Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. Blood sample collection in small laboratory animals. Journal of Pharmacology and Pharmacotherapeutics. 1 (2), 87-93 (2010).
  8. Diehl, K. H., et al. A good practice guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes. Journal of Applied Toxicology. 21 (1), 15-23 (2001).
  9. Wollowitz, A., Bijur, P. E., Esses, D., John Gallagher, E. Use of butterfly needles to draw blood is independently associated with marked reduction in hemolysis compared to intravenous catheter. Academic Emergency Medicine. 20 (11), 1151-1155 (2013).
  10. Eder, J. M., Cutter, G. R. A new device for collecting cord blood. Obstetrics and Gynecology. 86 (5), 850-852 (1995).

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