방법 논문

시험관 내에서 인간 망막 모세포종 재건

DOI:

10.3791/62629

⸱

2022년 10월 11일

 , 
1Beijing Institute of Ophthalmology, Beijing Tongren Eye Center, Beijing Tongren Hospital, Capital Medical University, Beijing Ophthalmology & Visual Science Key Laboratory

이 논문에서

요약

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

우리는 인간 배아 줄기 세포 (hESC)에 이중 대립 유전자 RB1 돌연변이를 도입하여 인간 망막 모세포종 (RB)을 생성하는 방법을 설명합니다. RB 세포주는 또한 접시에서 단리된 RB를 사용하여 성공적으로 배양될 수 있었다.

초록

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

인간 RB는 소아암으로 치료를 시행하지 않으면 치명적입니다. RB는 설치류 모델에서 비교적 드문 원뿔 전구체에서 유래하기 때문에 인간과 설치류의 종간 차이와 관련하여 인간에서 파생 된 질병 모델은 인간 RB의 메커니즘을 밝히고 치료 대상을 찾는 데 더 유리합니다. 본원에서, 프로토콜은 각각 이대립유전자 RB1 점 돌연변이(RB1 Mut/Mut) 및 RB1 녹아웃 돌연변이(RB1-/-)를 갖는 2개의 유전자 편집된 hESC 계통의 생성을 기술한다. 망막 발달 과정에서 RB의 형성이 관찰됩니다. RB 세포주는 또한 RB 오가노이드로부터 분리함으로써 확립된다. 전체적으로 2D 및 3D 결합 분화 프로토콜을 사용하여 유전자 편집 hESC 라인을 망막 오가노이드로 분화함으로써 우리는 접시에서 인간 RB를 성공적으로 재구성하고 원뿔 전구체 기원을 확인했습니다. 망막 모세포종의 발생, 증식 및 성장을 관찰하고 새로운 치료제를 추가로 개발하는 데 유용한 질병 모델을 제공 할 것입니다.

서론

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

인간 망막 모세포종 (RB)은 망막 원뿔 전구체 1,2,3에서 유래 한 희귀하고 치명적인 종양이며, 어린 시절에 가장 흔한 유형의 안구 내 악성 종양입니다4. RB1 유전자의 동형접합체 불활성화는 RB5에서 개시되는 유전적 병변이다. 그러나, RB1 돌연변이를 갖는 마우스는 망막 종양2를 형성하지 못한다. 마우스 종양은 Rb1 돌연변이 및 다른 유전자 변형의 조합으로 생성 될 수 있지만, 여전히 인간 RB6의 특징이 부족합니다. 망막 오가노이드 분화의 발달 덕분에, 인간 RB1의 특성을 나타내는 hESC 유래 RB를 얻을 수 있었다.

망막 오가노이드 분화를 위한 수많은 프로토콜이 지난 10년 동안 확립되었으며, 여기에는 2D7, 3D8, 2D 및 3D9의 조합이 포함됩니다. 인간 RB를 생성하기 위해 여기에서 사용되는 방법은 부착 문화와 부유 문화의 통합입니다9. RB1 돌연변이 된 hESC를 망막 오가노이드로 분화시킴으로써 RB의 형성은 약 45 일에 검출 된 다음 약 60 일에 빠르게 증식합니다. 90일째에, RBs의 단리 및 RB 세포주의 생성이 가능하다; 또한, RB는 120일째에 거의 모든 망막 오가노이드를 둘러싸고 있다.

hESC 유래 RB는 RB의 기원, 종양 발생 및 치료법을 탐구하기 위한 혁신적인 모델입니다. 이 프로토콜에서는 유전자 편집 hESC의 생성, RB의 분화 및 RB에 대한 특성화가 상세히 설명된다.

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프로토콜

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

이 연구는 수도 의과 대학 베이징 통렌 병원의 기관 윤리위원회의 승인을 받았습니다. H9 hESC는 와이셀 연구소에서 입수합니다.

1. RB1 돌연변이 hESC의 생성

  1. RB1의 녹아웃(KO)에 대한 CRISPR/Cas9 표적 벡터.
    1. 한 쌍의 sgRNA를 설계합니다. RB1의 절제를 위해, 이 유전자의 첫 번째 엑손을 표적으로 한다. 정방향 프라이머 서열은 CACCGCGGTGGCGGCCGTTTTTCGGG이고, 역방향 프라이머 서열은 AAACCCGAAAAACGGCCGCCACCGC이다.
      참고: 특정 RB1 돌연변이의 경우 복구된 템플릿도 필요합니다. 이 프로토콜에서는 RB1-KO 세포주가 예로 사용됩니다.
    2. 제조업체의 지침에 따라 37°C에서 30분 동안 pX330-U6-키메라 BB-CBh-hSpCas9-2A-Puro( 재료 표 참조)를 사용하여 1μg의 pX330-U6-키메라 BB-CBh-hSpCas9-2A-Puro를 30분 동안 분해합니다.
    3. 제조업체의 지침에 따라 정제 키트를 사용하여 소화된 플라스미드를 정제합니다.
      참고: 효소 반응은 정제 키트를 사용하여 아가로스 겔 없이 직접 세척할 수 있습니다( 재료 표 참조).
    4. 포스포릴 및 어닐링 올리고의 각 쌍을 T4 폴리뉴클레오티드 키나제 (PNK)를 사용하여 반응시켜 1 μL의 올리고1 (100 μM), 1 μL의 올리고2 (100 μM), 1 μL의 10x T4 라이게이션 완충액, 6.5 μL의ddH2O, 및 0.5 μL의 T4 PNK를 포함한다.
      참고: 1.1.1단계의 정방향 및 역방향 프라이머는 한 쌍의 올리고입니다. 올리고를 인산화 및 어닐링하여 하기 파라미터를 사용하여 열순환기에서 어닐링한다: 30분 동안 37°C; 5 분 동안 95 °C; 분당 5 °C에서 25 °C까지 램프 다운.
    5. 실온(RT)에서 뉴클레아제가 없는 물 199μL에 1μL의 올리고시약을 첨가하여 인산화 및 어닐링된 올리고를 200배 희석합니다.
    6. 결찰 반응을 설정하고 다음을 혼합하여 RT에서 10분 동안 배양합니다: 1.1.3단계에서 Bbs1 분해된 플라스미드 50ng, 1.1.5단계에서 올리고 듀플렉스 1μL, 2x 결찰 완충액 5μL, 리가아제 1μL, 뉴클레아제가 없는 물을 사용하여 최대 10μL를 채웁니다.
    7. 결찰 혼합물을 변형시키고 다음 단계를 위해 양성 콜로니를 시퀀싱합니다.
      알림: 시퀀싱을 위해 U6 정방향 또는 역방향 프라이머를 사용하십시오.
      1. 얼음에서 유능한 세포를 해동하십시오.
      2. 1.5mL 미세 원심분리 튜브에 50μL의 적격 세포를 취합니다.
      3. 1.1.6단계의 결찰 혼합물 1μL를 적격 세포에 추가합니다.
      4. 튜브를 위아래로 세 번 피펫팅하여 부드럽게 혼합합니다.
        알림: 소용돌이하지 마십시오.
      5. 혼합물을 얼음에 30 분 동안 두십시오.
      6. 혼합물을 42°C에서 90초 동안 열충격.
      7. 항생제가 없는 실온 루리아-베르타니(LB) 국물 950μL를 튜브에 추가합니다.
      8. 튜브를 셰이커에 넣고 37°C에서 300rpm으로 60분 동안 돌립니다.
      9. LB 플레이트(펩톤, 카제인에서 추출한 펩톤, 염화나트륨, 한천, 암피실린)를 미리 37°C로 따뜻하게 합니다.
      10. 50-100 μL의 세포와 결찰 혼합물을 RT의 플레이트에 퍼뜨립니다.
      11. 플레이트를 37°C에서 밤새 인큐베이션한다.
      12. 플레이트에서 12 개의 콜로니를 집어 들고 암피실린으로 LB 배지로 옮깁니다. 배지를 셰이커에 300rpm으로 60분 동안 놓습니다.
      13. 1μL의 박테리아 용액(1.1.7.12단계에서)을 PCR용 템플릿으로 사용하고 양성 콜로니를 선택합니다.
      14. U6 프라이머에 의해 양성 콜로니를 서열화하고, 다음 단계에서 설계된 sgRNA 서열과 함께 콜로니를 사용한다.
    8. 미디 키트를 사용하여 플라스미드를 추출합니다(재료 표 참조).
      참고: 미니 키트를 사용하는 플라스미드의 품질과 양은 다음 핵 절제 실험에 충분하지 않습니다. 미디 또는 맥시 키트가 미니 키트보다 더 적합합니다.
  2. HESC 배양 및 핵체.
    알림: 모든 시약을 RT로 예열합니다.
    1. 1 x 10 6 H9 세포를 10 μM Y-27632 (ROCK 억제제) 및 2 mL의 새로운 ncEpic-hiPSC/hESC 배양 배지로 사전 코팅된6 웰 플레이트에 해동합니다.
      알림: 사용하기 전에 6웰 플레이트를 1% 성장 계수가 감소된 기저막 매트릭스로 30°C에서 최소 37분 동안 코팅하십시오.
    2. 다음날 상청액을 제거하고 1x Dulbecco의 인산염 완충 식염수(DPBS)로 세포를 헹군 다음 2mL의 새로운 ncEpic-hiPSC/hESC 배양 배지를 추가합니다.
    3. 세포가 약 80% 컨플루언시로 성장할 때까지 다음 3-5일 동안 2mL의 새로운 ncEpic-hiPSC/hESC 배양 배지로 매일 배지를 교체합니다.
    4. 1회 또는 2회 계대하여 hESC의 상태를 조정한다.
      참고: hESC의 상태를 식별하는 가장 쉬운 방법은 형태입니다.
    5. 미분화 H9 세포를 80% 컨플루언시에 도달할 때까지 6웰 플레이트에서 배양합니다.
    6. 10μM의 Y-27632와 혼합된 2mL의 새로운 ncEpic-hiPSC/hESC 배양 배지로 뉴클레오펙션 2시간 전에 배지를 변경하고 1% 성장 인자 감소 기저막 매트릭스를 사용하여 12웰 플레이트의 한 웰을 프리코팅합니다.
    7. 배지를 흡인하고 예열된 DPBS 1mL로 헹굽니다.
    8. DPBS를 제거하고 1mL의 세포 해리 효소( 재료 표 참조)와 함께 37°C에서 3.5분 동안 배양합니다.
    9. 1mL의 새로운 ncEpic-hiPSC/hESC 배양 배지를 세포에 추가하고 피펫을 두 번 수행하여 H9 세포를 단일 세포 현탁액으로 만듭니다.
    10. 세포 계수를 위해 혼합물 100μL를 꺼내고 남은 혼합물을 내부에 다른 2mL의 ncEpic-hiPSC/hESC 배양액이 들어 있는 15mL 원심분리 튜브로 옮깁니다.
    11. 200 x g 에서 5분 동안 원심분리합니다. 상청액을 제거하고 약 2 x 106 세포를 100 μL 반응 부피로 재현탁시킨다. 제조업체의 프로토콜에 따라 세포, 플라스미드, 핵 절제 및 반응 조건에 대한 부피를 최적화합니다. 이 프로토콜에 사용된 핵 형성 시스템에 대한 재료 표를 참조하십시오.
      알림: 일반적으로 핵형성 중에는 기포가 허용되지 않습니다.
    12. 형질감염 후 세포를 사전 코팅된 12웰 플레이트로 옮기고 1.5mL의 ncEpic-hiPSC/hESC 배지와 10μM의 Y-27632를 보충한 다음 37°C, 5%CO2 인큐베이터에서 세포를 배양합니다.
    13. 매일 매체를 교체하십시오. 48시간 후, 약 1주일 동안 세포 선택을 위해 2μg/mL의 퓨로마이신을 추가합니다.
      참고: 처음 3일 동안 수많은 세포가 죽습니다. 나머지 세포는 퓨로마이신 선택 후 다음 주에 증식하여 콜로니로 생성될 수 있습니다. 선택 주에 배지에 항상 2μg/mL의 퓨로마이신이 포함되어 있는지 확인하십시오.
    14. 현미경으로 수동으로 식민지를 선택하십시오.
      참고: 콜로니 형태는 hES 콜로니와 동일합니다. 배지에 10μL 흰색/일반 피펫 팁을 사용하여 콜로니를 조각(콜로니당 2-6개)으로 자르고 하나의 콜로니를 12웰 플레이트의 사전 코팅된 웰 하나에 옮깁니다.
    15. 먼저, RB1 돌연변이 및 오프 타겟 상황을 확인한 다음(표 1), RB1 녹아웃 H9 세포주를 특성화하기 위해 다능 성을 확인하였다.
      참고: PCR 및 생어 시퀀싱을 사용하여 RB1 돌연변이 및 표적 외 상황을 감지합니다. RT-PCR 및 면역 형광으로 다 능성 마커를 확인하십시오.

2. 인간 망막 모세포종의 생성

  1. RB1-KO hESC의 유지 보수.
    1. 유전자 편집 H9 세포를 성장인자 감소 기저막 매트릭스가 코팅된 6웰 플레이트에서 2mL의 ncEpic-hiPSC/hESC 배양액으로 배양하고 배지를 매일 교체합니다.
    2. EDTA 완충액을 사용하여 37°C에서 3.5분 또는 RT에서 5분 동안 계대배양.
      참고: EDTA 완충액은 1x DPBS, 5mM EDTA 및 0.9mg/mL의 NaCl의 혼합물입니다.
  2. 망막 세포 분화.
    알림: 차별화 전에 배지 I을 준비하십시오. 배지 I을 준비하려면 Dulbecco의 변형 독수리 배지 (DMEM) / 영양소 혼합물 F-12 (F12)-글루타민 (1x) 24.5mL, 뉴런 기초 배지 24.5mL, 100x 보충제 A 250μL, 50x 보충제 B 500μL, 0.1mM ß- 메르 캅토 에탄올 및 100x L- 글루타민 250μL를 혼합합니다. 사용하기 전에 모든 혼합물을 RT로 예열하십시오.
    1. RB1-KO hESC를 6-웰 플레이트의 한 웰에서 80% 합류점으로 성장시킨다.
    2. 배지를 제거하고 1mL의 1x DPBS로 세포를 헹굽니다.
    3. 1mL의 디스파제 완충액( 재료 표 참조)을 사용하여 37°C에서 5분 동안 세포 콜로니를 상승시킵니다.
      참고: 현미경으로 세포 콜로니를 확인하십시오. 일반적으로 식민지의 가장자리가 펼쳐지는 데 5 분이 걸립니다.
    4. 디스파제 완충액을 흡인하고 1mL의 1x DPBS로 세포를 한 번 부드럽게 헹굽니다.
    5. 1mL의 중간 I을 웰에 추가합니다.
    6. 콜로니를 조각(콜로니당 6-9개)으로 자르고 배지에 10μL의 흰색/일반 피펫 팁을 넣습니다.
      참고: 일반적으로 셀의 약 60%-70%가 웰에서 분리됩니다. 세포 스크레이퍼를 사용하여 배지에 남아 있는 세포를 긁어냅니다.
    7. 15mL 튜브에서 200 x g 로 5분 동안 원심분리하여 모든 세포를 수확합니다.
    8. 약 50 μL의 상청액을 배지에 남겨두고 세포를 분산시킨 다음, 세포를 250 μL의 성장 인자와 혼합하여 부드러운 교반에 의해 기저막 매트릭스를 감소시킨다.
      알림: 성장 인자 감소 된 기저막 매트릭스를 사용하기 전에 4 ° C 또는 얼음 위에 보관하십시오. 분취하여 -20 °C에서 보관하는 경우 사용하기 전에 밤새 또는 최소 1 시간 동안 4 ° C에 두십시오.
    9. 부유 세포가 있는 15mL 튜브를 37°C 인큐베이터에 20분 동안 보관합니다.
      참고: 세포와 성장 인자 감소 기저막 매트릭스가 응고된 겔을 형성하는지 확인하십시오.
    10. 1mL 튜브에 1mL의 배지 I을 추가한 다음 응고된 겔을 2-3회 가볍게 피펫하여 1mL 피펫으로 덩어리를 분산시킵니다.
    11. 9mL의 배지 I을 추가하고 세포 현탁액을 10cm 세포 배양 접시에 옮깁니다.
    12. 접시를 5%CO2 가 있는 37°C 인큐베이터로 옮기고 하루를 0일로 설정한다.
    13. 1일째에 현미경을 사용하여 세포를 검사합니다.
      알림: 접시에서 수천 개의 속이 빈 낭종이 관찰 될 수 있습니다. 평균적으로 한 조각의 젤에서 3-4 개의 낭종이 관찰됩니다.
    14. 5 일째에 매체를 변경하십시오. 상청액을 15mL 튜브에 모으고 낭종이 바닥에 가라앉을 때까지 기다린 다음 배지를 제거하고 새로운 배지 I로 교체합니다.
      알림: 4일째에 배지가 노란색으로 변하면 4일째에 배지를 교체하고 그렇지 않으면 5일째에 배지를 교체하십시오. 원래 접시에 신선한 배지 I 10mL를 추가합니다. 수백 개의 낭종이 이미 배양 표면에 부착되어 있습니다. 그들을 거기에 보관하십시오.
    15. 튜브의 낭종을 두 개의 10cm 접시에 분산시킵니다.
      알림: 접시에 최소 300개의 낭종이 있는지 확인하십시오. 낭종이 합류하지 않으면 낭종을 다른 접시로 분리하지 마십시오. 원래 10cm 접시에 다시 넣으십시오.
    16. 7 일째에 대부분의 낭종 (95 % 이상)이 접시에 붙어 퍼지고 부착 된 식민지를 형성합니다.
      참고: 빠르면 3일째에 부착된 콜로니를 관찰할 수 있습니다.
    17. 10 일째에 신선한 배지 I로 배지를 교체하십시오. 모든 낭종이 접시에 붙어 있는지 확인하십시오.
    18. 다음 단계 전에 DMEM 36mL, F12 12mL, 보충제 B 2%(v/v), 0.1mM MEM 비필수 아미노산 용액(NEAA)을 혼합하여 배지 II를 준비합니다.
    19. 세포가 13-17 일까지 퍼져 있는지 확인하십시오. 세포가 퍼져 있지만 이웃 콜로니와 상호 작용하지 않는 15 일째에 다음 단계를 수행하십시오.
    20. 1mL의 DPBS로 세포를 한 번 헹구고 1mL의 디스파제 용액을 37°C에서 5분 동안 추가합니다.
      참고: 5분 이내에 셀의 가장자리가 올라갑니다.
    21. 디스파제 완충액을 제거하고 1mL의 1x DPBS로 배양물을 부드럽게 헹굽니다.
    22. 각 10cm 접시에 배지 II 10mL를 추가하고 37°C, 5%CO2 배양기에서 배양합니다.
    23. 부착 된 배양 물은 24 시간 후에 자발적으로 분리되어 망막 유기체로 조립됩니다.
      참고: 유기체를 형성하지 않는 수많은 세포는 다음 2일 이내에 사망합니다.
    24. 분리 3일 후, 세포 배양 접시에서 세포를 수집하고 오가노이드가 15mL 튜브에 침전되도록 합니다.
    25. 튜브에서 상청액을 제거하고 오가노이드를 다음 4일 동안 10mL의 배지 II가 있는 새로운 비부착성 접시(페트리 접시)로 옮깁니다.
    26. DMEM : F12를 3 : 1 비율 (v / v), 2 % 보충 B (v / v), 0.1 mM MEM 비 필수 아미노산 용액 (NEAA), 8 % 태아 소 혈청 (FBS) (v / v), 100 μM 타우린 및 2 mM 글루타민.
    27. 분리 일주일 후 매체를 중간 III으로 변경하십시오.
    28. 이 날부터 배지 III에서 오가노이드를 배양하고 일주일에 두 번 배지를 새로 고칩니다.
  3. RB 세포주의 확립.
    알림: 모든 시약은 RT에서 예열됩니다.
    1. 90일째에 RB(80%-90%)는 망막 오가노이드를 포함합니다. 따라서, RB 세포주의 생성을 위해 90일간 RB 오가노이드를 선택한다.
    2. 로스웰 파크 기념 연구소(RPMI)-1640 배지를 10% FBS와 혼합하여 1640 배지를 준비합니다.
    3. RPMI-20 배지에서 현미경으로 현미경으로 미세 수술 칼로 RB를 조각 (RB 당 25-1640 개)으로 자릅니다.
    4. RPMI-1640 배지를 제거하고 조각을 0.25% 트립신/EDTA로 37°C에서 10분 동안 처리합니다.
    5. RPMI-1640 배지를 추가하여 반응을 종료하고 200 x g 에서 5분 동안 원심분리합니다.
    6. 상청액을 제거하고 세포를 부착되지 않은 접시의 1640 배지에 재현탁시킨다.
    7. RB 세포주는 부유 배양물이다. 배지를 일주일에 두 번 교체하고 2주 이내에 RB 세포를 계대합니다.
      참고: 1차 RB 세포의 증식 속도는 매우 느립니다.

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결과

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

RB 생성 절차는 부착 및 부유 배양을 결합한 그림 1에서 설명됩니다. hESC로부터 인간 RB1-KO를 수확하고, RB 오가노이드를 단리함으로써 RB 세포주를 수득할 수 있었다.

여기서 프로토콜은 다양한 단계의 차별화에 대한 세부 정보를 제공합니다(그림 2). 속이 빈 구체는 처음 3일 동안 형성되어 배양 표면에 부착된 다음 확장됩니다(그림 2A-E). 15일째부터, 세포는 상승되고 현탁액에서 배양된다(도 2F). 분리 다음 날, 망막 유기체가 형성되고 밝은 테두리가 보입니다 (그림 2G, 검은 색 화살표). 또한, 유기체 외부의 세포는 다음 주에 죽을 가능성이 있습니...

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토론

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

인간 망막 모세포종 (RB)은 RB1 의 불 활성화와 Rb 단백질의 기능 장애로 인해 발생합니다. 이 프로토콜에서 RB1-KO hESC는 접시에서 RB를 생성하는 중추적인 단계입니다. RB1-/- hESC를 사용하더라도 망막 오가노이드 분화 방법으로 인해 RB 형성이 없을 가능성이 있습니다10. 이 프로토콜에서 순응 문화에서 부유 문화로의 이전은 차별화 과정에서 필수적입니다. 낭종의 밀도, 만능 줄기 세포의 유형 및 증식 속도는 모두 박리 시기에 영향을 미치는 변수입니다. 세포가 확장될 때 세포를 분리하는 것이 바람직하지만이웃 콜로니에 의해 상호작용하지 않는다9. 콜로니가 인접하면 인접한 망막 오가노이드로 이어지고 분화 효율이 감소합니다.

단계를 비판적으로 따르면 RB를 수확하는 데 문제가 없을 것입니다. 그러나, 이 방법은 R...

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공개 사항

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

저자는이 연구의 객관성에 영향을 미칠 수있는 제휴, 회원 자격, 자금 또는 금융 보유에 대해 알지 못합니다.

감사의 글

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

모든 도움을 주신 502 팀에 감사드립니다. 이 연구는 Beijing Municipal Natural Science Foundation (Z200014)과 National Key R & D Program of China (2017YFA0105300)의 지원을 부분적으로 받고 있습니다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
2-메르캅토에탄올Life Technologies21985-023
Anti-ARR3SigmaHPA063129항체
Anti-CRX (M02)AbnoveABN-H00001406-M02항체
Anti-Ki67Abcam  ab15580항체
Anti-Syk (D3Z1E)Cell Signaling Technology13198항체
BbsINEBR3539S제한 효소
Dispase (1U/mL)Stemcell Technologies7923
DMEM basicGibco10566-016
DMEM/F-12-GlutaMAXGibco10565-042
DMSOSigmaD2650
DPBSGibcoC141905005BT
EDTAThermo15575020
Fetal Bovine Serum (FBS), Human Embryonic Stem CellsBiological Industry04-002-1A
글루타민Gibco35050-061
Ham's F-12 영양 혼합물 (Hams F12)Gibco11765-054
MEM Non-essential Amino Acid Solution (100X)SigmaM7145
Neurobasal MediumGibco21103-049
P3 Primary Cell 4D-Nucleofector X Kit SLonzaV4XP-3032Nucleofection kit
Pen StrepGibco15140-122
PuromycinGene OperationISY1130- 0025MG
QIAquick PCR 정제 키트QIAGEN28104
ncEpic-hiPSC/hESC 배양 배지NuwacellRP01001ncEpic-hiPSC/hESC 배양 배지, 1.2.1
성장 인자 감소 기저막 매트릭스BD356231Matrigel, 1.2.1
세포 해리 효소Gibco12563-011TrypLE Express, 1.2.8
RNeasy Midi KitQIAGEN75144
RNeasy 미니 키트QIAGEN74104
보충제 ALife Technologies17502-048N-2 보충제(100X), 액체, 메둘 내 보충제
I 보충제 BLife Technologies17105-041B-27 보충제(50X), 액체, 메둘 내 보충제 I,II,III
T4 폴리뉴클레오티드 키나아제라이프 테크놀로지EK0032
타우린시그마T-8691-25G
Y-27632 2HClSelleckS1049
pX330-U6- 키메라 BB-CBh-hSpCas9-2A-PuroAddgene42230
Nucleofector 4DLonza
RPMISigmaR0883-500ML
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참고문헌

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