이 콘텐츠를 보려면 JoVE 구독이 필요합니다. 로그인하거나 오늘 무료 평가판을 시작하세요.

방법 논문

인간 유도 만능 줄기 세포와 그 신경 및 신경교 유도체에서 여러 미토콘드리아 파라미터의 유세포 분석

5.3K 조회수

⸱

DOI:

10.3791/63116

⸱

2021년 11월 8일

 ,  ,  , 
1Department of Clinical Medicine (K1), University of Bergen, 2Neuro-SysMed, Center of Excellence for Clinical Research in Neurological Diseases, Haukeland University Hospital, 3Department of Neurosurgery, Qilu Hospital and Institute of Brain and Brain-Inspired Science, Cheeloo College of Medicine, Shandong University, 4Shandong Key Laboratory of Brain Function Remodeling

* These authors contributed equally

이 논문에서

요약

이 연구는 미토콘드리아 부피, 미토콘드리아 막 전위, 활성 산소 종 수준, 미토콘드리아 호흡 사슬 조성 및 미토콘드리아 DNA의 변화를 감지하기 위해 두 개의 형광 리포터 또는 항체를 사용한 유세포 분석 및 이중 염색을 기반으로 여러 미토콘드리아 기능 매개 변수를 측정하는 새로운 접근 방식을보고합니다.

초록

미토콘드리아는 많은 신경 퇴행성 질환의 병태생리학에서 중요하다. 미토콘드리아 부피, 미토콘드리아 막 전위 (MMP), 활성 산소 종 (ROS)의 미토콘드리아 생산 및 미토콘드리아 DNA (mtDNA) 복제 수의 변화는 종종 이러한 과정의 특징입니다. 이 보고서는 인간 유도 만능 줄기 세포(iPSC) 및 iPSC 유래 신경 및 신경교 세포를 포함한 다양한 세포 유형에서 여러 미토콘드리아 매개변수를 측정하기 위한 새로운 유세포 분석 기반 접근 방식을 자세히 설명합니다. 이 흐름 기반 전략은 살아있는 세포를 사용하여 미토콘드리아 부피, MMP 및 ROS 수준을 측정하고 고정 세포를 사용하여 미토콘드리아 호흡 사슬(MRC) 및 미토콘드리아 전사 인자 A(TFAM)와 같은 mtDNA 관련 단백질의 구성 요소를 추정합니다.

MitoTracker Green(MTG), 테트라메틸로다민 에틸 에스테르(TMRE) 및 MitoSox Red를 포함한 형광 리포터와의 공동 염색을 통해 미토콘드리아 부피, MMP 및 미토콘드리아 ROS의 변화를 정량화하고 미토콘드리아 함량과 관련시킬 수 있습니다. MRC 복합체 서브유닛 및 외부 미토콘드리아 막 20(TOMM20)의 트랜스로카제에 대한 항체를 이용한 이중 염색은 MRC 서브유닛 발현의 평가를 허용한다. TFAM의 양은 mtDNA 복제 수에 비례하므로 TOMM20 당 TFAM의 측정은 미토콘드리아 부피 당 mtDNA의 간접적 인 측정을 제공합니다. 전체 프로토콜은 2-3 시간 내에 수행 할 수 있습니다. 중요하게도, 이러한 프로토콜은 유세포 분석을 사용하여 미토콘드리아 부피 당 전체 수준과 특정 수준 모두에서 미토콘드리아 매개 변수를 측정 할 수 있습니다.

서론

미토콘드리아는 거의 모든 진핵 세포에 존재하는 필수 세포 기관입니다. 미토콘드리아는 산화적 인산화를 통해 아데노신 삼인산(ATP)을 생성하여 에너지 공급을 담당하고 생합성 및 대사를 위한 대사 매개체 역할을 합니다. 미토콘드리아는 ROS 생성, 세포 사멸 및 세포 내Ca2+ 조절과 같은 다른 많은 중요한 세포 과정에 깊이 관여합니다. 미토콘드리아 기능 장애는 파킨슨병(PD), 알츠하이머병(AD), 헌팅턴병(HD), 프리드라이히 운동실조증(FRDA) 및 근위축성 측삭 경화증(ALS)1을 비롯한 다양한 신경퇴행성 질환과 관련이 있습니다. 증가된 미토콘드리아 기능 장애 및 mtDNA 이상도 인간의 노화에 기여하는 것으로 생각됩니다 2,3.

다양한 유형의 미토콘드리아 기능 장애가 신경 퇴행성 질환에서 발생하며 미토콘드리아 부피의 변화, MMP 탈분극, ROS 생성 및 mtDNA 복제 수의 변화가 일반적입니다 4,5,6,7. 따라서 이러한 기능 및 기타 미토콘드리아 기능을 측정하는 능력은 질병 메커니즘을 연구하고 잠재적 인 치료제를 테스트 할 때 매우 중요합니다. 더욱이, 인간 신경퇴행성 질환을 충실하게 복제하는 동물 모델의 부족을 고려할 때, 뇌 세포에서 인간 질병을 요약하는 적절한 시험관내 모델 시스템을 확립하는 것은 이러한 질병에 대한 더 큰 이해와 새로운 치료법의 개발을 향한 중요한 단계입니다 2,3,8,9.

인간 iPSC는 뉴런 및 비뉴런 세포(즉, 신경교 세포)를 비롯한 다양한 뇌 세포를 생성하는데 사용될 수 있으며, 신경퇴행성 질환과 관련된 미토콘드리아 손상은 두 세포 유형 3,10,11,12,13 모두에서 발견되었다. 신경 및 신경교 계통으로의 iPSC 분화를 위한 적절한 방법이 이용가능하다14,15,16. 이 세포는 시험관 내 질병 모델링 및 약물 스크리닝을 위한 고유한 인간/환자 플랫폼을 제공합니다. 또한 환자에서 파생되기 때문에 iPSC 유래 뉴런과 신경교 세포는 인간에서 일어나는 일을보다 정확하게 반영하는 질병 모델을 제공합니다.

현재까지 iPSC, 특히 살아있는 뉴런과 신경교 세포에서 여러 미토콘드리아 기능 파라미터를 측정하는 편리하고 신뢰할 수 있는 방법은 거의 없습니다. 유세포 분석의 사용은 과학자에게 단일 세포에서 미토콘드리아 기능을 포함한 생물학적 매개 변수를 측정하기위한 강력한 도구를 제공합니다. 이 프로토콜은 iPSC의 신경 줄기 세포(NSC), 뉴런 및 신경교 성상세포를 포함한 다양한 유형의 뇌 세포 생성에 대한 세부 정보와 iPSC 및 iPSC 유래 신경 및 신경교 세포를 포함한 다양한 세포 유형에서 여러 미토콘드리아 매개변수를 측정하는 새로운 유세포 분석 기반 접근 방식을 제공합니다. 이 프로토콜은 또한 유세포분석을 사용하여 미토콘드리아 부피, MMP, 미토콘드리아 ROS 수준, MRC 복합체 및 TFAM을 측정하기 위한 공동염색 전략을 제공합니다. 미토콘드리아 부피 또는 질량의 측정을 통합함으로써, 이러한 프로토콜은 또한 미토콘드리아 단위 당 총 수준과 특정 수준의 측정을 허용합니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

프로토콜

참고: 이 프로토콜에 사용된 모든 매체 및 솔루션의 레시피에 대해서는 재료 표 및 보충 표 S1 을 참조하십시오.

1. 인간 iPSC를 NCS, 도파민성(DA) 뉴런 및 성상세포로 분화

  1. 매트릭스 코팅 플레이트를 준비하십시오.
    1. 매트릭스 5mL가 담긴 바이알을 얼음에서 밤새 해동합니다. 1mL의 매트릭스를 차가운 고급 Dulbecco의 변형 된 독수리 배지 / Ham의 F-12 (고급 DMEM / F12) (1 % 최종 농도)로 희석하십시오. 1mL 분취량을 만들어 -20°C에서 보관합니다.
    2. 매트릭스 용액을 4°C에서 해동하고(차갑게 유지) 6웰(6웰 플레이트에서 웰당 1mL)을 코팅합니다.
    3. 매트릭스 코팅 플레이트를 37°C에서 가습된 5% CO2/95% 공기 인큐베이터에 1시간 동안 놓습니다. 인큐베이터에서 플레이트를 꺼내 실온 (RT)과 평형을 이루십시오.
      알림: 코팅 후 3일 이내에 플레이트를 사용하는 것이 좋습니다. 그러나, 코팅된 플레이트는 4°C에서 최대 2주 동안 저장될 수 있다. 사용하기 전에 꺼내서 RT로 예열하는 것을 잊지 마십시오. 장기간 보관하려면 매트릭스의 건조를 방지하기 위해 코팅된 플레이트에 1mL의 iPSC 배양 배지를 추가합니다.
  2. iPSC 해동
    1. 매트릭스 코팅 플레이트를 RT 또는 37°C의 인큐베이터에서 20-30분 동안 예열합니다. RT에서 필요한 양의 iPSC 배양 배지를 예열합니다.
    2. 예열된 iPSC 배양 배지 6mL를 Y-27632 ROCK 억제제 12μL와 혼합하여 최종 농도 10μM을 얻습니다.
    3. iPSCs의 냉동 바이알을 수조에서 37°C에서 작은 얼음 조각이 남을 때까지 부분적으로 해동합니다.
    4. 12μL의 ROCK 억제제와 함께 예열된 iPSC 배양 배지 1mL를 세포에 천천히 추가합니다. iPSC가 있는 바이알의 액체 함량을 5mL 피펫을 사용하여 6웰 사전 코팅된 플레이트의 한 웰에 적가합니다.
    5. 플레이트를 수직 방향으로 움직여 우물 내용물을 혼합하고 플레이트를 인큐베이터로 되돌립니다. Dulbecco의 인산염 완충 식염수(DPBS)(1x)(Ca 2+/Mg 2+-free)(6웰 플레이트에서 웰당 4mL)로 세척한 후24시간 후에 iPSC 배양 배지를 교체합니다.
      알림: 후속 급지에 ROCK 억제제를 첨가하지 마십시오. iPSC 배양 배지를 매일 교체하십시오.
  3. iPSC의 계대 배양
    1. 매트릭스 코팅 플레이트를 RT 또는 37°C의 인큐베이터에서 20-30분 동안 예열합니다. RT에서 필요한 양의 iPSC 배양 배지를 예열합니다.
    2. 세포를 함유하는 플레이트로부터 배양 배지를 흡인한다. iPSC를 DPBS(1x)(Ca 2+/Mg2+-free)(6웰 플레이트에서 웰당 4mL)로 헹굽니다.
    3. EDTA(0.5mM)(6웰 플레이트에서 웰당 1mL)를 추가합니다. 콜로니의 가장자리가 웰에서 들어 올려지기 시작할 때까지 플레이트를 37 ° C에서 배양합니다 (보통 3-5 분). EDTA를 흡인합니다.
    4. 예열된 iPSC 배양 배지(6웰 플레이트에서 웰당 4mL)를 추가하고 10mL 멸균 피펫을 사용하여 iPSC 콜로니를 한 번 강제로 분리합니다. 세포 덩어리가 단일 세포로 부서질 수 있으므로 위아래로 피펫팅하지 마십시오.
    5. 각 웰의 내용물을 매트릭스 코팅된 6-웰 플레이트(6-웰 플레이트에서 웰당 2mL)의 2개의 개별 웰로 옮기고 37°C에서 배양합니다. 피펫팅하는 동안 현탁액에 기포가 발생하지 마십시오.
      알림: 인큐베이터에 보관하기 전에 플레이트를 부드럽게 흔듭니다. 분할 비율은 1:2(하나의 웰을 2개의 새 웰로)에서 1:4(웰 하나를 4개의 새 웰로)일 수 있습니다.
    6. 식민지가 좋은 크기와 연결로 60 % 합류점에 도달 할 때까지 매일 배지를 교체하십시오.
  4. 신경 유도 및 신경 전구 생성
    1. 500mL의 화학적으로 정의된 배지(CDM), 500mL의 신경 유도 배지(NIM) 및 500mL의 신경 줄기 세포 무혈청(NSC SF) 배지를 준비합니다.
    2. 세포를 DPBS(1x)(Ca 2+/Mg2+-free)(6-웰 플레이트에서 웰당 4mL)로 헹구고 NIM(6-웰 플레이트에서 웰당 3mL)을 추가합니다. Day 0으로 설정합니다.
    3. 1일차, 3일째 및 4일째에 NIM(6웰 플레이트에서 웰당 3mL)을 교체하고 매일 현미경 검사로 관찰합니다.
    4. 5일째에 아래 설명된 대로 신경 로제트를 현탁액 배양으로 분리합니다.
      1. DPBS(1x)(Ca 2+/Mg2+-free)(6웰 플레이트에서 웰당 4mL)로 부드럽게 한 번 세척합니다. 콜라게나제 IV (6 웰 플레이트에서 웰 당 1mL)를 넣고 인큐베이터에서 1 분 동안 유지합니다. 콜라게나제 IV를 흡인하고 DPBS(1x)(6웰 플레이트에서 웰당 4mL)로 부드럽게 한 번 세척합니다.
      2. 웰당 2mL의 NSC SF 배지를 6웰 플레이트에 추가합니다. 200μL 피펫 팁을 사용하여 그리드를 그려 웰의 바닥을 긁어 세포를 분리합니다.
      3. 6-웰 플레이트로부터 세포 현탁액을 10cm 비부착성 접시에 모은다. NSC SF 배지로 부피를 12mL로 구성합니다.
      4. 응집을 방지하기 위해 인큐베이터의 궤도 셰이커에서 65-85rpm으로 부착되지 않은 접시를 흔듭니다.
  5. DA 뉴런 분화
    1. 7일째에 100ng/mL 섬유아세포 성장 인자-8b(FGF-8b)가 보충된 CDM 12mL를 넣고 인큐베이터의 안와 셰이커에 접시를 놓습니다.
    2. 8-13 일에 2 일마다 배지를 교체하고 매일 현미경 검사로 관찰하십시오.
    3. 14일째에 100ng/mL FGF-8b 및 1μM 푸르모르파민(PM)이 보충된 CDM 12mL를 추가합니다. 인큐베이터의 궤도 셰이커에 접시를 놓습니다.
    4. 15-20 일에 2 일마다 배지를 교체하고 매일 현미경으로 세포를 관찰하십시오.
    5. 더 큰 구를 분해하기 위해 1000μL 팁을 사용하여 구를 기계적으로 통과시킵니다.
      알림: 비율은 1:2일 수 있습니다(한 접시에서 2개의 새 요리로).
  6. 차별화 종료
    1. 6웰 플레이트 또는 커버슬립을 아래 설명된 대로 Poly-L-오르니틴(PLO) 및 라미닌으로 코팅합니다.
      1. 6-웰 플레이트를 웰당 1mL의 PLO로 코팅하고, 플레이트를 37°C에서 20분 동안 인큐베이션한다. PLO 용액을 흡인합니다.
      2. UV 하에서 플레이트를 20분 동안 소독합니다. DPBS(1x)(6웰 플레이트에서 웰당 4mL)로 웰을 두 번 헹굽니다.
      3. 5μg/mL 라미닌 용액(6웰 플레이트에서 웰당 1mL)을 웰에 넣고 37°C에서 2시간 동안 배양합니다. 라미닌을 흡입하고 플레이팅하기 전에 DPBS(1x)(6웰 플레이트에서 웰당 4mL)로 웰을 한 번 잠시 세척합니다.
    2. 50mL 튜브에 모든 구체(1.5.5단계)를 수집하고 DPBS(1x)를 채웁니다. 300× g 에서 5분 동안 회전합니다. 상청액을 흡인하십시오.
    3. 수조에서 37°C에서 10분 동안 2mL의 세포 해리 시약( 재료 표 참조)과 함께 배양한 후 200μL 피펫으로 부드럽게 분쇄합니다(거품 형성을 피하면서 구의 크기에 따라 20-50회).
    4. 세포 해리 시약을 10% 소 태아 혈청(FBS)으로 Dulbecco의 변형 독수리 배지(DMEM) 2mL로 중화하고 세포가 포함된 50mL 원추형 튜브를 RT에서 5 분 동안 300×g으로 원심분리합니다. 상청액을 흡인합니다.
    5. 10ng/mL 뇌 유래 신경영양 인자(BDNF) 및 10ng/mL 신경교 세포주 유래 신경영양 인자(GDNF)가 보충된 CDM 1mL를 추가하여 위아래로 부드럽게 피펫팅하여 세포 펠릿을 재현탁하여 단일 세포 현탁액을 얻습니다.
    6. 플레이트에서 라미닌 용액을 흡입하고(단계 1.6.1.3), DPBS(1x)(6웰 플레이트에서 웰당 4mL)로 간단히 세척하고, 10ng/mL BDNF 및 10ng/mL GDNF가 보충된 3mL의 CDM에 미리 코팅된 플레이트 또는 커버슬립에 세포를 시드합니다(단계 1.6.5에서). 4 일마다 세포를 먹이십시오.
      참고: 차별화 문화는 몇 주에서 최대 3개월 동안 유지할 수 있습니다. 신경 형태는 일반적으로 종료 후 2주 후에 나타나며 그 시점부터 다운스트림 분석에 사용할 수 있습니다. BDNF 및 GDNF는 더 긴 유지 관리 (최대 2 개월)를 위해 배양에 필요하지 않습니다.
  7. NSC 생성
    1. 코트 매트릭스 플레이트.
    2. 50mL 튜브에 모든 신경구(1.4단계에서 생성됨)를 수집하고 DPBS(1x)(Ca 2+/Mg2+-free)를 채웁니다. 300 × g 에서 5 분 동안 회전하십시오. 상청액을 흡인하십시오.
    3. 펠릿을 수조에서 37°C에서 10분 동안 2mL의 세포 해리 시약과 함께 배양한 다음 200μL 피펫으로 부드럽게 분쇄합니다(기포 형성을 피하면서 구의 크기에 따라 20-50회).
    4. 10% FBS로 2mL의 DMEM으로 중화하고 RT에서 5분 동안 300× g 의 세포가 포함된 50mL 원추형 튜브를 원심분리합니다. 상청액을 흡인합니다. 단일 세포 현탁액을 얻기 위해 위아래로 부드럽게 피펫팅하여 세포 펠릿을 재현탁합니다.
    5. 사전 코팅된 플레이트에서 매트릭스 용액을 흡인하고 NSC SF 배지(6웰 플레이트에서 웰당 3mL)에서 프리코팅된 플레이트의 세포를 시드합니다. 2-3 일마다 세포를 먹이고 합류 할 때 세포를 나눕니다.
      참고: 이 단계부터 NSC를 확장하고 동결할 수 있습니다.
  8. 아교 세포 분화
    1. NSC에서 성상 세포 분화
      1. 500mL의 성상 세포 분화 배지를 준비합니다.
      2. NSC SF 배지로 폴리 -D- 라이신 (PDL) 코팅 플레이트 / 커버 슬립에 NSC를 시드합니다.
      3. 다음 날, 세포를 DPBS(1x)(Ca 2+/Mg2+-free)(6웰 플레이트에서 웰당 4mL)로 헹구고 성상세포 분화 배지(6웰 플레이트에서 웰당 3mL)를 추가합니다. Day 0으로 설정합니다.
      4. 매일 현미경으로 NSC를 관찰하고 1일부터 27일까지 2일마다 성상세포 분화 배지(6웰 플레이트에서 웰당 3mL)를 교체합니다.
    2. 성상 세포 성숙
      1. 성상 세포 성숙 배지를 준비하십시오.
      2. 28일째에 세포를 DPBS(1x)(6웰 플레이트에서 웰당 4mL)로 헹구고 성상세포 성숙 배지(6웰 플레이트에서 웰당 3mL)를 추가합니다.
      3. 29일 이후에는 매일 현미경으로 세포를 관찰하고 2일마다 성상세포 성숙 배지(6웰 플레이트에서 웰당 3mL)를 교체합니다.
      4. 성숙 1 개월 후, 세포를 확장하고이 단계부터 냉동 보존하십시오.
        참고: 이 단계에서는 셀 수가 증가합니다. 세포를 분할 할 때, PDL 코팅 커버 슬립은 배양에 필요하지 않습니다.

2. 면역세포화학 및 면역형광염색에 의한 세포 특성 분석

  1. 배양 기간이 끝나면 세포와 함께 커버 슬립을 12 웰 플레이트로 옮깁니다.
    세포를 인산염 완충 식염수(PBS)(1x)로 2회 헹구고 RT에서 4% 파라포름알데히드(PFA)(12웰 플레이트에서 웰당 0.5mL)에서 10분 동안 배양합니다.
    참고: 고정된 샘플은 2mL의 PBS(1x)로 덮고 면역 염색에 필요할 때까지 4°C에서 보관할 수 있습니다. PFA는 독성이 있으며 암을 유발하는 것으로 의심됩니다. 피부와 눈에 노출되는 것을 방지하고 화학 흄 후드 아래에서 작업하십시오.
  2. 세포를 차단 및 투과화하고, PBS(1x), 0.3% 트리톤 X-100, 및 10% 정상 염소 혈청을 함유하는 블로킹 완충액과 함께 RT에서 1시간 동안 인큐베이션한다.
  3. 항-옥타머-결합 전사 인자 4(Oct4) 및 항-단계 특이적 배아 항원-4(SSEA4)를 갖는 iPSC, 항-성 결정 영역 Y 박스-2(Sox2) 및 항-네스틴을 갖는 NSC, 항-쌍을 이루는 박스-6(Pax6) 및 항-네스틴을 갖는 신경구체, 항-신경교세포-섬유소 산성 단백질(GFAP) 및 항-S100 칼슘-결합 단백질 β(S100β)을 갖는 성상세포, 항-티로신 하이드록실라제(TH)를 갖는 DA 뉴런을 염색하고, 항-β III 튜불린(Tuj 1), 항-시냅토피신 및 항-PSD-95(12웰 플레이트에서 웰당 1차 항체 용액 0.5mL, 자세한 내용은 재료 표 참조).
  4. 샘플을 PBS(1x)로 3회 10분 동안 부드럽게 흔들면서 세척합니다.
  5. 2차 항체 용액(블로킹 버퍼 중 1:800, 12웰 플레이트에서 웰당 Alexa Fluor 2차 항체 용액 0.5mL)과 함께 RT에서 부드럽게 흔들면서 1시간 동안 배양합니다.
  6. 세포를 PBS (1x) 중 Hoechst 33342 (12 웰 플레이트에서 웰 당 0.5 mL)로 RT에서 15 분 동안 배양하여 핵을 표지합니다.
  7. 세포를 장착 매체로 장착하고 RT에서 밤새 건조시켜 어둠 속에서 형광 현미경으로 이미징합니다. 현미경 설정 및 매개변수에 대해서는 보충 그림 S1 을 참조하십시오.

3. 살아있는 세포에서 미토콘드리아 부피, MMP 및 미토콘드리아 ROS의 유세포 분석 측정

  1. 세포가 50%-60% 컨플루언시에 도달할 때까지 6웰 플레이트의 4웰에 세포를 별도로 시드합니다. 이 네 개의 우물에 #1, #2, #3 및 #4라는 레이블을 지정합니다.
  2. 배양 기간이 끝나면 다음과 같이 5개의 개별 염색 용액(6웰 플레이트에서 웰당 500μL)을 준비합니다: #1 전용 배양 배지(대조군을 위한 세포만을 포함하는 웰 #1); FCCP (100 μM)를 포함하는 # 2-1; 배양 배지에 FCCP (100 μM) + TMRE (100 nM) + MTG (150 nM)를 함유하는 #2-2; TMRE (100 nM) + MTG (150 nM)를 함유하는 #3 배지; #4는 10% FBS를 가진 PBS(1x) 중 미토삭스 레드(10μM) + MTG(150nM)를 함유합니다. 이러한 화합물 및 유세포분석 설정에 대한 자세한 내용은 그림 1A, 보충 표 S2 및 재료 표를 참조하십시오.
    알림: 배양 배지를 사용하여 염색 용액을 준비하십시오. 사용하기 전에 RT에서 배지와 PBS(1x)를 예열하십시오. FCCP는 독성이 있습니다. 피부와 눈의 노출을 방지하고 화학 흄 후드 아래에서 작업하십시오.
  3. #2 웰에서 배지를 흡입하고 #2-1 용액을 추가합니다(FCCP만 해당). 세포를 37°C에서 10분 동안 배양합니다.
  4. #2 및 #3 웰에서 배지를 흡입하고 #2 웰에 #2-2 용액(FCCP + TMRE + MTG)을 추가하고 #3 웰에 #3 용액(TMRE + MTG)을 추가합니다. 세포를 37°C에서 45분 동안 배양한다.
  5. #4 웰에서 배지를 흡입하고 #4 용액(MitoSox Red + MTG)을 추가합니다. 세포를 37°C에서 15분 동안 배양한다.
  6. 모든 우물에서 매체를 흡인하십시오. PBS(1x)(6웰 플레이트에서 웰당 4mL)로 세척합니다. 37°C에서 5분 동안 1mL의 세포 해리 시약(6웰 플레이트에서 웰당 1mL)을 사용하여 세포를 분리합니다. 1mL의 DMEM에서 세포 해리 시약을 10% FBS(6웰 플레이트에서 웰당 2mL)로 중화합니다.
  7. 15mL 원추형 튜브에 모든 웰의 내용물을 수집합니다. 튜브를 300×g에서 5 분 동안 원 심분리합니다. 펠릿을 PBS(1x)로 한두 번 씻습니다.
  8. 상청액을 흡입하되 튜브에 약 100μL를 남겨 둡니다. 세포 펠릿을 300μL의 PBS(1x)에 재현탁시킨다. 세포를 1.5mL 마이크로 원심분리 튜브로 옮깁니다. RT에서 튜브를 어둠 속에 보관하십시오.
  9. 유세포 분석기 (3 개의 파란색 및 1 개의 빨간색 레이저 구성)를 사용하여 세포를 분석합니다. 530/30 대역통과 필터를 사용하여 필터 1(FL1)에서 MTG, 대역통과 필터 585/40을 사용하여 필터 2(FL2)의 TMRE, 510/580 대역통과 필터를 사용하여 필터 3(FL3)에서 MitoSox Red를 검출합니다.

4. 고정 세포에서 MRC 복합체 서브유닛 및 TFAM의 유세포분석 측정

  1. 배양 기간이 끝나면 세포 해리 시약을 추가하여 세포를 분리합니다 (~ 106). 그런 다음 펠릿을 넣고 15mL 튜브에서 세포를 수집합니다. PBS(1x)로 원심분리하여 세포를 300 ×g에서 5분 동안 2회 원심분리하여 세척한다.
  2. 세포를 RT에서 10분 동안 1.6% PFA(15mL 튜브에 1.6% PFA 1mL)에 고정합니다. PBS(1x)로 원심분리하여 세포를 300 ×g에서 5분 동안 2회 원심분리하여 세척한다.
  3. -20°C에서 20분 동안 얼음처럼 차가운 90% 메탄올(15mL 튜브에 90% 메탄올 1mL)로 세포를 투과시킵니다.
  4. PBS (1x) 중 분획 V(15mL 튜브 중 블로킹 완충액 1mL)-0.3M 글리신, 5% 염소 혈청 및 1% 소 혈청 알부민(BSA)을 함유하는 블로킹 완충액에서 샘플을 차단한다. 세포를 PBS(1x)로 원심분리하여 세포를 2회 세척한다(단계 3.7에서와 같이).
  5. 복합체 I 서브유닛의 측정을 위한 항-NDUFB10 (1:1,000), 콤플렉스 II 서브유닛의 측정을 위한 항숙시네이트 탈수소효소 복합체 플라보단백질 서브유닛 A (SDHA, 1:1,000) 및 콤플렉스 IV 서브유닛의 측정을 위한 항-COX IV (1:1,000), 및 Alexa Fluor 488 (1:400)과 접합된 항-TFAM 항체. Alexa Fluor 488(1:400)과 접합된 anti-TOMM20 항체로 동일한 수의 세포를 30분 동안 별도로 염색합니다(15mL 튜브에 1차 항체 용액 1mL, 항체에 대한 자세한 내용은 재료 표 참조).
  6. 세포를 PBS(1x)로 한 번 세척하고 300× g 에서 5분 동안 원심분리합니다. NDUFB10, SDHA 및 COX IV의 튜브에 2차 항체(1:400)를 추가하고 이러한 용액으로 세포를 30분 동안 배양합니다.
  7. 세포를 PBS(1x)로 300×g에서 5 분 동안 원 심분리하여 한 번 세척합니다. 상청액을 흡인하여 튜브에 약 100μL를 남깁니다. 세포 펠릿을 300μL의 PBS(1x)에 재현탁시킨다. 얼음 위의 어두운 곳에 보관된 1.5mL 미세 원심분리 튜브로 세포를 옮깁니다.
  8. 유세포 분석기에서 세포를 분석합니다 (3 개의 파란색 및 1 개의 빨간색 레이저 구성). 530/30 대역통과 필터를 사용하여 필터 1(FL1)에서 신호를 검출합니다. 현미경 설정 및 매개변수에 대해서는 보충 그림 S2 를 참조하십시오.

5. 유세포 분석 획득 및 분석

  1. 염색되지 않은 컨트롤 튜브를 사용하여 분석된 세포 집단의 크기와 복잡성을 기반으로 전방 산란 영역(FSC-A) 및 측면 산란 영역(SSC-A) 산점도를 설정합니다. 현미경 설정 및 매개변수에 대해서는 보충 그림 S2 를 참조하십시오.
    참고: 개별 세포 유형에 대해 염색되지 않은 컨트롤을 설정합니다.
  2. 비염색 제어 튜브를 사용하여 포지티브 게이트를 선택하고 단색 제어 튜브를 사용하여 다색 유세포분석에서 MTG(형광단-1[FL-1])와 TMRE(FL-2) 간의 형광 스펙트럼 중첩을 보정합니다. 음성 대조군에 이소타입 제어를 사용하여 MRC 및 TFAM 샘플의 배경 염색을 모니터링합니다. FCCP 튜브를 TMRE 염색을 위한 탈분극 제어로 사용하십시오.
  3. 외부 파편을 차단하여 전방 및 측면 산점도에서 살아있는 세포와 주 게이팅을 선택합니다(그림 2A). 전방 산란 높이(FSC-H) 대 FSC-A 밀도 플롯을 사용하여 이중선을 게이트 아웃하여 더블릿을 제외하고 측면 산란 높이(SSC-H) 대 SSC-A 플롯을 구성합니다(그림 2A).
  4. 데이터 수집(유세포분석기)
    1. 염색되지 않은 또는 이소타입 샘플을 음성 대조군으로 사용하여 SSC-A 및 다양한 필터(FL1, FL2, FL3, FL4)를 보면서 단일 세포 이벤트의 주요 집단 위에 게이트를 만듭니다(그림 1B 및 그림 2B).
  5. 데이터 분석 (CFlow 소프트웨어)
    1. 게이트의 위치를 염색된 세포 샘플 상에 복사하고, 양성 염색을 위해 양성으로 염색된 세포의 양을 기록한다.
    2. 각 세포 부분모집단에 대해 히스토그램 플롯을 선택하고 다양한 필터 채널(FL1, FL2, FL3, FL4)(x축)의 중간 형광 강도(MFI)를 분석합니다.
      1. 아래의 식 (1)과 같이 히스토그램의 #3 TMRE 염색 샘플에서 FL2의 MFI로부터 #2 FCCP 처리된 세포의 FL2의 MFI를 빼서 TMRE 수준을 계산한다.
        TMRE 수준 = #3 TMRE-염색된 샘플에서 추출한 FL2의 MFI - #2 FCCP 처리된 세포의 FL2의 MFI (1)
      2. MMP 및 미토콘드리아 ROS에 대한 특정 값을 TMRE 또는 MitoSox Red에서 MFI로 계산하여 미토콘드리아 부피 지시지 MTG로 나눕니다.
      3. 복소수 표현식 또는 TFAM에서 MFI를 사용하여 복소 서브유닛 및 TFAM에 대한 특정 값을 계산하고 미토콘드리아 부피 지표 TOMM20을 나눕니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

결과

분화 방법 및 유세포 분석 전략에 대한 개략적인 설명이 그림 3에 나와 있습니다. 인간 iPSC는 신경 로제트로 분화된 다음 신경 영역으로 분화하기 위해 서스펜션 배양으로 들어 올려집니다. 신경 영역은 DA 뉴런으로 더욱 분화되고 성숙됩니다. 신경 구체는 단일 세포로 해리되어 신경교 성상 세포를 생성하고 NSC로 단층으로 재 도금 된 다음 성상 세포로 분화됩니다. 이 프로토콜은 MMP, 미토콘드리아 부피, 미토콘드리아 ROS 수준, MRC 복합체 서브유닛의 발현 수준 및 TFAM(상대적 mtDNA 복제 수의 간접 측정)을 측정하기 위해 유세포분석으로 샘플을 획득하고 분석하는 데 필요한 전략을 제공합니다. 구체적으로, 형광 리포터, TMRE 및 MTG와의 동시 염색을 사용하여 MMP 및 미토콘드리아 부피의 변화를 검출하고 정량화했습니다. MitoSox Red 및 MTG와의 동시 염색을 통해 살아있는 세포에서 미토콘드리아 ROS 생성을 측정할 수 있습니다. TOMM20과 함께 M...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

토론

본원에는 iPSC 유래 뉴런 및 성상세포를 생성하고 유세포분석을 사용하여 미토콘드리아 기능의 여러 측면을 평가하기 위한 프로토콜이 있습니다. 이러한 프로토콜을 통해 인간 iPSC를 뉴런과 신경교 성상 세포로 효율적으로 변환하고 대부분 살아있는 세포에서 미토콘드리아 기능을 자세히 특성화할 수 있습니다. 이 프로토콜은 또한 살아있는 세포의 부피, MMP 및 미토콘드리아 ROS 수준과 고정 세포의 MRC 복합체 및 TFAM을 포함한 여러 미토콘드리아 기능을 획득하고 분석하기 위한 공동 염색 유세포분석 기반 전략을 제공합니다. 특히, 이러한 프로토콜은 미토콘드리아 부피 당 전체 및 특정 수준의 추정을 허용합니다. 이 전략은 DA 뉴런 및 성상 세포에서 알려진 미토콘드리아 질환 (POLG)에서 미토콘드리아 기능 장애를 감지하지만 이러한 기술은 모든 유형의 세포 및 질병에 적용 할 수 있습니다. 또한 프로토콜은 강력하고 재현 가능합니다. 이전의 여러 연구에서는 섬유 아세포, iPSC, NSC, DA 뉴런 및 성상 세포

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

공개 사항

저자는 공개 할 이해 상충이 없습니다.

감사의 글

노르웨이 베르겐 대학교의 분자 이미징 센터와 유세포 분석 핵심 시설에 감사드립니다. 이 연구는 노르웨이 연구위원회 (보조금 번호 : 229652), Rakel og Otto Kr.Bruuns legat 및 중국 장학위원회 (프로젝트 번호 : 201906220275)의 자금으로 지원되었습니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
anti-Oct4Abcamab19857, RRID:AB_445175일차 항체; 1:100, 10 &mu로 사용; L in 1000 μ L 염색 용액; Alexa Fluor ®를 사용하십시오. 488 염소 안티 토끼 IgG  (1:400, Thermo Fisher Scientific, 카탈로그 # A-11008)를 2차 항체로 사용합니다.
anti-SSEA4Abcamab16287, RRID:AB_778073일차 항체; 1:100, 10 &mu로 사용; L in 1000 μ L 염색 용액; Alexa Fluor ®를 사용하십시오. 2차 항체로 594 염소 항-마우스 IgG (1:800, Thermo Fisher Scientific, 카탈로그 # A-11005).
anti-Sox2Abcamab97959, RRID:AB_2341193일차 항체; 1:100, 10 &mu로 사용; L in 1000 μ L 염색 용액; Alexa Fluor ®를 사용하십시오. 488 염소 안티 토끼 IgG  (1:400, Thermo Fisher Scientific, 카탈로그 # A-11008)를 2차 항체로 사용합니다.
anti-Pax6Abcamab5790, RRID:AB_305110일차 항체; 1:100, 10 &mu로 사용; L in 1000 μ L 염색 용액; Alexa Fluor ®를 사용하십시오. 488 염소 안티 토끼 IgG  (1:400, Thermo Fisher Scientific, 카탈로그 # A-11008)를 2차 항체로 사용합니다.
anti-NestinSanta Cruz Biotechnologysc-23927, RRID:AB_627994일차 항체; 1:50, 20 &mu로 사용; L in 1000 μ L 염색 용액; Alexa Fluor ®를 사용하십시오. 2차 항체로 594 염소 항-마우스 IgG (1:800, Thermo Fisher Scientific, 카탈로그 # A-11005).
anti-GFAPAbcamab4674, RRID:AB_304558일차 항체; 1:100, 10 &mu로 사용; L in 1000 μ L 염색 용액;   Alexa Fluor ®를 사용하십시오. 594 염소 항닭 IgG (1:800, Thermo Fisher Scientific, 카탈로그 # A-11042)를 2차 항체로 사용합니다.
안티 S100&베타;   Alexa Fluor 488Abcamab196442, RRID:AB_2722596; 1:400, 2.5 &mu로 사용; L in 1000 μ L 염색 용액;
anti-THAbcamab75875, RRID:AB_1310786일차 항체; 1:100, 10 &mu로 사용; L in 1000 μ L 염색 용액; Alexa Fluor ®를 사용하십시오. 488 염소 안티 토끼 IgG  (1:400, Thermo Fisher Scientific, 카탈로그 # A-11008)를 2차 항체로 사용합니다.
anti-Tuj 1Abcamab78078, RRID:AB_2256751일차 항체; 1:1000, 1 &mu로 사용; L in 1000 μ L 염색 용액; Alexa Fluor ®를 사용하십시오. 2차 항체로 594 염소 항-마우스 IgG (1:800, Thermo Fisher Scientific, 카탈로그 # A-11005).
anti-SynaptophysinAbcamab32127, RRID:AB_22869491차 항체; 1:100, 10 &mu로 사용; L in 1000 μ L 염색 용액; Alexa Fluor ®를 사용하십시오. 488 염소 안티 토끼 IgG  (1:400, Thermo Fisher Scientific, 카탈로그 # A-11008)를 2차 항체로 사용합니다.
anti-PSD-95Abcamab2723, RRID:AB_303248일차 항체; 1:100, 10 &mu로 사용; L in 1000 μ L 염색 용액;   Alexa Fluor ®를 사용하십시오. 594 염소 항닭 IgG (1:800, Thermo Fisher Scientific, 카탈로그 # A-11042)를 2차 항체로 사용합니다.
Abcamab198308와 접합된 anti-TFAM; 1:400, 2.5 &mu로 사용; L in 1000 μ L 염색 용액; 마우스 단클론 IgG2b 를 사용하십시오. 알렉사 플루오® 488을 isotype control로 사용합니다.
anti-TOMM20 conjugated with Alexa Fluor 488Santa Cruz BiotechnologyCat# sc-17764 RRID:AB_628381Primary 항체; 1:400, 2.5 &mu로 사용; L in 1000 μ L 염색 용액; 마우스 단클론 IgG2a 사용  알렉사 플루오® 488을 isotype control로 사용합니다.
anti-NDUFB10Abcamab196019일차 항체; 1:1000, 1 &mu로 사용; L in 1000 μ L 염색 용액; Alexa Fluor ®를 사용하십시오. 488 염소 안티 토끼 IgG  (1:400, Thermo Fisher Scientific, 카탈로그 # A-11008)를 2차 항체로; 토끼 단클론 IgG를 동형 대조군으로 사용합니다.
anti-SDHAAbcamab137040일차 항체; 1:1000, 1 &mu로 사용; L in 1000 μ L 염색 용액;   Alexa Fluor ®를 사용하십시오. 488 염소 안티 토끼 IgG  (1:400, Thermo Fisher Scientific, 카탈로그 # A-11008)를 2차 항체로; 토끼 단클론 IgG를 동형 대조군으로 사용합니다.
anti-COX IVAbcamab14744, RRID:AB_301443일차 항체; 1:1000, 1 &mu로 사용; L in 1000 μ L 염색 용액; 사용  알렉사 플루어 ® 488 염소 안티 마우스 IgG  (1:400, Thermo Fisher Scientific, 카탈로그 # A-11001)를 2차 항체로; 마우스 단클론 IgG를 동형 대조군으로 사용합니다.
Activin APeproTech120-14E성상세포 분화 배지 성분
ABM 기초 배지LonzaCC-3187성상세포 배양을 위한 기초 배지
AGM SingleQuots Supplement PackLonzaCC-4123성상세포 배양을 위한 보충제
항생제-항진균제Thermo Fisher Scientific15240062CDM 성분
Advanced DMEM/F-12Thermo Fisher Scientific12634010묽은 Geltrex
소 혈청 알부민Europa BioproductsEQBAH62-1000면역염색 분석에서 항체의 비특이적 결합을 방지하기 위한 차단제 및 CDM 성분
BDNFPeproTech450-02DA 뉴런 배지 성분
B-27 보충제Thermo Fisher Scientific17504044성상세포 분화 배지 성분
BD Accuri C6 Plus 유세포 분석기BD Biosciences, USA
화학적으로 정의된 지질 농축액Thermo Fisher Scientific11905031CDM 성분
콜라겐분해효소 IVThermo Fisher Scientific17104019인간 iPSC의 부드러운 해리를 위한 시약
CCD 현미경 카메라 Leica DFC3000 GLeica Microsystems, 독일
Corning 비처리 배양 접시Sigma-AldrichCLS430589현탁 배양
DPBSThermo Fisher Scientific14190250다양한 세포 배양에 사용
세척 DMEM/F-12, GlutaMAX 보충제Thermo Fisher Scientific10565018성상세포 분화 기저 매체
EDTAThermo Fisher 인간 iPSC의 부드러운 해리를 위한 과학 15575020 시약
필수 8 기초 배지Thermo Fisher ScientificA1516901 iPSC 배양을 위한 기초 배지
필수 8 보충제 (50X)Thermo Fisher ScientificA1517101iPSC 배양을 위한
보충제 EGF 재조합 인간 단백질Thermo Fisher ScientificPHG0314NSC 배양을 위한 보충제
FGF-베이직 (AA 10– 155) NSC 배양을 위한 재조합 인간 단백질Thermo Fisher ScientificPHG0024보충제
Fetal Bovine SerumSigma-Aldrich12103CMedium ingredient
FGF-basicPeproTech100-18BAstrocyte differentiation medium ingredient
FCCPAbcamab120081Eliminate mitochondrial membrane potential and TMRE staining
유체 흡인 시스템 BVC 제어Vacuubrand, 독일
포름알데히드(PFA) 16%Thermo Fisher Scientific28908세포 고정
GeltrexThermo Fisher ScientificA1413302인간 iPSC의 부착 및 유지 관리에 사용
GlutaMAX 보충제Thermo Fisher Scientific35050061NSC 배양
GDNFPeprotech450-10DA 뉴런 매체 성분
GlycineSigma-AldrichG8898완충액 차단에 사용
Ham's F-12 영양 혼합물Thermo Fisher Scientific31765027CDM용 기초 배지
Heregulin beta-1 humanSigma-AldrichSRP3055Astrocyte 분화 매체
성분 Hoechst 33342Thermo Fisher ScientificH1399컨포칼 이미지용 핵 염색
Heracell 150i CO2 인큐베이터Fisher Scientific, 미국
IMDMThermo Fisher Scientific21980032CDM용 기저 배지
슐린Roche1376497CDM 성분
InSolution AMPK 억제제Sigma-Aldrich171261신경 유도 배지 성분
인슐린 유사 성장 인자-I 인간Sigma-AldrichI3769성상세포 분화 배지 성분
KnockOut DMEM/F-12 배지Thermo Fisher Scientific12660012NSC 배양을 위한 기초 배지
라미닌Sigma-AldrichL2020신경 세포의 부착 및 성장 촉진 in vitro
Leica TCS SP8 STED 컨포칼 현미경Leica Microsystems, 독일
모노티오글리세롤Sigma-AldrichM6145CDM 성분
MitoTracker Green FMThermo Fisher ScientificM7514미토콘드리아 부피 표시기에 사용
MitoSox RedThermo Fisher ScientificM36008미토콘드리아 ROS 표시기에 사용
N-아세틸-L-시스테인Sigma-AldrichA7250신경 유도 배지 성분
N-2 보충제Thermo Fisher Scientific17502048Astrocyte 분화 매체 성분
일반 염소 혈청Thermo Fisher ScientificPCN5000완충액
오비탈 셰이커 차단에 사용 - SSM1Stuart Equipment, UK
Poly-L-Ornithine 솔루션Sigma-AldrichP4957체외 신경 세포의 부착 및 성장 촉진
Poly-D-lysine 하이드로브로마이드Sigma-AldrichP7405체외 신경 세포의 부착 및 성장 촉진
PurmorphamineSTEMCELL Technologies72204DA 뉴런 분화 촉진
ProLong Gold Antifade MountantThermo Fisher ScientificP36930컨포칼 이미지
용 커버슬립 장착PBS 1xThermo Fisher Scientific18912014다양한 세척
재조합 인간/마우스 FGF-8b 단백질R&에 사용됩니다. D Systems423-F8-025/CFDA 뉴런 분화 촉진
SB 431542Tocris BioscienceTB1614-GMP신경 유도 배지 성분
StemPro 신경 보충제Thermo Fisher ScientificA10508-01NSC 배양을 위한 보충제
TrypLE Express EnzymeThermo Fisher Scientific12604013해리 시약
트랜스페린Roche652202CDM 성분
TRITON X-100VWR International9002-93-1면역 염색 분석에서 세포 투과화에 사용
TMREAbcamab113852미토콘드리아 막 전위 염색에 사용
수조 Jb Academy Basic Jba5 JBA5 그랜트 기기그랜트 기기, 미국
1차 항체와 결합Alexa Fluor 488 1차 항체용 보충제인세포

참고문헌

  1. Wang, Y., Xu, E., Musich, P. R., Lin, F. Mitochondrial dysfunction in neurodegenerative diseases and the potential countermeasure. CNS Neuroscience & Therapeutics. 25 (7), 816-824 (2019).
  2. Chen, A., et al. Nicotinamide riboside and metformin ameliorate mitophagy defect in induced pluripotent stem cell-derived astrocytes with POLG mutations. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 9, 737304(2021).
  3. Liang, K. X., et al. Disease-specific phenotypes in iPSC-derived neural stem cells with POLG mutations. EMBO Molecular Medicine. 12 (10), 12146(2020).
  4. Chen, H., Chan, D. C. Mitochondrial dynamics--fusion, fission, movement, and mitophagy--in neurodegenerative diseases. Human Molecular Genetics. 18, 169-176 (2009).
  5. Lin, M. T., Beal, M. F. Mitochondrial dysfunction and oxidative stress in neurodegenerative diseases. Nature. 443 (7113), 787-795 (2006).
  6. Singh, A., Kukreti, R., Saso, L., Kukreti, S. Oxidative stress: A key modulator in neurodegenerative diseases. Molecules. 24 (8), Basel, Switzerland. 1583(2019).
  7. Kondadi, A. K., Anand, R., Reichert, A. S. Functional interplay between cristae biogenesis, mitochondrial dynamics and mitochondrial DNA integrity. International Journal of Molecular Sciences. 20 (17), 4311(2019).
  8. Sterneckert, J. L., Reinhardt, P., Schöler, H. R. Investigating human disease using stem cell models. Nature Reviews. Genetics. 15 (9), 625-639 (2014).
  9. Patani, R. Human stem cell models of disease and the prognosis of academic medicine. Nature Medicine. 26 (4), 449(2020).
  10. Liang, K. X., et al. N-acetylcysteine amide ameliorates mitochondrial dysfunction and reduces oxidative stress in hiPSC-derived dopaminergic neurons with POLG mutation. Experimental Neurology. , 337(2021).
  11. Kikuchi, T., et al. Human iPS cell-derived dopaminergic neurons function in a primate Parkinson's disease model. Nature. 548 (7669), 592-596 (2017).
  12. Juopperi, T. A., et al. Astrocytes generated from patient induced pluripotent stem cells recapitulate features of Huntington's disease patient cells. Molecular Brain. 5, 17(2012).
  13. Liang, K. X., et al. Stem cell derived astrocytes with POLG mutations and mitochondrial dysfunction including abnormal NAD+ metabolism is toxic for neurons. bioRxiv. , (2020).
  14. Liu, Q., et al. Human neural crest stem cells derived from human ESCs and induced pluripotent stem cells: induction, maintenance, and differentiation into functional schwann cells. Stem Cells Translational Medicine. 1 (4), 266-278 (2012).
  15. Hong, Y. J., Do, J. T. Neural lineage differentiation from pluripotent stem cells to mimic human brain tissues. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 7, 400(2019).
  16. Lundin, A., et al. Human iPS-derived astroglia from a stable neural precursor state show improved functionality compared with conventional astrocytic models. Stem Cell Reports. 10 (3), 1030-1045 (2018).
  17. Liang, K. X., et al. N-acetylcysteine amide ameliorates mitochondrial dysfunction and reduces oxidative stress in hiPSC-derived dopaminergic neurons with POLG mutation. Experimental Neurology. 337, 113536(2021).
  18. Pendergrass, W., Wolf, N., Poot, M. Efficacy of MitoTracker Green™ and CMXrosamine to measure changes in mitochondrial membrane potentials in living cells and tissues. Cytometry. Part A. 61 (2), 162-169 (2004).
  19. Keij, J. F., Bell-Prince, C., Steinkamp, J. A. Staining of mitochondrial membranes with 10-nonyl acridine orange, MitoFluor Green, and MitoTracker Green is affected by mitochondrial membrane potential altering drugs. Cytometry. 39 (3), 203-210 (2000).
  20. Buckman, J. F., et al. MitoTracker labeling in primary neuronal and astrocytic cultures: influence of mitochondrial membrane potential and oxidants. Journal of Neuroscience Methods. 104 (2), 165-176 (2001).
  21. Zanchetta, L. M., Kirk, D., Lyng, F., Walsh, J., Murphy, J. E. Cell-density-dependent changes in mitochondrial membrane potential and reactive oxygen species production in human skin cells post sunlight exposure. Photodermatology, Photoimmunology & Photomedicine. 26 (6), 311-317 (2010).

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재인쇄 및 허가

태그

유세포 분석법신경 유래 세포미토콘드리아 막 전위활성 산소종미토콘드리아 부피미토콘드리아 DNA 복제수미토콘드리아 호흡쇄
인간 유도 만능 줄기 세포와 그 신경 및 신경교 유도체에서 여러 미토콘드리아 파라미터의 유세포 분석
문의하기
도서관에 추천하기

개인정보 처리방침

이용 약관

정책

저작권 © 2026 MyJoVE Corporation. 모든 권리 보유.