방법 논문

포토스타틴을 이용한 살아있는 이식 전 마우스 배아에서 미세소관 세포골격의 시공간적 세포골격 조작

DOI:

10.3791/63290

⸱

2021년 11월 30일

 ,  ,  ,  , 
1Australian Regenerative Medicine Institute, Monash University, 2School of BioSciences, The University of Melbourne

이 논문에서

요약

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

기본 및 응용 연구에 널리 사용되는 전형적인 미세 소관 억제제는 세포에 광범위한 영향을 미칩니다. 최근에, 포토스타틴은 미세소관의 순간적, 가역적, 공간적으로 정밀하게 조작할 수 있는 광전환 가능한 미세소관 억제제의 부류로 부상하였다. 이 단계별 프로토콜은 3D 라이브 이식 전 마우스 배아에서 포토스타틴의 적용을 자세히 설명합니다.

초록

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미세 소관 세포 골격은 세포의 틀을 형성하며 세포 내 수송, 세포 분열 및 신호 전달의 기본입니다. 예를 들어, 노코다졸을 사용하는 유비쿼터스 미세 소관 네트워크의 전통적인 약리학적 파괴는 모든 세포에 치명적인 결과를 초래할 수 있다. 가역적으로 광전환가능한 미세소관 억제제는 약물 효과가 시공간적으로 조절된 방식으로 구현될 수 있게 함으로써 한계를 극복할 수 있는 잠재력을 갖는다. 이러한 약물 계열 중 하나는 아조 벤젠 기반 포토스타틴 (PSTs)입니다. 이들 화합물은 어두운 조건에서 비활성이며, 자외선으로 조명될 때, 이들은 β-튜불린의 콜히친-결합 부위에 결합하고 미세소관 중합 및 동적 턴오버를 차단한다. 여기서, 3차원(3D) 생이식 전 마우스 배아에 PSTs의 적용은 세포하 수준에서 미세소관 네트워크를 교란시키는 것으로 개시된다. 이 프로토콜은 실험 설정에 대한 지침뿐만 아니라 라이브 셀 공초점 현미경을 사용하는 PST에 대한 광 활성화 및 비활성화 매개 변수를 제공합니다. 이것은 재현성을 보장하고 다른 사람들이이 절차를 연구 질문에 적용 할 수있게합니다. PST와 같은 혁신적인 광 스위치는 동적 세포 내 미세 소관 네트워크에 대한 이해를 높이고 실시간으로 세포 골격을 비 침습적으로 조작하는 강력한 도구로 진화 할 수 있습니다. 또한, PST는 오가노이드, 블라스토이드 또는 다른 종의 배아와 같은 다른 3D 구조에서 유용하다는 것을 입증 할 수 있습니다.

서론

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미세소관 구조는 다양한 기능(1,2)을 지원하기 위해 다양한 세포 유형에 따라 크게 다릅니다. 성장과 수축의 역동적 인 특성은 세포 외 및 세포 내 단서에 신속하게 적응하고 끊임없이 변화하는 세포의 요구에 대응할 수있게합니다. 따라서, 그것은 세포 정체성에서 중요한 역할을하는 "형태 학적 지문"으로 간주 될 수 있습니다.

소분자 억제제를 이용한 미세소관 세포골격의 약리학적 표적화는 발달생물학, 줄기세포생물학, 암생물학 및 신경생물학 3,4,5,6,7에서 많은 근본적인 발견을 가져왔다. 이 접근법은 필수 불가결하지만 독성 및 오프 타겟 효과와 같은 다양한 한계를 제시합니다. 예를 들어, 가장 널리 사용되는 미세소관 표적화 제제 중 하나인 노코다졸은 강력한 미세소관-탈중합 약물(8)이다. 그러나, 노코다졸과 같은 소분자 억제제는 적용 시부터 활성이며, 많은 중요한 세포 기능에 미세소관 세포골격의 본질적인 성질을 고려할 때, 미세소관의 글로벌 탈중합은 오프 타겟 효과를 생성할 수 있으며, 이는 많은 응용에 부적합할 수 있다. 또한, 노코다졸 처리는 샘플이 약물로부터 세척되지 않는 한 돌이킬 수 없으며, 따라서 지속적인 라이브 이미징을 방지하고, 따라서 개별 미세소관 필라멘트의 정확한 추적을 방지한다.

광활성화 화합물의 개발은 광미적 분자의 생성과 함께 시작되었으며, 미세소관 성장 억제의 효과를 정밀하고 시공간적으로 제어되는 방식으로 표적화하고 모니터링하는 새로운 시대를 예고했다. 가역적으로 광전환 가능한 약물의 한 군인 포토스타틴(PSTs)은 콤브레타스타틴 A-4의 스틸벤 성분을 아조벤젠9로 대체하여 개발되었다. PST는 자외선으로 조명될 때까지 비활성이며, 이에 의해 비활성 트랜스-구성은 가역적 이성체화에 의해 활성 시스-구성으로 변환 된다. Cis-PST는 β-튜불린의 콜히친 결합 부위에 결합하여 미세소관 중합을 억제하고, β-튜불린과의 계면을 차단하고, 미세소관 성장(10)에 필요한 이량체화를 방지한다. PST의 코호트 중에서, PST-1P는 가장 높은 효능을 가지며, 완전히 수용성이며, 조명 후 생체 활성의 빠른 발병을 보여주기 때문에 납 화합물로 부상했다.

PST의 가장 효과적인 트랜스- 시스-이성체화는 360-420 nm 사이의 파장에서 발생하며, 이는 PST 활성화를 위한 이중 옵션을 가능하게 한다. 전형적인 공초점 현미경 상의 405nm 레이저 라인은 미세소관 성장 억제의 최적의 공간 표적화를 위해 투여될 수 있다. 405nm 레이저 조명을 통해 PST 활성화의 위치와 타이밍을 정확히 파악할 수 있는 기능은 정밀한 시간 및 공간 제어를 용이하게 하여 초 미만의 응답 시간(9) 내에 세포 이하 수준에서 미세소관 역학의 붕괴를 허용한다. 대안으로, 저렴한 LED UV 광은 전체 유기체 조명이 미세 소관 구조의 유기체 전체 파괴를 유도하도록 허용합니다. 이것은 공간 타겟팅보다는 정확한 시간 억제의 발병이 목표인 연구자들에게 비용 효율적인 대안이 될 수 있습니다. PST의 또 다른 특징은 510-540 nm 범위9에서 파장의 녹색 빛을 적용하여 주문형 불활성화입니다. 이는 PST 매개 성장 억제 전, 도중, 및 후에 미세소관 필라멘트의 추적을 가능하게 한다.

PST는 여전히 비교적 최근의 설계이지만, 아메보이드(12)에서의 세포 이동의 새로운 메카니즘 조사, 신생아 마우스(13)의 뇌로부터 분리된 뉴런, 초파리 멜라노가스터(14)에서의 날개 상피 발달 등을 포함하여 다양한 연구 분야(11)에 걸친 수많은 시험관내 응용에 사용되어 왔다. . 다른 빛 반응성 약물은 세포 기능의 표적 파괴에 유용한 도구임이 입증되었습니다. 예를 들어, 블레비스타틴의 유사체인 아지도블레비스타틴이 조명15,16 하에서 향상된 미오신 억제를 위해 사용되었다. 이것은 시공간 적으로 조절 된 세포 기능 억제 능력 때문에 새로운 발견의 잠재력을 강조합니다.

살아있는 3D 유기체는 생리적 조건 하에서 전체 동물, 단일 세포 또는 세포 이하 수준에서 미세 소관 역학을 조작하는 탁월하면서도 섬세한 시스템을 제공합니다. 특히, 이식 전 마우스 배아는 유기체(17) 내의 세포간 관계뿐만 아니라 세포의 내부 작용에 대한 탁월한 통찰력을 제공한다. PSTs의 활성화 및 비활성화의 시간적 및 공간적으로 표적화된 연속적인 사이클은 이식 전 마우스 배아(16)에서 비중심성 미세소관-조직화 중심으로서 세포간 사이토카인증 구조인 상간 브릿지의 특성화에 기여하였다. 유사한 실험 셋업은 배반포 형성 18을 허용하기 위해 마우스 배아의 밀봉에서 성장하는 미세 소관의 관여를 입증하였다18. 또한, PSTs는 또한 뒷뇌19에서 세포의 서브세트에서 미세 소관 성장을 억제함으로써 신경 세포 이동을 조사하기 위해 전체 제브라 피쉬 배아에 사용되었다.

이 프로토콜은 이식 전 마우스 배아에서 PST-1P의 실험 설정 및 사용을 설명합니다. 여기에 제시된 지침은 또한 염색체 분리 및 세포 분열 연구, 세포 내화물의 밀매, 세포 형태 형성 및 이동과 같은 광범위한 목표에 대한 PST의 적용을 안내 할 수 있습니다. 또한, 이러한 연구는 오가노이드 시스템, 블라스토이드 및 Caenorhabditis elegans 및 Xenopus laevis와 같은 다른 배아 모델에서 PST의 구현을 돕고 잠재적으로 시험관 내 수정 기술에 대한 PST의 사용을 확대 할 것입니다.

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프로토콜

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실험은 동물 윤리 번호 19143에 따라 Monash 동물 윤리위원회에 의해 승인되었습니다. 동물들은 윤리 지침에 엄격히 따라 동물 시설(Monash Animal Research Platform)에서 특정 병원균이 없는 동물 집 조건에 수용되었다.

1. 이식 전 마우스 배아 수집

  1. 제도적 동물 윤리 지침에 따라 앞서16,18에서 설명한 바와 같이 마우스를 Superovulate 및 짝짓기한다.
    참고: 살아있는 배아 수집을 위해 가장 일반적으로 사용되는 균주는 C57BL/6 또는 FVB/N 마우스입니다. 여기에 표시된 모든 데이터는 FVB/N 마우스를 사용하여 생성되었다.
  2. 짝짓기 후 아침에, 도20에 기재된 바와 같은 M2 배지 또는 인간 튜벌 유체 (HTF) 배지를 사용하여 난관으로부터 접합체를 플러시한다. 21,22에 기재된 바와 같은 구강 피펫 장치를 사용하여, 효소고트를 신선한 심플렉스 칼륨 최적화 배지(KSOM) 액적으로 옮기고, 37°C로 예열하고, 5%CO2로 평형화시키고, 배지 커버리지를 보장하기 위해 충분한 부피의 미네랄 오일로 오버레이된 35 mm 배양 접시에 담았다.
  3. 도 20에 기재된 바와 같은 미세주입 효소는 적색 형광 태깅된 미세소관 플러스 말단 마커를 암호화하는 cRNA를 포함한다. 여기서, 최종 결합 단백질 3 (EB3)-dTomato에 대한 cRNA는16,18에 기재된 바와 같이 제조 및 정제하고 미세주입 완충액으로 희석한 후 30 ng/μL 농도로 사용하였다.
    참고: cRNA를 미리 준비하고 필요할 때까지 -20°C에 보관하는 것이 좋습니다.
  4. 배아가 PST-1P 처리를 위해 원하는 발달 단계에 도달할 때까지 37°C 및 5%CO2 에서 암흑에서 배아를 배양한다.
    참고 : 다른 배아 단계에 필요한 배양 시간에 대한 포괄적 인 자료는23을 참조하십시오. 여기에 사용된 16-세포 단계 배아의 경우, 수정 후 배아 3일째(E3)로 배양한다.

2. 약물 및 이미징 접시 준비

참고: 2.1-2.10단계의 경우 의도하지 않은 PST-1P 활성화를 방지하기 위해 어두운 색 또는 빨간색 표시등 조건에서만 독점적으로 작업하십시오. 알루미늄 호일 또는 어두운 덮개는 PST가 포함 된 모든 튜브 및 접시에 사용해야합니다.

  1. 초순수에서 50 mM PST-1P의 스톡 농도를 준비한다.
    참고 : PST-1P의 분자량은 440 g / mol입니다. 원액은 -20°C에서 최대 1년 동안 안정하다. PST-1P는 물 또는 수성 완충액에 용해되지만 DMSO에 쉽게 용해되지는 않습니다.
  2. 단계 2.1로부터, 초순수에서 800 μM PST-1P의 중간 작동 농도를 제조하였다.
  3. PST-1P를 신선한 KSOM에서 40 μM의 최종 농도로 희석한다. 전형적인 실험은 약 20 μL의 PST-1P 처리된 KSOM을 필요로 하며, 19 μL의 KSOM에 800 μM PST-1P의 1 μL를 희석하여 20 μL의 최종 부피를 확보하여 가시성을 위해 적색광만을 사용하여 충분한 배지가 미리 준비되도록 한다.
    참고: PST-1P 희석액의 농도 및 활성화 상태는 분석 확립 중에 수행되어야 하는 분광광도계를 사용하여 UV-Vis 흡광도 스펙트럼을 취하여 확인할 수 있습니다. 1 cm 큐벳에서 완전히 트랜스 40 μM 희석된 380 nm(A380)에서의 흡광도는 대략 0.8이어야 한다. 시스- 및 트랜스-형태 둘 다 455 nm에서 동일한 흡광도를 갖는다(A455). A380 대A455의 비율이 대략 9:1일 때, 희석은 비활성(완전 트랜스)이다. 비율A380:A455가 1:2일 때, 희석은 완전히 활성화된다(완전 시스). 중간 비율은 중간 활성화 상태를 반영합니다.
  4. 라이브 이미징용 챔버 슬라이드를 제조하기 위해, 10 μL의 PST-1P 처리된 KSOM을 피펫 1웰의 중앙에 넣고 반구형 액적을 형성하였다(도 1A).
  5. 물방울을 덮기에 충분한 미네랄 오일을 부드럽게 첨가하여 매체가 분산되지 않도록하십시오. 이렇게하면 물방울이 증발하지 않습니다.
  6. 챔버 슬라이드 디쉬를 예비-온하고 CO2-평형화시키고 37°C 및 5%CO2의 인큐베이터에서 최소 3시간 또는 기껏해야 하룻밤 동안 평형화시킨다.
  7. 단계 2.6에서 평형화 기간의 끝에서, 세척 단계로서 PST-1P-처리, 예열 및 평형화된 KSOM의 10 μL 액적을 갖는 35 mm 배양 접시를 제조하였다. 기름으로 겹치지 마십시오.
  8. 단계 2.7로부터 PST-1P-처리된 KSOM 액적 내로 구강 피펫팅에 의해 배아를 옮긴다.
    참고: 단계 2.7 및 2.8은 배아의 구강 피펫팅에 권장되지만 선택 사항입니다.
  9. 입 피펫팅에 의해 배아를 PST-1P 처리된 KSOM 액적의 중심으로 즉시 단계 2.4-2.6에서 제조된 이미징 챔버 슬라이드로 옮긴다(도 1A).
  10. 영상화 전에 PST-1P로 처리된 KSOM 중의 배아를 이미징 챔버 슬라이드에서 37°C 및 5%CO2 에서 적어도 1시간 동안 인큐베이션한다. 가능하다면, 챔버 슬라이드를 37°C 및 5%CO2 의 환경 챔버 내부의 현미경에 장착하고, 완전한 어둠 속에서 모든 PST-1P가 비활성 트랜스-구성에 있고 배아가 접시의 바닥에 가라앉을 수 있도록 한다.

3. 라이브 이미징 및 PST-1P 광활성화

참고: 3.1-3.13단계는 눈사태 광 다이오드 검출기(APD) 및 어두운 환경 챔버가 장착된 레이저 스캐닝 공초점 현미경에서 수행됩니다. 이러한 지침은 구체적으로 재료 표에 설명된 수집 소프트웨어를 사용한 이미징 설정을 참조합니다. 그러나, 그들은 또한 다른 공초점 현미경 시스템에 적용될 수 있습니다.

  1. 규정된 침지 매체로 63x/1.2 NA 수유 침지 목표를 준비합니다.
  2. 적색광 토치를 사용하여 위치 지정을 안내하고, 목표를 전진시켜 침지 매체에 접촉시킨다. 이 단계에서 배아를 찾기 위해 흰색 또는 밝은 필드 빛을 사용하지 마십시오.이 배아는 PST-1P를 조숙하게 활성화 할 수 있습니다.
  3. 아이피스를 사용하고 적색 조명 아래에있는 동안 매체 물방울의 가장자리를 위치시키고이 위치 바로 위에 목표를 배치하십시오. 이것은 사용자가 방향을 설정하고 초점 평면을 찾는 데 도움이 될 수 있습니다.
  4. 다음으로, 아이피스를 통해 또는 소프트웨어 지원 라이브 모드 스캐닝에서 적색 파장 필터 또는 561nm 레이저를 사용하여 액적 내에서 배아를 찾습니다.
  5. 스테이지 컨트롤러와 라이브 스캐닝 모드를 사용하여 전체 배아의 z-스택을 획득하기 위한 시작점과 끝점을 설정합니다.
  6. 레이저 전력 설정(일반적으로 APD와 같은 고감도 검출기의 경우 5% 미만의 561nm 레이저 전력으로 충분함), 디지털 오프셋(일반적으로 -0.900)을 조정하여 EB3-dTomato 혜성의 출현을 최적화하고 배경 잡음, 2μm의 핀홀, 512 x 512의 픽셀 분해능 및 3.15μs의 픽셀 유지 시간을 최소화합니다.
  7. 전체 배아의 z-스택을 1 μm 섹션 간격으로 획득하여 전체 유기체에서 미세소관 성장 영역을 평가한다(도 1B).
  8. 3.7단계의 3D z-스택 이미지를 사용하여 EB3-dTomato 추적 실험에 대한 관심 영역(ROI)을 식별합니다. 확대/축소를 3배로 늘리고 관심 있는 특정 하위 영역 주위에 직사각형 ROI를 그립니다.
  9. 이미징 파라미터의 일반적인 값인 561nm 레이저 파워, -0.900의 디지털 오프셋, 512 x 512의 픽셀 해상도, 3μm의 핀홀, 3.15μs의 픽셀 드웰 시간, 3배의 줌, 500ms의 시간 간격 등 이미징 파라미터의 일반적인 값을 사용하여 단일 z-평면의 타임랩스 동영상을 획득합니다.
    참고: 120개의 시간 프레임은 1분의 추적 동영상을 제공하며 데이터 분석에 충분해야 합니다. 형광단의 표백이 최소화되는 한 획득은 더 오래 지속될 수 있습니다 (그림 1C).
  10. PST-1P를 활성화하려면 405nm 레이저로 전환하고 405nm 레이저를 10% 전력으로 설정하고, 픽셀 해상도 512 x 512, 핀홀이 최대로 열렸으며, 픽셀 유지 시간이 3.15μs, 3배 확대, 500ms의 시간 간격 및 총 20프레임으로 설정된 다른 타임랩스 동영상을 획득합니다(그림 1D).
  11. PST-1P의 활성화 후 EB3-dTomato 혜성의 손실을 확인하기 위해 단계 3.9에서와 같이 561nm 레이저로 다시 전환하고 획득을 반복한다(도 1E). 활성화 후 가능한 한 빨리 이 인수가 수행되는지 확인합니다.
    참고: 3.10 단계는 EB3-dTomato 혜성의 더 긴 억제를 위해 반복적으로 수행 할 수 있습니다. 그러나 배아는 자외선으로 인한 피해를 피하기 위해주의 깊게 모니터링해야합니다.
  12. PST-1P를 비활성 트랜스 상태로 되돌리려면 10% 전력에서 514nm 레이저를 사용합니다. 514nm 레이저가 10% 전력으로 설정되고, 픽셀 해상도가 512 x 512이고, 핀홀이 최대로 열렸으며, 픽셀 유지 시간이 3.15μs, 3배의 줌, 500ms의 시간 간격 및 총 20시간 프레임으로 설정된 타임랩스 동영상을 획득합니다(그림 1F).
  13. 3.11단계를 반복하여 EB3-dTomato 혜성의 회복을 시각화합니다(그림 1G).

4. 이미지 데이터 분석

  1. PST에 의한 미세 소관 중합 억제를 분석하고 정량화하려면 연구자가 특정 요구에 맞게 사용할 수있는 소프트웨어 프로그램을 사용하십시오. 사용을 권장하는 사람들은 EB3-dTomato 혜성16,18의 움직임, 방향 및 속도를 수동 또는 자동으로 추적 할 수있는 추적 도구를 보유하게됩니다.

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도 1: PST-1P 이식 전 마우스 배아에서의 광활성화 및 비활성화의 개략적인 표현. 모든 실험은 완전한 어둠 (검은 배경) 또는 적색 조명 조명에 의해서만 수행됩니다. (a) EB3-dTomato를 발현하는 생이식 전 마우스 배아를 16-세포 단계로 배양한 다음, 이미징 챔버 슬라이드에서 40 μM PST-1P를 함유하는 KSOM의 액적으로 옮긴다. (B) 전체 배아의 3D 이미지는 EB3-dTomato 혜성의 분포를 시각화하여 미세 소관 성장을 평가할 수 있습니다. (c) 실험을 시작하기 위해, EB3-dTomato 혜성은 타임랩스 이미징을 사용하여 세포하 영역에서 추적된다. (d) 405 nm 레이저를 이용한 동일한 아세포 영역에서의 후속 PST-1P 광활성화는 EB3-dTomato 혜성(E)의 손실을 초래한다. 강화된 PST-1P 활성화는 필요한 경우 순차적 405nm 광 조명에 의해 구현될 수 있다. (F-G) PST-1P를 비활성 상태로 되돌리고 EB3-dTomato 혜성을 복원하기 위해 514nm 레이저를 동일한 세포 하위 영역에 적용합니다. 필요한 경우 여러 차례의 광활성화 및 비활성화를 수행 할 수 있습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

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결과

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프로토콜에 따라, 이식 전 마우스 배아에 EB3용 cRNA를 미세주입하였고, 적색 형광 dTomato(EB3-dTomato)로 태그하였다. 이것은 EB3가 미세 소관 플러스 말단24를 중합하는 데 결합함에 따라 성장하는 미세 소관의 시각화를 가능하게합니다.

실험은 마우스 배아가 16개의 세포로 구성된 경우 수정 후 3일(E3)을 수행하였다. 다른 이식 전 발달 단계는 조사 할 과학적 질문에 따라 사용할 수 있습니다. 405 nm 레이저 광 활성화 프로토콜을 이용한 최소 광표백을 입증하기 위해, 처리되지 않은 배아를 사용한 대조군 실험이 도시된다(도 2A i). EB3-dTomato 밀도가 뛰어난 ROI는 배아의 획득 된 3D 이미지를 기반으로 선택됩니다. 이 예에서는 전체 셀의 단일 z-평면이 EB3-dTomato 고해상도 이미징에 사용됩니다. 그러나, ...

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토론

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미세 소관 네트워크는 세포의 근본적인 내부 작동에 필수적입니다. 결과적으로, 이것은 살아있는 유기체에서 미세 소관 역학을 조작하는 데 어려움을 겪는데, 네트워크에 대한 교란은 세포 기능의 모든 측면에 광범위한 영향을 미치는 경향이 있기 때문입니다. 광전환 가능한 미세소관-표적화 화합물의 출현은 미세소관 성장 억제의 유도 및 역전에 대한 우수한 제어와 함께 세포 골격을 아세포 수준에서 정밀하게 조작하는 방법을 제시한다9. 이 프로토콜은 미세소관 중합이 어떻게 세포 하부 규모에서 광활성화된 PST-1P에 의해 이식 전 마우스 배아에서 그리고 시간적으로 정확한 방식으로 억제될 수 있는지를 입증한다. 추가적으로, 이러한 억제는 미세소관 네트워크의 단기간의 교란에 대한 조사를 허용하도록 역전될 수 있다.

제시된 프로토콜은 살아있는 이식 전 마우스 배아에 PST를 적용하는 데 최적화되어 있으며 다양한 다른 배양 시스템으로 사용을 확장하기위한 기초로...

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공개 사항

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저자는 경쟁 또는 재정적 이익을 선언하지 않습니다.

감사의 글

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저자는 Oliver Thorn-Seshold 박사와 Li Gao 박사에게 포토스타틴과 원고 준비에 대한 조언, 촬영 지원을위한 Monash Production 및 현미경 지원을위한 Monash Micro Imaging 박사에게 감사드립니다.

이 연구는 National Health and Medical Research Council (NHMRC) 프로젝트 보조금 APP2002507을 J.Z.에 지원하고 캐나다 고급 연구 연구소 (CIFAR) Azrieli 장학금을 J.Z.에 지원했습니다. Australian Regenerative Medicine Institute는 빅토리아 주 정부와 호주 정부의 보조금으로 지원됩니다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
흡인기 튜브Sigma-AldrichA5177입 흡인 장치
챔버 슬라이드용 - LabTekThermo Fisher ScientificNUN155411
EB3-dTomato용 cRNA 인코딩해당 없음mMessage in vitro Transcription kit를 사용하여 제조업체 지침에 따라 준비
양 접시 - 35mmThermo Fisher Scientific150560
인간 융모막 성장 호르몬Sigma-AldrichC8554
인간 난관 유체 (HTF) 매체Cosmo-BioCSR-R-B071
Imaris 이미지 분석 소프트웨어비트 플레인
이멀젼 오일 W 2010Carl Zeiss444969-0000-000현미경 침지 대물
LED 토치와 함께 사용 - 적색광Celestron93588
M2 중간Sigma-AldrichM7167
마우스 - 야생형 FVB/N, 수컷 및 암컷N/A/A암컷 8-9주. 수컷 2-6개월.
미세모세관 피펫 - KimbleSigma-AldrichZ543306구강 흡인 장치용
미세주입 버퍼N/AN/A5 mM Tris, 5 mM NaCl, 0.1 mM EDTA, pH 7.4
미네랄 오일OrigioART-4008-5P
mMessage 체외 전사 키트Thermo Fisher ScientificAM1340
NanoDrop 분광 광도계Thermo Fisher Scientific
Potassium Simplex Optimized Medium (KSOM) mediumCosmo-BioCSR-R-B074
Pregnant mare serum gonadotrophinProspec BioHOR-272
PST-1PN/A/ABorowiak, M. et al., Photoswitchable Inhibitors of Microtubule Dynamics Optically Control Mitosis and Cell Death. Cell. 162 (2), 403-411, doi:10.1016/j.cell.2015.06.049, (2015).
RNA 정제 키트SangonB511361-0100
초순수Sigma-AldrichW1503
ZEN Black SoftwareCarl Zeiss
배 N N

참고문헌

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Hawdon, A., Aberkane, A., Zenker, J. Microtubule-dependent subcellular organisation of pluripotent cells. Development. 148 (20), (2021).
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