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Research Article
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
필 블롯 기술은 다층 및 농축된 생물학적 샘플을 단일 레이어로 분리하여 두께를 줄이고 샘플 농도를 높이며 이미지 처리를 용이하게 하는 Cryo-EM 그리드 준비 방법입니다.
필 블롯 Cryo-EM 그리드 준비 기술은 다층 시료의 층을 줄이기 위해 크게 수정된 역주입 방법입니다. 플런지 동결 전에 층을 제거하면 시료 두께를 Cryo-EM 데이터 수집에 적합한 수준으로 줄이고 시료 평탄도를 개선하며 이미지 처리를 용이하게 하는 데 도움이 될 수 있습니다. 필 블롯 기술은 다층 멤브레인을 단일 층으로 분리하고, 층상 2D 결정을 개별 결정으로, 용해성 단백질의 적층 된 시트 모양의 구조를 단일 층으로 분리 할 수 있습니다. 이러한 유형의 시료의 높은 시료 두께는 특히 데이터 수집을 위해 현미경 스테이지를 기울여야 하는 경우 Cryo-EM 데이터 수집 및 Cryo-EM 이미지 처리에 극복할 수 없는 문제를 자주 제기합니다. 또한, 그리드 준비 이전의 샘플 농도를 증가시킬 수 있고 필 블롯 기술을 조정하여 단층 표본의 조밀 한 분포를 초래할 수 있기 때문에 이러한 샘플 중 임의의 고농도의 그리드를 효율적으로 데이터 수집을 위해 준비 할 수 있습니다.
필 블롯 기술은 적층된 막 단백질의 2차원 결정을 단층으로 분리하여 Cryo-EM 2D 및 3D 데이터 수집에 적합한 얇은 샘플을 얻고이미지 처리를 용이하게 하기 위해 개발되었습니다1. 이 프로토콜은 다른 유형의 다층 샘플뿐만 아니라 Z 단위의 두께를 늘리지 않고 그리드에서 두 샘플 유형의 높은 샘플 농도를 달성하는 데에도 적합합니다.
샘플 층을 하나의 층으로 감소시키는 것은 역주입 방법(2) 상에서 실질적으로 연장되고 변형되는 프로토콜에서 모세관 압력과 전단력의 조합을 적용함으로써 달성된다. 첫 번째 블로팅 단계는 백 주입 방법에서 20-25μm 여과지 기공 크기가 아닌 서브 마이크론에서 블로팅하는 동안 다층 샘플의 양쪽에 탄소 필름과 그리드 바를 단단히 샌드위치하고 부착시킵니다. 개별 층의 분리 또는 박리는 그리드가 트레할로스 드롭에 수직으로 눌려지면 샌드위치 된 층을 강제로 분리 할 때 발생하여 탄소 필름이 그리드 막대에서 멀어집니다 (그림 1). 그리드 바와의 원래 접촉점에서 멀리 떨어진 탄소 필름의 위치 변경은 그리드가 서브 마이크론 여과지에서 다시 한번 블롯 될 때 다음 단계에서 발생합니다. 이러한 단계의 반복 횟수는 특정 샘플에 대해 최적화할 수 있습니다. 또한 이 프로토콜을 사용하여 Z의 응집을 피하면서 샘플 농도를 높일 수 있습니다. 그리드 바 및 탄소 필름에 대한 부착과 강제 분리에 의존하기 때문에 이 접근법은 특정 섬세하거나 불안정한 단백질 및 단백질 복합체와 같은 매우 깨지기 쉬운 분자에는 적합하지 않을 수 있습니다.
필 블롯 기술은 특수 장비나 값비싼 소모품이 필요하지 않습니다. 그러나 특정 샘플에 대한 적용 가능성은 생물학적 매개 변수에 대한 신중한 고려가 필요합니다. 평탄도를 보장하기 위해 탄소 필름이 필요하기 때문에 2D 결정의 경우 결정이 더 쉽지만 필 블롯 기술을 통한 조작은 샘플의 생물학적 무결성 또는 결정 순서에 영향을 미칠 수 있습니다. 단일 입자에 대한 필 블롯 기술의 적합성은 탄소 필름이 필요하고 조작에 안정적인 것으로 제한되며 테스트 될 수 있습니다. 층 사이에 중요한 생물학적 상호 작용이있는 표본은 이러한 상호 작용의 중단으로 인해 필 블롯 기술의 도움으로 특성화에 적합하지 않을 수 있습니다.
필 블롯 기술("필 블롯")은 실온에서 TEM에 의한 음성 염색 또는 염색되지 않은 샘플로 테스트 및 스크리닝함으로써 가장 빠르게 최적화됩니다. 최적의 필 블롯 반복 횟수가 확인되면 유리화 전에 두께를 제어하는 시간을 결정할 수 있습니다.
1. 필 블롯 기술의 준비 단계
알림: 준비하려면 다음 항목을 서로 인접하게 배치해야 합니다.
2. 그리드에 탄소 필름 배치
3. 다층 2D 결정을 단층으로 분리
성공적인 필 블롯 실험은 종종 고농도의 단일 샘플 층을 생성합니다. 대부분의 그리드 사각형의 일부 영역에는 여전히 여러 레이어가 포함될 것으로 예상되며, 특히 필 블롯 단계의 반복 횟수가 적습니다. 그러나 대부분의 그리드 사각형에는 인간 류코트리엔 C4 합성 효소 (그림 2) 및 리포좀 (3.2 단계, 그림 3에 추가됨)의 2D 결정에서 관찰 된 바와 같이 광범위한 단층 영역이 포함됩니다. 층에서 원하는 감소를 나타내지 않는 샘플에 대해 추가 필 블롯 단계를 테스트해야 할 수 있습니다.
성공적인 필 블롯 실험의 가장 중요한 지표는 고해상도 Cryo-EM 데이터 수집 및 이미지 처리 후 관찰된 데이터 품질과 생물학적 무결성입니다. 데이터 해석에는 레이어 간의 접촉 영역에 대한 잠재적 손상 또는 왜곡에 대한 신중한 고려가 포함되어야 합니다.
박리 블로팅이 발생한 EM 그리드의 영역은 일반적으로 발생하지 않은 영역보다 더 높은 농도의 샘플을 표시합니다. 이 겉보기 농축 효과는 다층 샘플이 탄소 필름과 그리드 바 표면 모두에 부착된 후 필 블롯 준비 중에 반복적으로 분리되고 약간 재배치되고 다시 접촉할 때 두 표면에 추가로 부착되기 때문에 발생합니다. 그 결과 원래의 다중 라멜라 샘플의 여러 층이 더 넓은 측면 영역에 걸쳐 분산됩니다(그림 3 및 그림 4). 이러한 영역에는 더 큰 2D 결정 또는 멤브레인이 포함될 수도 있습니다. 두 현상 모두 "필 영역"이 필 블롯 단계의 영향을 받지 않는 영역에 인접한 영역에서 쉽게 관찰되고 비교됩니다(그림 3). 그림 2-4의 이미지는 투과 전자 현미경으로 120kV의 가속 전압에서 저선량 조건에서 수집되었습니다(재료 표 참조).

그림 1: 필 블롯 기법의 개략적 표현. 필-블롯 기술의 처음 두 단계(1-2 및 1-3)와 마지막 단계(1-6)는 백주입 방법(2)을 기반으로 하고 중간 단계는 필-블롯 프로토콜(Johnson et al.1에서 수정됨)을 따릅니다. 1단계에서 (A) 20-25μm 기공 크기의 여과지 두 장을 쌓고, (B) 트레할로스 용액 두 방울이 있는 파라핀 필름 조각에 인접하고, (C) 두 개의 추가 여과지에 서브미크론 여과지 한 장을 쌓습니다. 단계 2에서, (A) 탄소 필름은 제 1 트레할로스 액적 상에 부유되고, (B) 모세관 방지 겸자로 집어 올려지고, 그 후 표면 장력을 깨지 않고 제 2 액적 (미도시)의 표면에 접촉되어 주변으로부터 과잉의 탄소 막을 제거한다. 3단계에서 (A) 그리드를 고정하는 포셉이 180° 회전하고(그리드의 탄소 필름 쪽이 이제 아래를 향함) (B) 샘플을 트레할로스의 메니스커스에 피펫팅합니다. 4단계에서 그리드는 탄소 필름이 위를 향하도록 원래 방향으로 다시 회전하고 샘플은 서브미크론 여과지 위로 천천히 내려갑니다. 그리드를 들어 올리고 5단계에서 트레할로스 용액 1.7μL 방울 위로 수직으로 내립니다. 4단계와 5단계를 "필 블로팅"이라고 하며 스태킹의 양에 따라 3회 이상 반복할 수 있습니다. 반복 횟수는 다른 샘플에 대해 최적화해야 할 수 있습니다. 단계 6에서, (A) 샘플을 20-25 μm 공극 크기의 여과지의 두 층에 블롯팅하고, (B) 액체 질소에 손으로 담그기 전에. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 2: 필 블롯 방법을 거친 2D 결정 샘플. 화살표의 왼쪽 영역은 탄소 필름과 그리드 막대 사이의 접촉 영역에서 단층 2D 결정으로 크게 축소되어 박리 블롯 된 다음 이동되었으며, 화살표의 오른쪽 영역은 필 블롯의 영향을받는 영역에 없었습니다. 박리 블롯 영역은 쉽게 선택할 수 있으며 대부분의 그리드에서 관찰됩니다. 도시된 2D 결정은 인간 류코트리엔C4 합성효소의 적층 및 단층 2D 결정입니다. 스케일 바는 10 μm에 해당합니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 3: 필 블롯을 거친 리포좀. 필 블롯은 붕괴 된 리포솜과 소포의 가장자리를 차단하여 이미지의 아래쪽 절반에서 관찰되는 것처럼 크고 대부분 단층 인지질 이중층이있는 영역을 생성하는 데 성공적으로 적용될 수 있습니다. 상반부는 그리드 바(grid bar)와 탄소 필름 사이의 접촉 영역에 있지 않았고, 따라서 두 개의 인지질 이중층을 갖는 완전한 리포좀을 함유한다. 스케일 바는 1μm에 해당합니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 4: 필 블롯 풋프린트. 400 메쉬 그리드의 그리드 사각형은 그리드 막대의 풋프린트("B"로 레이블이 지정됨)와 결과 필 블롯 영역뿐만 아니라 그리드 막대와 접촉하지 않았거나 더 적은 필 블롯 반복을 거친 영역("C"로 레이블이 지정됨)을 보여줍니다. 스케일 바는 10 μm에 해당합니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 5: 너무 얇은 탄소 필름을 사용하여 서브미크론 여과지에 역주입하여 준비한 EM 그리드를 블로팅합니다. 이미지는 (A) 멤브레인과의 초기 접촉, (B) 접촉 후 1000ms 및 (C) 접촉 후 2000ms에서 촬영된 비디오(비디오 1 참조)의 단일 프레임입니다. 화살표는 모세관 압력이 탄소 필름을 파열시킨 격자 사각형을 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
비디오 1: 그리드는 필 블롯 단계를 위해 서브미크론 여과지에 놓입니다. 탄소 필름은 왼쪽 하단에서 오른쪽 상단 방향으로 그리드에 천천히 단단히 흡입되어 그리드 바와 탄소 필름 사이에 샘플을 단단히 끼 웁니다. 탄소 필름과 개별 샘플 층은 각각의 후속 필 블롯 단계에서 변위되어 더 높은 계층화 된 샘플에 대한 추가 반복으로 최적화를 허용합니다. 이 비디오를 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.
저자는 경쟁하는 재정적 이해 관계나 기타 이해 상충이 없습니다.
필 블롯 기술은 다층 및 농축된 생물학적 샘플을 단일 레이어로 분리하여 두께를 줄이고 샘플 농도를 높이며 이미지 처리를 용이하게 하는 Cryo-EM 그리드 준비 방법입니다.
이 작업의 일부는 NIH 보조금 HL090630(ISK)의 지원을 받았습니다.
| 600-메시 그리드 | SPI | 2060-C-XA | |
| 안티-캐필러리 펜치 | Ted Pella | 510-5 | |
| 카본 투 코팅 마이카 | |||
| Cryo-EM | Cryo-EM 그리드는 120 kV 또는 200 kV에서 스크리닝될 수 있습니다. 고해상도 데이터는 300kV에서 수집됩니다. | ||
| Dumpont #5 펜치 | Ted Pella | 5622 | |
| Cryo-EM 보관용 그리드 상자 | Ted Pella | 160-40 | |
| Kim Wipes | |||
| 액체 질소 | |||
| 운모 | Ted Pella | 56 | 운모는 탄소 코팅되어 TEM 그리드보다 약간 큰 사각형으로 절단됩니다. 탄소 두께는 여러 번의 박리 블롯에서 쉽게 부서지는 얇은 탄소를 피하기 위해 최적화가 필요할 수 있습니다. |
| 음성 염색 | 1-2% 우라닐 아세테이트는 많은 샘플에 적합합니다. 포스 포 텅스텐 산과 같은 다른 염색을 대체 할 수 있습니다. | ||
| 파라 필름 | |||
| 폴리스티렌 용기 | 껍질 - 블롯 그리드를 유리화하는 데 사용됩니다. 폴리스티렌 선적 컨테이너는 이러한 목적으로 재활용할 수 있으며 알루미늄 호일로 라이닝할 수 있습니다. | ||
| 서브미크론 여과지 | MilliporeSigma | DAWP04700 | |
| 투과 전자 현미경 | JEOL | JEM-1400 | 80-120kV의 가속 전압에서 작동하는 모든 TEM은 음으로 염색된 그리드의 스크리닝에 적합합니다. |
| 트레할로스 | 4% 트레할로스 용액을 준비합니다. | ||
| Whatman #4 여과지 | MilliporeSigma | WHA1004150 | 이것은 20-25 &mu에 해당합니다. 프로토콜의 M 기공 크기 여과지. |