이 콘텐츠를 보려면 JoVE 구독이 필요합니다. 로그인하거나 오늘 무료 평가판을 시작하세요.

방법 논문

분할 뿌리 노출 기술을 통한 밀에서 과불화알킬산의 장거리 운송 조사

1.9K 조회수

⸱

DOI:

10.3791/64400

⸱

2022년 9월 28일

 ,  , 
1College of Natural Resources and Environment, Northwest A&F University

이 논문에서

요약

본 프로토콜은 밀에서 퍼플루오로알킬산의 장거리 수송을 위한 간단하고 효율적인 방법을 기술한다.

초록

다량의 과불화알킬산(PFAA)이 토양에 유입되어 식물에 축적되어 인체 건강에 잠재적인 위험을 초래합니다. 식물 내에서 PFAA의 축적과 전좌를 조사하는 것이 필수적입니다. 장거리 수송은 체관부를 통해 식물 잎에서 식용 조직으로 전달되는 PFAA의 중요한 경로입니다. 그러나 이전에는 단기 노출 기간에 유기 오염의 전좌 가능성을 평가하기가 어려웠습니다. 분할 루트 실험은 수경 실험을 사용하여 PFAA의 장거리 전좌를 효과적으로 밝혀내는 솔루션을 제공하며, 이 연구에서는 두 개의 50mL 원심분리 튜브(A 및 B)에서 수행되었으며, 그 중 원심분리 튜브 A는 50mL의 1/4 강도의 Hoagland 멸균 영양 용액을 갖는 반면 원심분리기 튜브 B는 동일한 양의 영양소 농도를 가졌습니다. 및 표적 PFAA (퍼플루오로옥탄 술폰산, PFOS, 및 퍼플루오로옥탄산, PFOA)를 주어진 농도로 첨가하였다. 통밀 뿌리를 수동으로 두 부분으로 분리하고 튜브 A와 B에 조심스럽게 삽입했습니다. 뿌리, 밀의 싹 및 튜브 A와 B의 용액에 있는 PFAA의 농도는 각각 LC-MS/MS를 사용하여 7일 동안 배양하고 수확한 후 평가되었습니다. 결과는 PFOA와 PFOS가 체관부를 통해 싹에서 뿌리까지 유사한 장거리 수송 과정을 경험하고 주변 환경으로 방출될 수 있음을 시사했습니다. 따라서 분할 루트 기술을 사용하여 다양한 화학 물질의 장거리 운송을 평가할 수 있습니다.

서론

퍼플루오로알킬산(PFAA)은 표면 활성과 열적 및 화학적 안정성 1,2,3을 포함한 우수한 물리화학적 특성으로 인해 다양한 상업 및 산업 제품에 널리 사용됩니다. 퍼플루오로옥탄 설폰산(PFOS)과 퍼플루오로옥탄산(PFOA)은 전 세계적으로 사용되는 가장 중요한 두 가지 PFAA 4,5,6이지만 이러한 화합물은 각각 2009년과 2019년 국제 스톡홀름 협약 7,8에 등재되었습니다. PFOS와 PFOA는 지속성과 광범위한 사용으로 인해 다양한 환경 매트릭스에서 널리 검출되었습니다. 전 세계적으로 다른 강과 호수의 지표수에서 PFOA 및 PFOS의 농도는 각각 0.15-52.8 ng / L 및 0.09-29.7 ng / L입니다9. 관개를 위해 지하수 또는 재생 수를 사용하고 바이오 솔리드를 비료로 사용하기 때문에 PFOA 및 PFOS는 각각 0.01-123 μg / kg 및 0.003-162 μg / kg 범위의 토양에 널리 존재합니다10, 식물에 많은 양의 PFAA를 도입하고 인체 건강에 잠재적 인 위험을 초래할 수 있습니다. 농업 토양과 곡물 (밀과 옥수수)의 PFAA (C4-C8) 농도는 양의 선형 상관 관계를 보여줍니다11. 따라서 식물 내에서 PFAA의 축적 및 전좌를 조사하는 것이 필수적입니다.

식물에서 PFAA의 전좌는 먼저 뿌리에서 지상 조직으로 발생하며, 뿌리에서 식용 조직으로의 PFAA의 전좌는 장거리 수송으로 간주됩니다12,13. 이전 연구에서는 야채와 과일에서 비스페놀 A, 노닐페놀 및 천연 에스트로겐을 검출했습니다.14, 이는 이러한 화학 물질이 체관부를 통해 이동할 수 있음을 의미합니다. 따라서 식물에서 PFAA의 전좌를 밝히는 것은 잠재적 위험을 평가하는 데 중요합니다. 그러나 PFAA의 축적 및 전좌는 토양에서의 생체 이용률에 영향을 받기 때문에 식물에서 표적 PFAA의 전좌 능력을 평가하는 것은 쉽지 않습니다. 또한 수경 실험은 일반적으로 여러 요인에 의해 제한되므로 식물의 식용 조직을 얻기가 더 어렵습니다. 전형적으로, 체관부는 식물에서 장거리를 통한 유기 화합물의 전좌를 관찰하기 위해 식물로부터 직접 수집되었지만, 식물 묘목15에서 체관부를 획득하는 것은 어렵다. 따라서 비교적 단기간에 노출되는 동안 식물에서 PFAA의 전좌를 연구하기 위해 간단하고 효과적인 방법인 분할 루트 기술이 도입되었습니다. 분할 뿌리 조사에 관해서는, 한 식물 묘목의 뿌리는 두 부분으로 분리됩니다. 한 부분은 표적 PFAA가 들어있는 영양 용액 (튜브 A)에 넣고 다른 부분은 PFAA가없는 영양 용액 (튜브 B)에 넣습니다. 며칠 동안 노출 된 후 튜브 B의 PFAA는 LC-MS / MS로 측정됩니다. 튜브 B 내의 PFAA의 농도는 식물16,17,18 내의 체관부를 통한 PFAA의 전좌 전위를 개시한다.

분할 뿌리 실험은 CuO 나노 입자17, 스테로이드 에스트로겐18 및 유기 인산 에스테르16과 같은 식물에서 많은 화합물의 장거리 전좌를 연구하기 위해보고되었습니다. 이 연구는 이러한 화합물이 체관부를 통해 식물의 식용 부분으로 이동할 수 있다는 증거를 제공했습니다. 그러나 PFAA가 식물의 전좌에 도움이 될 수 있는지 여부와 화합물 특성의 영향에 대해 더 자세히 조사해야 합니다. 이러한 보고를 바탕으로 본 연구에서는 밀에서 PFAA의 장거리 수송을 공개하기 위해 뿌리 분할 실험을 수행했습니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

프로토콜

밀 종자 인 Triticum aestivum L.을 조달하여 ( 재료 표 참조) 본 연구에 사용했습니다.

1. 밀 묘목 발아 및 수경 재배

  1. 비슷한 크기의 밀 씨앗을 선택하고 15 % (w / w) 과산화수소 용액으로 8 분 동안 소독하십시오.
  2. 소독 된 씨앗을 탈 이온수로 철저히 헹구고 실온의 어두운 곳에서 습한 여과지에 올려 5 일 동안 발아시킵니다.
  3. 균일 한 크기의 발아 된 약 9 개의 묘목을 선택하고 250mL의 영양 용액 (Hoagland 용액의 1/4 강도, 화학 성분은 표 1에 표시됨)이있는 플라스틱 비커로 옮깁니다.
    참고: 9개의 시드 중 각각 3개의 시드가 블랭크, PFOA 및 PFOS에 대해 선택되었습니다.
  4. 노출 전 7 일 동안 성장 챔버에서 묘목을 22 ° C에서 14 시간, 27 ° C에서 10 시간 주기로 재배합니다.

2. 루트 분할 실험

  1. 두 개의 50mL 원심 분리 튜브 (A 및 B)에서 묘목 재배를 수행합니다.
    참고: 원심분리 튜브 A에는 50mL의 멸균 1/4 강도 Hoagland 용액이 존재했으며 원심분리 튜브 B에는 동일한 양의 영양 용액이 존재했습니다.
    1. 상업용 PFOA와 PFOS( 재료 표 참조)를 메탄올에 녹이고 멸균 영양 용액을 원액으로 희석합니다. 그런 다음 원액을 100μg/L의 PFOA/PFOS 농도로 튜브 B에 추가합니다.
    2. 배경 오염을 모니터링하기 위해 빈 컨트롤로 삼중 처리를 수행하십시오. 분할 루트 노출 실험의 개략도가 그림 1에 나와 있습니다.
  2. 핀셋을 사용하여 밀 묘목의 전체 뿌리를 두 개의 동일한 부분으로 분리하여 뿌리가 여전히 같은 싹에 연결되도록하고 조심스럽게 튜브 A와 B에 각각 삽입하십시오.
  3. 두 개의 튜브를 알루미늄 호일로 밀봉하고 인큐베이터에서 7 일 동안 배양하십시오. 단계 1.4에 명시된 것과 동일한 배양 조건을 유지하십시오.
  4. 배양 7 일 후에 밀 묘목을 수집하고 멸균 된 가위를 사용하여 PFAA의 스파이크 용액과 스파이크되지 않은 용액에서 각각 배양 된 싹과 뿌리의 세 부분으로 밀을 분리합니다.
  5. 식물 샘플을 동결건조기에서 -55°C에서 48시간 동안 동결건조합니다.
  6. 균질화하고 뿌리를 측정하고 샘플을 쏘십시오. 스파이크된 용액 샘플과 스파이크되지 않은 용액 샘플을 수집합니다.

3. 식물 조직에서 PFOA 및 PFOS 추출

  1. 2mL의 탄산나트륨 완충액(0.25mol/L), 1mL의 테트라부틸암모늄 황산수소염(0.5mol/L) 및 5mL의 메틸 tert-부틸 에테르( 재료 표 참조)를 균질화된 뿌리 또는 싹을 포함하여 15mL 폴리프로필렌 튜브에 추가합니다.
  2. 튜브를 250rpm으로 20분 동안 흔들고 실온에서 10분 동안 2,000 x g 로 원심분리하여 상청액 유기상을 얻습니다. 추출 과정을 두 번 수행하십시오.
  3. 수집 된 추출물을 혼합하고 부드러운 질소 (N2) 스트림에서 건조하도록 기화 한 다음 5mL의 메탄올로 재구성하고 약 30 초 동안 동일한 속도를 유지하면서 와동시킵니다.
  4. 페스티카브 카트리지( 재료 표 참조)를 메탄올 중 0.1% NH4OH5mL, 물 5mL, 메탄올 5mL로 컨디셔닝합니다.
  5. 페스티카브 카트리지(500mg/6mL)를 통해 추출 메탄올 용액 5mL를 추가하여 안료를 제거하고 5mL의 메탄올로 카트리지를 용리한 다음 동일한 튜브에 수집합니다.
  6. 수집된 메탄올 용액 10mL를 증발시켜 거의 건조시키고 메탄올 200μL로 재구성한 후 실온에서 20분 동안 10,000 x g 에서 볼텍싱 및 원심분리합니다.

4. 영양 용액에서 샘플 준비

  1. 극성 강화 폴리머(PEP) 추출 카트리지(60mg/g, 3mL)를 활성화하기 위해 메탄올 5mL와 물 5mL로 조건화합니다( 재료 표 참조).
  2. 각각 1mL의 스파이크 용액 또는 50mL의 스파이크되지 않은 용액 샘플 (2.6 단계)을 카트리지를 통해 추가합니다.
  3. 표적 PFAA를 메탄올 10mL로 용리하고 부드러운N2로 추출물을 증발시킨 다음 분석을 위해 메탄올 200μL로 재구성합니다.

5. 기기 분석

  1. 다중 반응 모드(MRM) 및 음성 전기 분무 이온화(ESI-)에서 표적 PFAA를 정량화하기 위해 탠덤 질량분석법(LC-MS/MS)과 결합된 초고성능 액체 크로마토그래피 UPLC를 사용합니다( 재료 표 참조).
  2. 10μL의 시료를 주입하고 C18 액체 크로마토그래피 컬럼(1.7μm, 2.1mm x 50mm, 재료 표 참조)을 사용하여 표적 PFAA를 분리하고 유속이 0.3mL/min인 UPLC의 이동상으로 물(상 A) 및 메탄올(상 B)에 2mM 암모늄 아세테이트를 사용합니다. 컬럼 온도를 50°C로 유지한다.
    참고: PFOA와 PFOS의 이온 전이는 각각 413에서 369 및 499에서 80입니다. 표적 PFAA의 정량화를 위한 그래디언트 용리 프로그램 및 LC-MS/MS 기기 파라미터는 표 2에 나열되어 있습니다.
  3. 데이터 분석 소프트웨어로 데이터를 처리합니다( 재료 표 참조).

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

결과

분할 뿌리 실험은 밀에서 PFAA의 장거리 수송을 조사했습니다. 그림 2A, C에서 볼 수 있듯이 PFOA와 PFOS는 모두 밀 뿌리에 흡수되어 싹으로 옮겨질 수 있습니다. PFOS 및 PFOA는 블랭크 대조군의 튜브 A에서 밀 뿌리 및 용액에서 검출되지 않았다. PFOS와 PFOA는 스파이크되지 않은 용액에서 배양 된 밀 뿌리에서 검출되었으며, 농도는 각각 0.26 ng / g ± 0.02 ng / g 및 0.64 ng / g ± 0.05 ng / g 건조 중량 (dw) (n = 3)으로 통밀 식물의 축적량의 1.5 % 및 1.8 %를 차지합니다. 이 결과는 PFOS와 PFOA가 체관부를 통해 싹에서 뿌리까지 장거리 수송을 경험할 수 있음을 시사합니다. PFOS와 PFOA는 각각 17.8ng/L ± 0.28ng/L 및 28.5ng/L ± 5.9ng/L(n = 3) 농도의 스파이크되지 않은 영양 용액에서도 발견되었으며, 이는 PFOA와 PFOS가...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

토론

이 방법의 정확성을 보장하려면 튜브 B의 스파이크 용액이 튜브 A의 스파이크되지 않은 용액을 오염시키지 않도록 조심스럽게 작업해야합니다. 본 연구에서 주어진 표적 PFAA 농도는 실제 환경에서의 농도보다 상대적으로 높았으며, LC-MS/MS를 사용하여 밀 및 스파이크되지 않은 용액에서 표적 PFAA를 모니터링할 수 있었습니다.

이 방법에는 제한이 있습니다. 각 처리군에 하나의 밀 묘목만 사용하고 뿌리를 반으로 나누었기 때문에 스파이크된 용액의 초기 농도가 상대적으로 낮을 경우 최종 처리에서 얻은 바이오매스가 적을수록 스파이크되지 않은 용액에서 배양된 뿌리의 PFAA 농도가 검출 한계 미만이 될 수 있습니다. 또한, 짧은 노출 시간으로 인해, 뿌리에서 밀의 식용 부분으로의 PFAA의 수송은 결정될 수 없었다. 분할 뿌리 실험은 식물16 내에서 다른 특성을 가진 PFAA의 체관 수송만을 분석 할 수있었습니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

공개 사항

저자는 공개 할 것이 없습니다.

감사의 글

중국 자연과학재단(NSFC 21737003), 중국대학과학기금(제2452021103호), 중국박사후과학재단(제2021M692651, 2021M702680)의 재정 지원에 감사드립니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
ACQUITY UPLC BEH C18 컬럼Waters, Milford, MA액체 크로마토그래피 컬럼
Cleanert PEP 카트리지Bonna-Angel Technologies, 중국고체상 추출 컬럼
Clearnert Pesticarb 카트리지Bonna-Angel Technologies, 중국고체상 추출 컬럼
LC-MS/MS(Waters Acquity UPLC i-Class Coupled to Xevo TQ-S)Waters, Milford, MA액체 크로마토그래피 및 질량 분석기
동결 건조기 Boyikang Instrument Ltd., Beijing, ChinaFD-1A50동결 건조 시료
MasslynxWaters, Milford, MA데이터 분석 소프트웨어
Methyl tert-butyl etherSigma-Aldrich Chemical Co. (St. Louis, US)식물 조직에서 표적 화합물 추출에 사용
MPFAC-MXAWellington Laboratories (Ontario, Canada)PFACMXA0518내부 표준
PFAC-MXB웰링턴 연구소 (캐나다 온타리오)PFACMXB0219PFAA 보정 표준의 혼합물
PFOASigma-Aldrich Chemical Co. (미국 세인트루이스)335-67-1a는 PFAA를 나타냅니다
PFOSSigma-Aldrich Chemical Co. (미국 세인트루이스)2795-39-3a는 PFAA를 나타냅니다
탄산나트륨 완충액Sigma-Aldrich Chemical Co. (미국 세인트루이스)식물 조직에서 표적 화합물을 추출하는 데 사용
테트라부틸암모늄 황산수소Sigma-Aldrich Chemical Co. (St. Louis, US)식물 조직에서 표적 화합물을 추출하는 데 사용
밀 씨앗Chinese Academy of Agricultural Sciences (Beijing, China) Triticum aestivum L.

참고문헌

  1. Lindstrom, A. B., Strynar, M. J., Libelo, E. L. Polyfluorinated compounds: Past, present, and future. Environmental Science & Technology. 45 (19), 7954-7961 (2011).
  2. Kannan, K. Perfluoroalkyl and polyfluoroalkyl substances: Current and future perspectives. Environmental Chemistry. 8 (4), 333-338 (2011).
  3. Cui, Q., et al. Occurrence and tissue distribution of novel perfluoroether carboxylic and sulfonic acids and legacy per/polyfluoroalkyl substances in black-spotted frog (Pelophylax nigromaculatus). Environmental Science & Technology. 52 (3), 982-990 (2018).
  4. Negri, E., et al. Exposure to PFOA and PFOS and fetal growth: a critical merging of toxicological and epidemiological data. Critical Reviews in Toxicology. 47 (6), 489-515 (2017).
  5. Chi, Q., Li, Z., Huang, J., Ma, J., Wang, X. Interactions of perfluorooctanoic acid and perfluorooctanesulfonic acid with serum albumins by native mass spectrometry, fluorescence and molecular docking. Chemosphere. 198, 442-449 (2018).
  6. Zhang, X., Chen, L., Fei, X. C., Ma, Y. S., Gao, H. W. Binding of PFOS to serum albumin and DNA: insight into the molecular toxicity of perfluorochemicals. Bmc Molecular Biology. 10, 16(2009).
  7. Stockholm Convention. PFASs listed under the Stockholm Convention. , Switzerland. Available from: http://chm.pops.int/Implementation/IndustrialPOPs/PFOS/Overview/tabid/5221/Default.aspx (2009).
  8. Stockholm Convention. Chemicals proposed for listing under the Convention. , Switzerland. Available from: http://chm.pops.int/TheConvention/ThePOPs/ChemicalsProposedforListing/tabid/2510/Default.aspx (2019).
  9. Pan, Y. T., et al. Worldwide distribution of novel perfluoroether carboxylic and sulfonic acids in surface water. Environmental Science & Technology. 52 (14), 7621-7629 (2018).
  10. Knight, E. R., et al. An investigation into the long-term binding and uptake of PFOS, PFOA and PFHxS in soil - plant systems. Journal of Hazardous Materials. 404, 124065(2021).
  11. Liu, Z. Y., et al. Crop bioaccumulation and human exposure of perfluoroalkyl acids through multi-media transport from a mega fluorochemical industrial park, China. Environment International. 106, 37-47 (2017).
  12. Mei, W. P., et al. Per- and polyfluoroalkyl substances (PFASs) in the soil-plant system: Sorption, root uptake, and translocation. Environment International. 156, 106642(2021).
  13. Wang, W., Rhodes, G., Ge, J., Yu, X., Li, H. Uptake and accumulation of per- and polyfluoroalkyl substances in plants. Chemosphere. 261, 127584(2020).
  14. Lu, J., Wu, J., Stoffella, P. J., Wilson, P. C. Analysis of bisphenol A, nonylphenol, and natural estrogens in vegetables and fruits using gas chromatography-tandem mass spectrometry. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 61 (1), 84-89 (2013).
  15. Herschbach, C., Gessler, A., Rennenberg, H. Long Distance Transport and Plant Internal Cycling of N- and S-Compounds. Progress in Botany 73. Luttge, U., Beyschlag, W., Budel, B., Francis, D. , Springer. Berlin, Heidelberg. 161-188 (2012).
  16. Liu, Q., et al. Uptake kinetics, accumulation, and long-distance transport of organophosphate esters in plants: Impacts of chemical and plant properties. Environmental Science & Technology. 53 (9), 4940-4947 (2019).
  17. Wang, Z. Y., et al. Xylem- and phloem-based transport of CuO nanoparticles in maize (Zea mays L.). Environmental Science & Technology. 46 (8), 4434-4441 (2012).
  18. Chen, X., et al. Uptake, accumulation, and translocation mechanisms of steroid estrogens in plants. Science of the Total Environment. 753, 141979(2021).
  19. Felizeter, S., McLachlan, M. S., de Voogt, P. Uptake of perfluorinated alkyl acids by hydroponically grown lettuce (Lactuca sativa). Environmental Science & Technology. 46 (21), 11735-11743 (2012).
  20. Zhou, J., et al. Insights into uptake, translocation, and transformation mechanisms of perfluorophosphinates and perfluorophosphonates in wheat (Triticum aestivum L.). Environmental Science & Technology. 54 (1), 276-285 (2020).

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재인쇄 및 허가

더 많은 논문 탐색

분할 뿌리 기술밀 축적체관 수송PFOA 흡수PFOS 흡수수경 재배 실험LC-MS/MS 분석식물 오염물질 이동
분할 뿌리 노출 기술을 통한 밀에서 과불화알킬산의 장거리 운송 조사
문의하기
도서관에 추천하기

개인정보 처리방침

이용 약관

정책

저작권 © 2026 MyJoVE Corporation. 모든 권리 보유.