방법 논문

양막에서 Lumican 추출 및 보관 온도 결정

DOI:

10.3791/64460

⸱

2022년 10월 14일

 ,  ,  , 
1Instituto de Oftalmologia Fundacion Conde de Valenciana IAP, 2Biochemistry Department, Medicine Faculty, Universidad Nacional Autónoma de Mexico

* These authors contributed equally

이 논문에서

요약

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

본 프로토콜은 양막(AM)으로부터 루미칸을 추출하고 그의 단백질 및 루미칸 농도를 정량화하기 위해 -20°C, 4°C 및 실온(RT)에서 6, 12, 20 및 32일 동안 AM 추출물(AME)로서 그의 저장 조건을 설명한다.

초록

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Lumican은 각막 상피화와 콜라겐 섬유 조직을 촉진하여 각막 투명성을 유지하는 인간 양막(AM)에 있는 작은 류신이 풍부한 프로테오글리칸입니다. 본 연구에서, AM으로부터 단백질을 추출하여 루미칸을 얻는 방법이 제안된다. 또한, 상이한 온도 및 시간대에 저장된 AM 추출물 (AME)에서 lumican의 안정성이 평가된다. 100mg의 AM을 해동하고 기계적 탈상피화하였다. 탈상피화된 AM을 동결시키고 미세 분말이 수득될 때까지 분쇄하고, 단백질 분해효소 억제제와 함께 2.5mL의 식염수 완충액으로 가용화하고, 단백질 추출을 위해 원심분리하였다. 상청액을 수집하고, -20°C, 4°C, 및 실온(RT)에서 6, 12, 20, 및 32일 동안 저장하였다. 그 후, 루미칸을 각 AME에서 정량화하였다. 이 기술은 AM에서 lumican 추출을위한 접근 가능하고 획득 가능한 프로토콜을 허용합니다. 루미칸 농도는 보관 시간 및 온도 조건에 의해 영향을 받았다. -20°C 및 4°C에서 12일간 저장된 AME에서 루미칸은 다른 AME보다 유의하게 높았다. 이 lumican 추출은 치료 및 제약 솔루션 개발에 유용 할 수 있습니다. 재상피화 및 상처 치유 과정에서 AME lumican의 사용을 결정하기 위해서는 추가 연구가 필요합니다.

서론

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

각막 애정에 가장 많이 사용되는 치료법 중 하나는 양막 이식입니다. 그러나 최근 몇 년 동안 양수의 다양한 구성 요소를 대체 및 보조 치료법으로 사용하기위한 새로운 제안이 등장했습니다. AM의 가장 많이 연구 된 성분 중에는 AM 추출물 (AME) 1,2,3,4,5,6,7에서 얻은 성분이 있습니다. AM은 항 혈관 신생 단백질, 인터루킨 (IL), 금속 단백 분해 효소 (TIMPs)의 조직 억제제, 호중구 세포 외 트랩을 억제하는 TSG-6에 의해 매개되는 항 염증 단백질, 성장 인자 : 표피 성장 인자 (EGF), 형질 전환 성장 인자 (TGF) (알파 및 베타), 각질 세포 성장 인자 (KGF), 간세포 성장 인자 (HGF) 및 콜라겐 원 섬유 생성을 조절하여 각막 투명성을 유지하는 루미 칸과 같은 여러 가용성 인자를 포함합니다1, 2,3,4,5,6,7,8,9.

Lumican은 콜라겐 섬유를 조직하고 각막 투명성을 유지하는 역할을하는 각막 기질 기질의 간질 콜라게나제의 주요 세포 외 구성 요소 중 하나 인 작은 류신이 풍부한 프로테오글리칸 (SLRP)입니다 4,10,11. 프로테오글리칸은 세포 외 기질 (ECM)의 분자로, 세포 신호 전달을 수행하고 세포 내 항상성을 유지하는 주요 분자입니다12. ECM 단백질은상처 치유 동안 증식, 분화 및 이동의 세포 과정을 주도하는 것으로 보고되었습니다11.

증거는 각막 재 상피화 과정에서 lumican의 참여 가능성을 나타냅니다. Saika et al.은 한 연구에서 각막 손상 후 손상 후 처음 8 시간에서 최대 3 일 사이에 각막 각질 세포에서 lumican이 검출 될 수 있음을 보여주었습니다. 둘째 날과 셋째 날에 가장 높은 농도의 루미칸을 나타내는 이 프로테오글리칸은 이후 7일째에 검출되지 않습니다13. 이 데이터는 각막 재 상피화 과정의 활성화에 lumican의 참여를 시사합니다. 다른 한편으로, 다른 연구에서, lumican의 부재는 재 상피화를 지연시키는 것으로보고되었다; 흥미롭게도 Lumican을 추가하면 재상피화 과정 4,11,13이 가속화될 수 있습니다. 마찬가지로, 최근 연구에 따르면 lumican은 각막 윤부 섬유 아세포14의 염증 기능을 조절할 수 있으며, 이는 염증성, 항 섬유화 및 재 상피 화 반응의 조절제로서 lumican의 역할을 시사합니다. 유사하게, lumican은 Fas-FasL과 같은 신호 분자와 상호 작용하여 각막 반응을 조절할 수 있습니다. 또한, 녹아웃 Lum-/- 마우스 모델에서 루미칸의 부재는 루미칸 신호전달의 부족이 적절한 각막 복구를 방해한다는 것을 입증했다15.

주로이 방법은 AM에서 lumican을 추출하는 실현 가능하고 접근 가능한 방법을 입증하는 것을 목표로합니다. 이 유리한 lumican 추출 방법을 사용하면 유사한 농도의 단백질을 얻을 수있어 처리 시간이 단축되고 이전 연구에 비해 조사자에게 더 편리합니다16. 또한, 이 AME 루미칸은 각막 복구 및 재상피화 과정을 위한 보조제로 사용될 수 있습니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

프로토콜

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

모든 실험 절차는 기관 검토위원회 (프로젝트 번호 CEI-2020/06/04)의 승인을 받았습니다. AM은 Instituto de Oftalmologia Conde de Valenciana amnion bank (식별되지 않은 인간 피험자로부터)에서 얻었으며, 이는 Chávez-García et al.17에 설명 된대로 준비되었습니다.

1. 양막 추출물의 제조

  1. 양막 은행에서 AM 100mg을 얻으십시오.
    참고: 이전 보고서에 따르면 AM 50mg은 총 10ng/mL의 루미칸14를 분비합니다. 더 높은 농도의 루미칸을 얻으려면 총 면적 32cm2에 해당하는 AM 100mg을 사용하십시오.
  2. AM이 얼면 실온에서 해동하십시오.
    알림: 층류 후드 클래스 II B에서 다음 절차를 수행하십시오.
  3. 페트리 접시에 AM을 멸균 균형 소금 용액 10mL(BSS, 재료 표 참조)로 2분 동안 세척합니다.
    1. BSS를 비커에 붓습니다.
    2. 단계 3을 반복하고 글리세롤 배지가 페트리 디쉬 BSS에 존재하지 않는지 육안으로 확인한다.
      참고: 3단계를 반복합니다. 글리세롤 배지가 페트리 디쉬 BSS에 존재하지 않을 때까지 필요에 따라.
  4. AM을 37°C, 5%CO2에서 30분 동안 10mL의 디스파아제 II(1.7IU/mL, 재료 표 참조)와 함께 배양합니다.
    참고: Dispase II는 상피 세포에 대해 부드러운 활성을 갖는 중성 프로테아제입니다. 이 효소는 온전한 표피를 진피로부터 효과적으로 분리하고 온전한 상피 시트를 단리한다(18).
  5. dispase 배양 후, 고무 경찰관과 함께 기계적 탈 상피화14 를 수행하십시오 ( 재료 표 참조). 현미경 시각화로 상피화 제거를 확인합니다.
    참고: 상피화 제거 과정은 4x 및 20x 대물렌즈를 사용하여 도립 현미경에서 확증됩니다. 세포층의 존재를 배제하기 위해 조직을 시각화하십시오.
  6. 페트리 접시에 AM을 BSS 10mL로 2분간 세척합니다. BSS를 비커에 붓습니다.
  7. 탈상피화된 AM(dAM)을 2mL 미세 원심분리 튜브에 넣습니다. dAM을 액체 질소에 40분 동안 담그십시오.
  8. 미세 분말이 얻어질 때까지 -85°C의 사전 냉각된 모르타르에서 2-3분 동안 동결된 dAM을 수동으로 분쇄합니다.
  9. 모르타르에서 dAM 분말을 2.5mL의 프로테아제 억제제 용액(프로테아제 억제제가 포함된 BSS)으로 가용화합니다.
    참고: 프로테아제 억제제의 모든 정제는 췌장 추출물(0.02mg/mL), 서몰리신(메탈로프로테아제)(0.0005mg/mL), 키모트립신(0.002mg/mL), 트립신(0.02mg/mL) 및 파파인(0.33mg/mL)과 같은 효소 혼합물로 구성됩니다( 재료 표 참조).
  10. 마이크로 피펫으로 혼합물을 모으고 메스 나이프를 사용하여 모르타르 벽을 청소하십시오. 혼합물을 5mL 튜브에 넣습니다.
  11. 30 초 동안 와류와 잘 섞는다.
  12. 조직 혼합물을 4°C에서 20분 동안 34 x g에서 원심 분리하고 즉시 4°C에서 20분 동안 3360 x g 에서 원심분리하여 균질화합니다.
  13. 수집된 상청액은 AME입니다(그림 1). 각 AME 0.7mL를 서로 다른 2mL 미세 원심분리 튜브에 -20°C, 4°C 및 실온(RT)의 서로 다른 온도 조건에서 6일, 12일, 20일 및 33일 동안 보관합니다.

figure-protocol-1
그림 1: AME 준비 과정 및 루미칸 농도 측정 . 100mg의 AM을 37°C에서 30분 동안 디스파제 II와 함께 인큐베이션하고 기계적으로 탈상피화하였다. 탈상피화된 AM을 세척하고 40분 동안 액체 질소에 침지한 다음, 미세 분말이 얻어질 때까지 분쇄하고, 프로테아제 억제제를 사용한 식염수 완충액 2.5mL로 가용화하고 원심분리하였다. 상청액을 수집하고, 총 단백질 및 루미칸 정량이 이루어질 때까지 6, 12, 20, 및 32일 동안 -20°C, 4°C 및 RT에서 보관하였다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

2. AME 단백질 정량화

참고: AME에서 총 단백질의 정량화는 관찰 직후에 수행해야 합니다. Lowry 단백질 분석을 사용하여 단백질을 정량화하고 제조업체의 지침을 따르십시오( 재료 표 참조). 모든 표준물질과 샘플을 삼중으로 분석하는 것이 좋습니다.

  1. AME의 각 샘플 40 μL를 96-웰 마이크로플레이트에 피펫팅한다.
    1. 최종 BSA 농도 0-1,500 μg/mL(0, 1, 5, 25, 125, 250, 500, 750, 1,000 및 1,500 μg/mL)에 대해 소 혈청 알부민(BSA) 표준물질을 사용하여 동일한 마이크로플레이트에 표준 곡선을 준비합니다.
  2. 200 μL의 변형된 Lowry 시약을 각 웰에 피펫팅한다. 즉시 플레이트 믹서에서 30 초 동안 혼합하십시오.
  3. 마이크로 플레이트를 알루미늄 호일로 덮고 RT에서 10 분 동안 배양합니다.
  4. 각 웰에 1x 폴린-시오칼트 시약 20 μL를 피펫팅합니다. 즉시 플레이트 믹서에서 30 초 동안 혼합하십시오.
    참고: 1x 폴린-시오칼테우 시약을 준비하려면 초순수로 2x (2N) 시약을 1:1로 희석하십시오. 희석된 시약이 불안정하므로 사용 당일에 1x Folin-Ciocalteu 시약을 준비하십시오.
  5. 마이크로 플레이트를 알루미늄 호일로 빛으로부터 덮고 RT에서 30 분 동안 배양합니다.
  6. ELISA 플레이트 분광기에서 660nm에서 샘플의 흡광도를 측정합니다( 재료 표 참조).
    참고: 색상은 650nm에서 750nm 사이의 파장에서 측정할 수 있습니다.
  7. 표준 블랭크 샘플의 660nm 흡광도 값을 평균하고 표준 및 알려지지 않은 샘플의 다른 660nm 값에서 뺍니다.
    1. ELISA 플레이트 분광기로 10초 동안 낮은 흔들림으로 엔드포인트 모드로 흡광도를 측정합니다.
  8. 표준 곡선을 사용하여 알려지지 않은 각 샘플의 단백질 농도를 결정합니다.
  9. 단백질 계산을 위해 각 표준 BSA 곡선의 X축에 있는 mg/mL 농도에 대해 Y축의 흡광도 값을 사용하여 선형 회귀 그래프에서 농도를 결정합니다.
    1. 선형 회귀 방정식과 r 값을 구하여 단백질 농도를 계산합니다.
      참고: 결과는 AM mg(μg/mL 단백질/mg AM 조직)에 대한 총 단백질의 정규화된 상대 농도 값으로 표시됩니다.

3. AME에서 루미칸의 정량화

알림: lumican의 농도는 다른 보관 조건과 기간에 저장된 AME에서 측정해야 합니다. 샌드위치 ELISA를 사용하여 루미칸을 정량화하고 제조업체의 지침을 따르십시오. 모든 표준물질과 샘플을 이중으로 분석하는 것이 좋습니다.

  1. 인간 lumican 포획 항체 ( 재료 표 참조)를 인산염 완충 식염수 (PBS)에서 사용 된 농도로 희석하십시오.
    참고: 포획 항체 바이알에는 120μg의 항체가 들어 있습니다. 0.5mL의 PBS로 재구성한 후 2μg/mL의 작업 용액에서 포획 항체를 희석합니다.
    1. 희석된 포획 항체를 웰당 100 μL를 즉시 피펫팅하여 96-웰 마이크로플레이트에 배치합니다. 플레이트를 동봉하고 RT에서 밤새 배양합니다.
  2. 각 웰을 흡인하고 다중 채널 피펫터를 사용하여 PBS, pH 7.2-7.4 ( 재료 표 참조) 중 0.05% 폴리옥시에틸렌 소르비탄 모노라우레이트 20: 300 μL의 세척 완충액으로 피펫팅하여 세척합니다. 세 번 반복하십시오.
    알림: 마지막 세척 후 접시를 에버팅하여 남아 있는 세척액을 제거하고 종이 타월에 부드럽게 두드립니다.
  3. 300 μL의 시약 희석제를 첨가하여 플레이트 차단: PBS 중 1% BSA, pH 7.2-7.4, 0.2 μm 여과( 재료 표 참조)를 각 웰에 여과하였다. RT에서 1 시간 동안 배양하십시오.
  4. 2단계를 반복합니다.
  5. 최종 농도 125, 250, 500, 1,000, 2,000, 4,000 및 8,000pg/mL에 대해 0-8,000pg/mL의 2배 연속 희석액을 사용하여 96웰 마이크로플레이트에 표준 곡선을 준비합니다. ELISA 루미칸 키트에는 75ng의 재조합 루미칸 표준이 포함되어 있습니다( 재료 표 참조).
  6. 100 μL의 샘플과 표준 곡선을 포획 항체 코팅된 96웰 마이크로플레이트에 추가합니다.
  7. 마이크로플레이트를 덮고 2-3rpm 사이의 속도를 유지하는 소형 로커에서 낮은 교반으로 RT에서 2시간 동안 배양합니다.
  8. 2단계를 반복합니다.
  9. 100μL의 비오티닐화 검출 항체( 재료 표 참조)를 각 웰에 추가합니다. 빛으로부터 덮고 2-3rpm 사이의 속도를 유지하는 소형 로커에서 낮은 교반으로 RT에서 2 시간 배양하십시오.
    참고: 비오티닐화 검출 항체 바이알에는 24μg의 항체가 들어 있습니다. 1.0mL의 시약 희석제로 재구성한 후 400ng/mL의 작업 용액에서 비오티닐화 검출 항체를 희석합니다.
  10. 2단계를 반복합니다.
  11. 스트렙타비딘-양 고추 냉이 퍼 옥시 다제 (HRP, 재료 표 참조)의 작업 희석액 100 μL를 각 웰에 첨가하십시오. 마이크로플레이트를 빛으로부터 덮고 RT에서 20분 동안 배양합니다.
    참고: 반응성 스트렙타비딘-HRP는 40배 농축되었습니다. 스트렙타비딘-HRP의 작업 용액 1x는 시약 희석제로 만들어졌습니다.
    알림: 플레이트를 직사광선에 두지 마십시오.
  12. 2단계를 반복합니다.
  13. 마지막으로 100μL의 기질 테트라메틸벤지딘(TMB, 재료 표 참조) 용액을 각 웰에 추가합니다.
    알림: 키트에 제공된 동일한 부피의 안정화 과산화수소 30% 용액으로 TMB 용액을 준비하십시오.
    알림: 사용 직전에 용액을 준비하고 실온에서 유지하십시오.
  14. 어두운 곳에서 RT에서 30 분 동안 배양하십시오.
    알림: 플레이트를 직사광선에 두지 마십시오. 더 이상 세척할 필요가 없으므로 TMB 용액을 흡입하지 마십시오.
  15. 50 μL의 1NH2SO4정지 용액을 첨가하여 비색 반응을 중지시켰다. 플레이트를 부드럽게 두드려 완전히 혼합되도록 합니다.
  16. ELISA 플레이트 분광기에서 450nm로 설정된 마이크로플레이트 리더를 사용하여 각 웰의 흡광도를 즉시 측정합니다.
  17. ELISA 플레이트 분광기로 10초 동안 낮은 흔들림으로 엔드포인트 모드로 흡광도를 측정합니다.
  18. 표준 블랭크 샘플의 450nm 흡광도 값을 평균하고 표준 및 알려지지 않은 샘플의 다른 450nm 값에서 뺍니다.
  19. 표준 곡선을 사용하여 알려지지 않은 각 샘플의 lumican 농도를 결정합니다.
  20. 루미칸 농도를 계산하려면 각 표준 루미칸 곡선의 X축에 있는 pg/mL 농도에 대해 Y축의 흡광도 값을 사용하여 선형 회귀 그래프를 만듭니다.
    1. 선형 회귀 방정식과 r 값을 구하여 lumican 농도를 계산합니다.
      참고: lumican의 농도는 추출된 조직의 mg에 대해 표준화되었습니다. 결과는 mg AM (ng / mL lumican / mg AM 조직)에 대한 루미 칸의 정규화 된 상대 농도 값으로 표현됩니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

결과

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

결과는 표준 편차(SD)± 평균값으로 보고됩니다. 스튜던트 t-검정과 분산 분석(ANOVA)을 수행했습니다. 0.05< p-값은 통계적으로 유의한 것으로 간주되었습니다. 통계 분석은 통계 소프트웨어를 사용하여 수행되었습니다( 재료 표 참조).

AME의 총 단백질 양은 시간 및 저장 조건에 의해 영향을 받았다. 기초 단백질 농도는 모든 AME에서 유사했습니다. 총 단백질의 범위는 평가 된 샘플간에 유의 한 차이없이 2.7 ± 0.3 μg / mL였습니다. 그러나, 샘플을 12, 20 및 32 일 동안 보관했을 때, 기저 농도에 대한 단백질 농도의 변동성이 관찰되었다. 흥미롭게도, 단백질 농도는 저장의 항상 RT에 대하여 4°C 및 -20°C에서 AME에서 증가하였다.

유사하게, 단백질 농도를 저장 시간 사이에 비교했을 때, 12, 20 및 32 일 후에 변화했다. ...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

토론

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

이 연구에서는 AME에서 lumican의 존재와 다양한 저장 조건에서의 안정성과의 직접적인 상관 관계를 분석했습니다. 흥미롭게도 AME의 총 단백질 농도를 정량화하면 보관 후 단백질 농도가 증가했습니다. 증거는 냉동 보관에서 단백질 농도를 변화시킬 수 있는 세 가지 메커니즘, 즉 저온 변성, 용질의 동결 농도 및 얼음으로 인한 단백질 구조의 부분 풀림을 시사합니다19. 냉동 과정은 샘플에서 액상의 결정화로 인해 보관 샘플의 단백질 농도에 영향을 미칠 수 있습니다. 결과는 이것이 냉동실의 보관 시간에 영향을 받아 농도를 동결하는 과정으로 발생했을 수 있음을 시사합니다. 더 높은 농도의 단백질은 더 긴 보관 시간 (32 일 및 20 일)과 가장 추운 온도 (4 ° C 및 -20 ° C)에서 관찰되었습니다. 그러나 단백질 농도가 가장 높은 기간에는 lumican 농도가 가장 높지 않았습니다. 이는 Lumican이 동결 온도 및 시간 조건의 영향을 받을 수 있음을 시사합니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

공개 사항

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

이 연구는 멕시코 국립 자치 대학의 연구 및 기술 혁신 프로젝트 지원 프로그램 (보조금 번호. PAPIIT IN203821) 및 교육 과학 기술 혁신부 (보조금 번호. SECTEI 250/2019).

감사의 글

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

저자는 경쟁하는 재정적 이해 관계가 없습니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
1 N H2SO4 정지 솔루션R& D 시스템DY994
100 μ L 마이크로피펫Eppendorf
1000 μ L 마이크로피펫Eppendorf
15 mm 페트리 접시Symlaboratorios
18 G 바늘 (1.2 mm x 40 mm)BD Becton Dickinson 
2 mL 마이크로 원심분리기 튜브EppendorfZ606340
20 mL 플라스틱 주사기 BD 벡턴 디킨슨 
20 μ L 마이크로피펫Eppendorf
20-200 μ L 마이크로피펫Eppendorf
5 mL microcentrifuge tubeEppendorf30119401
96-well microplateSARSTEDT821581
Aluminum foilN/AN/A
Amniotic membraneInstituto de Oftalmologia Conde de Valenciana Amnion Bank100 mg
Balanced salt solutionBausch + LombBSS-403802
비커해당 없음해당 없음
BioRender BioRender피규어 디자인 
Compact RockerBioRad970822DDMod. 5202SD-BIO
완전한, EDTA-free, 프로테아제 억제제
칵테일 정제		Roche11 873 580 001프로테아제 억제제
Daiggner vortex Genie 2A.Daigger & Co. , INC22220A
Dispase IIGibco17105-041
ELISA 플레이트 분광계Thermo Labsystems& 주의;35401106멀티스캔
프리저
GraphPad 프리즘 GraphPad Software, Inc버전 9통계 분석 및 그래픽 프로그램 
휴먼 루미칸 듀오셋 ELISA 키트R& D SystemsDY2846-05는 인간 Lumican 포획 항체
인큐베이터를 포함합니다.포마 사이언티픽 3326 S/N 36481-7002
도립광 현미경Olympus 6A13921탈상피화를 확인하기 위해  Mod.CK2
층류 후드Forma Scientific 14753-567Mod.1184
액체 질소N/
해당 없음 모르타르N/
해당 없음 다중 채널 피펫터Eppendorf
질소 탱크Thermo ScientificMod. Biocan 20
종이 타월해당 없음인
산염 완충 식염수R& D SystemsDY006
Pierce Modified Lowry 단백질 분석 키트Thermo Scientific23240
플레이트 실러R& D 시스템DY992
시약 희석제R& D 시스템DY995PBS의 1% BSA, pH 7.2-7.4, 0.2 μ m 여과
된 냉장 원심분리기centurion scientific Ltd 15877모드. K2015R
고무 경찰관 세포 스크래퍼NEST710001기계적 상피
스 나이프BraunBB521No. 10 또는 21
Streptavidin-HRP 40배 농축 R& D 시스템부품 893975
기판 테트라메틸벤지딘(TMB) 용액R& D SystemsDY999
톱니 핀셋Invent Germany6binox 
초순수PISA
세척 버퍼R & D SystemsWA1260.05% 트윈 20인치 PBS, pH 7.2-7.4
305211302562AA 제거 메

참고문헌

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Jirsova, K., Jones, G. Amniotic membrane in ophthalmology: properties, preparation, storage and indications for grafting-a review. Cell and Tissue Banking. 18 (2), 193-204 (2017).
  2. Witherel, C., Yu, T., Concannon, M., Dampier, W., Spiller, K. Immunomodulatory effects of human cryopreserved viable amniotic membrane in a pro-inflammatory environment in vitro. Cellular and Molecular Bioengineering. 10 (5), 451-462 (2017).
  3. Ruiz-Cañada, C., et al. Amniotic membrane stimulates cell migration by modulating transforming growth factor-β signalling. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 12 (3), 808-820 (2017).
  4. Yeh, L., et al. Soluble lumican glycoprotein purified from human amniotic membrane promotes corneal epithelial wound healing. Investigative Opthalmology & Visual Science. 46 (2), 479(2005).
  5. Navas, A., et al. Anti-Inflammatory and anti-fibrotic effects of human amniotic membrane mesenchymal stem cells and their potential in corneal repair. Stem Cells Translational Medicine. 7 (12), 906-917 (2018).
  6. Magaña-Guerrero, F., Domínguez-López, A., Martínez-Aboytes, P., Buentello-Volante, B., Garfias, Y. Human amniotic membrane mesenchymal stem cells inhibit neutrophil extracellular traps through TSG-6. Scientific Reports. 7, 12426(2017).
  7. Garfias, Y., Zaga-Clavellina, V., Vadillo-Ortega, F., Osorio, M., Jimenez-Martinez, M. Amniotic membrane is an immunosuppressor of peripheral blood mononuclear cells. Immunological Investigations. 40 (2), 183-196 (2010).
  8. Koob, T., et al. Biological properties of dehydrated human amnion/chorion composite graft: implications for chronic wound healing. International Wound Journal. 10 (5), 493-500 (2013).
  9. Miyagi, H., Thomasy, S., Russell, P., Murphy, C. The role of hepatocyte growth factor in corneal wound healing. Experimental Eye Research. 166, 49-55 (2018).
  10. Chen, S., Mienaltowski, M., Birk, D. Regulation of corneal stroma extracellular matrix assembly. Experimental Eye Research. 133, 69-80 (2015).
  11. Karamanou, K., Perrot, G., Maquart, F., Brézillon, S. Lumican as a multivalent effector in wound healing. Advanced Drug Delivery Reviews. 129, 344-351 (2018).
  12. Theocharis, A., et al. Cell-matrix interactions: focus on proteoglycan-proteinase interplay and pharmacological targeting in cancer. FEBS Journal. 281 (22), 5023-5042 (2014).
  13. Saika, S., et al. Role of lumican in the corneal epithelium during wound healing. Journal of Biological Chemistry. 275 (4), 2607-2612 (2000).
  14. Domínguez-López, A., et al. Amniotic membrane conditioned medium (AMCM) reduces inflammatory response on human limbal myofibroblast, and the potential role of lumican. Molecular Vision. 27, 370-383 (2021).
  15. Vij, N., Roberts, L., Joyce, S., Chakravarti, S. Lumican regulates corneal inflammatory responses by modulating Fas-Fas Ligand signaling. Investigative Opthalmology & Visual Science. 46 (1), 88(2005).
  16. Mahbod, M., et al. Amniotic membrane extract preparation: What is the best method. Journal of Ophthalmic and Vision Research. 9 (3), 314-319 (2014).
  17. Chávez-García, C., et al. Ophthalmic indications of amniotic membrane transplantation in Mexico: an eight years Amniotic Membrane Bank experience. Cell and Tissue Banking. 17 (2), 261-268 (2015).
  18. Stenn, K. S., Link, R., Moellmann, G., Madri, J., Kuklinska, E. Dispase, a neutral protease from Bacillus polymyxa, is a powerful fibronectinase and type IV collagenase. Journal of Investigative Dermatology. 93 (2), 287-290 (1989).
  19. Bhatnagar, B. S., Bogner, R. H., Pikal, M. J. Protein stability during freezing: separation of stresses and mechanisms of protein stabilization. Pharmaceutical Development and Technology. 12 (5), 505-523 (2007).
  20. McClain, A. K., McCarrel, T. M. The effect of four different freezing conditions and time in frozen storage on the concentration of commonly measured growth factors and enzymes in equine platelet-rich plasma over six months. BMC Veterinary Research. 15 (1), 292(2019).
  21. Tamhane, A., et al. Evaluation of amniotic membrane transplantation as an adjunct to medical therapy as compared with medical therapy alone in acute ocular burns. Ophthalmology. 112 (11), 1963-1969 (2005).
  22. Shtein, R., et al. Autologous serum-based eye drops for treatment of ocular surface disease. Ophthalmology. 127 (1), 128-133 (2020).
  23. Shahriari, H., Tokhmehchi, F., Reza, M., Hashemi, N. Comparison of the effect of amniotic membrane suspension and autologous serum on alkaline corneal epithelial wound healing in the rabbit model. Cornea. 27 (10), 1148-1150 (2008).
  24. Schuerch, K., Baeriswyl, A., Frueh, B., Tappeiner, C. Efficacy of amniotic membrane transplantation for the treatment of corneal ulcers. Cornea. 39 (4), 479-483 (2019).
  25. Chen, H., et al. Amniotic membrane transplantation for persistent corneal ulcers and perforations in acute fungal keratitis. Cornea. 25 (5), 564-572 (2006).
  26. Guo, Q., et al. A comparison of the effectiveness between amniotic membrane homogenate and transplanted amniotic membrane in healing corneal damage in a rabbit model. Acta Ophthalmologica. 89 (4), 315-319 (2011).
  27. Sabater, A., Perez, V. Amniotic membrane use for management of corneal limbal stem cell deficiency. Current Opinion in Ophthalmology. 28 (4), 363-369 (2017).
  28. Ahmad, T., et al. Autolysis of bovine skin, its endogenous proteases, protease inhibitors and their effects on quality characteristics of extracted gelatin. Food Chemistry. 265, 1-8 (2018).
  29. Mullegama, S. V., et al. Nucleic acid extraction from human biological samples. Methods in Molecular Biology. 1897, 359-383 (2019).
  30. Skog, M., et al. The effect of enzymatic digestion on cultured epithelial autografts. Cell Transplantation. 28 (5), 638-644 (2019).

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재인쇄 및 허가

이 JoVE 논문의 텍스트 또는 그림 재사용 허가 요청

허가 요청

태그

관련 논문