다중 혈청학적 검사에서 다양한 항체 등급의 동시 검출

라임 보렐리아증(Lyme borreliosis)은 북반구의 온화한 기후에서 가장 흔한 진드기 매개 전염병이다¹. 보렐리야(Borrelia) 속의 스피로헤테(spirochete) 박테리아에 의해 발생하며, 지리적 분포가 다른 5가지 알려진 인간 병원체가 있다². 유럽의 주요 병원성 보렐리아 종은 B. afzelii 및 B. garinii이며, B. burgdorferi s.s., B. spielmanii 및 B. bavariensis는 덜 자주 연루됩니다. 북아메리카에서는 B. burgdorferi s.s.가 라임 보렐리아증 ^2,3의 유일한 원인균이다. 보렐리아 병원균은 진드기 속 익소데스(Ixodes)에 속하며, 진드기에 물린 후 24시간 이내에 전염될 수 있다⁴.

라임 보렐리아증 진단은 일반적으로 임상 증상에 의해 이루어지며 이후 혈청학으로 확인됩니다. 유럽과 북미 모두에서 진단 지침은 보렐리아 특이적 항원 1,5,6,7,8,9에 대한 항체 반응을 평가하기 위해 반사 면역블롯이 있는 효소 결합 면역 흡착 분석(ELISA)으로 구성된 2단계 테스트 시리즈를 권장합니다 . 그러나 이 접근법은 민감도가 부족하고 특히 혈청전환이 불완전하고 항-보렐리아 IgG 및 IgM 역가가 너무 낮은 감염 초기 단계에서 최적이 아니다⁶.

멀티플렉스 면역분석법은 한 번에 하나의 표적만 측정하는 기존의 면역분석을 개선하며, 하나 이상의 항원에 대한 여러 항체 동형형 반응을 동시에 평가할 수 있습니다 10,11,12. ELISA와 같은 분석은 반응당 단일 분석물을 식별하고 정량화하는 것으로 제한되며, 현재 보렐리아 감염 후 단일 박테리아 항원에 대해 유도된 순환 IgG 또는 IgM입니다. 이 보고서는 인간 혈청 샘플에서 본 명세서에서 선택한 보렐리아 항원에 대해 IgG 및 IgM 항체를 동시에 검출하는 다중 면역 분석법의 개발을 위해 비드 기반 분석물 프로파일링 기술을 사용하는 방법을 설명합니다. 우리는 유럽에서 자생하는 가장 흔한 병원성 보렐리아 종을 함께 포함하는 4개의 항원을 선택했습니다(B. 가리니, B. 아프젤리, B. 부르그도르페리 s.s.) 및 북미 (B. burgdorferi s.s.) (표 1) ^2,3입니다. 이를 통해 결정적인 병원체를 식별하고 환자 샘플에서 초기 IgM 및 이후 더 내구성 있는 IgG 면역 반응을 식별할 수 있습니다.

표 1: 멀티플렉스 분석 개발에 사용되는 대표적인 보렐리아 항원.

우리는 처음에 두 개의 개별 반응에서 항 보렐리아 항원 IgG 또는 IgM 항체를 검출하는 단일 리포터 면역분석을 개발한 다음 이러한 분석을 동일한 반응 혼합물에서 두 항체 동형을 모두 측정하는 듀얼 리포터 다중 분석으로 병합했습니다. 마그네틱 비드는 관심 병원체 표적 항원에 결합된 다음 환자 혈청 샘플과 함께 배양됩니다. 비드 결합 항원은 병원체 항원에 대한 면역 반응에서 생성된 혈청에서 순환하는 IgG와 IgM에 의해 인식되고 포착됩니다. 분석 IgG 대 IgM 특이성은 각각 두 개의 2차 항체와 관련된 뚜렷한 형광단 신호를 가진 IgG 또는 IgM에 결합하는 2차 항체의 선택에 의해 결정됩니다. 각 형광 신호는 IgG 또는 IgM(여기서는 각각 Brilliant Violet 421 또는 phycoerythrin)을 검출하는 데 사용되는 단일 형광단에 특화된 서로 다른 여기 레이저 및 방출 캡처가 있는 기기의 두 Reporter 채널(즉, 듀얼 리포터) 중 하나에서 검출됩니다. 기기 분류 채널은 다양한 비드 세트에 내재된 색상으로 구분된 염료를 식별합니다. 따라서, 여러 표적 항원을 서로 다르게 염색된 비드에 결합할 수 있으며, 비드 세트를 함께 혼합하여 혈청 샘플에서 다양한 항병원체 면역 활성을 종합적으로 평가하는 데 사용할 수 있습니다. 분류 채널은 각 개별 비드 세트(즉, 특정 항원)를 식별하고 해당 항원에 대한 IgG 또는 IgM과 관련된 형광을 측정합니다. 그 결과 멀티플렉스 분석은 덜 포괄적인 기존 검사에 비해 시간과 자원을 절약하고 제한된 샘플 부피에서 라임 면역 반응을 정확하게 분류합니다. SARS-CoV-2 감염¹³과 같은 다른 병리학에서 면역 반응을 분류하기 위해 유사한 이중 보고자 접근 방식이 이전에 사용되었지만, 이 보고서에서는 라임 보렐리오증의 면역 반응을 특성화하기 위한 다중 형광 분석 기술의 적용에 대해 자세히 설명합니다.

이 실험 시리즈에서 인간 혈청 샘플을 사용하기 위해 적절한 기관 검토 위원회/윤리 위원회의 승인을 받았습니다. 샘플은 SARS-CoV-2 혈청 유병률에 대한 독일 국가 연구에서 익명화된 잔류 물질이었다¹⁴. 인체 샘플 사용에 대한 승인은 독일 하노버 의과대학 윤리위원회(9086_BO_S_2020)에서 승인되었습니다. 이번 연구에서는 총 21개의 인간 혈청 샘플이 사용되었다.

1. 인체 시료 사용에 대한 윤리적 승인

1. 인체 샘플 사용에 대한 적절한 윤리적 승인을 획득합니다.

2. 시약 및 장비

1. 인간 혈청 샘플: 이전에 라임 보렐리아증 진단을 받았거나 보렐리아 음성 면역 상태^12,14로 진단된 사람의 혈청 샘플을 사용하여 기술 분석 검증 및 품질 관리를 수행합니다.
2. 단일 리포터 계측. 초기 분석 개발 및 기술 검증을 위해 2채널 단일 리포터 기기(재료 표)를 사용합니다.
   참고: 단일 리포터 시스템에는 1) 비드 세트별 형광을 식별 및 정량화하여 사용되는 경우 서로 다른 비드 세트를 구별하고(분류 채널), 2) 비드 결합 표적 특이적 피코에리트린(PE) 형광을 검출 및 정량화(리포터 채널, 532nm 여기, "주황색" 565-585nm 방출)의 두 가지 레이저가 있습니다. 따라서 단일 항체 동형 클래스(예: IgG 또는 IgM)만 단일 리포터 채널을 사용하여 한 번에 분석할 수 있습니다.
   1. 초기 검증 연구를 수행하여 항 보렐리아 IgG 및 IgM을 두 항체 클래스 모두에 대해 PE 표지 검출 시약을 사용하는 단일 리포터 96웰 형식으로 별도로 평가합니다.
      참고: 현재 분석법은 대표적인 예로 Borrelia 항원 VlsE 및 DbpA의 두 가지 변이체에 특이적인 순환 IgG와 항원 OspC에 특이적인 순환 IgM을 평가합니다. 이 분석은 원하는 대로 다른 항-보렐리아 항원에 대한 혈청 면역 반응을 평가하기 위해 확장될 수 있다¹².
3. 듀얼 리포터 계측. 이중 IgM/IgG 분석의 개발 및 기술 검증을 위해 동일한 반응에서 동시 IgG/IgM 분석이 가능한 3채널 이중 리포터 기기(재료 표)를 사용합니다(아래 자세히 설명). 이 기기에는 총 3개의 형광 검출 채널이 있으며, 그 중 2개는 표적 Ig 관련 신호를 평가하는 리포터 채널입니다.
   참고: 듀얼 리포터 시스템에는 세 가지 레이저가 있습니다: 1) 비드 세트별 형광(분류 채널)을 식별하고 정량화합니다. 2) 표적 특이적 피코에리트린(PE) 형광(리포터 채널 1, 532nm 여기, "주황색" 565-585nm 방출)을 검출 및 정량화하고, 3) 두 번째 표적 분석물의 표적 특이적 Brilliant Violet 421(BV421) 형광을 평가합니다(리포터 채널 2, 405nm 여기, "청색" 421-441nm 방출). 듀얼 리포터 시스템은 96웰 및 384웰 마이크로타이터 플레이트(반자동 처리) 분석 형식과 모두 호환됩니다. 일반적인 분석 계획은 그림 1에 나와 있습니다. 프로토콜 단계는 아래에 자세히 설명되어 있습니다.

3. 항원 커플링

1. 보렐리아 항원을 자성, 카르복실화 및 형광 색으로 구분된 6.5μm 마이크로스피어(비드; 재료 목차) 1-에틸-3-(3-디메틸아미노프로필)카르보디이미드(EDC)/설포-N-하이드록시숙신이미드(sNHS) 화학을 사용합니다.
   참고: 자세한 설명은 참조¹¹및 참조¹²에서 찾을 수 있습니다. 표 1에서 각 항원의 결합 농도를 찾으십시오. 결합된 비드는 사용할 때까지 4°C의 어두운 곳에 보관해야 합니다. 커플링 및 검출 반응에 사용되는 모든 완충액은 보충 자료에 자세히 설명되어 있습니다.

4. 분석 절차: 단일 리포터 IgG 또는 IgM 혈청학적 분석: 96웰 형식

1. 샘플을 2단계로 희석합니다(2단계, 모두 96웰 플레이트에서, 200배 혈청 샘플 희석은 분석 완충액에서).
   참고: 분석 완충액 조성물은 1%(w/v) 소 혈청 알부민을 함유하는 Low Cross Buffer: PBS의 1:4 혼합물입니다. Tween-20을 혼합물에 첨가하여 최종 농도 0.05%(v/v)로 만듭니다.
   1. 시료 희석 1단계: 혈청 시료 5μL를 분석 완충액 120μL와 혼합합니다(25배 희석).
   2. 시료 희석 2단계: 희석액 10μL와 분석 완충액 70μL를 혼합하여 25배 희석액을 추가로 8배 희석하여 최종 시료 희석액을 200배로 만듭니다.
2. 마그네틱 비드 혼합 희석
   1. 비드 모집단당(즉, 고유한 표적 항원당) 1.0 × 10⁶ beads/mL를 포함하는 비드 혼합물을 준비합니다.
   2. 준비된 비드 혼합물을 분석 완충액에 25배 희석하여 이 희석된 현탁액의 최종 비드 농도가 이제 비드 모집단당(즉, 고유한 표적 항원당) 4 × 10⁴ 비드/mL가 되도록 합니다.
3. 비드를 사용한 혈청 샘플 배양
   1. 25μL의 희석된 결합 멀티플렉스 비드 현탁액(4.0 × 10⁴ beads/set/mL 포함)을 96웰 반면적 마이크로타이터 플레이트의 할당된 웰에 피펫팅합니다(재료 표).
   2. 25μL의 200배 희석된 혈청 샘플(위 4.1단계)을 25μL의 결합 비드 현탁액이 포함된 적절한 웰에 추가합니다.
      참고: 이렇게 하면 추가로 2배 희석되므로 웰의 최종 혈청 샘플 희석은 400배이고 최종 비드 수는 1000 비드/비드 세트/50μL 반응입니다.
   3. 96웰 반응 플레이트를 마이크로플레이트 씰(접착 호일 또는 플라스틱 플레이트 커버)로 덮습니다.
   4. 플레이트 셰이커에서 20 °C, 750 rpm에서 2 시간 동안 플레이트를 배양합니다.
4. 비드 세척
   1. 플레이트 셰이커에서 96웰 반응판을 제거하고 접착판 씰을 조심스럽게 제거합니다.
   2. 96웰 반응 플레이트를 플레이트 와셔에 넣습니다.
   3. 자동 마그네틱 플레이트 와셔를 사용하여 100μL 세척 버퍼(1× PBS + 0.05% v/v Tween 20)로 비드를 세 번 세척합니다.
5. 세척된 비드를 100μL의 세척 버퍼에 재현탁하고 접착 호일 또는 플라스틱 플레이트 커버로 플레이트를 덮고 플레이트 셰이커에서 플레이트를 20rpm에서 1000분 동안 흔듭니다.
6. 세척 된 구슬을 쪼갠다
   1. 플레이트 셰이커에서 96웰 반응판을 제거하고 접착판 씰을 조심스럽게 제거합니다.
   2. 피펫팅을 5회 위아래로 하여 반응을 혼합하고 각 100μL 반응 부피 50μL를 2개의 새로운 96웰 반응 플레이트(IgG 검출용 플레이트 1개, IgM 검출용 플레이트 1개)에 각각 전달합니다.
7. 검출 항체/시약 배양
   참고: 이 시점에서 표적 항원 결합 비드를 혈청 샘플과 함께 배양하여 항원과 반응하는 혈청 내 순환 항체(존재하는 경우)를 추출합니다. 면역글로불린이 결합된 반응 비드는 두 개의 플레이트로 나뉘었으며, 이제 PE 라벨이 있는 아이소타입 특이적 2차 항체를 사용하여 IgG와 IgM을 별도의 플레이트에서 검출 및 정량화합니다. 20분까지 시차 플레이트 처리
   1. 마그네틱 플레이트 와셔를 사용하여 자성 비드가 포함된 웰에서 상층액을 흡입합니다.
   2. 각 플레이트에 대해 분석 버퍼에 PE 접합 염소 항인간 IgG(3μg/mL) 또는 PE 접합 당나귀 항인간 IgM(5μg/mL)을 포함하는 적절한 Ig 검출 시약 혼합물(항-IgG 또는 항-IgM)을 만듭니다. 각 비드 함유 웰에 대해 30μL의 검출 시약이 사용됩니다. 반응 웰을 위한 충분한 IgG 및 IgM 검출 시약 용량을 준비하고, 피펫팅 손실을 수용할 수 있는 충분한 용량을 준비합니다.
   3. IgG 플레이트의 반응 비드가 들어 있는 각 웰에 30μL의 IgG 검출 시약을 피펫팅하고 96웰 반응 플레이트를 마이크로플레이트 씰로 덮습니다.
   4. IgM 플레이트의 반응 비드가 들어 있는 각 웰에 30μL의 IgM 검출 시약을 피펫팅하고 96웰 반응 플레이트를 마이크로플레이트 씰로 덮습니다.
   5. 플레이트 셰이커에서 750rpm으로 흔들면서 20°C에서 45분 동안 배양합니다.
8. 비드 세척
   1. 플레이트 셰이커에서 96웰 반응판을 제거하고 접착판 씰을 조심스럽게 제거합니다.
   2. 96웰 반응 플레이트를 마그네틱 플레이트 와셔에 넣습니다.
   3. 마그네틱 플레이트 와셔를 사용하여 100μL 세척 버퍼로 비드를 3회 세척합니다.
9. 100μL의 세척 버퍼에 비드를 재현탁시킵니다.
10. 단일 리포터 기기에서 결과를 분석합니다.
    1. 96웰 반응 플레이트를 마이크로플레이트 씰로 덮습니다.
    2. 플레이트 셰이커에서 20rpm에서 20°C에서 1000웰 반응 플레이트를 3분 동안 흔듭니다.
    3. 플레이트 셰이커에서 96웰 반응 플레이트를 옮기고 단일 리포터 유량 분석기 기기(재료 표)에 넣습니다.
    4. 각 샘플에 대해 흡수량 = 80μL, 카운트 = 50/비드 모집단, 타임아웃 = 60초, 게이팅 = 7,500-15,000)^12,13 기기 설정을 사용하여 형광 강도 중앙값(MFI)을 분석합니다.

5. 분석 절차: 이중 리포터 IgG 및 IgM 혈청학적 분석: 96웰 형식

1. 시료 희석(2단계, 모두 96웰 플레이트에서 사용, 분석 완충액에서 혈청 시료 희석 200배)
   1. 시료 희석 1단계: 5μL 혈청 시료를 120μL 분석 완충액과 혼합합니다(25배 희석).
   2. 시료 희석 2단계: 첫 번째 희석액 10μL(섹션 5.1.1의 25배 희석 시료)와 70μL 분석 완충액(8배 희석)을 혼합하여 25배 희석된 시료를 추가로 8배 희석하여 최종 시료 희석액을 200배로 희석합니다.
2. 마그네틱 비드 혼합 희석
   1. 비드 모집단당(즉, 고유한 표적 항원당) 1.0 × 10⁶ 표적 항원 결합 비드/mL를 포함하는 비드 혼합물을 준비합니다.
      참고: 이 실험 시리즈에서는 각 반응에서 4개의 고유한 보렐리아 항원에 대해 IgG 및 IgM 면역 반응을 모두 평가했습니다.
   2. 준비된 비드 혼합물을 분석 완충액에 50배 희석합니다. 이 희석된 현탁액의 비드 농도는 이제 비드 모집단당 2.0 × 10⁴ 비드/mL입니다.
      참고: 예비 연구에서 비드 수의 절반을 사용할 때 형광 신호가 선형 정량 범위 내에서 유지되는 것을 확인한 후 이중 분석 반응의 비드 수는 단일 리포터 반응에 사용된 비드 수보다 절반으로 줄어 두 분석 간의 직접적인 비교를 허용하고 리소스를 절약합니다.
3. 비드를 사용한 혈청 샘플 배양
   1. 25μL의 희석된 표적 항원 결합 비드 현탁액(2.0 × 10⁴ beads/set/mL 포함)을 96웰 반면적 마이크로타이터 플레이트의 사전 할당된 웰에 피펫팅합니다. 반응 웰의 정확한 수와 플레이트에서의 위치는 작업자가 결정한 테스트된 총 샘플 수와 샘플당 단일 웰 또는 반복 웰을 실행할지 여부에 따라 달라집니다.
      참고: 표적 항원 결합 마그네틱 비드는 인간 혈청 샘플과 반응합니다. 항 보렐리아 항원 면역 반응성 IgG와 IgM은 모두 샘플에 존재하는 경우 동일한 항원 결합 비드에 결합하고 고정됩니다. 결합된 IgG 및 IgM의 2차 항체 정량화는 분화를 가능하게 하는 IgG 및 IgM 식별을 위해 서로 다른 형광단을 사용하여 동일한 반응에서 동일한 비드에 대해 수행됩니다.
   2. 25μL의 혼합 표적 항원 결합 비드 현탁액(5.2단계)을 포함하는 각 웰에 25μL의 200배 희석된 혈청(위 5.1단계)을 추가합니다.
      참고: 이렇게 하면 추가로 2배 희석되므로 웰의 최종 혈청 샘플 희석량은 400배이고 최종 비드 수는 500 비드/비드 세트/50μL 반응입니다.
   3. 96웰 반응 플레이트를 마이크로플레이트 씰(접착 호일 또는 플라스틱 플레이트 커버)로 덮습니다.
   4. 플레이트 셰이커에서 20 °C, 750 rpm에서 2 시간 동안 비드가 있는 플레이트를 배양합니다.
4. 비드 세척(과도한 혈청 샘플 제거용)
   1. 플레이트 셰이커에서 96웰 반응판을 제거하고 접착판 씰을 제거합니다.
   2. 96웰 반응 플레이트를 마그네틱 플레이트 와셔에 넣습니다.
   3. 마그네틱 플레이트 와셔를 사용하여 100μL 세척 버퍼로 비드를 3회 세척합니다.
5. 마지막 세척 단계 후 비드에서 최종 세척량을 흡입합니다.
6. 검출 항체 (Incubation - Part I)
   1. 분석 완충액에서 PE 접합 당나귀 항인간 IgM(5μg/mL)과 함께 비오틴화된 염소 항인간 IgG(1μg/mL)를 포함하는 신선한 IgG 및 IgM 이중 검출 시약을 만듭니다. 각 비드 함유 웰에 대해 30μL의 이중 검출 시약이 사용됩니다. 반응 웰을 위한 충분한 IgG 및 IgM 이중 검출 시약 용량을 준비하고, 피펫팅 손실을 수용할 수 있는 충분한 용량을 준비합니다.
   2. 30μL의 IgG 및 IgM 이중 검출 시약을 할당된 각 웰에 피펫팅하고 96웰 반응 플레이트를 마이크로플레이트 씰로 덮습니다.
   3. 플레이트 셰이커에서 750rpm으로 흔들면서 20°C에서 45분 동안 플레이트를 배양합니다.
7. 비드 세척(과잉 검출 항체 제거용)
   1. 플레이트 셰이커에서 96웰 반응판을 제거하고 접착판 씰을 조심스럽게 제거합니다.
   2. 96웰 반응 플레이트를 자동 마그네틱 플레이트 와셔에 넣습니다.
   3. 자동 마그네틱 플레이트 와셔를 사용하여 100μL 세척 버퍼로 비드를 세 번 세척합니다.
8. 마지막 세척 단계 후 비드에서 최종 세척량을 흡입합니다.
9. 스트렙타비딘 복합 리포터(배양 - 파트 II)
   1. 신선한 BV421 표지 Streptavidin을 분석 완충액에 0.2μg/mL 농도로 희석합니다. 각 비드 함유 웰에 대해 30μL의 BV421 표지된 Streptavidin이 사용됩니다. 반응 웰을 위한 충분한 BV421 표지 Streptavidin 부피를 준비하고, 피펫팅 손실을 수용할 수 있는 충분한 여분을 준비합니다.
   2. 희석된 BV421-Streptavidin 30μL를 각 반응 웰에 피펫팅하고 96웰 반응 플레이트를 마이크로플레이트 씰로 덮습니다.
   3. 플레이트 셰이커에서 750rpm으로 흔들면서 20°C에서 30분 동안 플레이트를 배양합니다.
10. 워시 비즈(여분의 BV421-스트렙타비딘을 제거하기 위해)
    1. 플레이트 셰이커에서 96웰 반응판을 제거하고 접착판 씰을 조심스럽게 제거합니다.
    2. 96웰 반응판을 마그네틱 플레이트 와셔에 넣습니다.
    3. 자동 마그네틱 플레이트 와셔를 사용하여 100μL 세척 버퍼로 비드를 세 번 세척합니다.
11. 웰 내의 비드를 세척 완충액에서 최종 부피 100μL까지 재현탁시킵니다.
12. 듀얼 리포터 기기에서 결과 분석
    1. 96웰 반응 플레이트를 마이크로플레이트 씰로 덮습니다.
    2. 플레이트 셰이커에서 20rpm으로 20°C에서 3분 동안 96웰 반응 플레이트를 1000분 동안 배양합니다.
    3. 96웰 반응 플레이트를 플레이트 셰이커에서 듀얼 리포터 유량 분석기 기기로 옮깁니다(재료 표).
    4. 제조업체 지침(기기 설정: 듀얼 리포터 모드, 흡수량 = 80μL, 카운트 = 50/비드 모집단, 타임아웃 = 60초, 게이팅 = 7,500-15,000)에 따라 시료 중간 형광 강도(MFI)를 평가합니다.

6. 이중 리포터 IgG 및 IgM 혈청학적 분석: 384웰 반자동 형식

1. 섹션 5에 자세히 설명된 분석 단계를 사용하여 384웰 플레이트 형식의 듀얼 리포터 분석을 수행하되, 피펫팅 로봇과 자동 마그네틱 플레이트 와셔(재료 표)를 사용하여 샘플을 처리합니다. 384웰 형식에서 1450rpm에서 배양 및 세척하는 동안 플레이트를 흔들고 형광을 측정하기 전에 21°C 및 1800rpm에서 5분 동안 플레이트를 흔듭니다.

실험 개요
단일 리포터 및 듀얼 리포터 비드 기반 Borrelia 분석에 대한 일반적인 계획은 그림 1에 나와 있습니다. 주어진 보렐리아 항원에 대해 생성된 단일 항체 표적(즉, IgG 또는 IgM)의 경우, 보고를 위해 PE 접합 항-동형 항체를 사용하여 인간 혈청 샘플에서 두 항체 클래스를 독립적으로 평가했습니다. IgG 및 IgM 면역 반응성을 동시에 분석하는 이중 리포터 분석을 위해 Borrelia 항원 특이적 IgG 검출은 IgM 검출을 위해 PE 접합 리포터(주황색 형광)를 유지하면서 비오틴화된 항인간 IgG + BV421 표지된 Streptavidin(청색 형광) 리포터 시스템을 사용했습니다. 이중 리포터 분석의 워크플로우는 2채널 형광 검출 시약 BV421-Streptavidin을 사용한 추가 검출 시스템 배양을 제외하고는 단일 리포터 분석과 유사합니다.

그림 1: 단일 리포터 및 듀얼 리포터 비드 기반 Borrelia 분석의 개략도. (A) 단일 리포터 기기는 "주황색" 스펙트럼에서 신호를 방출하는 피코에리트리틴(PE) 형광 리포터 라벨을 사용하여 항 보렐리아 IgG 또는 IgM을 개별적으로 특성화하는 비드 기반 분석을 개발하고 초기에 검증하는 데 사용되었습니다. 원하는 보렐리아 항원을 비드에 결합하고 혈청 샘플에 존재하는 IgG 또는 IgM을 캡처하고 정량화하는 데 사용할 수 있습니다. 주어진 항원에 대한 IgG 및 IgM 반응성을 모두 평가하기 위해 두 개의 개별 면역분석이 필요합니다. (B) 이중 리포터 시스템은 동일한 웰의 모든 개별 보렐리아 항원에 대한 IgG 및 IgM 항체 모두에 대한 혈청 샘플을 동시에 분석할 수 있도록 했습니다. 이 접근법은 항 보렐리아 IgM을 표적으로 하는 것과 동일한 PE 접합 검출 항체를 사용하지만, PE 기반 시스템에서 30분의 추가 검출 시스템 배양 단계가 필요한 비오틴화된 1차 검출 항체 및 BV421 표지된 Streptavidin("파란색" 방출기)을 사용하는 것으로 IgG 검출을 대체합니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

인트라 어세이 정밀도
세 가지 대표적인 보렐리아 항원에 대한 Spearman 상관 분석(그림 2)은 인간 혈청에 존재하는 항 보렐리아 항체를 검출할 때 MFI 값의 균일한 재현성을 보여주었습니다.

그림 2: 이중 리포터 비드 기반 Borrelia 분석의 인트라 분석 정밀도. Spearman의 상관 분석은 PE 검출 시스템을 사용하여 Borrelia 특이적 IgM 항체(A)를 검출하고 BV421 검출 시스템을 사용하여 Borrelia 특이적 IgG 항체(B, C)를 검출했을 때 이중 리포터 분석의 높은 분석 내 정밀도를 보여주었습니다. 총 21개의 혈청 샘플을 반자동 절차를 사용하여 중복으로 분석했습니다. 각 그래프에서 MFI 신호는 서로에 대해 표시되고 선형 회귀로 분석되었습니다. 빨간색 점선으로 표시된 선형 곡선(x=y)은 감지 시스템에 대한 동일한 MFI 신호를 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

분석 간 정밀도
우수한 분석-분석 재현성은 dual-reporter 분석에서 관찰되었습니다. 7개의 독립적인 실행에 걸쳐 측정된 품질 관리 샘플의 MFI 값이 포함된 Levey-Jennings 차트(그림 3)는 모든 대표 항원에 대한 높은 분석 간 정밀도를 보여주었습니다. 4 개의 대표적인 보렐리아 항원의 평균 백분율 변동 계수 (CV % = 표준 편차 / 평균 × 100)는 5.3 %였습니다.

희석 선형성
원래의 단일 리포터 분석과 새로운 듀얼 리포터 분석은 서로 다른 유세포 분석 플랫폼을 사용하기 때문에 두 유세포 분석 기기 간에 동일한 항원 면역분석의 형광 출력 중앙값을 비교했습니다(그림 4). 시료 희석 시리즈는 IgM 및 IgG 평가 모두에 대해 선형 희석 곡선을 제공했으며, 평가된 전체 희석 범위(1:100-1:12,800)에서 기기 간 용량-반응의 양호한 병렬성을 보였습니다.

그림 3: 듀얼 리포터 비드 기반 Borrelia 분석의 분석 간 정밀도. 분석 간 정밀도를 평가하기 위해 품질 관리 샘플의 Borrelia 특이적 IgM(A) 및 IgG(B-D) 항체 반응을 매번 중복 웰에서 7번의 독립적인 실행에 걸쳐 분석했습니다. 분석은 수동으로 수행되었습니다. MFI 값은 Levey-Jennings 차트에 표시되었습니다. 녹색 선은 모든 값의 평균을 나타냅니다. 두 개의 빨간색 점선은 분석 간 정밀도의 허용 오차 범위를 나타냅니다. 이것은 평균값에서 표준 편차(2.5 S.D.±의 2.5배로 계산되었습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 4: 이중 리포터 비드 기반 Borrelia 분석의 희석 선형성. 100배에서 12,800배의 시료 희석에서 IgM 검출(A) 및 IgG 검출(B)에 대한 희석 곡선은 단일 리포터 기기와 이중 리포터 기기를 사용하여 수동으로 수행했을 때 유사했습니다. 테스트된 모든 희석에서 MFI 값은 이중 리포터 기기(파란색 기호)보다 단일 리포터 기기(빨간색 기호)를 사용할 때 약간 더 높았습니다. 표시된 것은 2개의 대표적인 항원에 대한 희석 곡선이며, 각 희석점은 표준 편차(SD *)가 오차 막대로 표시된 삼중 웰의 평균 측정값을 나타냅니다. 참고: 작은 SD는 이 축척에서 볼 수 없습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

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