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Research Article
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
여기서는 세포 사멸 유도 후 접종된 잎을 지속적으로 이미징하여 프로그래밍된 세포 사멸 개시 속도를 연구하기 위한 프로토콜을 제시합니다.
과민반응(HR) 부여 저항은 N 저항 유전자에 의해 결정될 수 있는 효과적인 방어 반응입니다. HR은 접종된 잎에 세포 사멸 구역이 형성되는 것으로 나타납니다. 여기에서, 디지털 현미경을 이용하여 세포 사멸 개시와 세포 사멸 출현 사이의 시간 동안 접종된 잎을 이미징하여 세포 사멸 개시 속도를 연구하기 위한 프로토콜이 제시된다. 디지털 현미경은 원하는 간격으로 연속 이미징 프로세스를 가능하게 하여 기존 방법의 몇 시간과 달리 세포 사멸 개시 속도를 최대 몇 분 만에 정확하게 측정할 수 있습니다. 디지털 현미경을 사용한 이미징은 빛과 무관하므로 식물의 생체 리듬을 방해하지 않고 낮과 밤에 사용할 수 있습니다. 프로그램된 세포 사멸 발달을 초래하는 다른 병리체계는 약간의 수정을 가진 이 프로토콜을 사용하여 공부할 수 있었습니다. 전반적으로, 이 프로토콜은 세포 사멸 개시율의 간단하고 정확하며 저렴한 식별을 가능하게 합니다.
감자는 세계에서 가장 널리 재배되는 식량 작물 중 하나이며 쌀, 밀, 옥수수에 이어 4위를 차지합니다. 그러나 감자 생산은 현재 가장 중요한 바이러스 병원체로 간주되는 감자 바이러스 Y(PVY)에 의해 심각한 영향을 받을 수 있습니다 1,2. 감자 식물 cv. Rywal, PVY의 여러 균주(PVY 균주 N-Wilga 포함)는 감염 부위에 대한 병원체의 제한이 접종된 잎에 괴사성 병변으로 나타나는 과민반응(HR) 부여 내성을 유발합니다3. 이 병리계에서 HR은 온도에 의존하는 Ny-1 저항성 유전자에 의해 매개되는데, 이는 낮은 온도에서 자란 식물이 괴사성 병변을 효율적으로 발달시키는 반면, 고온(28°C)에서 체질적으로 자란 식물에서는 병변 형성 부족과 전신 바이러스 확산으로 저항성 포기가 입증된다 3,4. 식물이 더 낮은 온도(22°C)로 옮겨지면 세포 사멸이 시작되며, 이는 세포 사멸 시작과 세포 사멸 외관 사이의 시간에 접종된 잎을 이미징하여 세포 사멸 개시 속도를 추적하기 위해 이용될 수 있습니다.
이 프로토콜은 디지털 현미경을 사용하여 세포 사멸 개시율을 결정하는 간단한 방법을 보여줍니다. 식물을 28°C에서 22°C로 옮긴 후 접종된 잎을 이미징함으로써 디지털 현미경을 통해 원하는 간격으로 잎을 연속적으로 관찰할 수 있습니다. 다른 방법(예: 공초점 현미경 또는 육안으로 병변 형성 관찰)의 사용과 달리, 이를 통해 병변 형성의 정확한 시간을 결정할 수 있으므로 앞서 언급한 방법 5,6의 시간과 달리 세포 사멸 개시율을 최대 분까지 정확하게 측정할 수 있습니다. 디지털 현미경 사용은 빛과 무관하므로 낮과 밤에 사용할 수 있습니다. 이 프로토콜은 또한 세포 사멸 개시에 관련된 성분을 식별하거나 사용된 식물이 형질전환되고 관심 성분의 변경된 수준을 갖는 경우 세포 사멸 개시 속도에 대한 다른 성분의 효과를 결정하는 데 사용할 수 있습니다.
참고: 섹션 1과 2는 Lukan et al.7이 설명한 방법을 기반으로 식물 재료 준비를 위한 수정된 프로토콜을 설명합니다. 특히, 통제된 환경 조건 및 접종 준비에 대한 일부 수정이 이루어졌습니다.
1. 감자 재배
2. 접종 준비 및 감자 접종
3. 식물 준비 및 병변 발달 기록을 위한 디지털 현미경 사용
이 연구는 감자 cv의 병변 발생을 통한 세포 사멸 개시를 연구하기 위한 단계별 프로토콜을 보여줍니다. 디지털 현미경을 사용하는 Rywal. 이를 통해 프로그래밍된 세포 사멸 시작의 정확한 시간을 결정할 수 있습니다.
뿌리가 발달한 식물은 감자 cv 후 2주 후에 토양에 넣었습니다. Rywal 미세전파(그림 1A,B). 기술된 조건 하에서 3-4주간의 성장 후, 적어도 3-4개의 완전히 발달된 잎을 가진 식물은 절제의 징후 없이 건강해 보이는 눈에 띄는 잎사귀를 추가 분석을 위해 사용하였다(그림 1C). 이 프로토콜에 설명된 대로 디지털 현미경을 사용하여 접종한 잎의 동일한 영역을 15분 간격으로 관찰하고 병변 발생 및 확장을 적시에 측정했습니다(그림 3). 병변은 15시간 30분에 발생했습니다(그림 3).

그림 1: 디지털 현미경을 사용한 분석을 위한 식물 준비 . (A) MS 30 배지와 감자 cv가 들어 있는 플라스틱 상자. 노드를 포함하는 Rywal 식물 explants. (B) 감자 이력서. 토양에 Rywal 식물 (미세 증식 후 2 주). (C) 감자 이력서. Rywal 식물, 접종 준비 (토양에 넣은 후 4 주), 적어도 3 개의 완전히 발달 된 잎이 있습니다. (D) 감자 cv의 두 번째 접종 잎(화살표). Rywal 공장은 테이프로 배치하고 고정(화살표)합니다. (E) 초점에 사용되는 다이얼을 가리키는 화살표가 있는 디지털 현미경 아래에 위치한 식물. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 2: 병변 발생을 기록하기 위한 디지털 소프트웨어 설정. (A) 소프트웨어 인터페이스 - 빨간색 원으로 표시된 버튼은 (1) 카메라 설정, (2) 이미지 캡처 설정 및 (3) 이미지 저장 버튼에 대한 옵션입니다. (B) 패널 A에서 (1)을 클릭하면 열리는 카메라 설정 창. 밝기, 대비, 채도, 선명도 및 감마를 적절하게 조정해야 합니다. (C) 패널 A에 표시된 (2)를 클릭하면 열리는 이미지 캡처 설정이 있는 창. (D) 패널 A에 표시된 (3)을 클릭하면 열리는 이미지 저장 설정이 있는 창. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

그림 3: 디지털 현미경으로 관찰한 접종된 잎의 병변 형성. 디지털 현미경으로 5분 간격으로 촬영한 23.6배 배율로 PVY를 접종한 감자 잎의 중앙 부분 이미지. 접종한 식물을 28°C에서 3일간 두고, 3일째는 7:00부터 22°C에서 디지털 현미경으로 관찰을 개시했다. (A) 21:02에는 병변이 아직 보이지 않고, (B) 90분 후인 22:32에는 병변이 보입니다. (C) 병변 확장은 다음날 아침 01:02 및 (D) 07:32에 관찰되었다. 실험을 두 번 반복하였고, 병변은 각각 세포 사멸 개시 후 8시간 15분 및 12시간 후에 발생하였다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
저자는 이해 상충이 없음을 선언합니다.
여기서는 세포 사멸 유도 후 접종된 잎을 지속적으로 이미징하여 프로그래밍된 세포 사멸 개시 속도를 연구하기 위한 프로토콜을 제시합니다.
기술 지원을 제공해 주신 Barbara Jaklič에게 감사드립니다. 이 연구는 슬로베니아 연구 혁신 기관(연구 핵심 자금 지원 번호 P4-0165 및 프로젝트 Z4-3217: 바이러스에 대한 감자 내성의 산화 환원 관련 신호 상호 연결성 해독)의 재정 지원을 받았습니다.
| 알코올 버너 | Mikro + Polo | SH-234002455 | 핀셋 및 메스 살균 |
| 용 오토 클레이브 A-21 CAV | Kambi![]() | N/A | |
| Bacto Agar | Becton, Dickinson and Company | 214010 | |
| 카보런덤 분말 | VWR 화학물질 | 22505297 | |
| DinoCapture 2.0 | 디지털 현미경용 | Dino-Lite | 버전 2.0 | 소프트웨어
| Dino-Lite Edge AM7915MZTL 디지털 현미경 | AnMo Electronics Corporation | AM7915MZTL | |
| 에탄올, 70% | Stella Tech | P94000 | 핀셋 및 메스 살균용 |
| 추출 백 | Bioreba | 420100 | |
| 성장 챔버 FS-WI | 광자 시스템 기구 | N/A | |
| 핸드 호모게나이저 | Bioreba | 400010 | |
| Hawita 특수 기판 | HAWITA Gruppe | 2000000071701 | 사용 준비 완료된 기판, 피트 (H4-H6 및 H6-H8) |
| 염산 (HCl) | Merck | 109057 | |
| 라벨 테이프 | Sigma | L8144-5EA | |
| 설치된 DinoCapture 2.0이 설치된 노트북 컴퓨터; | 성장 | 챔버에서 실험이 진행됨에 따라 HP | Z2V77EA#BED | 컴퓨터를 양도할 수 있어야
| Murashige와 Skoog 매체 | Duchefa Biochemie | M02220100 | |
| Na2HPO4 | Emsure | 1065860500 | |
| NaH2PO4 | Emsure | 1064700250 | |
| 파스퇴르 피펫 0.5 mL | 브랜드 | 21500209 | |
| pH-meter | Mettler Toledo | ML1601 | |
| 플라스틱 상자 | Cvetlice Dornig | VCG10.5 | 반지름 = 10.5cm |
| 플라스틱 화분 | Lab Associates | DIS40003 | 반경 = 11.5cm(상단), 반경 = 9.8cm(하단) |
| Saccharose | Kemika d.d. | 1800408 | |
| 나트륨 디 에틸 디티 오 카르 바 메이트 (DIECA) | 시그마 - Aldeich | 228680 | 나트륨 디 에틸 디티 오 카르 바 메이트 삼수화물, ACS 시약 |
| 수산화 나트륨 (NaOH) | Merck | 106462 | |
| 멸균 수술 블레이드 | 브라운 | 4511733633 | |
| 핀셋 | 브라운 | BD033R |