THP-1 세포주는 다양한 생물학 관련 연구 분야에서 인간 단핵구/대식세포의 기능을 조사하기 위한 모델로 널리 사용됩니다. 이 논문에서는 효율적인 CRISPR-Cas9 기반 엔지니어링 및 단일 세포 클론 분리를 위한 프로토콜에 대해 설명하여 강력하고 재현 가능한 표현형 데이터를 생성할 수 있습니다.
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THP-1 세포주는 다양한 생물학 관련 연구 분야에서 인간 단핵구/대식세포의 기능을 조사하기 위한 모델로 널리 사용됩니다. 이 논문에서는 효율적인 CRISPR-Cas9 기반 엔지니어링 및 단일 세포 클론 분리를 위한 프로토콜에 대해 설명하여 강력하고 재현 가능한 표현형 데이터를 생성할 수 있습니다.
인간 급성 단핵구 백혈병(AML) THP-1 세포주는 인간 면역결핍 바이러스(HIV)와 같은 중요한 인간 병원체와의 상호 작용을 포함하여 인간 단핵구 유래 대식세포의 기능을 연구하기 위한 모델로 널리 사용됩니다. 골수성 기원의 다른 불멸 세포주와 비교했을 때, THP-1 세포는 많은 온전한 염증 신호 경로를 유지하고 있으며, phorbol-12-myristate 13-acetate (PMA)로 처리했을 때 대식세포로 분화하는 능력을 포함하여 일차 단핵구와 더 유사한 표현형 특성을 나타냅니다. CRISPR-Cas9 기술을 사용하여 표적 유전자 녹아웃(KO)을 통해 THP-1 세포를 엔지니어링하면 바이러스-숙주 상호 작용을 포함한 면역 관련 메커니즘을 더 잘 특성화할 수 있는 강력한 접근 방식을 얻을 수 있습니다. 이 논문은 사전 조립된 Cas9:sgRNA 리보핵단백질을 세포핵으로 전달하기 위해 전기천공법을 사용하는 효율적인 CRISPR-Cas9 기반 엔지니어링을 위한 프로토콜에 대해 설명합니다. 약간 다른 위치에서 동일한 유전자 자리를 표적으로 하는 여러 sgRNA를 사용하면 큰 DNA 단편이 삭제되어 편집 효율성이 증가하며, 이는 T7 엔도뉴클레아제 I 분석법으로 평가됩니다. 유전자 수준에서의 CRISPR-Cas9 매개 편집은 Sanger 염기서열분석에 이어 ICE(Inference of CRISPR Edits) 분석으로 검증되었습니다. 단백질 고갈은 기능 분석법과 결합된 면역 블로팅에 의해 확인되었습니다. 이 프로토콜을 사용하여 표적 유전자 자리에서 최대 100% indels와 단백질 발현을 95% 이상 감소시켰습니다. 높은 편집 효율은 희석을 제한하여 단일 세포 클론을 편리하게 분리할 수 있습니다.
THP-1은 급성 백혈병(AML)을 앓고 있는 환자로부터 분리된 인간 단핵구 유래 세포주로, 일차 단핵구1과 매우 유사한 표현형 특징을 나타냅니다. 표현형에서 제한된 수명과 공여체 간/공여자 간 변동성을 모두 분열하지 않고 나타내지 않는 1차 단핵구 유래 대식세포와 비교했을 때, THP-1 세포는 사실상 영원히 배양될 수 있으며 결과 재현성에 유리한 보다 균일한 행동을 할 수 있습니다 2,3,4,5,6. 특히, THP-1 세포는 phorbol-12-myristate 13-acetate (PMA)를 가진 대식세포와 같은 표현형으로 분화될 수 있으며, 이는 염증 신호 7,8,9,10,11,12,13 또는 HIV
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이 연구에 사용된 시약 및 장비의 세부 사항은 재료 표에 나열되어 있습니다.
1. CRISPOR를 사용한 가이드 설계(그림 1.1)
참고: SnapGene Viewer 소프트웨어는 4, 7 및 10단계에서 사용하여 편집 대상 부위와 관심 유전자 내 PCR 프라이머 혼성화 위치에 주석을 달 수 있습니다.
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GFP 리포터 단백질(THP-1_GFP)을 안정적으로 발현하는 THP-1 세포주를 생성하고(그림 2A), 효율적인 CRISPR-Cas9 매개 유전자 에디션을 위한 프로토콜을 확립하기 위한 도구로 사용되었습니다. 이를 위해 EGFP 유전자를 표적으로 하는 3개의 sgRNA를 CRISPOR 웹 도구29(그림 2B)로 설계했으며, 이는 9:1의 몰비로 Cas9와 동시에 복합체를 형성하여 RNP를 형성한 후 다른 설정을 사용하여 전기천공법을 통해 세포로 전달되었습니다. 다음으로, 세포를 20% FBS 함유 RPMI 배지 단독(그림 2C, 상단 패널)에서 성장시키거나 컨디셔닝 배지(그림 2C, 하단 패널)로 1:1로 희석했습니다. EGFP KO 효율의 .......
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여기에서는 THP-1 세포주의 성공적인 CRISPR 매개 편집을 얻기 위한 프로토콜이 설명됩니다. 이 접근 방식은 전기천공법/핵 절편에 의한 사전 조립된 sgRNA/Cas9 RNP의 전달에 의존합니다. 이 전략은 sgRNA/Cas9 카세트의 렌티바이러스 매개 통합으로 인해 잠재적으로 발생하는 off-target 효과를 제한하여 nuclease의 지속적인 발현을 생성하기 위해 선택되었습니다. 신뢰할 수 있고 효율적인 편집을 달성하기 위해 관심 유전자를 표적으로 하는 여러 sgRNA를 선택했으며, 이는 게놈 인델 생성 가능성을 증가시켜 단백질 발현 및 기능적 KO32의 손실로 이어집니다. 세포막의 최적 투과화를 달성하기 위해 전기천공법 설정에 특별한 주의를 기울였으며, 이는 과도한 세포 사멸을 방지하면서 sgRNA/Cas9 RNP의 효율적인 전달을 보장하는 데 필요했습니다33. 이와 관련.......
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모든 저자는 이해 상충이 없습니다.
프로토콜을 공유하고 토론해 주신 JP Concordet(MNHN, U1154/UMR7196, Paris), G. Bossis(IGMM, Montpellier), D. Schlüter(독일 하노버 의과대학)에게 감사드립니다. 이 프로젝트는 유럽 연합의 Horizon 2020 연구 및 혁신 프로그램(AZ에 대한 보조금 계약 101017572 없음) 및 ANRS(AZ에 대한 보조금 ECTZ162721)로부터 자금을 지원받았습니다. IDMIT(Infectious Disease Model and Innovative Therapies) 연구 인프라는 참조 ANR_11_INSB_0008에 따른 "PIA(Programme investissement d'avenir)"의 지원을 받습니다.
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| 이름 | 회사 | 카탈로그 번호 | 댓글 |
|---|---|---|---|
| 0.2 & 마이크로; m 주사기 필터 | ClearLine | 146560 | _ |
| 0.4 % trypan blue | Beckman Coulter | 383200 | _ |
| 1.5 mL 튜브 | Eppendorf | 3810X | _ |
| 24-웰 플레이트 | Corning | 353047 | _ |
| 6x TriTrack DNA 로딩 염료 | Thermo scientific | R1161 | _ |
| 75 cm² 배양 플라스크 벤티드 캡 | 코닝 | 353136 | _ |
| 8-Strip PCR Tubes with Caps | Life 기술 | AM12230 | _ |
| 96웰 플레이트 플랫 바 | Corning | 353072 | _ |
| 96웰 플레이트 라운드 바텀 | 코닝 | 353077 | _ |
| Agarose | Euromedex | D5 | _ |
| ATGpr | _ | _ | https://atgpr.dbcls.jp/ |
| ChemiDoc 이미징 시스템 | BIO-RAD | 12003153 | _ |
| 카운팅 슬라이드 | NanoEntek | DHC-N04 | _ |
| CRISPOR | _ | _ | |
| http://crispor.gi.ucsc.edu/ DPBS | Gibco | 14190094 | _ |
| Ensembl | EMBL-EBI | _ | https://www.ensembl.org/index.html |
| Fetal Bovine Serum | Sigma-Aldrich | F7524 | _ |
| FlowJo | BD Life Sciences | v10.10 | _ |
| GeneRuler 100 bp Plus DNA Ladder | Thermo scientific | SM0323 | _ |
| 게놈 데이터 뷰어 | NCBI | _ | https://www.ncbi.nlm.nih.gov/gdv/ |
| GraphPad Prism | Dotmatics | _ | Version 9.3.1 |
| Herculase II Fusion DNA Polymerases | Agilent | 600679 | _ |
| ICE CRISPR 분석 도구 | Synthego | _ | https://www.synthego.com/products/bioinformatics/crispr-analysis |
| Image Lab Touch | BIO-RAD | _ | Version 2.4.0.03 |
| NEBuffer 2 | New England Biolabs | B7002S | T7EI M0302S |
| Neon Kit, 10 µ에 포함됨; L | 팁, 튜브, 버퍼 R 및 E | Invitrogen | MPK1025K |
| Kit | Invitrogen | MPK5000 | _ |
| NetStart 1.0 | _ | _ | |
| https://services.healthtech.dtu.dk/services/NetStart-1.0/ Nuclease-free Water | Synthego | _ | _ |
| PCR primer (EGFP) | Eurofins | _ | Fw : GGAATGCAAGGTCTGTTGAATG ; 개정판 : CACCTTGATGCCGTTCTTCT |
| PCR 프라이머 (SAMHD1) | Eurofins | _ | Fw : CGGGATTGATTTGAGGACGA ; 개정판 : GGGTGGCAAGTTAGTGAAGA |
| 페니실린-스트렙토마이신(10,000 U/mL) | Gibco | 15140122 | _ |
| PFA | 전자 현미경 과학 | 15714 | _ |
| PMA | Sigma-Aldrich | P8139 | _ |
| PrimerQuest | IDT | _ | https://eu.idtdna.com/pages/tools/primerquest |
| QIAquick PCR 정제 키트 | Qiagen | 28104 | _ |
| QuickExtract DNA 추출 솔루션 | Biosearch Technologies | QE09050 | _ |
| RPMI 1640, GlutaMAX | Gibco | 61870010 | _ |
| SnapGene Viewer | Dotmatics | _ | Version 7 |
| SpCas9 2NLS Nuclease | Synthego | _ | |
| _SYBR Safe DNA Gel Stain | Invitrogen | S33102 | _ |
| Synthetic sgRNA (EGFP) | Synthego | _ | #1 : CGCGCCGAGGUGAAGUUCGA ; #2 : UUCAAGUCCGCCAUGCCCGA ; #3 : CAACUACAAGACCCGCGCCG |
| Synthetic sgRNA (SAMHD1) | Synthego | _ | #1 : AUCGCAACGGGGACGCUUGG ; #2 : GCAGUCAAGAACCUCGGCGC ; #3 : CCAUCCCGACUACAAGACAU |
| 주사기 Plastipak Luer Lock | BD | 301229 | _ |
| T100 Thermal Cycler | BIO-RAD | 1861096 | _ |
| T7 endonuclease I | New England Biolabs | M0302S | _ |
| TAE 버퍼 UltraPure, 10x | Invitrogen | 15558026 | 400 mM Tris-Acetate, 10 mM EDTA |
| THP-1 세포 | ATCC | TIB-202 | _ |
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| ZE5 세포 분석기 | BIO-RAD | 12014135 | _ |
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