이 프로토콜은 인플루엔자 감염 후 안정적인 상태에서 마우스 폐에서 살아있는 면역 및 비면역 집단을 격리하는 방법을 자세히 설명합니다. 또한 상피 및 골수성 세포 부분 집합을 식별하기 위한 게이팅 전략을 제공합니다.
방법 논문
이 프로토콜은 인플루엔자 감염 후 안정적인 상태에서 마우스 폐에서 살아있는 면역 및 비면역 집단을 격리하는 방법을 자세히 설명합니다. 또한 상피 및 골수성 세포 부분 집합을 식별하기 위한 게이팅 전략을 제공합니다.
폐는 병원균 및 기타 유해한 환경 자극에 지속적으로 노출되어 손상, 기능 장애 및 질병 발병에 취약합니다. 호흡기 감염, 알레르기, 섬유증 및 암에 대한 마우스 모델을 활용한 연구는 질병 진행 메커니즘을 밝히고 치료 대상을 식별하는 데 매우 중요했습니다. 그러나 쥐의 폐에 초점을 맞춘 대부분의 연구는 면역 세포와 상피 세포 중 하나를 동시에 분리하는 것보다 두 집단을 분리하는 것을 우선시합니다. 여기에서는 유세포 분석 및 형광 활성화 세포 분류에 적합한 면역 및 비면역 집단 모두에 대한 포괄적인 단일 세포 현탁액을 준비하는 방법을 설명합니다. 이러한 집단에는 상피 세포, 내피 세포, 섬유아세포 및 다양한 골수성 세포 부분 집합이 포함됩니다. 이 프로토콜은 기관지폐포 세척과 그에 따른 폐의 팽창을 수반합니다. 그런 다음 폐는 리바아제 혼합물로 분해됩니다. 이 처리 방법은 다양하고 다양한 세포 유형을 유리하게 만들고 필터에 대한 수동 해리가 필요하지 않은 단일 세포 현탁액을 생성하여 세포 생존을 촉진하고 다운스트림 분석을 위해 많은 수의 살아있는 세포를 생성합니다. 이 프로토콜에서는 또한 naive 및 influenza 감염 폐 모두에서 상피 및 골수성 세포 하위 집합에 대한 게이팅 체계를 정의합니다. 살아 있는 면역 세포와 비면역 세포를 동시에 분리하는 것은 세포 간 누화를 조사하고 건강 및 질병에서 폐 생물학에 대한 더 깊은 이해를 얻는 데 중요합니다.
폐는 기도(airway), 폐포(alveoli) 및 간질(interstitium)로 구성되어 있습니다. 면역 세포와 비면역 세포는 이러한 구획 내에 상주하여 항상성 폐 기능(가스 교환)과 바이러스 감염과 같은 환경적 위협에 대한 숙주 방어에 기여합니다. 크고 작은 기도 또는 기관지와 세기관지에는 상피 세포가 늘어서 있습니다. 이 영역에서 우세한 상피 세포는 곤봉 세포와 섬모 세포(ciliated cell)로, 보호 분자를 분비하고 점액 섬모 청소를 촉진하는 역할을 합니다1. 폐포는 폐에서 가장 말단에 있는 구조로, 폐포 I형 세포(ATI)와 폐포 II형 세포(ATIIs)의 두 가지 상피 세포 유형이 늘어서 있습니다. ATI는 가스 교환을 담당하고 ATII는 적절한 표면 장력을 보장하기 위해 계면 활성제를 분비하고 재활용합니다 2,3. ATII는 자가 재생되며 ATI로 분화될 수도 있는데, 이는 특히폐 손상 4 이후에 중요한 역할을 한다. 또한 ATII는 폐포 틈새에 서식하는 주요 면역 세포 유형인 폐포 대식세포(AM)에 대한 지지 틈새를 제공합....
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이 프로토콜은 하버드 의과대학의 기관 동물 관리 및 사용 위원회(Institutional Animal Care and Use Committee)의 지침을 준수합니다(보조금 번호: R35GM150816 및 P30DK043351). 8-12주 된 암컷 C57BL/6J 마우스가 실험에 사용되었습니다. 이 프로토콜은 수컷 마우스에도 적합합니다. 이 연구에 사용된 시약 및 장비에 대한 자세한 내용은 재료 표에 나와 있습니다.
1. 재료 준비
2. 폐 적출
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성공적인 분해는 90%-95%의 생존율을 가진 약 20-2,500만 개의 세포를 얻을 수 있습니다. 약 25,000개의 계수 구슬이 폐의 8% 분획에 추가되면 구슬은 수집된 이벤트의 1%-3%를 손상시켜야 합니다. singlet에 대한 게이팅 후 세포의 약 90%-95%가 Zombie Aqua 음성(생존력 표시)이어야 합니다(그림 2A, 그림 3A).
CD45+ 세포 중 CD64+F4/80+ 세포는 대식세포로 정의됩니다(그림 2B). 기준선에서 폐에 있는 모든 대식세포의 80%-90%는 AM(Siglec-F+CD11c+)으로 정의되고 나머지는 IM(Siglec-F-CD11c-)으로 분류.......
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이 프로토콜은 90%-95%의 생존율로 마우스당 약 2,0-2,500만 개의 세포를 분리하는 마우스 폐 소화를 간략하게 설명합니다. 또한 추가 분석을 위해 BALF를 수집할 수 있습니다. 그 결과로 생성된 세포 현탁액은 염기서열분석 또는 세포 배양을 위해 세포를 분리하기 위한 유세포 분석 및 형광 활성화 세포 분류를 포함한 여러 실험실 기술과 호환됩니다. 간단히 말해서, 관류 후 BALF가 수집되고 폐가 디스파제로 팽창됩니다. 그런 다음 폐를 잘게 썰어 리버라제/DNase 용액에서 소화합니다. 용해 및 여과 후에는 인플루엔자 바이러스 감염 중 골수성 및 상피 부분 집합의 유세포 분석 분석을 포함한 다운스트림 응용 프로그램을 진행할 수 있습니다.
BALF를 회수할 수 없거나 폐가 제대로 팽창된 상태로 유지되지 않는 경우 카테터가 잘못 배치되었기 때문일 수 있습니다. 카테터가 기관/기관지에 너무 깊숙이 삽입되면 조직을 뚫고.......
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이 연구는 미국 국립보건원(R35GM150816 및 P30DK043351), 찰스 H. 후드 재단 및 하버드 줄기세포 연구소의 보조금으로 부분적으로 지원되었습니다. Alexander Mann과 Franklin 실험실의 다른 모든 구성원이 유세포 분석 게이팅 계획 및 분석을 설계하고 개선하는 데 도움과 조언을 제공해 주신 것에 감사드립니다. 또한 하버드 의과대학의 Immunology Flow Cytometry Core에도 감사드립니다. 유세포 분석은 FlowJo를 사용하여 수행되었습니다. 그림 회로도는 BioRender를 사용하여 생성되었습니다.
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