방법 논문

생체 내 컨포칼 현미경: 눈꺼풀 가장자리에서 디모덱스 진드기를 감지하기 위한 표준 운영 절차

DOI:

10.3791/68534

2025년 7월 3일

이 논문에서

요약

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In vivo 컨포칼 현미경은 고해상도의 유망한 이미징 기술입니다. 임상의가 생체 내에서 눈꺼풀 가장자리에서 Demodex를 감지하기 위해 다음 절차를 제시합니다.

초록

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Demodex 진드기 감염은 눈꺼풀 가장자리에 염증을 유발할 수 있으며, Demodex 안검염은 임상 사례에서 일련의 안구 질환을 유발할 수 있습니다. 많은 의사들이 속눈썹 제모술과 체외 광학 현미경으로 속눈썹 관찰을 통해 Demodex 진드기의 안구 감염을 진단합니다. 그러나 속눈썹 제거 후 잔류 진드기의 존재와 절차와 관련된 통증은 표준 임상 치료의 한계입니다.

생체 내 컨포칼 현미경(IVCM)은 임상의가 제모 없이 눈꺼풀 가장자리에서 Demodex 진드기를 자세히 관찰할 수 있는 비침습적 이미징 기술입니다. 이 기술을 사용하면 <30분 이내에 완료할 수 있는 간편한 분석이 가능합니다. 이 검사에 대한 관심이 높아지고 있음에도 불구하고 광범위한 경험이 없는 많은 안과 의사는 접근하기 어려울 수 있습니다. 이 논문은 임상 작업에서 이 방법의 채택 증가를 촉진하기 위해 IVCM을 사용하여 눈꺼풀 가장자리에서 Demodex 진드기를 시각화하기 위한 표준 운영 절차를 제시합니다.

서론

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안검염은 임상 실습에서 가장 흔하게 접하는 안과 진단 중 하나입니다. 증거는 Demodex 진드기의 존재와 안검염 사이에 상당한 연관성이 있음을 시사합니다1. 진드기의 감염은 Demodex2로 인한 직접적인 손상과 그 분비물에 의해 유발되는 면역 반응을 모두 포함하며, 이는 박테리아의 매개체로 작용하여 잠재적으로 안검염3의 발병에 기여할 수 있습니다. 모낭낭염(Demodex blepharitis, DB)은 각막과 안구 표면의 손상1을 포함하여 환자의 삶의 질에 부정적인 영향을 미치는 다양한 불만족스러운 사건을 유발한다 4,5.

Demodex는 모낭과 피지선, 그리고 그 주변 부위에 서식하는 기생 진드기입니다6. 속눈썹 여포 내부 또는 주변에서 Demodex를 감지하면 DB7 진단에 도움이 될 수 있습니다. DB의 임상 진단에는 속눈썹 제모와 광학 현미경 검사로 Demodex를 관찰하는 것이 포함됩니다. 그러나, 속눈썹 제거 후 난포 깊숙한 곳에 서식하는 많은 진드기가 구멍에 남아 있을 수 있으며, 8,9,10 이는 잠재적으로 진드기 수를 과소평가하게 만들 수 있는 것으로 인식되고 있다. 안과의 비침습적 이미징 도구인 IVCM(In vivo Confocal Microscopy)은 in vivo 11에서 속눈썹 여포 내부 또는 주변의 Demodex를 시각화하기 위한 대체 접근 방식을 제공합니다. 이 기술은 조직학적인 해상도11로 안구 표면과 눈꺼풀의 미세 구조에 대한 통찰력을 제공합니다. 진드기는 특징적인 형태와 운동성을 기반으로 육안으로 식별할 수 있습니다. 그러나 IVCM은 이 이미징 양식에 대한 광범위한 경험이 부족한 안과 의사에게 기술적 문제를 제시할 수 있습니다12.

건강한 눈꺼풀과 DB의 감별 진단 및 후속 조치를 포함한 일상적인 임상 적용에서 IVCM의 채택을 촉진하기 위해 눈꺼풀 가장자리에서 Demodex 진드기를 관찰하기 위한 표준 운영 절차(SOP)를 제안합니다. 이 프로토콜은 임상의에게 in vivo 진드기 검출을 위한 체계적인 접근 방식을 제공합니다.

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프로토콜

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이 프로토콜은 IVCM을 사용하여 눈꺼풀 가장자리에서 Demodex를 관찰하는 데 사용되는 SOP에 중점을 둡니다(그림 1). 본 연구는 원저우 의과대학 안과병원 기관검토위원회(IRB)의 승인을 받았으며(IRB 승인 번호 H2023-022-K-20), 후향적 성격으로 인해 본 후향적 분석에 대한 개인 동의 요건은 면제되었다. 여기에 설명된 절차는 이전에 보고된 설명을 참조합니다 11,13,14,15,16.

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그림 1: 단층 촬영 장치. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

1. 장치 및 프로그램 준비

  1. 컴퓨터를 켭니다.
    1. 바탕 화면이 나타나면 장치 뒷면의 로커 스위치를 O에서 I로 전환합니다. 검사를 시작하기 전에 장치의 전원이 켜져 있음을 나타내는 로커 스위치의 녹색 빛을 찾으십시오.
      참고: 컴퓨터를 시작하기 전에 장치를 켜면 연결 오류가 발생할 수 있습니다.
    2. 검사 전에 소프트웨어를 시작하고 프로그램 설정을 지정하십시오. Setup 메뉴에서 Options (Supplemental File 1: Supplemental Figure S1)를 선택합니다. 그런 다음 이미지 번호 표시 상자를 선택하여 각 이미지의 이미지 번호를 표시합니다. 또한 종료 시 정보 표시 상자를 선택하여 소프트웨어의 의도하지 않은 종료를 방지합니다.
      참고: 이미지 썸네일을 큰 아이콘으로 표시하면 결과를 직접 관찰할 수 있습니다. 설정을 자주 변경하지 마십시오.
  2. 시험 전 준비 사항
    1. 렌즈 청소용 물티슈로 렌즈를 청소하십시오. 더러운 장치 부품으로 인해 전염되는 병원성 세균으로 인한 감염을 방지하기 위해 알코올에 적신 면봉으로 머리 받침대와 턱받이를 소독하십시오.
    2. 턱받이를 조정합니다. 턱받이의 수평 위치가 올바른지 확인하십시오: 두 개의 검은색 레버를 함께 눌러 턱걸이가 걸릴 때까지 앞으로 당깁니다.
    3. 카메라를 뒤로 이동합니다. 검사 전에 조정 나사를 돌려 환자에게서 멀어지도록 하십시오.
    4. Carbomer-based 점안용 젤 한 방울(약 0.02mL)을 장치의 현미경 렌즈 전면에 콘택트 젤로 바릅니다.
      알림: 접촉 젤에 기포가 없고 소량만 사용되는지 확인하십시오. 장치의 현미경 렌즈 전면에 너무 많은 접촉 젤을 바르면 대물렌즈로 흘러 들어가 기계 부품에 달라붙어 장치가 손상될 수 있습니다.
    5. 보호 커버에서 멸균 일회용 폴리메틸메타크릴레이트(PMMA) 캡을 제거하고 캡의 앞쪽 표면을 건드리지 않고 캡의 측면을 장치의 현미경 렌즈에 단단히 누릅니다(그림 2).
      참고: PMMA 캡을 올바르게 장착하려면 접촉 젤이 기포 없이 캡의 뒤쪽 표면과 접촉해야 합니다. 캡은 멸균 패키지의 손상을 방지하기 위해 전용 용기에 보관됩니다. 검사 중 감염의 위험이 있을 수 있는 포장이 손상된 캡을 사용하지 마십시오.
    6. 캡 앞면에 젤 눈물 대용품 한 방울을 바르면 캡과 눈꺼풀 사이의 젤 브리지로 사용합니다(그림 2).
      참고: 젤 간의 혼동을 피하기 위해 두 응용 분야 모두에 동일한 Carbomer-based 점안 젤을 사용합니다: 젤 눈물 대체물과 현미경 렌즈와 캡 사이의 에이전트로 사용되는 젤.
    7. 새 환자 파일을 만들거나 기존 환자 파일을 선택합니다.

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그림 2: PMMA 캡 및 젤 도포의 올바른 피팅. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

2. 환자 준비

참고: 각막 무결성이 의심되는 경우 이 검사를 수행하지 마십시오.

  1. 환자의 협조를 얻고 잠재적 위험을 최소화하기 위해 환자에게 다음 사항을 설명하십시오.
    1. 장치를 사용한 검사가 눈꺼풀에 닿아도 안전하다는 것을 환자에게 확신시킵니다. 환자에게 눈꺼풀 가장자리에 국소 마취제를 한 방울 떨어뜨려 눈을 마취시킬 것이라고 알립니다.
    2. 검사를 시작할 때 최상의 이미지 품질을 위해 검사 절차 내내 환자에게 턱을 턱받이에 대고 이마를 앞머리 받침대에 기대도록 요청하십시오.
    3. PMMA 캡이 눈꺼풀에 닿을 때까지 장치를 눈꺼풀 가까이로 이동할 것이라고 환자에게 알립니다. 장치가 눈꺼풀에 닿는 동안 통증을 느끼지 않을 것이라고 확신시키지만 PMMA 캡의 접촉은 느낄 것입니다. 검사 중 통증을 느끼면 즉시 임상의에게 알리도록 요청하십시오.
    4. 임상의가 Demodex를 관찰하기 위해 눈꺼풀 가장자리의 이미지를 획득하는 동안 환자에게 시선을 고정해야 한다고 알립니다. 환자에게 피로를 느끼면 임상의에게 알리도록 요청하십시오. 검사가 계속되기 전에 잠시 앉아서 휴식을 취할 수 있습니다. 검사가 완료되면 통보를 받게 됩니다.
  2. 약물 금기 사항을 피하기 위해 국소 마취제 및/또는 아이 젤 포장에 대한 지침을 따르십시오. 환자에게 알레르기가 있는지 물어보고 환자의 알레르기가 국소 마취제 및/또는 아이 젤의 금기 사항이 아닌지 확인합니다.
    참고: 국소 마취제 및/또는 아이 젤에 대한 알레르기 반응은 확인되지 않은 알레르기의 결과로 발생할 수 있습니다.
  3. 국소 마취제인 프로파라카인 하이드로클로라이드(Proparacaine hydrochloride)를 눈꺼풀 가장자리에 한 방울 떨어뜨려 검사합니다.
    알림: 알레르기 반응이 나타나면 즉시 식염수로 헹굽니다.

3. 검사 수행

  1. 먼저 오른쪽 눈을 관찰하십시오. 작업자의 관점에서 스캔 카메라를 왼쪽으로 이동합니다. OD 는 카메라의 오른쪽-왼쪽 인식에 의해 설정 섹션에서 자동으로 선택됩니다.
  2. CCD 카메라를 왼쪽으로 이동합니다. CCD 카메라 대물 렌즈를 돌려 CCD 카메라의 이미지(제어 이미지)를 스캐너 레이저 카메라의 광축에 수직으로 조정합니다.
  3. 새 시험을 시작합니다.
    1. Examination Data(검사 데이터) 대화 상자를 관찰하고 Examination Data(검사 데이터) 탭의 Device(장치) 드롭다운 목록(Supplemental File 1: Supplemental Figure S2)에서 Heidelberg Retina Tomograph-Cornea(하이델베르크 망막 단층 촬영-각막)를 선택하고 나타나는 각막 모듈 설정(Cornea Module Settings) 대화 상자를 관찰합니다.
    2. Field Lens 드롭다운 목록에서 FOV 400을 선택하고 OK(확인)를 클릭하여 확인합니다(보충 파일 1: 보충 그림 S3).
    3. 획득 창이 열릴 때까지 기다립니다. 스캐닝 레이저 카메라 라이브 이미지와 제어 이미지가 표시됩니다. 제어 이미지가 표시되지 않으면 CCD 카메라 케이블이 CCD 카메라에 올바르게 연결되어 있는지 확인한 다음 획득 창을 다시 시작합니다.
  4. 획득 창에서 계수 설정(보충 파일 1: 보충 그림 S4): CCD Zoom Factor 드롭다운 목록에서 1x를 선택하여 제어 이미지 크기를 설정합니다. 자동 밝기 상자와 자동 상자를 선택하여 라이브의 밝기를 자동으로 제어하고 이미지를 제어합니다. 그러나 자동 밝기 제어가 비활성화된 경우 슬라이더를 사용하여 컨트롤 및 라이브 이미지의 밝기를 제어합니다. 풋스위치를 누를 때마다 단일 이미지가 획득되고 저장되도록 섹션의 스캔 유형이 선택되었는지 확인하십시오.
  5. 참조 이미지를 획득합니다.
    1. 획득을 시작하기 전에 자동 밝기 컨트롤을 끄고 슬라이더를 왼쪽으로 이동하여 이미지 밝기를 조정합니다. 어두워진 후 스캐닝 레이저 카메라 라이브 이미지에 초기의 밝은 반사가 표시되어 PMMA 캡의 전방 표면을 나타내도록 조정 핀으로 초점면을 조정합니다.
      참고: 현미경은 10μm 초점 조정이 가능합니다.
    2. 초점 위치[μm] 섹션에서 재설정을 클릭하고 초점 위치[μm] 값이 0으로 바뀔 때까지 기다립니다. 현재 이미지는 참조 이미지로 표시됩니다. 자동 재설정을 끄고 자동 밝기 상자를 선택합니다. 라이브 이미지의 밝기는 자동으로 제어됩니다.
    3. 초점 위치[μm] 섹션의 값 대신 점선이 표시되거나 초점면을 조정해도 표시된 값이 변경되지 않는 경우 현미경 렌즈 케이블이 올바르게 연결되어 있는지 확인하십시오.
      참고: pachymetry의 초점 위치[μm] 는 현재 표시된 이미지의 초점면 위치를 미크론 단위로 표시합니다. 초점면이 이후에 이동하면, 실제 초점면의 위치는 기준 이미지의 위치를 기준으로 계산됩니다.
  6. 환자를 위해 검사 테이블의 높이를 높이거나 낮춥니다. 환자의 턱을 턱받이에 놓고 이마를 이마 받침대에 대십시오(그림 3A, B). 환자의 윗 눈꺼풀이 머리 받침 기둥의 빨간색 표시와 정렬되도록 장치의 지정된 검은색 조정 나사를 통해 턱 받침대 높이를 조정합니다.
  7. 환자에게 포인터의 고정된 광원 앞을 내려다보고 시선을 고정시키라고 말합니다(그림 3A, B).
    알림: 이미지 수집 중 눈의 움직임으로 인해 이미지 품질이 저하되고 안구 표면이 손상될 수 있습니다.
  8. 면봉을 사용하여 위쪽 눈꺼풀을 뒤집어 속눈썹 뿌리와 손바닥 가장자리를 완전히 드러냅니다. 장치의 조정 나사를 돌려 레이저 빔의 반사를 환자의 윗 눈꺼풀 높이에 배치합니다. 스캐닝 레이저 카메라가 PMMA 캡의 중앙에 수직으로 부드럽게 닿을 때까지 환자의 위쪽 눈꺼풀 가장자리를 향해 천천히 움직입니다(그림 3C). 환자가 불편함을 호소하면 잠시 멈추고 PMMA 캡 정렬을 확인하십시오.
    참고: 환자의 눈꺼풀에 너무 많은 압력을 가하지 마십시오. 불충분한 젤 브리지, 환자의 눈과 머리 움직임 및/또는 시술자의 너무 강한 카메라 움직임으로 인해 PMMA 캡과 환자의 눈꺼풀 사이의 접촉은 안구 표면과 눈꺼풀을 손상시킬 수 있습니다.
  9. 속눈썹의 측두부에서 눈꺼풀 가장자리의 코 쪽으로 속눈썹의 뿌리를 조심스럽게 스캔하고 손바닥 가장자리의 미세한 수평 움직임으로 속눈썹과 모낭을 평가할 수 있습니다. 장치의 현미경 렌즈를 시계 방향 또는 시계 반대 방향으로 돌려 이미지를 스캔 및 획득하고, 초점 평면을 점차적으로 수정하여 전체 여포와 속눈썹 뿌리를 관찰하고, 스캐닝 레이저 카메라 라이브 이미지에 표시되는 다양한 깊이를 기록합니다. 눈당 6-10개의 속눈썹 모낭을 스캔하여 이미지를 획득하고, 샘플링은 눈꺼풀 가장자리의 측두, 중간 및 코 영역에 분포되어 있습니다.
    참고: 스캐닝 레이저 카메라 라이브 이미지에 작은 반사가 표시되고 초점면 위치를 변경할 때 지속되면 접촉 젤에 기포가 있음을 나타낼 수 있습니다. 이 문제를 해결하려면 콘택트 젤을 갱신하십시오.
  10. 이미지를 수동으로 저장하고 풋 페달을 밟아 Demodex 진드기의 모든 의심 이미지를 기록합니다. 페달 오디오 피드백을 활성화하여 성공적인 이미지 획득을 확인합니다. 스캐닝 레이저 카메라 라이브 이미지에서 눈꺼풀 구조가 표시되지 않고 반사율이 높은 경계층만 보이는 경우, 이는 PMMA 캡과 환자의 눈꺼풀 가장자리 사이의 접촉이 중단되었음을 나타낼 수 있습니다. 이 문제를 해결하려면 PMMA 캡이 환자의 눈꺼풀 가장자리에 올바르게 닿을 때까지 카메라를 다시 정렬합니다.
  11. 라이브 이미지가 흐릿하게 보이거나 왜곡되거나 모낭 구조가 표시되지 않는 경우 이러한 문제는 환자가 머리를 움직이거나 눈을 깜박이고 있음을 나타낼 수 있습니다. 움직임을 최소화하기 위해 환자에게 고정 조명에 집중하도록 상기시킵니다. 가능하면 밝기, 초점면 및 스캔 위치를 조정하여 이미지 품질을 개선하십시오.
  12. 스캐닝 레이저 카메라를 조정해야 하거나 환자가 피로 또는 통증을 느끼는 경우 환자에게 뒤로 앉아서 스캐닝 레이저 카메라를 뒤로 움직인 다음 카메라를 다시 조정하도록 요청하십시오. 환자가 검사 중 계속 불편함을 느끼고 휴식 후에도 증상 완화의 징후가 보이지 않으면 환자의 안전을 보장하기 위해 절차를 중단하고 일정을 다시 잡습니다.
  13. 환자를 하루 종일 여러 번 검사하는 경우 이미지 보기 창의 동일한 검사 탭에 있는 모든 이미지를 저장합니다.
  14. 왼쪽 눈을 검사하고 작업자의 관점에서 카메라를 오른쪽으로 이동한 다음 OS 가 자동으로 선택될 때까지 기다립니다. 장치에서 PMMA 캡을 제거하고 장치의 현미경 렌즈에 새 PMMA 캡을 끼운 다음 이전 단계를 반복합니다.

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그림 3: 환자 자세. (A,B) 환자가 위치에 있습니다. (C) 눈꺼풀에 닿도록 캡을 조정하고 있습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

4. 진찰 후

  1. 시험을 그만 두십시오. 속눈썹 여포의 이미지가 저장되어 있고 획득한 이미지가 이미지 보기 창에 표시되는지 확인합니다. 그렇지 않은 경우 이미지 획득에 실패했거나 데이터가 저장되지 않았을 수 있습니다. 먼저 소프트웨어 연결 문제 또는 페달 고장과 같은 잠재적인 장비 오작동을 배제합니다. 문제 해결 후 환자에게 상황을 설명하고 검사를 반복합니다.
  2. 검사 후 국소 마취의 효과가 감소할 때까지 환자에게 눈을 비비지 않도록 요청하십시오.
  3. 장치에서 PMMA 캡을 제거합니다.
  4. 렌즈 청소용 물티슈로 현미경 렌즈를 청소하십시오.
  5. 옵션 대화 상자에서 획득 시간순 정렬(빠름)을 선택하고 측두부에서 비강(보충 파일 1: 보충 그림 S5)까지 순서대로 표시되는 속눈썹 모낭의 획득된 이미지를 관찰합니다(보충 파일 1: 보충 그림 S5), 즉 눈꺼풀 가장자리를 따라 속눈썹 뿌리를 스캔하는 순서. 모든 이미지를 검토하고, 분석할 고품질 이미지를 선택하고(그림 4), 저품질 이미지를 삭제합니다. 관찰자가 진드기의 존재 여부에 대해 이미지를 평가하고 각 눈에 대해 총 Demodex 진드기가 있는 속눈썹 여포의 수를 기록하도록 합니다.
    참고: 고품질 이미지는 선명한 진드기 형태를 보여주며, 이미징된 진드기 부분은 가능한 한 커야 하며, 이상적으로는 100μm보다 커야 합니다. 고품질 이미지를 사용할 수 없는 경우 두 번째 관찰자에 의한 독립적인 평가가 필요합니다. 두 관찰자의 결과가 일치하지 않는 경우, 세 번째 관찰자가 불일치를 해결하고 보고서에 포함할 최종 결과를 확립하기 위해 판결을 내려야 합니다.
  6. 시간측에서 비강 쪽까지의 고품질 이미지를 보고서의 라이트박스에 배치하여 보고서를 생성합니다. 보고서 템플릿 및 진드기 계수 형식( 보충 파일 2 참조)에서 검사 결과를 기반으로 결과를 설명하기 위한 적절한 보고서 템플릿을 선택합니다.

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그림 4: 속눈썹 여포 내부의 Demodex . (이미지: 400μm x 400μm). (가)3개의 Demodex 진드기가 난포 내에서 관찰되고(노란색 화살표), 단일 속눈썹이 표시됩니다(흰색 화살표). (B) 5개의 Demodex 진드기가 난포 내에서 관찰되며(노란색 화살표), 단일 속눈썹이 표시됩니다(흰색 화살표). 진드기는 서로 다른 깊이를 통해 이동할 수 있으므로 단일 초점면에서의 이미징은 개별 진드기의 단편화된 부분을 캡처할 수 있으며, 이로 인해 불완전한 형태학적 표현이 발생할 수 있습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

5. 매일 퇴근 후 장치를 끄십시오.

  1. 모든 대화 상자와 창을 닫은 후 소프트웨어를 닫습니다.
  2. 컴퓨터를 끕니다.
  3. 장치 뒷면의 로커 스위치를 I에서 O로 전환하여 장치를 종료합니다. 최적의 시스템 성능 및 데이터 보안을 위해 먼저 소프트웨어를 종료한 다음 장치를 끄십시오.
    알림: 장치를 너무 오랫동안, 특히 하루 이상 계속 켜두면 안 됩니다.
  4. 장비에 연결된 무정전 전원 공급 장치(UPS)를 정기적으로 유지 관리하고 적절한 작동을 확인하여 갑작스러운 정전으로 인한 데이터 손실 또는 장치 오작동을 방지하십시오.
  5. NAS(Network-Attached Storage) 스토리지 활용과 같은 정기적인 백업을 수행합니다.

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결과

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위에서 설명한 SOP에 따라 2024년에 Demodex 감염이 의심되는 환자를 검사했습니다. 또한 이 SOP가 적용되지 않은 2023년의 데이터를 비교했습니다. 그림 5에서 볼 수 있듯이 2024Demodex 감지를 위해 IVCM을 받은 환자의 수는 전년도보다 훨씬 많습니다. 이 SOP를 통해 4세에서 92세까지 다양한 연령의 환자를 검사할 수 있습니다.

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그림 5: 2023년과 2024년에 Demodex 관찰을 위해 생체 내 컨포칼 현미경을 받는 피험자의 수와 연령 그...

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토론

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외부 기생충인 Demodex는 인간에게 가장 흔한 기생충 중 하나입니다. 이 진드기는 속눈썹 여포, 마이봄샘(MG), 피지선에 서식하며 투명하고 길쭉한 모양이며 길이가 0.15-0.4mm입니다17. 이 장치를 사용하여 수행된 IVCM은 1μm/픽셀의 측면 해상도와 800배 배율의 400μm x 400μm 실시간 이미지를 제공합니다. IVCM을 통해 속눈썹 여포의 Demodex에 대한 자세한 이미지를 얻을 수 있습니다. 눈꺼풀 가장자리 치료에 대한 환자의 반응 변화도 모니터링할 수 있다11,13. 비침습적 기술인 IVCM은 눈꺼풀 가장자리에 있는 진드기의 빠른 시각화를 위한 안과의 이미징 도구로 제시되었습니다18. 속눈썹 제모 및 광학 현미경 검사로 ...

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공개 사항

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저자는 공개할 이해 상충이 없습니다.

감사의 글

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이 연구는 중국 전통 의학 과학 기술부 국가관리국-저장성 중국 전통 의학 공동 건설 과학 기술 계획(GZY-ZJ-KJ-23086)의 보조금으로 지원되었습니다. 생체 내 컨포칼 현미경 검사는 Rostock 각막 모듈을 추가하여 Heidelberg Retina Tomograph III를 사용하여 수행되었습니다. 저자는 Heidelberg Engineering GmbH, 모든 참가자 및 이 표준 운영 절차에 대해 작업하는 사람들에게 감사를 표하고 싶습니다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
카보머 기반 안과용 젤, Vidisic  Bausch and Lomb, 베를린, 독일8187195
Heidelberg Eye Explorer 소프트웨어  Heidelberg Engineering GmbH, 하이델베르크, 독일버전 1.3.3.0
하이델베르그 망막 단층 촬영 III  Heidelberg Engineering GmbH, 하이델베르크, 독일HRT3-08398
프로파라카인 염산염Alcon Laboratories, 미국 텍사스주 포트워스8387271
토모캡  Heidelberg Engineering GmbH, 하이델베르크, 독일18829PMMA 캡

참고문헌

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
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