연구 논문

상부 경관신경신경총 손상에 대한 자가신경이식 대 다중 신경 이식: 쥐 모델 연구

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DOI:

10.3791/69481

2026년 3월 27일

* These authors contributed equally

이 논문에서

요약

신경 이식 또는 신경 이식으로 수리된 왼쪽 상부 상완신경총 손상의 쥐 모델을 구축함으로써, 두 그룹 모두 유사한 근력을 달성했다; 이식된 동물들은 뛰어난 움직임 협응력을 보였다.

초록

상완신경총(C5-C6) 상완신경총 손상은 어깨 외전과 팔꿈치 굴곡을 방해합니다. 근위 절단이 보존된 C5-C6 파열의 경우, 신경 이식술(NG)이 전통적인 접근법으로 남아 있습니다. 신경 전달(NT)은 C5-C6 탈출에서 유일한 유효한 선택지입니다. NT의 현재 전 세계 표준은 세 가지 이식 절차를 포함합니다: 척수 부신경(SAN)에서 상상동맥(SSN), 오버린 절차, 그리고 리카벤봉스 절차. 최근 임상 추세는 NT 적응증이 근 파열 시나리오까지 포함하도록 확대되고 있음을 시사하는데, 이는 원위 NT가 축삭 재생 거리를 현저히 단축한다는 논리에 기반합니다. 직접 비교를 가능하게 하기 위해 본 연구는 이러한 임상 전략을 시뮬레이션하는 두 가지 쥐 모델을 구축했습니다: 1) C5-C6 절단 부위를 SSN과 상부 줄기에 접목한 NG 모델; 2) 위의 세 가지 절차를 포함하는 다중 NT 모델. 기능 회복(오치아이 점수, 바르트 발 결함 검사, 테르지스 그루밍 검사), 전기생리학적 지표 및 재생된 감각 축삭 수는 수술 후 8주와 16주에 평가되었습니다. 8주 시점에는 그룹 간 기능적 결과에서 통계적으로 유의한 차이가 없었습니다. 16주가 되자, 오치아이 점수와 테르지스 결과는 여전히 비슷했지만, NG는 바르트 테스트에서 유의미하게 우수한 성과를 보였다. 전기생리학적으로 NT는 8주경에 근피신경, 겨드랑이신경, 상상신경의 회복률이 유의미하게 높았다. 그러나 이러한 전기생리학적 이점은 16주가 지나면서 통계적으로 유의미하지 않아졌습니다. 8주 시점에 비추어 음모는 근피신경과 겨드랑이신경에서 재생된 감각 축삭을 더 많이 보유했으며, SSN 수치는 유사했다. 16주경에는 NG가 세 신경 모두에서 감각 축삭 수에서 NT를 능가했습니다. 날카로운 C5-C6 절단 모델을 대상으로 한 쥐 모델의 이러한 결과는 수술 후 16주 이내에 NG가 NT와 유사한 기능적·전기생리학적 회복을 달성하며, 감각 및 운동 조정 기능의 우수한 회복을 보인다는 것을 시사합니다. 그러나 이러한 발견의 번역적 관련성을 확인하기 위해서는 더 긴 추적 관찰 기간의 추가 연구가 필요합니다.

서론

상완신경총 손상은 일반적으로 상부 몸통 손상(C5–C6, C7 관련 여부와 상관없음), 하부 몸통 손상(C8–T1), 그리고 전신경총 손상(C5–T1)으로 분류됩니다. 머리와 어깨에 가해지는 압축력은 일반적으로 상부 몸통 부상을 유발합니다. C5–C7 근 부위의 상공 인대가 외상력의 상향 전달을 부분적으로 분산시키기 때문에, 특히 C5 근이 추간공에서 파열되는 경우가 드물지않습니다. 하지만 심한 폭력은 뿌리 박탈로 이어질 수 있으며, 심지어 하부 줄기까지 확장될 수 있습니다. 상지가 수평면에서 강제로 주의를 빼앗기면 아랫줄기 뿌리 박리가 우세합니다; 더 큰 힘이 들면 완전한 상완신경총 탈리가 발생할 수 있습니다. C8–T1 근을 보호하는 상공공 인대가 없기 때문에, 거의 모든 외상성 하부 몸통 손상은 근 절실입니다2. 따라서 뿌리 손상 양상에 관해, C5–C6 뿌리는 파열될 가능성이 더 높은 반면, C7–C8–T1 뿌리는 박리에 더 취약합니다. 이러한 병리해부학적 특성은 적절한 수술 전략을 선택하는 데 매우 중요합니다.

상부 몸통 손상은 임상적으로 어깨 외전과 팔꿈치 굴곡 상실로 특징지어집니다. 근위 근부 절단 부위가 여전히 존재하는 C5–C6 파열 환자의 전통적인 전략은 신경 이식술(NG)입니다: 잔여된 C5와 C6 뿌리를 보통 상부 신경 자가이식을 통해 상부 줄기의 앞뒤 분기와 상상골 신경3에 연결합니다. C5와 C6 근이 박탈될 때, 신경 이식(NT)만이 유일한 재건 방법이 됩니다. 전 세계 대부분 센터에서 채택하는 수술 알고리즘은 세 가지 절차를 결합합니다: 척수 부신경에서 상갑상신경으로, 척골신경의 한 다발을 근피신경의 이두박근 가지로 연결하는 (Oberlin 절차), 그리고 요골신경에서 겨드랑이 신경 전쪽 가지로 가는 삼두근의 긴 머리 분지(Leechavengvongs 절차)4.

지난 10년간 상완신경총 재건에서 NT의 적응증이 점차 확대되었으며, 일부 저자들은 근 파열에도 이식 기법을 권장하며, 원위 이식이 재생 거리를 현저히 단축시켜 운동 회복을 가속화한다고 주장합니다 5,6,7. 그러나 지금까지 이 보고서들은 오로지 수술 후 근력 결과에만 집중되어 왔습니다; 기능적 회복의 질을 결정하는 변수인 민첩성과 조정된 움직임에 대한 평가는 여전히 부재하고 있습니다.

잔류 뿌리 절단기가 감각 섬유의 비율이 더높고 재구성 후 장거리 피질 재매핑이 필요 없다는 점을 고려할 때,9 9 C5–C6 신경절 파열 후 발생 시 생존 가능한 C5–C6 근 절단기를 사용하는 NG가 NT에 비해 전반적으로 더 우수한 기능적 회복 품질을 제공한다고 가설을 세웁니다. 쥐가 상완신경총 손상 및 수리의 이상적인 실험 모델로 널리 인정받고 있기 때문에, 우리는 각각 NG 또는 NT로 재건한 C5–C6 신경절 후 병변의 두 성인 쥐 모델을 구축할 것이다. 행동 평가, 전기생리학적 평가, 재생된 감각 축삭 수를 사용하여 두 그룹을 비교하고 가설을 검증할 것입니다.

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프로토콜

이 프로토콜은 푸단대학교 실험동물과학과 동물복지 및 윤리 위원회(승인 번호: 2019 화산병원 JS-008)에서 승인되었습니다.

쥐 모델의 확립
왼쪽 상부 몸통 파열 부상
실온은 23–25°C로 유지되었습니다. 스프래그-도울리 쥐는 복막 내 1% 펜토바르비탈나트륨(0.4 mL/100 g 체중)으로 마취하였다. 마취 유도 후, 쥐는 수술판 위에 누워 몸통에서 90° 전방으로 젖혀졌습니다. 목, 가슴, 겨드랑이, 그리고 NG 동물에서만 두 개의 뒷다리가 면도되었다. 피부는 포비돈-요오드로 소독되었습니다. 삼상연골에서 흉골 마누브리움 상부 경계까지 3cm 길이의 경추 중간 절개를 하였다. 수술용 현미경 아래에서 피하 조직과 심부 근막을 층별로 해부하여 흉골근, 흉골돌기근, 대흉근, 소흉근을 노출시켰습니다. 이 네 근육은 멸균된 맞춤형 종이 클립 견인기를 사용해 수축되었습니다. 견인기의 원위 끝은 고무줄로 작동판에 고정되었고, 장력을 조절하여 내부 경정맥을 보호하면서 최적의 노출을 얻었습니다. 전방 및 중중각 사각근이 확인되었고, 중각 간극장 공간의 쇄골상부 부분이 노출되었다(그림 1A). C5와 C6 근은 각각의 추간공에서 5mm 떨어진 곳에서 절단한 후, 5mm 구간을 절제하여 명확한 틈을 만들었다(그림 1B). NT 그룹에서는 C5와 C6의 근위 절단부를 인접한 연조직에 봉합하여 재생 축삭이 원위 경로로 진입하는 것을 막았다.

NG 모델의 설립
L자형 절개가 뒷발의 등외측부, 외측 망골을 가로질러 하퇴부 외측을 따라 이루어졌다. 수술용 현미경 아래에서 피하 조직과 심부 근막을 한 겹씩 해부하며 작은 복재정맥을 보호한 후 설문 신경을 노출시키고 채취했습니다. 양측 비판신경은 총 길이 8cm를 형성했다. 신경주위 결합 조직을 다듬은 후, 각 신경은 8개의 1cm 분절로 나뉘었다. 상갑골 신경은 상부 줄기에서 기원에서 절단되었다. 한 이식편은 C5에서 상상신경으로 다리를 놓는 데 사용되었고; C5에서 3개의 접목, C6에서 상부 줄기로 4개의 접목을 받았습니다(그림 1C).

신약 모델 설립
경추 중앙선 절개는 상완 쪽으로 약 2.5cm 멀리 연장되었습니다.  외측 흉측 피부 가지가 나오는 지점에서, 흉근이 흉근과 이두근 사이의 섬유 방향을 따라 절개되었습니다. 더 깊은 흉부 소근육은 무딘 박리하여 흉부 아래를 지나는 상완신경총 끈을 드러냈다. 척골신경은 내측 척수에서 시작되어 척골 구간 내에서 가장 내측으로 흐릅니다(그림 1D). 근피신경은 외측 척추에서 시작하여 대측근 아래쪽 경계 아래를 지나 팔로 들어가 최종적으로 이두근 상완근 배에 들어가 척수 구간 내에서 가장 측면을 따라 뻗어 있습니다(그림 1D). 요골신경은 후삭에서 시작하여 광배근 힘줄의 하부 경계 아래를 지나 후팔로 들어가며, 삼두근의 길고, 내측, 측면 머리를 공급하는 세 가지 가지를 분배합니다. 겨드류신경도 후삭에서 시작되어 사각형 공간을 가로지르고, 삼각근을 지배하는 전후각으로 나뉩니다.

척수 부신경이 상상골신경으로 이동하는 과정
흉쇄유돌근은 경추 중앙선 절개 부위 내에서 후퇴하여 척수 부신경을 노출시켰습니다. 이 신경은 이복근 아래에서 나와 흉쇄유돌근 내측 경계의 중간 3분의 1에 도달하고, 흉쇄유돌기 가지를 분화하여 그 근육의 후방 경계를 따라 계속 이어지고, 목 쪽으로 측면으로 내려가 사모조에 신경을 지하게 합니다. 흉쇄유돌이드 가지는 이식 후 결합 부위를 방해할 수 있는 부신경의 견인을 제거하기 위해 절단되었다. 승모근 가지는 근육으로 들어가는 지점에서 갈라져 있었습니다. 상갑골 신경은 상부 줄기 원위부에서 절단되었다. 부신경의 승모근 가지는 단일 10-0 합성 폴리프로필렌 봉합사로 상상엽신경과 결합되었다(그림 1E).

척골신경다발이 근피신경의 이두근 운동 가지로 이동하는 과정 (Oberlin 절차)
근피신경의 주 줄기는 원위로 동원되어 이두근 운동 가지가 완전히 노출되었다. 이두근 운동 가지의 중간 3분의 1 지점에서 척골신경 외측에서 6mm 다발이 채취되었고, 그 말단 끝이 날카롭게 절단되었다. 이두근 운동 가지는 근피신경줄기에서 시작점에서 절단되었다. 움직이는 척골 다발은 단일 10-0 합성 폴리프로필렌 봉합사로 이두근 운동 가지에 부착되었다. 이두근 운동 가지의 완전한 노출은 두 가지 목적을 달성합니다: (1) 척골신경에서 섬유 채취 부위를 정확히 식별하는 것, (2) 이식 후 긴장 없는 맞속을 보장하는 것입니다(그림 1F).

요골 긴 삼두근 가지를 겨드랑이신경 전지로 옮기는 과정(Leechavengvongs 절차)
쥐는 엎드린 자세로 재배치되었고, 앞다리는 몸통 쪽으로 90° 외전되었습니다. 왼쪽 상완의 등쪽 부분은 면도하고 소독되었다. 왼쪽 상완의 등쪽에 3.5cm 길이의 세로 절개가 이루어졌으며, 어깨 관절에서 중상완골 수준까지 이어졌다. 수술 중인 현미경 아래에서 피하 조직과 심부 근막을 층층이 해부했습니다. 삼각근은 후퇴하여 기저 사각형 공간이 드러났으며, 여기서 겨드랑이 신경의 주 줄기와 동반된 후방 회곡 상완골 혈관이 그 공간에서 나오는 것이 보였다. 겨드랑이 신경은 전방과 후방 전체 구간이 완전히 노출될 때까지 원위로 동원되어 삼각근 복부에 진입하기 직전이었다. 같은 절개 부위 내에서 삼두근의 긴 머리와 외측 머리 사이에 요골신경의 주 줄기가 확인되었습니다. 요골신경은 원위로 동원되어 삼두근의 긴 머리까지 전체 운동 가지가 명확히 시각화되었다(그림 1G). 긴 머리 삼두근 가지는 근육 진입 지점에서 절단되었고, 근위부에서 반사되어 겨드랑이 신경의 앞쪽 가지에 근접하게 작용했다. 겨드랑이 신경의 앞쪽 가지는 주 줄기에서 시작하여 절단되었고, 원위로 반사되었다. 긴 머리 삼두근은 겨드류신경의 앞쪽 가지로 갈라져 단일 10-0 합성 폴리프로필렌 봉합사로 보호되었다(그림 1H).

모든 신경 재건이 완료된 후, 각 수술 부위는 멸균 식염수로 세척되었고, 모든 결합 부위는 무결성을 확인하기 위해 꼼꼼히 점검되었습니다. 모든 절개는 층으로 닫혔으며, 대흉근은 5-0개의 흡수성 실크 봉합사(NT 그룹의 경추 절개에만 필요)로 근사화되었고, 이어서 피하 근막과 피부가 삽입되었습니다. 모든 신경 결합이 긴장 없이 이루어졌기 때문에 수술 후 상지 고정술은 필요하지 않았습니다.

행동 평가
오치아이 점수13
쥐는 꼬리를 들어 올려 몸을 테이블 위 30cm 높이에 매달았고, 양쪽 앞다리의 자세를 관찰했다. 쥐는 좁은 활주로 위에 놓여 (길이 50cm× 너비 10cm)을 테이블 위에 놓아 걷는 앞다리 보행을 관찰했습니다. 런웨이 전체가 흰 종이로 덮여 있었고, 시작 부분은 검은 잉크로 적셨습니다. 쥐가 앞으로 걸어가면서 뚜렷한 발자국이 발견됩니다. 0점 – 매달려 있을 때 양쪽 앞다리가 편안하게 바닥을 향해 곧게 늘어져 있습니다(그림 2A-1); 걷는 동안 양쪽 앞다리 모두 끌리지 않습니다(그림 2A-2). 1점 – 매달린 상태에서 영향을 받은 앞다리가 약간 내전되고 굽혀집니다(그림 2B-1); 걷는 동안에는 팔꿈치 굴곡 제한으로 인해 약간의 저항이 관찰됩니다(그림 2B-2). 2점 – 매달려 있을 때 영향을 받은 전肢가 완전히 굽히고 내전됩니다(그림 2C-1); 걷는 동안 심한 끌림이 나타납니다(그림 2C-2).

바르트 풋 과실 테스트13
테이블에서 11cm 높이에 50cm × 38cm의 수평 금속 격자가 준비되었다; 각 격자 정사각형의 크기는 1.5cm입니다. 쥐는 격자 위에 놓였고; 영향을 받은 앞다리가 격자 구멍을 통과할 때마다 이를 '풋 폴트'로 기록합니다(그림 3). 영향을 받은 팔다리가 2분 동안 저지른 발 실수 횟수를 집계했습니다.

테르지스 그루밍 테스트14
쥐는 투명한 열린 관측 상자에 넣어졌습니다. 약 1–3mL의 생리식염수를 쥐의 주둥이와 얼굴에 뿌렸고, 쥐가 물방울을 제거하려는 시도가 관찰되었습니다.

등급 0 – 영향을 받은 팔다리에서 반응이 없음.
1등급 – 영향을 받은 팔다리가 팔꿈치에서 굽혀져 입에 닿지만 코에는 닿지 않습니다(그림 4A).
2등급 – 영향을 받은 팔다리가 코에 도달합니다(그림 4B).
3등급 – 영향을 받은 팔다리가 코 위까지 닿지만 눈에는 닿지 않습니다(그림 4C).
4등급 – 영향을 받은 팔다리는 눈까지 도달하지만 귀에는 닿지 않습니다(그림 4D).
5등급 – 영향을 받은 팔다리가 귀 또는 그 뒤쪽까지 도달합니다(그림 4E).

복합 근육 활동전위(CMAP)
쥐는 마취, 고정 및 준비를 했으며, 프로토콜에서 설명한 대로 쇄골상부 부분과 상완신경총의 척수 구간을 노출시켰습니다. 검은색 기록 바늘 전극은 목표 근육(이두근, 상완근, 삼각근, 또는 척추하근)의 복부에 삽입되었습니다. 빨간색 기록 전극은 같은 근육의 힘줄-근육 접합부에 삽입되었습니다. 녹색 기준 전극은 검은색과 빨간색 전극 사이에 배치되었습니다(그림 5). 모든 전극은 깊이 2mm로 삽입되며, 양쪽 모두 동일한 삽입 부위를 사용합니다. 자극 전극으로 신경을 부드럽게 올려 검사했습니다. 0.5 mA 강도와 0.2 ms 지속 시간의 단일 사각파 펄스가 전달되었으며; CMAP 지연 시간과 진폭이 기록되었습니다. 반대편(건강한) 쪽이 기준점으로 사용되었으며(1 값이 할당됨). 잠복 지연률([영향을 받은 쪽의 잠복/건강한 쪽의 잠복 시간] × 100%와 진폭 회복률([영향을 받은 쪽의 진폭/건강한 쪽의 진폭] × 100%)을 계산하였습니다.

면역형광 염색
수초화된 섬유는 항신경섬유 200(NF200)으로 표지되었고; 그중 운동 미엘린 섬유는 항콜린 아세틸트랜스퍼라제(ChAT)와 공동 표지하여 구별되었습니다. 따라서 NF200 양성이지만 ChAT는 음성인 섬유는 감각 수초화 섬유로 분류되었다15.

신경이식군의 경우, 근피신경, 겨드랑이신경, 상상골신경의 주요 줄기를 영향을 받은 사지의 두 번째 봉합 부위에서 원위까지 채취하였다. 신경전달군에서는 근피신경의 이두근 가지, 겨드랑이 신경의 전쪽 가지, 그리고 상상골 신경이 각각의 결합 부위에서 멀리 이동하였다. 각 신경의 3mm 구간을 4% 파라포름알데히드에 담근 후 4°C에서 24시간 고정하였다.

시료들은 종축에 수직으로 배치되어 파라핀에 박혀 3 μm 간격으로 연속적으로 절단되었습니다. 탈파라핀화 후, 전자레인지를 이용해 0.01 M EDTA 버퍼(pH 8.0)에서 항원 회재가 수행되었습니다. 절편은 4°C에서 1차 항체를 PBS에 희석한 상태로 하룻밤 배양했습니다(ChAT, 1:200; 이후 PBS 세척과 2차 항체(Cy3-conjugated 염소 항-토끼 1:300; Alexa Fluor 488-결합된 염소 생쥐 방지 제품, 1:400) 빛으로부터 보호됨. 핵은 DAPI로 염색되었습니다. 각 신경의 전체 단면을 슬라이드 스캐너가 장착된 형광 현미경으로 촬영했습니다.

NF200은 녹색 형광, ChAT는 붉은 형광으로 시각화되었으며; NF200 양성/ChAT 음성 프로필은 감각 수초화된 섬유로 집계되었습니다. 각 신경에서 무작위로 선정된 다섯 개의 절편을 ImageJ로 분석하였습니다. 전체 단면의 감각 미엘린 섬유 총 수를 각 단면별로 집계하였고, 다섯 단면의 평균값을 최종 신경 표본의 최종 집계로 삼았습니다.

통계 분석
표본 크기(n=8개)는 감각축삭 개수 파일럿 효과 크기(코헨의 d = 2.31)를 사용해 G*파워로 전향적으로 계산하여 α = 0.05에서 80% 검정력을 얻≥. 모든 통계 분석은 GraphPad Prism을 사용하여 수행되었습니다. 데이터는 중앙값(4분위 범위) [M (p25–p75)]으로 제시됩니다. 그룹 간 비교는 Mann-Whitney U 검정으로 수행되었습니다. P 값 0.05< 통계적으로 유의한 것으로 간주되었습니다.

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결과

수술 후 1일째에 NG와 NT 쥐 모두 수술 부부에서 어깨 외전과 팔꿈치 굴곡 기능이 완전히 상실되었고; 동물이 제압된 상태에서 영향을 받은 앞다리의 등쪽 부분을 찔렀을 때, 두 그룹 모두 후퇴나 발성은 보이지 않았다. 8주경에 두 그룹 모두 어깨와 팔꿈치 기능이 개선되었으나, 같은 자극책이 이제는 철수를 불러왔다. 16주가 되자, 아직 완전하지 않았지만 추가 회복이 관찰되었다. 등쪽 앞다리를 찔렀을 때는 NT 쥐가 몸부림치며 비명을 질렀고, NG 쥐는 더 격렬하게 몸부림치며 더 큰 삑삑거림을 냈다.

8주와 16주에서는 NG와 NT 사이에 오치아이 점수 차이가 없었으며(둘 다 P > 0.05). 2분 테스트 중 발 단지 수는 8주에 비슷했으나(P > 0.05), 16주에는 NG 쥐가 NT 쥐보다 유의미하게 적은 단단을 냈습니다(P < 0.05). 테르지스의 그루밍 점수는 두 시점 모두에서 통계적으로 구별이 불가능했으며(...

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토론

본 연구의 목적은 잔여 신경근 이식을 이용한 상완신경총 손상 재건이 신경 이식에 비해 전반적으로 더 우수한 결과를 제공한다는 가설을 검증하는 것이었습니다. C5–C6 파열을 가진 성체 쥐는 두 그룹으로 나뉘었는데, 한 그룹은 신경 이식을 통한 상부 줄기 재건을 받았고, 다른 그룹은 척수 부신경, 요골신경의 긴 두두삼두부 가지, 척골신경 다발의 이동을 통해 이루어졌다. 전기생리학적으로 신경이식군이 신경전달군보다 우월하지 않았다; 실제로 이식 그룹의 초기 회복은 이식 그룹에 비해 늦었는데, 이는 신경 이식 과정에서 재생 축삭이 추가적인 결합 부위를 통과해야 하기 때문입니다. 그러나 수술 후 16주가 되자, 신경이식 동물들은 바르트 족부 과실 검사에서 유의미하게 더 나은 성능을 보였습니다. 이 결과는 두 전략 간에 근육 강도 회복 차이가 없었음에도 불구하고, 신경 이식 후 회복된 움직임의 조정 능력이 신경 이식 후보다 우수함을 나타냅니다.

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공개 사항

저자들은 공개할 것이 없습니다.

감사의 글

이 연구는 중국 국가자연과학기금(번호 82201525, JS에 의한)의 후원으로 진행되었습니다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
1× 시트레이트 항원 추출 용액 서비스바이오G1219-1L
1× Tris-EDTA 항원 추출 용액(pH 8.0)서비스바이오G1207-1L
1× Tris-EDTA 항원 추출 용액(pH 9.0)서비스바이오G1218-1L
10-0 프로린존슨& 존슨 메드 테크W2790
5-0 머실크존슨& 존슨 메드 테크SA82G
Alexa Fluor 488 결합 염소 항쥐 IgG (H+L)서비스바이오GB25301
안티-160 kDa 신경섬유 미디엄 마우스 mAb서비스바이오GB12763-100
항콜린 아세틸트랜스퍼라제 토끼 pAb서비스바이오GB11070-1-100
항형광 소광 코팅제서비스바이오G1401
소 혈청 알부민서비스바이오GC305010-5g
서비스바이오GB11070-1
Cy3 결합 염소 항토끼 IgG (H+L)서비스바이오GB21303
다피서비스바이오G1012-10
임베딩 머신GET 전자(후이저우) 유한회사.JB-P5
형광 현미경니콘이클립스 C1
4채널 전기요도단테 가문DT440
G*파워하인리히 하이네 대학교 D&우움, 셀도르프3.1.9.7
고속 카메라 컨트롤러니콘DS-U3
이미지J국립보건원(NIH)1.8.0
미세수술 기구닝보 청허 마이크로 기기 공장6804
전자레인지갈란츠P70D20TL-P4
작동 현미경상하이 의료광학 기기 공장SXP-1B
피펫에펜도르프100221588457
프리즘그래프패드  소프트웨어10.1.2
회전 미세토름라이카RM2016
스캐너엡슨V300
스프래그 도울리 쥐상하이 시피-Bk 실험동물OR-1001
조직 자가형광 소광기서비스바이오G1221-5ML
조직 마킹 펜&즈wnj;유전자 기술GT1001

재인쇄 및 허가

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