연구 프로토콜은 충칭 의과대학교 제1부속병원 윤리 위원회의 검토 및 승인을 받았습니다(No. 2024-020-01). 본 연구는 중국 국가 의학 연구 등록소(National Medical Research Registry, China)에 전향적으로 등록되었습니다(등록 번호: MR-50-24-036087, 등록일: 2024년 9월 6일). 익명화된 얼굴 사진의 출판 동의를 포함하여, 모든 참여자로부터 등록 전 서면 동의를 얻었습니다. 본 연구는 헬싱키 선언을 준수하여 수행되었습니다.
연구 설계
본 연구는 12주 동안 진행된 안면 분할, 무작위, 전향적 임상 연구였다. 본 연구에 사용된 복합 산 필링제는 AHA (4%), 살리실산 (2%), 아젤라산 (1.5%)으로 구성되었으며, 총 산 농도는 약 7.5%였다. 제형의 pH는 3.6이었다. 연구 시작 전, 맹검 처리된 통계 전문가가 스프레드시트로 생성한 무작위 서열을 사용하여 참가자를 치료군과 대조군으로 배정하였으며, 이는 맹검 처리된 의사에 의해 실행되었다. 치료 부위에는 3주 동안 주 2회 복합 산 필링을 실시하였다 (총 6회 세션). 치료 부위를 자극이 적은 비유성 세안제로 부드럽게 세안하고 완전히 건조시킨 후, 필링제를 얇고 균일하게 도포하였다 (안면 절반당 ~2 mL). 제형은 이마와 관자놀이부터 뺨, 코, 입 주변 영역, 턱 순서로 표준화된 순서에 따라 도포하였으며, 눈꺼풀, 입술, 점막 표면 및 손상된 피부는 피하였다. 제품을 피부에 15분 동안 도포한 후 물로 중화시켰다. 임상적 종점은 과도한 화끈거림, 부종, 물집 또는 광범위한 프로스팅(frosting) 없이, 견딜 수 있는 정도의 따끔거림이나 온열감과 함께 나타나는 가볍고 균일한 홍반으로 설정하였다. 제거 후에는 진정 및 보습 마스크를 15분 동안 적용하였다.
참가자들은 자극적인 국소 제품 사용, 각질 제거, 피부 짜기 및 직접적인 햇빛 노출을 피하고 낮 동안 광범위 자외선 차단제를 사용하도록 안내받았다. 이 3주간의 치료 단계 이후에 9주간의 추적 관찰 기간이 이어졌다. 대조군 쪽은 처음 3주 동안 아무런 처치를 받지 않았다. 이 초기 대기 기간이 지난 후, 대조군 쪽에 동일한 3주 과정의 복합산 필링을 실시하였고, 이어서 6주간의 추적 관찰을 진행하였다. 각 안면 반측당 5회의 세션은 병원에서 교육받은 의료진에 의해 수행되었으며, 안면 반측당 1회의 세션은 연구자가 제공한 표준화된 지침에 따라 참가자가 집에서 수행하였다. 참가자에게는 제품의 양과 도포 범위, 도포 순서 및 치료 부위, 규정된 노출 시간 및 제거 절차에 관한 표준화된 서면 및 구두 지침이 제공되었다. 연구 설계 및 실험 워크플로우의 개략적인 개요는 그림 1에 제시되어 있다.
환자 모집
중등도 보통 여드름(AV)으로 임상 진단을 받은 18~60세의 환자 30명을 연구에 등록하였습니다. 성별에 관계없이 중등도 AV 진단 기준인 2등급(면포, 구진, 농포를 포함하여 31~50개의 병변) 또는 3등급(다수의 구진 및 농포, 간헐적인 큰 염증성 병변 및 3개 미만의 결절을 포함하여 51~100개의 병변)에 해당하는 참가자를 선정하였습니다. 광과민성 피부이거나 직전 4주 이내에 광과민성 약물을 사용한 경우, 직전 한 달 이내에 강한 햇빛에 노출된 적이 있거나 치료 후 1개월 이내에 상당한 햇빛 노출이 예상되는 경우, 치료 부위에 흉터, 활성 감염 또는 치유되지 않은 상처가 있는 경우, 진단된 면역결핍 질환이 있는 경우, 심각한 심장, 간 또는 신장 기능 장애가 있는 경우, 또는 기록된 정신 질환이 있는 환자는 제외하였습니다. 적격성을 갖춘 30명의 참가자 모두가 연구를 완료하였으며 최종 분석에 포함되었습니다.
결과 평가
객관적 평가
홍반 및 포르피린 분석
표준화된 환경 조건(온도, 습도, 조명 고정) 하에서 안면 영상 시스템을 사용하여 기저선 및 각 추적 관찰 시점의 양측 이마, 뺨, 턱선 및 기타 영향 부위의 이미지를 캡처하였습니다. 이 시스템을 통해 홍반 강도와 포르피린 수치를 객관적으로 정량화하였습니다.
미생물군 샘플링 및 면역조직화학 분석
치료 전과 3주 차에 치료 부위에서 채취한 미생물 스왑을 통해 피부 마이크로바이옴 프로파일링을 수행하였다. 제조사의 프로토콜에 따라 지정된 추출 키트로 스왑에서 미생물 DNA를 추출한 후, 회수된 DNA의 양을 정량하였다. 보편적 프라이머인 341F (5’-CCTACGGGNGGCWGCAG-3’)와 805R (5’-GACTACHVGGGTATCTAATCC-3’)를 사용하여 박테리아 16S rRNA 영역을 증폭시켰다. 증폭 과정은 98 °C에서 30 s 동안 변성시킨 후, 98 °C에서 10 s, 54 °C에서 30 s, 72 °C에서 45 s의 과정을 32회 반복하였다. 마지막 신장 단계는 72 °C에서 10 min 동안 수행하였다.
지정된 비즈를 사용하여 PCR 증폭물을 정제하고 라이브러리 평가 전에 정량화하였다. Bioanalyzer와 정량적 PCR 키트를 사용하여 산물의 품질을 평가했으며, 이후 적격한 증폭물들을 풀링하여 시퀀싱을 진행하였다. 디멀티플렉싱된 raw read는 먼저 Cutadapt를 사용하여 프라이머 서열을 제거함으로써 처리하였다. Paired-end read는 FLASH에서 어셈블하였으며, fqtrim을 사용하여 품질 점수가 20 미만이거나, 길이가 100 bp 미만이거나, 모호한 염기가 서열의 5% 이상을 차지하는 read를 제외하였다. 품질 필터링을 통과한 clean tag는 후속 분석을 위해 보존하였다. Vsearch로 키메라를 제거하였으며, DADA2를 사용하여 남은 read의 노이즈를 제거하고 증폭물 서열 변이체(ASV)를 생성하였다.
종 주석 작업은 feature-classifier 플러그인을 사용하여 SILVA 및 NT-16S 데이터베이스를 대상으로 QIIME2에서 완료되었습니다. alpha 및 beta 다양성 계산에도 QIIME2가 사용되었습니다. 박테리아 조성은 상대 풍부도 프로파일을 통해 평가되었습니다. 속 수준의 풍부도 차이는 Wilcoxon 검정을 통해 테스트하였으며, P < 0.05를 유의미한 것으로 간주하였습니다. 선형 판별 분석 효과 크기(Linear discriminant analysis effect size)는 nsegata-lefse를 사용하여 수행하였으며, 임계값은 LDA ≥3.0 및 P < 0.05로 설정하였습니다.
등록된 참가자 중 10명의 환자를 무작위로 선정하여 IL-1α, IL-6, IL-17, TGF-β 및 TLR2를 포함한 염증 매개체에 대한 면역조직화학 분석을 수행하였다. 피부 생검 샘플(2 mm)은 요오드포르(iodophor)로 소독한 후 기선(0주 차)과 3주 차에 활동성 여드름 병변에서 수집하였다. 샘플은 4% 파라포름알데히드(paraformaldehyde)로 고정하고 파라핀에 매립한 후 4‑μm 두께로 절편화하였다. 파라핀 매립 절편(4 μm)을 탈파라핀화하고 재수화하였다. 항원 회복은 EDTA 버퍼(pH 9.0)를 사용하여 마이크로파 가열 방식으로 수행하였다. 내인성 과산화효소는 3% H2O2로 억제하였으며, 이후 비특이적 항체 결합을 줄이기 위해 3% 염소성 혈청(goat serum)으로 처리하였다. 그 후 절편을 4 °C에서 밤새 일차 항체와 함께 배양하였다: IL-1α (1:400), IL-6 (1:400), IL-17A (1:400), TGF-β (1:400), TLR2 (1:300). 이어서 절편을 Polymer-HRP 이차 항체 키트로 실온에서 30분간 배양한 후, DAB 발색제 검출 및 헤마톡실린 대조 염색을 수행하였다. 음성 대조군은 일차 항체 대신 PBS와 함께 배양하였다. 이미지는 디지털 스캐너를 사용하여 400× 배율로 획득하였다. 절편당 5개의 영역을 무작위로 선정하였으며, 두 명의 눈가림 처리된 피부과 전문의가 점수를 산정하였다.
주관적 평가
연구자 종합 평가
기초 단계와 12주 차에, 치료 할당 내용을 모르는 피부과 전문의가 Global Acne Grading System (GAGS)을 사용하여 얼굴 전체의 여드름 중증도를 평가하였다.
환자 자가 평가
치료 및 추적 관찰 기간이 종료된 후, 참가자들은 4단계 자가 평가 척도를 사용하여 인지된 임상적 개선 정도를 평가하였습니다. 점수는 다음과 같이 정의되었습니다: 0, 개선 없음 또는 악화; 1, 경미한 개선; 2, 보통의 개선; 3, 뚜렷한 개선.
눈가림 결과 평가
평가 편향을 줄이기 위해, 치료 배정 내용을 알지 못하는 피부과 전문의가 기저선 사진을 사용하여 임상적 개선 정도를 독립적으로 평가하였습니다.
안전성 모니터링
치료 안전성을 평가하기 위해 모든 추적 관찰 방문 시마다 이상 반응을 평가하였습니다.
통계 분석
연구 시작 전, 베이스라인부터 12주 차까지의 전체 얼굴 GAGS 점수 변화를 검출하기 위해 표본 크기를 추정하였다. 표본 크기 계산은 복합 산성 필링의 예비 연구를 바탕으로 하였으며, 표준화된 피험자 내 효과 크기를 0.60, 양측 유의 수준을 0.05, 검정력을 80%로 가정했을 때 24명의 평가 가능한 피험자가 필요했다. 20%의 중도 탈락률을 고려하여 목표 등록 인원은 30명으로 설정하였다.
통계 분석은 통계 소프트웨어 및 그래프 작성 소프트웨어를 사용하여 수행되었습니다 (참조 재료 목록). 연속형 데이터는 그 분포에 따라 기술되었습니다. 대략적인 정규분포를 보이는 변수는 평균으로 보고하였습니다. ± 표준편차로 나타냈으며, 정규분포를 따르지 않는 변수는 적절하게 사분위간 범위 또는 범위를 동반한 중앙값으로 요약하였다. 범주형 데이터는 빈도와 백분율로 표시하였다.
데이터 분포는 Shapiro-Wilk 검정을 사용하여 평가하였으며, 히스토그램과 Q-Q 플롯의 시각적 검토를 통해 이를 뒷받침하였습니다. 표본 크기가 작고 여러 변수가 정규 분포를 따르지 않았기 때문에, 주요 분석은 비모수 검정을 사용하여 수행하였습니다. GAGS 점수, 적색 영역 및 포르피린 수치를 포함한 주요 결과는 paired Wilcoxon signed-rank test를 사용하여 분석하였습니다.
주요 임상 결과에 대해 효과 크기와 95% 신뢰 구간을 산출하였습니다. 쌍을 이룬 비모수 비교의 경우, 일치 쌍 순위-이분 상관계수를 효과 크기 척도로 사용하였습니다. 연속형 또는 서열형 변수 간의 관계를 평가하기 위해 Spearman 순위 상관분석을 적용하였습니다. 통계 검정은 양측 검정으로 수행하였으며, P < 0.05일 때 결과가 유의미한 것으로 간주하였습니다.
동일한 참여자로부터 수집한 처치군 샘플을 대상으로 마이크로바이옴 분석을 수행하였습니다. 알파 다양성은 Shannon 및 Simpson 지수를 사용하여 평가하였습니다. 기저 상태와 처치 후 샘플 간의 알파 다양성 지수 변화는 paired Wilcoxon signed-rank test를 사용하여 분석하였습니다.
박테리아 군집 구성은 문(phylum), 과(family), 속(genus) 수준의 상대적 풍부도로 요약되었습니다. 풍부도나 유병률이 낮은 분류군은 기술적 분석을 위해 유지되었습니다. 기저치와 치료 후 샘플 간 특정 분류군의 상대적 풍부도 차이는 쌍체 비모수 검정을 사용하여 평가되었습니다. 마이크로바이옴 분석의 경우 분류군 수준의 검정은 탐색적으로 수행되었으며, 보정되지 않은 P 값이 보고되었습니다. 모든 검정은 양측 검정으로 수행되었으며, 유의 수준 임계값은 P < 0.05로 설정되었습니다.