이 콘텐츠를 보려면 JoVE 구독이 필요합니다. 로그인하거나 오늘 무료 평가판을 시작하세요.

연구 논문

전신성 홍반성 루푸스의 대식세포: 연구 동향과 신흥 개척지에 대한 서지계량학 분석

99 조회수

⸱

DOI:

10.3791/72238

⸱

2026년 8월 11일

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Qihuang School, Beijing University of Chinese Medicine, 2Department of Rheumatology and Immunology, First Teaching Hospital of Tianjin University of Traditional Chinese Medicine, 3College of Basic Medical Sciences, Zhejiang Chinese Medical University, 4Department of Rheumatology and Immunology, Ruijin Hospital, 5Nephrology Center, First Affiliated Hospital of Xinjiang Medical University, 6Division of Nephrology, Tongji Hospital, 7Tongji Medical College and State Key Laboratory for Diagnosis and Treatment of Severe Zoonotic Infectious Diseases, Huazhong University of Science and Technology, 8Shenzhen Institute of Translational Medicine, Shenzhen Second People's Hospital, 9Department of Traditional Chinese Medicine Rheumatology, China-Japan Friendship Hospital, 10Department of Nephrology, China-Japan Friendship Hospital

이 논문에서

요약

본 연구는 서지 측정 분석을 통해 2016년부터 2025년까지 전신 루푸스 홍반증과 대식세포 분야의 연구 지형과 발전하는 최전선을 체계적으로 규정합니다.

초록

이 연구는 Web of Science Core Collection을 기반으로 한 서지계량 방법을 사용하여 2016년부터 2025년까지 발표된 전신성 홍반성 루푸스(SLE)에서 대식세포의 역할에 관한 1,197편의 논문을 체계적으로 분석하였습니다. 분석은 출판 동향, 협력 네트워크, 연구 주제, 지식 기반을 검토하여 현재 연구 환경, 핵심 연구 세력, 그리고 이 분야의 최전선적 진화를 명확히 했습니다. 논문 수는 2022년에 154편으로 정점을 찍었으며, 연간 인용 건수는 2016년 184회에서 2025년 9,030회로 증가하여 활발하고 영향력 있는 연구를 보여주었습니다. 중국은 출판 수(379편)에서 1위를 차지했으며, 미국은 총 인용(18,838회)과 국제 협력 중심성에서 선두를 차지했습니다. 상하이 교통대학교와 카롤린스카 연구소가 각각 23편의 논문을 발표하며 가장 생산적인 기관이었다. 면역학의 최전선(임팩트 팩터 = 5.9; 저널 인용 보고서 쿼타일 1)는 가장 생산적인 저널이었습니다. 키워드 타임라인 클러스터링은 호중구 세포외 함정, 수지상 세포, 톨 유사 수용체 등 선천 면역의 핵심 구성 요소와 T 세포, B 세포, 형상세포 수지상 세포 등 13개의 주요 연구 주제를 확인했습니다. 이 주제에는 대식세포 분극, NOD 유사 수용체 계열인 피린 도메인 3(NLRP3) 인접종, 세포자멸사 세포 제거와 같은 핵심 기전뿐만 아니라 루푸스 신염, 대식세포 활성화 증후군, 류마티스 관절염과 같은 임상 핫스팟도 포함되었습니다. 연구 핫스팟의 진화는 세포 세포 및 면역 복합체 제거라는 초기 기본 메커니즘에서 사이토카인, 선천면역, 적응 면역의 정교한 조절로, 그리고 최종적으로 신호전달 경로 표적 치료, 임상 관리, 다기관 검증 연구로 발전한 과정을 반영하며, '경로'와 '다기관 진단'이 현재 연구 최전선으로 두드러지고 있습니다.

서론

전신성 홍반성 루푸스(SLE)는 자가항체 생성, 면역 복합체 침착, 다기관 염증을 특징으로 하는 만성 자가면역 질환입니다 1,2. 최근 수십 년간 진단 접근법과 치료 전략의 상당한 발전에도 불구하고, SLE는 신장, 혈액계, 중추신경계에 심각한 손상을 계속 일으키고 있습니다 3,4,5. 글루코코르티코이드, 면역억제제, 생물학적 제제 등 기존 치료법들은 일반적으로 치료 효능이 제한적이며 다양한 정도로 부작용과 연관되어 있습니다 6,7,8. 키메라 항원 수용체 T(CAR-T) 세포 치료와 같은 세포공학 전략은 자가반응성 B 세포의 깊은 고갈을 통해 SLE에서 지속 가능한 약물 없는 관해를 달성할 잠재력을 보여주었습니다 9,10,11. 선천 면역계의 핵심 구성원으로서, 대식세포는 면역 복합체 제거, 세포자멸사 세포의 발화세포 형성, 사이토카인 분비에 중요한 역할을 하여 면역 항상성을 유지합니다11,12. 누적된 증거는 SLE 발병 기전과 여러 형태의 대식세포 기능 장애가 관련이 있음을 시사합니다 13,14,15. 루푸스 신염에서는 M1 대식세포가 조직 손상을 촉진하는 반면, M2 대식세포는 조직 손상을 촉진하는 반면, M2 대식세포는 조직 복구와 섬유화 재형성에 기여하는 루푸스 신염에서 일관되게 관찰되었습니다16,17. 호중구 세포외 트랩(NET)의 과도한 형성과 인터페론 신호 전달 경로의 비정상적인 활성화는 대식세포 매개 염증 반응을 더욱 증폭시킵니다 18,19,20. 그 결과, 대식세포 기능 장애는 SLE 발병 기전의 중심 결절일 뿐만 아니라 유망한치료 표적으로 부상했습니다.

지난 10년간 대식세포가 SLE에서 역할을 다룬 논문이 급격히 증가했으며, 이는 발세포작용, NETosis, 대식세포 분극, 대사 재프로그래밍, 신호 전달 경로의 표적 조절 등 다양한 연구 방향을 아우르는 연구입니다22,23,24,25,26. 그러나 급증하는 문헌은 단편화된 연구 주제, 핵심 연구 세력의 불분명한 식별, 최전선 진화의 모호한 지도 등 도전 과제도 함께 제시하며, 현재 연구 환경에 대한 체계적인 개요가 시급히 필요함을 부각시킨다. Bibliometrics는 수학적·통계적 방법을 활용하여 지식 운반자의 분포 특성과 진화 패턴을 정량적으로 분석하며, 출판 동향, 협력 네트워크, 연구 핫스팟, 그리고 최전선의 역학에 대한 객관적인 데이터를 제공합니다 27,28,29,30,31. 서지계량학 접근법은 SLE 면역치료, 바이오마커 발견 및 관련 분야에서 지식 매핑에 성공적으로 적용되었으나, SLE의 대식세포에 초점을 맞춘 서지계량 매핑은 여전히 제한적입니다 32,33,34. 이 연구는 2016년부터 2025년까지 Web of Science의 핵심 컬렉션 데이터베이스에서 관련 문헌을 수집하고, CiteSpace, VOSviewer, Scimago Graphica를 활용해 다차원 시각적 분석을 수행합니다. 출판 결과물, 국가/지역 및 기관 협력, 저자 및 학술지 네트워크, 키워드 공현 및 타임라인 군집화, 인용 폭발 탐지를 분석함으로써, 본 연구는 SLE 대식세포 분야의 현재 연구 상태, 핵심 연구 세력, 주제 진화, 그리고 신흥 개척지를 체계적으로 밝혀내어 향후 연구를 위한 객관적인 지식 지도와 방향성 참조를 제공하는 것을 목표로 합니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

프로토콜

이 연구는 Web of Science Core Collection 데이터베이스의 공개 참고 기록에서 모든 데이터를 얻었으므로 윤리적 승인이나 사전 동의가 필요하지 않았습니다. 이 연구에는 인간 참가자, 동물, 임상 샘플이 포함되지 않았습니다.

데이터 수집 및 검색 전략

데이터는 데이터 일관성과 재현성을 보장하기 위해 Web of Science Core Collection(WOSCC) 데이터베이스에서 단 한 날짜(2026년 4월 27일)에 검색되었습니다. 검색 쿼리는 다음과 같은 구조의 불리언 연산자를 사용했습니다: TS=("루푸스 홍반, 전신" 또는 "전신성 루푸스 에리테마토스" 또는 "루푸스 홍반 전포성") 그리고 TS=("대식세포*"). 문서 유형은 논문과 리뷰 논문으로 제한되었습니다. 출판 기간은 2016년 1월 1일부터 2025년 12월 31일까지였습니다. 총 1,197편의 유효 논문이 이후 서지 분석을 위해 보관되었습니다.

분석 도구

여러 소프트웨어 패키지를 통합한 분석 파이프라인이 사용되었습니다. CiteSpace(연구 자원 식별자 [RRID]: SCR_020932)는 키워드 타임라인 클러스터링과 인용 버스트 분석에 사용되었습니다.35. VOSviewer(RRID: SCR_016598)는 국가/지역, 기관, 저자에 대한 공동 저자 네트워크를 구축하고 시각화하는 데 사용되었으며, 키워드 공동 출현 지도36을 생성하는 데 사용되었습니다. Scimago Graphica는 VOSviewer37에서 내보내는 네트워크 파일을 기반으로 국가/지역 협업 네트워크 시각화를 생성하는 데 사용되었습니다. 기본 통계 계산과 도표 작성은 WPS Excel과 GraphPad Prism(RRID: SCR_002798)을 사용해 수행되었습니다. 전체 서지 측정 워크플로우는 그림 1에 나와 있습니다.

CiteSpace 및 VOSviewer에서의 매개변수 구성

CiteSpace에서는 2016년부터 2025년까지 1년 간격으로 시간 단편이 설정되었습니다. g-인덱스(k = 10)가 노드 선택 임계값으로 선택되었습니다. Pathfinder 가지치기 알고리즘은 두 번 적용되었습니다: 첫 번째는 각 개별 시간 슬라이스 네트워크를 단순화하기 위해서였고, 두 번째는 시각적 복잡성을 줄이기 위해 모든 슬라이스를 병합한 후에 적용되었습니다. VOSviewer에서는 네트워크 레이아웃 최적화를 위해 LinLog/모듈러리티 알고리즘이 선택되었습니다. 노드 크기는 특정 분석에 따라 문서 수나 인용 빈도에 따라 가중치가 부여되었습니다. Scimago Graphica를 이용한 국가/지역 협업 매핑의 경우, 노드 직경은 출판물 양을 반영하고, 링크 두께는 국가 간 협업 강도를 나타냈습니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

결과

연간 출판물

2016년부터 2025년 사이에 SLE의 대식세포에 관한 총 1,197편의 논문이 출판되었습니다. 연간 발행 부수는 변동이 있었으며, 2016년 112부에서 시작해 2022년 154부로 정점을 찍었고, 2025년에는 133부로 약간 감소했습니다. 같은 기간 동안 연간 인용 건수는 184건에서 9,030건으로 증가했으며, 소폭 변동이 있어 이 분야의 학문적 영향력이 점진적으로 증가하고 있음을 나타냅니다(그림 2).

국가/지역 기여 및 초국가적 협력 네트워크

총 76개 국가/지역이 SLE의 대식세포 연구에 기여했습니다. 발행 부수 순으로 순위가 매겨진 상위 10개 국가/지역이 제시되어 있습니다(

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

토론

이 서지계량학 연구는 지난 10년간(2016–2025) SLE 대식세포 연구 환경을 체계적으로 구분합니다. Web of Science Core 컬렉션의 1,197건의 출판물을 분석하여 전 세계적인 출판 동향, 협력 네트워크, 핵심 연구 세력, 주제별 진화, 지식 기반 역학을 파악하여, 이 빠르게 진화하는 분야의 향후 연구를 위한 객관적인 로드맵을 제공했습니다.

10년간의 연구 기간 동안, SLE 대식세포에 관한 연간 논문은 2016년 112건에서 2022년 154건으로 소폭 증가했다가 2025년 133건으로 소폭 감소했습니다. 더 중요한 것은, 연간 인용 횟수가 184건에서 9,030건으로 증가했는데, 이는 산출량 변동에도 불구하고 이 분야의 학문적 영향력이 크게 증가했음을 보여줍니다. 이러한 성장 경로는 대식세포가 SLE 발병 기전에서 중심 역할을 하는 점이 점점 더 인식되고 있으며, 이는 면역 복합체 제거와 발화세포...

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

공개 사항

저자들은 이해 상충을 선언할 필요가 없습니다. 이 원고 작성에는 데이터 분석, 도표 생성, 글쓰기 등 AI 보조 도구는 사용되지 않았습니다.

감사의 글

이 작업은 중일 우호병원의 우수 및 혁신 이니셔티브(보조금 번호) 지원의 하였습니다. ZRZC2025-KCC02), 국가 고수준 병원 임상 연구 연구비(보조금 번호 2025-NHLHCRF-JBGS-B-WZ-15), 중국 국가자연과학기금(보조금호 82400846), 중국과학기술부 주요 신약 혁신 프로젝트(보조금 번호 2017ZX09301001), 그리고 러시아 국립과학재단 외국인 우수 과학자 프로그램(보조금 번호 257431017).

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
CiteSpace (version 6.4.R1)Drexel University, Philadelphia, PA, USAN/AKeyword timeline clustering and citation burst analysis; RRID: SCR_020932; URL: https://citespace.podia.com
GraphPad Prism (version 10.1)Dotmatics, Boston, MA, USAN/AFigure preparation and data visualization; RRID: SCR_002798; URL: https://www.graphpad.com
Scimago Graphica (version 1.0.25)Scimago Lab, Madrid, SpainN/ACountry/region collaboration network visualization; RRID: not available; URL: https://www.graphica.app
VOSviewer (version 1.6.19)Centre for Science and Technology Studies, Leiden University, Leiden, NetherlandsN/ACoauthorship network construction and keyword co-occurrence mapping; RRID: SCR_016598; URL: https://www.vosviewer.com
Web of Science Core CollectionClarivate Analytics, Philadelphia, PA, USAN/ALiterature retrieval and data source; URL: https://clarivate.com/webofscience
WPS Excel (2023)Kingsoft, Zhuhai, ChinaN/ABasic statistical calculations and bar, line, and pie charts; RRID: not available; URL: https://www.wps.com

참고문헌

  1. Tanaka Y. Systemic lupus erythematosus. Best Pract Res Clin Rheumatol. 2022;36(4):101814.
  2. Cascarano G, et al. Systemic lupus erythematosus: one year in review 2026. Clin Exp Rheumatol. 2026;44(3):427-37.
  3. Mejia-Vilet JM, Turner-Stokes T, Houssiau F, Rovin BH. Kidney involvement in systemic lupus erythematosus: from the patient assessment to a tailored treatment. Best Pract Res Clin Rheumatol. 2023;37(4):101925.
  4. Zheng Z, et al. Immune thrombocytopenia in patients with systemic lupus erythematosus. Clin Rheumatol. 2025;44(1):97-104.
  5. Justiz-Vaillant AA, et al. Neuropsychiatric systemic lupus erythematosus: molecules involved in its immunopathogenesis, clinical features, and treatment. Molecules. 2024;29(4):747.
  6. Fanouriakis A, et al. EULAR recommendations for the management of systemic lupus erythematosus: 2023 update. Ann Rheum Dis. 2024;83(1):15-29.
  7. Su X, et al. Systemic lupus erythematosus: pathogenesis and targeted therapy. Mol Biomed. 2024;5(1):54.
  8. Morand EF, Fernandez-Ruiz R, Blazer A, Niewold TB. Advances in the management of systemic lupus erythematosus. BMJ. 2023;383:e073980.
  9. Mackensen A, et al. Anti-CD19 CAR T cell therapy for refractory systemic lupus erythematosus. Nat Med. 2022;28(10):2124-32.
  10. Wang Q, et al. In vivo CD19 CAR T-cell therapy for refractory systemic lupus erythematosus. N Engl J Med. 2025;393(15):1542-4.
  11. Wang W, et al. BCMA-CD19 compound CAR T cells for systemic lupus erythematosus: a phase 1 open-label clinical trial. Ann Rheum Dis. 2024;83(10):1304-14.
  12. Bao Y, Wang G, Li H. Approaches for studying human macrophages. Trends Immunol. 2024;45(4):237-47.
  13. Bernier ED, Bartnicki E, Khanna KM. Macrophages: sentinels, warriors, and healers. Hum Mol Genet. 2025;34(R1):R110-20.
  14. Zhang L, Sheng J, Liu T. Macrophages in lupus nephritis: insights into its pathogenesis and emerging treatments. Front Biosci (Landmark Ed). 2025;30(10):39365.
  15. Yang S, Zhao M, Jia S. Macrophage: key player in the pathogenesis of autoimmune diseases. Front Immunol. 2023;14:1080310.
  16. Chavanisakun C, Keawvichit R, Benjakul N. M1 and M2 macrophage polarization correlates with activity and chronicity indices in lupus nephritis. Life (Basel). 2025;15(1):55.
  17. Zhao L, et al. Regulation of macrophage polarization by targeted metabolic reprogramming for the treatment of lupus nephritis. Mol Med. 2024;30(1):96.
  18. Fresneda Alarcon M, McLaren Z, Wright HL. Neutrophils in the pathogenesis of rheumatoid arthritis and systemic lupus erythematosus: same foe different M.O. Front Immunol. 2021;12:649693.
  19. Postal M, et al. Type I interferon in the pathogenesis of systemic lupus erythematosus. Curr Opin Immunol. 2020;67:87-94.
  20. Lood C, et al. Neutrophil extracellular traps enriched in oxidized mitochondrial DNA are interferogenic and contribute to lupus-like disease. Nat Med. 2016;22(2):146-53.
  21. Cutolo M, et al. Dynamic macrophage phenotypes in autoimmune and inflammatory rheumatic diseases. Nat Rev Rheumatol. 2025;21(9):546-65.
  22. Wu R, et al. Polydopamine-encapsulated probiotics restore gut homeostasis and reinstate macrophage efferocytosis in systemic lupus erythematosus. Adv Sci (Weinh). 2026;13(24):e22637.
  23. Suvandjieva V, et al. Modelling the impact of NETosis during the initial stage of systemic lupus erythematosus. Bull Math Biol. 2024;86(6):66.
  24. Zhao CL, et al. Long non-coding RNA H19 contributes to M1 macrophage polarization mediated inflammation via miR-145-5p-PAI-1 axis in systemic lupus erythematosus. Autoimmunity. 2026;59(1):2649582.
  25. Su H, et al. Glucose metabolic reprogramming in systemic lupus erythematosus and lupus nephritis: theoretical foundations and therapeutic implications. Front Immunol. 2026;17:1799232.
  26. Lv Q, et al. ANGPTL3 in podocytes contributes to the pathogenesis of lupus nephritis by activating MSR1 in macrophages. Kidney Dis (Basel). 2026;12(1):288-301.
  27. Chen G, Yan Z, Wang Y, Tao Q. Rheumatoid arthritis and fibromyalgia syndrome: a bibliometric and bioinformatics perspective on comorbidity research. J Multidiscip Healthc. 2025;18:6811-27.
  28. Wang Y, et al. Research trends and hotspots in JAK inhibitors for ulcerative colitis: a bibliometric analysis from 2015 to 2024. J Multidiscip Healthc. 2025;18:6755-71.
  29. Ma L, Yao T, Jin D, Yan Z. Mapping the knowledge landscape of muscle disorders in rheumatoid arthritis: a bibliometric and bioinformatics study. J Vis Exp. 2026;(230):e70373.
  30. Jia MY, Bai XX. Mapping the knowledge landscape of atopic dermatitis and allergic rhinitis comorbidity: a bibliometrics study. J Vis Exp. 2026;(230):e70363.
  31. Zhao Y, Chen GY, Fang M. Research trends of rheumatoid arthritis and depression from 2019 to 2023: a bibliometric analysis. J Multidiscip Healthc. 2024;17:4465-74.
  32. Fu D, Cao Y, Ma T, Wu H. A bibliometric analysis on immunotherapy treatments for systemic lupus erythematosus: analysis of published evidence from 2014 to 2024. Clin Rheumatol. 2026;45(2):831-44.
  33. Yan YL, et al. Research trends of the aetiology of systemic lupus erythematosus in the past 10 years: a bibliometric analysis (2014-2023). Clin Exp Rheumatol. 2025;43(9):1650-60.
  34. Yu H, et al. Mapping theme evolution and identifying hotspots in biomarkers of systemic lupus erythematosus based on global research. Biomark Med. 2024;18(7):321-32.
  35. Synnestvedt MB, Chen C, Holmes JH. CiteSpace II: visualization and knowledge discovery in bibliographic databases. AMIA Annu Symp Proc. 2005;2005:724-8.
  36. van Eck NJ, Waltman L. Software survey: VOSviewer, a computer program for bibliometric mapping. Scientometrics. 2010;84(2):523-38.
  37. Wang YF, et al. Global trends and hotspots of artificial intelligence in pain management: a bibliometric analysis. Digit Health. 2026;12:20552076261460708.
  38. Anders HJ, et al. Lupus nephritis. Nat Rev Dis Primers. 2020;6(1):7.
  39. Jing C, et al. Macrophage metabolic reprogramming presents a therapeutic target in lupus nephritis. Proc Natl Acad Sci U S A. 2020;117(26):15160-71.
  40. Tsokos GC, et al. New insights into the immunopathogenesis of systemic lupus erythematosus. Nat Rev Rheumatol. 2016;12(12):716-30.
  41. Mohammadi S, Saghaeian-Jazi M, Sedighi S, Memarian A. Immunomodulation in systemic lupus erythematosus: induction of M2 population in monocyte-derived macrophages by pioglitazone. Lupus. 2017;26(12):1318-27.
  42. Funes SC, et al. Implications of macrophage polarization in autoimmunity. Immunology. 2018;154(2):186-95.
  43. Carter SJ, Tattersall RS, Ramanan AV. Macrophage activation syndrome in adults: recent advances in pathophysiology, diagnosis and treatment. Rheumatology (Oxford). 2019;58(1):5-17.
  44. da Cruz HLA, et al. Differential expression of the inflammasome complex genes in systemic lupus erythematosus. Immunogenetics. 2020;72(4):217-24.
  45. Caricchio R, Gallucci S. Systemic lupus erythematosus and cytokine storm. Adv Exp Med Biol. 2024;1448:355-64.
  46. Ahamada MM, Jia Y, Wu X. Macrophage polarization and plasticity in systemic lupus erythematosus. Front Immunol. 2021;12:734008.
  47. Sadeghi M, et al. Neutrophil extracellular trap: a key player in the pathogenesis of autoimmune diseases. Int Immunopharmacol. 2023;116:109843.
  48. Wang X, et al. Recent advances of type I interferon on the regulation of immune cells and the treatment of systemic lupus erythematosus. J Inflamm Res. 2025;18:4533-49.
  49. Hanata N, Kaplan MJ. The role of neutrophil extracellular traps in inflammatory rheumatic diseases. Curr Opin Rheumatol. 2025;37(1):64-71.
  50. Lee S, et al. AIM2 forms a complex with pyrin and ZBP1 to drive PANoptosis and host defence. Nature. 2021;597(7876):415-9.
  51. Kraaij T, et al. A novel method for high-throughput detection and quantification of neutrophil extracellular traps reveals ROS-independent NET release with immune complexes. Autoimmun Rev. 2016;15(6):577-84.
  52. Li Q, Liu H, Yin G, Xie Q. Efferocytosis: current status and future prospects in the treatment of autoimmune diseases. Heliyon. 2024;10(7):e28399.
  53. Dehdashtian E, Caricchio R. From innate immunity to autoimmunity: neutrophils in systemic lupus erythematosus pathogenesis. Lupus. 2025;34(10):989-1002.
  54. Maria NI, Davidson A. Renal macrophages and dendritic cells in SLE nephritis. Curr Rheumatol Rep. 2017;19(12):81.
  55. Ma C, Xia Y, Yang Q, Zhao Y. The contribution of macrophages to systemic lupus erythematosus. Clin Immunol. 2019;207:1-9.
  56. Kahlenberg JM, Kaplan MJ. The inflammasome and lupus: another innate immune mechanism contributing to disease pathogenesis? Curr Opin Rheumatol. 2014;26(5):475-81.
  57. Khorasani S et al. Amelioration of regulatory T cells by Lactobacillus delbrueckii and Lactobacillus rhamnosus in pristane-induced lupus mice model. J Cell Physiol. 2019;234(6):9778-9786.
  58. Xu H, Yuan K, Chen G. Single-cell transcriptomics reveals CCL3+ classical monocyte subset linked to autoimmune pathogenesis. J Inflamm Res. 2025;18:16273-91.
  59. Wei S, et al. Integrative analysis of single-cell and bulk transcriptome data reveal the significant role of macrophages in lupus nephritis. Arthritis Res Ther. 2024;26(1):84.
  60. Nehar-Belaid D et al. Mapping systemic lupus erythematosus heterogeneity at the single-cell level. Nat Immunol. 2020;21(9):1094-1106.
  61. Liu SY, et al. Hydroxychloroquine enhances efferocytosis and modulates inflammation via MerTK/Gas6 signaling in a pristane-induced lupus mouse model. Front Immunol. 2025;16:1524315.
  62. Xing Y, et al. Single-cell spatial transcriptomics reveals pathogenic mechanism of renal fibrosis in imiquimod-induced lupus nephritis in mice. Biochem Biophys Rep. 2025;43:102087.
  63. Zhao J, et al. Cxcl9high macrophages recruit circulating Cxcr3+ plasmablasts into kidneys to promote pathogenesis of lupus nephritis mice. Commun Biol. 2025;8(1):1446.
  64. Zhou H, et al. Machine learning combined multi-omics analysis to explore key oxidative stress features in systemic lupus erythematosus. Front Immunol. 2025;16:1567466.
  65. Wang K, Li X, Tang Y, Zhao L. Exploring key genes of glutathione metabolism in systemic lupus erythematosus based on Mendelian randomisation, single-cell RNA sequencing and multiple machine learning approaches. IET Syst Biol. 2025;19(1):e70021.
  66. Lee M, et al. Inhibition of salt-inducible kinases resolves autoimmune arthritis by promoting macrophage efferocytosis. Signal Transduct Target Ther. 2025;10(1):293.
  67. Hoover PJ, et al. A human-mouse atlas of intrarenal myeloid cells identifies conserved disease-associated macrophages in lupus nephritis. J Exp Med. 2025;222(11):e20241873.
  68. Zhu H, et al. The expression and clinical significance of different forms of Mer receptor tyrosine kinase in systemic lupus erythematosus. J Immunol Res. 2014;2014:431896.
  69. Yin Y, et al. Amino acid metabolism modulates macrophage polarization: implications for autoimmune-related diseases. Front Immunol. 2026;17:1736082.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

재인쇄 및 허가

태그

대식세포 분극화선천 면역적응 면역NLRP3 인플라마솜세포사멸 세포 제거루푸스 신염톨 유사 수용체대식세포 활성화 증후군
문의하기
도서관에 추천하기

개인정보 처리방침

이용 약관

정책

저작권 © 2026 MyJoVE Corporation. 모든 권리 보유.