공중 드롭 방법을 사용하여 마우스 배아 줄기 (MES) 세포의 체외 차별에

1. 전에 37 ° C, 5 % CO ₂ 조직 문화의 인큐베이터 하룻밤 하루에 0.1 % 젤라틴 용액과 부화 플레이트를 사용하여 T75 휴대용 술병을 아교 질로 만들다.
2. , 품어에서 MES의 세포를 꺼내서 매체를 대기음, PBS와 ES 세포 문화를 린스, 요리의 코트 바닥 (2 ml/100mm 판)에 0.05 %의 트립신 솔루션을 추가합니다.
3. 세포가 접시를 sloughing 때까지, 37 ° C 약 1 분 동안 품어.
   
4. 부드럽게 (pipet 위, 아래) 4-6 번 연결 파스퇴르 피펫으로 ES 세포를 분산하기 위해 trypsinized 세포, 씹다. prewarmed을 (37 ° C) MES 매체가 포함된 15 ML 원뿔 원심 튜브에 분산 ES 세포를 전송합니다.
   
5. 원심 분리하여 세포를 수집합니다. 뜨는을 기음, MES 매체 10 ML을 추가하고 단일 세포 현탁액을 형성하고 아래로 피펫.
   
6. 37 0.1 % 젤라틴과 부화로 사전 코팅 T75 플라스크에 세포 현탁액을 전송 ° C 한 시간 만이라도 5 % CO ₂
   
   * 일시간 후, 섬유아 세포는 판에 부착된했지만 줄기 세포는 매체에 남아 있습니다. 줄기 세포를 수집하는 매체를 피펫.
   
   
7. 5 분 1,000 RPM에서 세포를 분사하고 MES 미디어를 대기음. 다음 MES 차별 매체의 또 다른 10 ML을 추가하고 세포의 벌금 정지있을 나타날 때까지 반복적인 pipetting하여 세포를 resuspend.
8. 멸균 분지 20ul (20ul/drop) 당 400-500 세포의 농도에 줄기 세포 현탁액을 희석하기 위해 hemocytometer 사용 차별화 매체와 세포를 계산합니다.
9. 뚜껑을 리프트, 조심스럽게 그것을 반전하고 PBS 10 ML 들어있는 접시 위에 놓으십시오. 멀티채널 피펫을 사용하여 조직 문화 요리의 뚜껑의 최대 - 설정되어 안쪽 표면에 20ul 방울의 행을 확인합니다.
10. 조심스럽게 2 일 인큐베이터에서 접시를 놓습니다. 이틀 뒤에는, 신중하게, 슬라이딩 커버를 뒤집 180 UL 신선한 차별 미디어를 기음과 96 잘 ultralow 부착 판의 우물에 몇 방울을 넣어. 다음 피펫과 전송 방울, 일대일하여 96 - 웰 플레이트까지 픽업 드롭합니다. 3 일간 그대로 인큐베이터에 접시를 놓습니다.
    
11. 문장의 각 우물의 젤라틴 0.1 %의 300ul와 48 - 잘 조직 배양 플레이트. 젤라틴을 추가 후, 37시 야간 번호판을 품어 ° C 하루 앞서 전 EBS를 전송합니다.
    
12. 다음날 48 아니라 판에서 젤라틴을 대기음. 다음 각 잘하는 차별화 매체 300 UL를 추가합니다. 48 잘 젤라틴 - 코팅 접시 하나별로 하나에 96 잘 접시에서 EBS를 전송합니다. 다음날 매체를 변경 후 세포를 유지하기 위해 매일 매체를 변경합니다.
    
13. 자연 cardiaomyocyte 수축이 7 일 이내 분명해야합니다.

The disadvantages of hanging drop method are as follows: the liquid volume of a drop is limited to less than 50ul due to maintaining hanging drops on the lid by surface tension, and it’s impossible to change the medium for hanging drops. Observation of forming EBs in drops directly with microscopy is also very difficult during cultivation. Further more , the hanging drop method consists of two steps, therefore, a series of step of the hanging drop method may be troublesome.