마취 유도 및 유지

수술 및 기타 잠재적으로 고통스러운 절차에 대한 마취제의 적절한 선택은 수의사에 의해 결정되어야합니다. 이것은 절차의 범위 및 기간, 종 및 긴장, 나이 및 동물의 생리 상태를 포함하여 수많은 양상을 기반으로합니다.

마취제는 흡입제 또는 주사용으로 사용할 수 있습니다. 외과 마취는 주사용 및 흡입 마취제의 조합을 사용하여 달성 될 수있다. ²

1. 흡입제 마취 유도

흡입제 마취는 이소플루란, 세보플루란 및 데플루란을 포함하며, 이소플루란이 가장 일반적으로 사용되고 있습니다. 이 마취제는 마취의 깊이를 제어하는 것이 더 쉽기 때문에 더 자주 사용됩니다. 흡입 마취를 이용한 마취의 유도는 정밀 기화기에 장착된 벨 항아리 또는 유도 챔버로 수행될 수 있다.

1. 벨 항아리
   1. 장비: 세라믹 또는 플라스틱 천공 플랫폼, 면공, 액체 마취제 (이소플루란, 세보플루란 또는 데플루란)가있는 벨 항아리 또는 탈수 항아리 및 야외로 배출된 연기 후드.
   2. 준비
      1. 마취 가스에 대한 인력의 노출을 피하기 위해 벤치가 아닌 후드 아래에 벨 항아리를 사용합니다.
      2. 벨 항아리를 하단에 있는 플랫폼으로 조립하여 항아리 바닥과 플랫폼 사이의 공간을 만듭니다. 이것은 동물이 액체 마취제와 접촉하는 것을 방지하기 위하여 필요합니다.
      3. 니트릴 장갑이나 기타 불침투성 장갑을 착용하고 마취로 면공을 포화시합니다.
      4. 면공을 플랫폼 아래에 벨 항아리에 놓습니다.
      5. 마취 증기의 탈출을 방지하기 위해 종 항아리에 뚜껑을 고정합니다.
   3. 유도
      1. 뚜껑을 한쪽으로 밀어 서 종 항아리에 동물을 배치합니다.
      2. 동물이 항아리에 들어가면 마취의 깊이를 결정하기 위해 그 활동과 호흡을 관찰해야합니다.
      3. 동물은 마취에 노출되어 효과가 있습니다.
      4. 동물이 완전히 마취되면 뚜껑을 한쪽으로 밀어 손을 도입 할 수있는 충분한 공간을 남깁니다. 마취된 동물의 꼬리, 스크러프 또는 몸을 잡고 벨 항아리에서 부드럽게 제거합니다.
2. 정밀 기화기
   정밀 기화기는 유도 챔버 또는 페이스 마스크와 함께 사용할 수 있습니다. 마취 기계는 각 절차 전에 검사해야 합니다. 레벨이 낮은 경우 적절한 마취제를 추가해야 합니다. 폐가스가 완전히 제거되었는지 확인하기 위해 청소 시스템을 점검해야 합니다. 수동 폐기물 가스 마취 시스템의 경우 청소 캐니스터를 계량하여 여전히 효과적인지 확인해야 합니다. 일반적으로, 시작 무게 위의 50 그램의 무게의 증가는 캐니스터가 소비되는 지점입니다.
   1. 설비
      1. 유도 챔버, 정밀 기화기, 폐 가스 청소 장치(수동 또는 활성) 및 액체 마취제(이소플루란, 세보플루란 또는 데플루란)은 사용 중인 기화기의 종류에 의해 결정됨).
   2. 준비
      1. 입력이 기화기로부터이고 출력이 폐가스 청소 시스템에 있도록 유도 챔버를 조립한다.
   3. 유도
      1. 동물을 유도실에 넣습니다. 일부 챔버는 슬라이딩 뚜껑을 가지고 있으며, 다른 챔버는 래치 힌지 뚜껑이 있습니다.
      2. 동물이 챔버에 들어가면 산소 흐름이 시작되고 정밀 기화기는 이소플루란을 위한 3-4유도 수준에서 켜지립니다. 마취 전달 수준이 낮아지면 유도 시간이 길어집니다.
      3. 동물은 마취에 노출되어 효과가 있습니다.
      4. 동물이 완전히 마취되면 마취 가스에 대한 인력 노출을 방지하기 위해 동물을 제거하기 전에 산소로 챔버를 플러시하십시오. 유도 챔버가 연기 후드에 놓이면, 산소로 세척하는 것은 개구부 전에 챔버에서 마취제를 제거할 필요가 없습니다.
      5. 마취된 동물의 꼬리, 스크러프 또는 몸을 잡고 챔버에서 부드럽게 제거합니다.
3. 안면 마스크
   1. 장비에는 설치류 코 콘 또는 마스크, 정밀 기화기, 폐 가스 청소 장치(수동 또는 활성) 및 액체 마취제(이소플루란, 세보플루란 또는 데플루란)이 포함되어 있습니다.
   2. 준비
      1. 코 콘또는 마스크를 조립하여 입력이 기화기로부터 이고 출력은 폐가스 청소 시스템에 있다.
      2. 설치류 마취 기계는 종종 흡입 챔버에서 설치류 코 콘 또는 마스크로 마취 증기 전달을 전환하는 토글이 있습니다. 코 콘 마취 전달을 위해 이것이 제대로 설정되어 있는지 확인하십시오.
   3. 유도
      1. 마취 가스는 불쾌한 냄새가 나기 때문에 많은 동물들이 유도를 위해 가면을 쓴 것에 반대할 것입니다. 바람직한 방법은 인덕션 박스를 사용하고 코 콘을 사용하여 유지보수하는 것입니다. 동물의 코나 얼굴이 마스크에 단단히 고정되면 산소 흐름이 시작되고 정밀 기화기가 이소플루란의 유도 수준 인유도 수준 인5에서 켜지립니다. 마취 성 전달 수준이 낮아지면 유도 시간이 길어지고 동물에 의한 어려움이 증가합니다.
      2. 유도 중에 너무 단단히 파악하면 질식될 수 있으므로 동물이 호흡을 모니터링하는 것이 필수적입니다.
      3. 동물이 이완되기 시작하자마자 코나 얼굴을 코 콘이나 마스크로 조정할 수 있으며, 마취 전달은 완전한 이완이 이루어지면 이소플루란의 유지 보수 수준인 1.5-0.5로 감소된다.

2. 주사용 마취제를 사용하여 마취를 유도합니다.

주사용 마취제는 주로 케타민과 진정제 또는 근육 이완제의 혼합물입니다.

일반적인 조합은: 1) 설치류 칵테일, 케타민으로 구성 (100 mg/ml), 자일라진 (20 mg/ml), 아세 프로 마진 (10 mg/ml), 멸균 식염수 (0.9% NaCl); 2) 케타민/자일라진 2:1, 케타민 (100 mg/ml), 자일라진 (20 mg/ml), 멸균 식염수 (0.9% NaCl); 및 3) 케타민/자일라진 마우스 믹스는 케타민(100 mg/ml), 자일라진(20 mg/ml), 멸균 식염수(0.9% NaCl)로 구성된다. 케타민/자일라진 콤보를 사용할 때, 증폭은 케타민으로만 이루어져야 하며, 자일라진은 이 약품의 반감기로 인해 이루어져야 합니다.

진정제 및 /또는 근육 이완제와 케타민의 조합은 개별 복용량을 그릴 수있는 주식 솔루션으로 준비해야합니다. 에이전트는 동물에게 적절한 복용량을 투여할 수 있도록 멸균 식염수로 정확하게 측정하고 희석되어야 합니다. 케타민은 규제 물질이기 때문에 병에서 사용되는 양은 "통제 된 약물 로그"에 주목해야하며 혼합물에는 개별 "통제 물질 로그"가 있어야합니다. 혼합물을 준비할 때, 케타민을 병에 천천히 추가하면 힘으로 주입하면 거품을 냅니다. 멸균 스토퍼 20ml 병은 혼합물에 사용됩니다. 병은 화합물의 이름으로 제대로 표시 해야 합니다., 혼합 된 날짜, 만료 날짜, 케타민 로트 번호 (그것은 통제 물질으로), 그리고 제안 된 복용량. 만료 날짜는 곧 만료될 성분의 날짜에 따라 결정될 수 있습니다(시설/상태의 규칙/지침에 따라 다름). 케타민의 정확한 기록 보관을 위해 빈 병과 채워진 병을 모두 계량해야합니다. 그런 다음, 가중치는 혼합물의 라벨과 각 병에 대해 준비되는 개별 조절 물질 로그 시트에 기록되어야 합니다. 케타민 혼합물을 온도 조절이 어두운 부위에 저장하여 효능을 유지합니다.

1. 설치류 칵테일 준비
   1. 마취 용액의 준비를위한 장비에는 3 cc 주사기를 포함, a 12 cc 주사기, 22 g x 1" 바늘, 1.8 cc 의 케타민 주사용 100 mg/ml, 1.8 cc 의 자일라진 주사용 20 mg/ml, 0.6 cc of acepromazine 주사용 10 mg/ml, 15.8 cc의 멸균 식염수 주입, 및 aa테스.
   2. 멸균 식염수 15.8 cc를 끌어서 병에 주입하십시오. 12cc 주사기와 3cc 주사기를 사용하고 정확한 측정을 위해 기포를 제거합니다.
   3. 케타민, 자일라진, 아세프로마진을 병에 넣습니다.
2. 설치류 칵테일 유도
   1. 일반적으로 설치류 칵테일은 마우스 마취에 사용됩니다. 성인 쥐의 설치류 칵테일에 대한 반응의 변화로 인해 5 주 미만의 쥐에서 가장 잘 사용됩니다. 설치류 칵테일 흡입 마취와 함께 사용할 수 있습니다., 특히 쥐에서.
   2. 설치류 칵테일은 일반적으로 다음과 같은 계산을 사용하여 무게에 따라 마우스에게 주어집니다 : (BW x 10) - 50 = 마이크로 리터 설치류 칵테일이 주어집니다. 이것은 긴장, 나이 및 건강 상태에 따라 변화할 것입니다.
   3. 이 솔루션은 단지 간복구로만 제공됩니다. 근육질로 주입하는 경우 조직에 심각한 반응이 있을 수 있습니다.
3. 케타민/자일라진 제제 2:1
   1. 마취 용액의 제조 장비에는 3 cc 주사기, 22 g x 1" 바늘, 케타민 주사용 10cc 100 mg/ml, 자일라진 주사용 20 mg/ml 5cc, 멸균 스토퍼 20ml 병 및 마취 라벨이 포함됩니다.
   2. 병에 케타민과 자일라진을 넣습니다.
4. 유도
   1. 케타민/자일라진 2:1은 쥐마취에 사용되며 흡입 마취와 함께 사용될 수 있다.
   2. 케타민/자일라진 2:1은 일반적으로 0.3cc의 투여량에서 시작하여 후속 마취 이벤트와 함께 0.02cc 증가한다. 이것은 긴장, 나이 및 건강 상태에 따라 변화할 것입니다.
   3. 케타민/자일라진 2:1은 근육질로만 제공됩니다.
5. 케타민/자일라진 마우스 믹스 준비
   1. 마취 용액의 제조에 필요한 케타민 /자일라진 마우스 믹스 장비에는 3 cc 주사기를 포함, 22 g x 1" 바늘, 3.6 cc 의 케타민 주사용 100 mg/ml, 0.4 cc 의 자일라진 주사용 20 mg/ml, 16 cc 멸균 식염수 (0.9% NaCl), 멸균 스토퍼 20 ml 병, 마취 라벨.
   2. 병에 케타민과 자일라진을 추가하여 자일라진에 9:1 케타민용 액수를 만듭니다.
   3. 병에 식염수를 추가하여 케타민 /자일라진 9:1을 식염수에 1:4 혼합물로 만들어 보세요.
6. 케타민/자일라진 마우스 믹스 유도
   1. 케타민/자일라진 마우스 믹스는 흡입 마취와 함께 사용될 수도 있다.
   2. 케타민/자일라진 마우스 믹스는 일반적으로 중량에 따라 마우스에 주어지며, 다음과 같은 계산을 사용하여 다음과 같은 계산을 사용하여: (BW x 10) - 50 = 마이크로리터 케타민/자일라진 마우스 믹스가 주어질 것이다. 이것은 긴장, 나이 및 건강 상태에 따라 변화할 것입니다.
   3. 케타민/자일라진 마우스 믹스는 인트라테톤으로 주어질 수 있다.

3. 마취 평가

마취 깊이는 다양한 자극에 대한 반응을 테스트하여 평가될 수 있다. 자발적인 운동은 신체의 물리적 자극에서 유래할 것입니다. 마취 깊이 평가에 활용된 물리적 방법 목록은 표 1을 참조하십시오.

메서드	절차	응답
발가락 핀치	다리를 확장하고 발가락 사이에 웨빙을 분리합니다. 이 영역은 손톱이나 외상성 집게를 사용하여 단단히 꼬집습니다.	긍정적 인 반사는 다리의 후퇴 또는 발의 철회에 의해 표시됩니다. 동물은 다리 또는 신체 운동, 발성, 또는 호흡의 현저한 증가가있는 경우 마취의 수술 평면에 없습니다.
꼬리 핀치	꼬리 끝은 손가락이나 외상성 집게를 사용하여 꼬집습니다.	긍정적 인 반응은 꼬리의 경련이나 움직임에 의해 표시됩니다. 동물은 꼬리의 움직임이있는 경우 마취의 수술 평면에 있지 않습니다, 발성, 또는 호흡의 현저한 증가.
귀 핀치	손가락이나 외상성 집게를 사용하여 피나 끝을 꼬집습니다.	긍정적인 반응이 수염의 머리 나 움직임을 앞으로 흔들고 있다. 머리, 수염, 발성 또는 호흡의 현저한 증가가있는 경우, 동물은 마취의 수술 비행기에 있지 않습니다.
팔페브랄 반사	손가락 끝을 사용하여 눈의 내측 캔투스 (내부 모서리)를 터치합니다.	양수 반사는 눈꺼풀을 만지는 반응으로 깜박임으로 표시됩니다. 눈꺼풀, 수염, 또는 호흡의 현저한 증가의 움직임이있는 경우, 동물은 마취의 수술 비행기에 없습니다.
각막 반사	면팁 어플리케이터를 사용하여 각막(안구)을 부드럽게 만드십시오.	긍정적인 응답은 깜박임으로 표시됩니다. 눈꺼풀, 수염, 또는 호흡의 현저한 증가의 움직임이있는 경우, 동물은 외과 마취의 충분히 깊은 평면에 있지 않습니다.

표 1. 마취 깊이를 평가하기 위한 물리적 자극 방법. ²

심박수, 호흡속도, 혈압, 점막 색상 및 모세관 리필 시간과 같은 생리적 지표도 사용되어야 합니다. 일반적인 관측은 동물의 호흡속도의 변화를 감지하고, 심박수 또는 심도 평가를 위한 혈압을 활용하는 데 유용할 수 있지만, 특수 장비가 요구된다. 심전도를 사용할 수 있는 경우 심장 박동의 속도와 강도를 측정할 수 있습니다. 혈압을 측정하기 위해 꼬리 또는 몸 전체에 장착되는 다양한 장치가 있습니다. 표 1에 설명된 물리적 자극은 이러한 세 매개 변수 모두의 증가를 야기한다.

점막, 눈, 귀, 입, 코, 항문 및 더 적은 범위까지의 발과 꼬리의 색상이 변화를 관찰합니다. 지역은 적당한 호흡 및 심장 기능을 나타내는 분홍색이어야 합니다. 동물이 단계 IV 마취로 이동하면 호흡이 중단되어 청색 또는 회색 으로 점막과 주변 피부로 표시됩니다.

모세관 리필 시간은 영역에 압력의 적용에 의해 희게 된 후 외부 모세관 침대로 돌아가는 색상에 걸리는 시간의 양으로 정의된다. 어플리케이터 스틱 또는 손가락은 마취 동물의 잇몸, 피나 또는 네일 침대에 누른다. 희게 된 영역이 분홍색색으로 돌아가는 데 걸리는 초 수는 1-2초 이상이어야 합니다. 연장된 리필 시간은 동물이 너무 깊이 마취되고 죽음에 가까워질 수 있다는 것을 나타내는 심장 박동 또는 심장 수축의 강도감소를 시사합니다.

여러 가지 매개 변수를 사용하여 마취 깊이를 평가하는 것이 중요합니다. 반복 된 핀치에 대해 동일한 발가락이나 귀를 사용하면 영역을 둔감하게하고 응답이 억압되고 마취 깊이에 대한 정확한 평가를 제공하지 않습니다. 발가락 및 귀 핀치 평가에 대 한 대체 사이트를 사용 합니다. 마취 깊이는 수술 내내 매 10-30 분마다 재평가되어야합니다. ²

연구 결과는 마취한 동물에 있는 심폐 변경이 있다는 것을 보여주었습니다. 주사용 약물로 마취하는 동안, 동물은 안정적인 호흡 속도를 경험한다. 그러나, 그들은 심장 출력에 가변성을 보여줍니다. 주사용 마취제에 대한 반응은 다른 균주 마다 크게 변화하는 것으로 보고되어 있으므로 복용량을 표준화하기가 어렵습니다. ⁷ 흡입제 에이전트는 호흡 속도를 감소하는 경향이 있지만 심혈관 시스템에 미치는 영향이 적습니다. 흡입제 마취의 투여가 절차 기간 내내 쉽게 조절되기 때문에 종종 바람직한 방법입니다.