Name: Myogenic 엔지니어링된 조직 구조의 제작 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-05-01T00:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 43 s
Description: 학습하세요 골격근 성근아세포를 이용한 교원 기반 심장 조직 공학 구조물 제작 방법을. 이 기술은 심장 전도 장애 치료를 위한 생체 내 조직 복구에 활용됩니다.

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, 쓰래서 연구 기금에서 새 연구원 수상하고, 어린이 병원 보스턴에서 심장 전도 기금에 기부,이 작품은 국립 보건원에서 연구 기금 (HL088206 HL068915)에 의해 지원됩니다.

1 부 : 주조 금형을 구축 조립 <ol><li> 실리콘 튜브 (VWR)를 이등분하고 3cm 길이 조각으로 그것을 잘라 면도날을 사용합니다. </li><li> 튜브의 각 끝 안쪽에 이식 등급 RTV 실리콘 접착제 (Rhodia)의 한 방울을 넣으십시오. </li><li> 빨리 실리콘 접착제 드롭에 폴리에스터 메쉬의 작은 조각 (1cm X 1cm) (맥매스터 - 카)를 장소와 튜브의 끝 부분으로 맞춥니다. 이것은 건설 첨부 파일 약간 제기하고 평평한 표면을 제공합니다. 다른 쪽 끝을 위해 반복합니다. </li><li> 금형 3 일 동안 실온에서 건조하도록 허용합니다. 이들은 본질적으로 일회용 있으므로 한 번에 20-30 금형을 만들기 위해 도움이 그것입니다. </li><li> 접착제가 완전히 건조되면 그들이 필요 때까지, 70 % 에탄올로 가득 비커 이러한 금형을 저장합니다. 이 단계는 금형을 소독 도움이 될 것입니다 그리고 완성된 제품은 그림 1에 표시됩니다. </li></ol> 2 부 : myoblast 세포 격리를위한 준비 <ol><li> 250 1 MG Laminin (시그마)를 희석 ML 0.22 μm의 필터 - 멸균 인산 버퍼 호수 (PBS)가 1퍼센트 페니실린 / 스트렙토 마이신 (Invitrogen)과 1 %의 Fungizone (Invitrogen)를 포함. </li><li> 4 단계 1.1에서 희석 Laminin 솔루션의 ML과 기본 골격 myoblasts을 도금 전 최소한 4 시간 동안 37 º C에서 부화와 코트 150mm 조직 문화 플레이트 (BD 팔콘). </li><li> (20 % FBS (아틀란타 체액), 5 NG / L 기본 Fibroblast의 성장 인자 (Promega), 1 % 페니실린 / 스트렙토 마이신 (Invitrogen), 그리고 1 %의 Fungizone와 햄의 F - 10 영양소 혼합 (시그마)를 혼합하여 myoblast 미디어 만들기 Invitrogen). </li><li> 100 ML 2.4 U / ML Dispase - 2 (로체)에서 ~ 295 U / MG Collagenase 2 (워싱턴)의 1g을 해소하여 골격 근육 소화 솔루션을 준비합니다. 0.037 g CaCl 2를 추가하고 잘 섞는다. -20 ° C.에 10 ML 주사기 및 매장 aliquots에 장착되어 0.2 μm의 필터 디스크를 사용하여 소화 버퍼를 검사 필터 ° C myoblast 미디어와 함께 37 조직 소화에 필요한 금액을 넣으십시오. </li></ol> 파트 3 : 골격근에서 Myoblast 절연 <ol><li> 포셉 작은 가위를 사용하여, 척수를 따라 다시 아래로 깔끔히 피부와 근막의 레이어를 다시 필링 후 근육을 절개하여 죽은 신생아 루이스 쥐에서 paraspinal 근육을 제거합니다. </li><li> 조직 문화 후드에서 얼음 1X 행크스 밸런스드 소금 솔루션의 40 ML (HBSS) (Invitrogen)로 가득 50 ML 원뿔 튜브 (BD 팔콘)에 excised 근육을 놓으십시오. 근육 스트립​​은 튜브의 바닥에 정착 조심스럽게 문화 후드 (베이커)에 살균 파스퇴르 피펫과 진공 흡입하여 액체와 혈액 잔존물의 대부분을 제거할 수 있습니다. </li><li> 150mm 문화 요리에 수확 근육 조각을 붓고 및 흡입과 가능한 한 남은 액체의 많은를 제거합니다. 2 개의 싱글 - 양날 면도날을 사용하면 두꺼운 붙여 조직을 말하다. 붙여넣기 사전 예열 소화 솔루션을 붓고와 10 ML의 피펫을 사용하여 새로운 50 ML 튜브에 혼합을 전송하기만하면됩니다. 효소 소화하는 동안 조직은 때때로 피펫 - 에이드 (드루먼드) 무선에 설치되어 10 ML의 피펫과 (버블링 제외) triturated입니다. 다시 말하지만, 조직이 여분의 액체를 해결하고 제거할 수 있습니다. </li><li> 락을 플랫폼에서 튜브를 삽입하고 약 30 분 37 º C에서 소화. </li><li> 근육이 액화되면 600 XG (베크맨 GP) 10 분 실온에서 70 μm의 셀 스트레이너 (BD 팔콘)와 원심 분리기를 통해 솔루션을 전달합니다. 파스퇴르 피펫과 흡입으로 많은 액체가 가능한 제거하고 따뜻한 myoblast 매체 10 ML와 펠렛을 resuspend. </li><li> 사전 플레이트 15 분 uncoated 150mm 조직 문화 판에있는 세포는 섬유아 세포를 제거하는 데 도움. </li><li> 아직 laminin - 코팅 cultureware에 연결된 모든 1-2 쥐 새끼 한 접시가 너무 희석하지 않은 세포를 전송합니다. 37 ° C와 5 % CO 2에서 humidified 보육 세트에서 접시를 놓습니다. </li></ol> 4 부 : 주조 설계 조직 구조 (5 ML) <ol><li> 1-2일 후, 인큐베이터에서 150mm의 myoblast 조직 문화 접시 10을 제거 37 ° C 1X PBS로 두 번 그들을 씻어하고 각 플레이트에 따뜻한 0.05 % 트립신 - EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) 4 ML를 추가합니다. 5 분 인큐베이터에 번호판을 반환합니다. </li><li> 문화 후드에있는 접시에서 분리 myoblasts을 수확하고 50 ML 튜브에 액체 (BD 팔콘)를 수집합니다. 접시를 모두 씻어 원심 튜브에 세포와 이것을 결합하는 myoblast 매체 10 ML을 사용합니다. 펠렛은 600 XG (베크맨 GP) 10 분 상온에서 세포 단계 3.5에서 설명한대로 초과하는 액체를 제거합니다. </li><li> 얼음 myoblast 매체와 장소의 1.6 ML에 myoblast 세포를 Resuspend. </li><li> 포셉를 사용하면, 신중하게 단계를 1.5에서 4 구조 금형을 제거하고 1X PBS로 두 번 그들을 씻어. 6 잘 조직 세제곱의 각 금형을 삽입하기 전에 파스퇴르 피펫과 함께 PBS의 모든 흔적에서 진공 흡입lture 플레이트 (BD 팔콘). </li><li> 얼음 구축 준비에 필요한 다른 시약을 (10X 햄의 F10, 항생제, 1을 입력 콜라겐 [3.9 MG / ML] [6]과 Matrigel ™) 모아서 37 º C.에 myoblast 미디어를 유지 500 μL 10X 햄의 F10, 100 μL 페니실린 / 스트렙토 마이신, 100 μL Fungizone, 1.6 ML의 콜라겐 및 15 ML 원뿔 관에 750 μL Matrigel ™를. 결합 10 초가 얼음위에 10로 설정 미니 Vortexer (VWR)과 장소를 사용하기위한 솔루션을 섞는다. </li><li> 다음 단계를 3.5에서 혼합 80 NaHCO 3 μL와 단계 3.3 myoblast 서스펜션을 추가합니다. 10 초에 대한 소용돌이 전체 혼합물과 거품의 솔루션을 취소하고 몇 분 얼음 양동이에 튜브를 반환합니다. </li><li> 그것이 10 ML의 피펫을 사용하여 응고하기 시작하기 전에 금형에 혼합물을 조심스럽게을 캐스팅. 각각의 금형은 점성 액체의 약 1 ML를 개최합니다. 이 절차를 수행하는 동안 공기 방울을 도입 피하기 위해보십시오. </li><li> 인큐베이터에 캐스트 구조가 들어있는 접시를 주의깊게 전송합니다. ~ 30 분 후 인큐베이터에서 확정 구성을 제거하고 조심스럽게 조직 구성 충당하기 위해 각 잘하는 myoblast 매체를 추가합니다. 인큐베이터 (그림 2)에 접시를 반환합니다. </li></ol> 제 5 부 : 대표 결과 이 프로토콜이 제대로 실행되면 myoblast 함유 조직 구조는 생체내 주입에 대한 준비가되어 (몰드에서 제거되면 IE) 또는 2 일 후 체외 분석에서 추가하십시오. <img src="/files/ftp_upload/1137/Figure1.jpg" alt="" /> 완료 금형 구조 그림 1. 예 (단계 1.5 참조). <img src="/files/ftp_upload/1137/Figure2.jpg" alt="" width="400" height="321" /> 그림 2. 확정 myoblast 함유 조직 [1]을 구축. <img src="/files/ftp_upload/1137/Figure3.jpg" alt="" /> 그림 3. myoblast 함유 조직의 H &amp; E 스테인드 섹션 구성. &quot;A&quot;는 세로 부분을 묘사하고 &quot;B&quot;는 단면을 보여줍니다.

<ol><li>Choi, Y. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+conduction+through+engineered+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Cardiac conduction through engineered tissue.</a> Am J Pathol. 169 (1), 72-85 (2006).</li>
<li>Rando, T. A., Blau, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primary+mouse+myoblast+purification%2C+characterization%2C+and+transplantation+for+cell-mediated+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Primary mouse myoblast purification, characterization, and transplantation for cell-mediated gene therapy.</a> J Cell Biol. 125 (6), 1275-1287 (1994).</li>
<li>Blau, H. M., Webster, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterization+of+human+muscle+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterization of human muscle cells.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 78 (9), 5623-5627 (1981).</li>
<li>Powell, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+human+bioartificial+muscles+expressing+a+foreign+recombinant+protein+for+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered human bioartificial muscles expressing a foreign recombinant protein for gene therapy.</a> Hum Gene Ther. 10 (4), 565-577 (1999).</li>
<li>Vandenburgh, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+skeletal+muscle+organoids+for+reversible+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered skeletal muscle organoids for reversible gene therapy.</a> Hum Gene Ther. 7 (17), 2195-2200 (1996).</li>
<li>Gallop, P. M., Seifter, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+and+Properties+of+Soluble+Collagens%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Enzymology%22%5BJournal%5D)">Preparation and Properties of Soluble Collagens.</a> Methods in Enzymology. 6, 635-641 (1963).</li>
</ol>

동물 실험은 어린이 병원 보스톤에있는 기관 애니멀 케어 및 사용위원회에 의해 명시된 지침과 규정에 따라 수행되었다.

조직 구조가 캐스팅 될있는 금형은 어떤 모양과 크기로 만들 수 있지만, 첨부 파일이 최소한 두 지점이있을 필요합니다. 그렇지 않으면, 매트릭스 및 세포는 구형 구조를 형성하고 세포는 죽지. 현재 프로토콜에서, 우리는이 목적을 위해 폴리에스터 메쉬의 사용을 설명, 아직 우리는 성공적으로 스테인리스 메쉬를 사용했습니다. 물론, 큰 금형보다 세포와 다른 재료의 더 큰 볼륨을 요구​​할 것입니다. 금형을 만들 때 사용하는 실리콘 접착제의 양을 최소화하고이 튜브의 맨 끝에 위치하고 있는지 확인하는 것이 중요합니다. 접착제 근처 myoblasts도 치료의 몇 일 후에, 실용적 수없는 경향이 있기 때문입니다. 또한, 그것은 오염 섬유아 세포 빠르게 증식하고 결국 문화의 myogenic 구성 요소를 압도하므로 조직의 구조를 준비하기 전에 단 하루 두 판 myoblasts를 신중하게합니다. 서로 접촉 세포 융합 및 myotubes로 차별하기 시작되므로 마찬가지로, myoblasts는 밀도가 도금해서는 안됩니다. 조직 구조의 제조에 관해서는, ...

<table><tbody><tr><td>실리콘 튜브</td><td>VWR international</td><td>60985-724</td><td></td></tr><tr><td>실리콘 접착제</td><td>Rhodia Silicones</td><td>MED ADH 4300 RTV</td><td></td></tr><tr><td>폴리에스테르 메쉬</td><td>McMaster-Carr</td><td>93185T17</td><td></td></tr><tr><td>Laminin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L2020</td><td></td></tr><tr><td>Nutrient Mixture F-10 HAM</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>N6908</td><td></td></tr><tr><td>소 태아 혈청</td><td>Atlanta Biologicals</td><td>S11550</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin/Streptomycin</td><td>Invitrogen</td><td>15140</td><td></td></tr><tr><td>Fungizone</td><td>Invitrogen</td><td>15290-018</td><td></td></tr><tr><td>Dispase-2</td><td>Roche Group</td><td>10295825001</td><td></td></tr><tr><td>Collagenase 2</td><td>Worthington Biochemical</td><td>46H8863</td><td></td></tr><tr><td>염기성 섬유아세포 성장인자</td><td>Promega Corp.</td><td>G5071</td><td></td></tr><tr><td>150 mm 조직 배양 접시</td><td>BD Biosciences</td><td>353025</td><td></td></tr><tr><td>0.05% (1X) Trypsin-EDTA</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>25300</td><td></td></tr><tr><td>1X Hanks Balanced Salt Solution</td><td>Invitrogen</td><td>14170-112</td><td></td></tr><tr><td>7.5% NaHCO&lt;sub&gt;3&lt;/sub&gt;</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>25080-094</td><td></td></tr><tr><td>70 &amp;mu;m 세포 스트레이너</td><td>BD Biosciences</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>6-웰 플레이트</td><td>BD Biosciences</td><td>353046</td><td></td></tr><tr><td>50 mL 원추형 튜브</td><td>BD Biosciences</td><td>352098</td><td></td></tr><tr><td>15 mL 원추형 튜브</td><td>BD Biosciences</td><td>352099</td><td></td></tr><tr><td>0.2 &amp;mu;m 필터</td><td>Nalge Nunc international</td><td>194-2520</td><td></td></tr></tbody></table>

myogenic 엔지니어링된 조직 구조의 제작

Fabrication of Myogenic Engineered Tissue Constructs

전자 맥박 조정기가있다는 사실에도 불구하고 생명을 구하는 의료 기기, 소아 환자에서 장기적인 성능이 아이의 작은 크기와 자신의 피할 수없는 성장에 의해 부과된 제한 문제 때문에 수 있습니다. 따라서 심장 리듬 장애와 소아 환자를 위해 특별히 설계된 혁신적인 치료법에 대한 진정한 필요가있다. 우리는 그 제안이 들어있는 콜라겐 기반 매트릭스로 구성된 전도성 생물 학적 대체 세포가 더 나은 성장에 적응 반복 수술의 필요성을 절감하며 크게 다음과 환자의 삶의 질을 향상시킬 수 autologously - 파생. 현재 연구에서 우리는 패션에 히드로겔 매트릭스 내에있는 마음의 상단과 하단 회의소 사이 전선관 될 것입니다 수술 - implantable 조직 구조를 기본 골격 myoblast 세포 문화를 통합을위한 절차를 설명합니다. 궁극적으로, 우리는 완전한 심장 블록과 어린이 방실 전기 전도를 복원할 수 있도록 설계 조직의이 유형을 사용하여 기대하고 있습니다. 그런 관점에서, 우리는 신생아 루이스 쥐 및 플레이트 그 규칙을 수정한 버전을 사용 laminin - 코팅 조직 문화 요리에의 골격 근육에서 myoblasts을 분리<sup&gt; [2, 3]</sup&gt;. 1~2일 후, 교양 세포는 항생제로 1을 입력 콜라겐, Matrigel ™, NaHCO를 수집하고 혼합<sub&gt; 3</sub&gt;. 그 결과 거의 모든 모양과 크기의 몰드로 주조 수있는 점성, 균일한 솔루션입니다<sup&gt; [1, 4, 5]</sup&gt;. 우리의 조직​​ 구조에 대한, 우리는 표준 절차를 사용하여 태아의 양고기 피부에서 분리된 제 1 형 콜라겐을 채용<sup&gt; [6]</sup&gt;. 일단 조직이 37 확정했다 ° 구조가 변할 때까지 C는, 문화, 미디어 조심스럽게 판에 추가됩니다. 설계 조직은 다음이 준비되는 시점에서 2 일간 더 탈수를 통해 더욱 응축 수 있습니다<em&gt; 체외에서</em&gt; 평가 또는 외과 - 이식.

여기, 우리는 콜라겐 기반 조직 골격 myoblasts를 포함하는 구성의 제조를 보여줍니다. 이러한 3 - D 설계 구조는 조직을 바꾸거나 수리하는 데 사용할 수 있습니다<em&gt; 생체내에</em&gt;. 우리 목적을 위해서도, 우리는 완전한 심장 블록의 수리를 위해 방실 전선관 이러한 디자인이<sup&gt; [1]</sup&gt;.

Myogenic 엔지니어링된 조직 구조의 제작

전자 페이스메이커가 생명을 구하는 의료 기기임에도 불구하고, 소아 환자에서의 장기적인 성능은 ...로 인해 문제가 될 수 있습니다.

이 절차는 신생아 Lewis Wraths로부터 골격근 조직을 채취하는 것으로 시작합니다. 이 조직으로부터 근아세포를 분리합니다. 이 근아세포를 조직 배양 접시에서 2일 동안 배양한 후, 회수하여 콜라겐 기반의 조직 구성 혼합물에 섞습니다.이 혼합물을 배양액에 잠긴 몰드에 조심스럽게 피펫팅하고 37 °C에서 배양합니다. 안녕하세요, 저는 보스턴 어린이 병원 및 하버드 의과대학 마취과학과의 Douglas Cowan 연구실 소속 Christina Pesach입니다. 오늘은 근원성 공학 조직을 제작하는 절차를 보여드리겠습니다.본 절차를 통해 심장에 삽입할 공학적 조직을 제작합니다. 우리의 목표는 완전 심장 차단증이 있는 어린이의 심박 조율기 삽입술을 대체하는 치료법으로서 심장의 상심실과 하심실 사이에 전기적 연결을 생성하는 것입니다. 이제 시작하겠습니다.본 구조물에서 주형(casting mold)은 수술로 이식 가능한 콜라겐 기반 조직 구조물의 형태를 잡는 데 사용됩니다. 이 비디오에서는 골격근모세포(skeletal myoblasts)를 포함하는 공학적 조직 구조물을 제작하는 과정이 설명되어 있습니다. 또한 본 프로토콜로 제작된 세포화된 조직의 심장 내 이식 과정이 시연됩니다.조직 몰드는 조직이 설계된 대상 심장의 생리적 요구 사항을 충족하기 위해 거의 모든 형태나 크기로 제작될 수 있습니다. 본 시연에서는 성체 쥐 심장의 AV groove에 맞게 절단할 수 있는 조직 조각을 형성하는 몰드를 제작합니다. 면도날을 사용하여 실리콘 튜브를 3 cm 길이의 조각으로 자른 다음, 각 조각을 길이 방향으로 이등분하여 몰드 제작을 시작하십시오.폴리에스테르 메쉬를 작게 자릅니다. 그다음 튜브의 맨 끝 안쪽에 임플란트 등급 RTV 실리콘 접착제를 한 방울 도포합니다. 접착제는 배양 세포에 어느 정도 독성이 있으므로 도포량을 최소한으로 유지하십시오.폴리에스테르 메쉬 조각을 실리콘 접착제 방울 위에 빠르게 올린 후 튜브의 끝부분과 정렬합니다. 이렇게 하면 구성물을 부착할 수 있도록 약간 솟아오른 평평한 표면이 형성됩니다. 튜브의 반대쪽 끝부분에 대해서도 동일한 과정을 반복합니다.금형을 상온에서 3일 동안 건조하십시오. 금형은 기본적으로 일회용이므로 한 번에 20~30개를 제작하는 것이 효율적입니다. 접착제가 완전히 마르면 금형을 멸균하기 위해 필요한 시점까지 70% ethanol이 채워진 용기에 보관하십시오.다음으로, 세포 분리를 준비

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decellularized 조직에서 주사용 매트릭스 젤을 준비하고 밀고 myocardium에 주입을위한...

심근 조직 공학을위한 생물학 유래 주사용 재료의 제조

설계 근육 조직은 질병 모델로 또한 고기에 대한 대체 소스로, 재생 의료에 큰 가능성이 있습니다. 여기 마우스 myoblast의 전구 세포, 및 전기 펄스에 의해 자극에서이 경우에, 근육 구조의 기술에 대해 설명합니다.

전기 자극의 손쥐 Myoblast의 전구 세포 및 응용에서 공학 골격근 조직도

정렬 심근 조직의 생성 임상 유용한 목적에 줄기 세포 생물학의 최근 발전을 조절하기위한 중요한 요구 사항입니다. 여기에 우리는 세포의 형태와 기능의 정확한 제어를위한 microcontact 인쇄 방법을 설명합니다. 심장 progenitors을 파생 배아 줄기 세포의 높은 정화 인구 사용하여, 우리는 비 등방성 기능 심근 조직을 생성합니다.

Microcontact 인쇄를 통해 정렬 기능 심근 조직의 생성

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엔지니어링 섬유소 기반 조직의 면역 조직 및 제약 조건의 적용에서 생성하고 세포와 콜라겐 (재) 조직을 유도하는 스트레인

복잡한 조직의 고도로 조직화된 구조를 만들려면 여러 재료 및 세포 유형을 통합된 복합체로 조립해야 합니다.  이 조합 설계는 강력한 섬유질 기질 염기를 포함하는 두 가지 별개의 생물학적으로 파생된 물질과 새로운 혈관 형성을 향상시키기 위한 내피 세포와 장기 특이적 층상 세포 시트를 통합합니다.

조직 공학 : 계층화 된 세포 시트의 전달을위한 다세포 3D 비계 건설

이 연구에서는 콜라겐, 평활근 세포 및 내피 세포를 직접 배양하여 살아있는 혈관 조직을 신속하게 만드는 기술을 제시합니다. 또한 엔지니어링된 혈관 조직의 기계적 특성화를 위한 새로운 프로토콜이 설명됩니다.

혈관 조직 재생을위한 엔지니어링 3D Cellularized 콜라겐 젤

현재까지 두꺼운 조직 결손은 일반적으로 자가 조직 플랩 또는 엔지니어링 조직을 적용하여 재구성됩니다. 이 프로토콜에서는 자가 피판을 대체하기 위해 자가 척추경을 지닌 혈관 조직 피판을 엔지니어링하는 새로운 방법을 제시합니다.

엔지니어링 혈관을 근육 플랩

이 프로토콜 사용자 정의 3D 인쇄 하는 플라스틱 금형을 사용 하 여 변수 크기의 자기 조립된 조직 반지 날조를 위한 플랫폼을 설명 합니다. PDMS 원판 3D 인쇄 형;에 치료 된다 다음 agarose 치료 PDMS 원판에 캐스팅 됩니다. 세포는 그들은 조직의 반지로 집계 결과 agarose 우물에 시드.

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확장 가능한 3D 엔지니어링 근육 조직의 전임상 약물 테스트

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