Name: 작은 동물의 근육 Engraftment의 역학에 의해 추적 VIVO에서 형광 이미징 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-09-21T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 15 s
Description: 배우세요 생체 내 형광 이미징을 이용한 마우스 근육 재생 모니터링 방법을. GFP 표지 근육 줄기세포 이식 후 역학을 추적하여 재생의학 연구에 활용할 수 있습니다.

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Z 양 및 Y 왕의 작품은 NIAMS / NIH에서 교부금 K02 AR051181, 근육질 영양 장애 협회와 Y 왕에 대한 하버드 줄기 세포 연구소에서 부여에 의해 가능하게되었다. Q Zeng 및 X 쑤의 작품은 브리검 앤드 위민스 병원에서 광학 이미징 연구실에게 수여 프로그램 부여에 의해 지원됩니다. 저자는 셀 작업에 기술적인 도움을 마취학과, BWH에서 웬 리우 감사하고 싶습니다.

셀 준비 <ol><li> 위성 세포 분리 <ol style="list-style-type:lower-alpha;"><li> 마취에서 GFP 형질 전환 마우스 (C57BL / 카 - βactin - EGFP)의 사지 근육이 제거됩니다. 작은 조각으로 절단 후, 위성 세포 37 1 시간 동안 2 % dispase의 collagenase 솔루션 다진 조직을 잠복기 ° C.를하여 효소 dissociated 아르 </li><li> 햄 F - 10 20 % FBS를 포함하는 성장 매체와 효소 소화를 중화, 파스퇴르 피펫과 반복 triturating하여 근육을 떼어 놓다. 세포는 세포 스트레이너 (ø70 - 100μm)를 통해 필터링 후 37에서 1 시간 동안 비 코팅 접시 ° C.에 비쳐지게 만들려합니다 </li><li> 부드럽게 콜라겐 코팅 접시에 뜨는와 플레이트를 제거합니다. myoblasts 정화 나중에이 단계 1 시간 반복합니다. (미리 판) </li><li> 시간에 미디어 및 플레이트 세포를 변경합니다. 최종 정화 myoblasts는 매체 햄 F - 10, 20 % FBS, 100 U / ML 페니실린, 37 ° C 5 % CO2와 95 %의 공기를 100 μg / ML 스트렙토 마이신 (의 성장 매체)이있는에 양식 있습니다. </li></ol> </li><li> 문화 10 NG / ML의 기본 FGF의 추가와 함께 성장 매체의 기본 myoblasts을 확장합니다. </li><li> 생체내 실험의 모든을 위해, 우리는 TA의 근육 당 5x10 5 세포를 주입. </li><li> myoblasts을 수확하면, 우리는 0.25 % 트립신 / EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산)를 사용하여 세포를 분리하여 두 번 PBS로 그들을 씻으십시오. 휴대폰 번호는 hemocytometer로 집계되고 세포는 5x10 4 셀 / μl의 농도에 HBSS에 resuspended 있습니다. HBSS에 집중 세포는 얼음에 게재 및 수집 후 1 시간 이내에 주입하고 있습니다. </li></ol> VIVO 이미징에 <ol><li> 4~6주의 나이에 남자 MDX 마우스는 잭슨 실험실에서 구입 동물 주거 시설에서 유지 관리됩니다. </li><li> 환경에 숙박 시설 중 하나에 대한 주 후 생쥐는 교양 세포와 이식 준비하고 있습니다. </li><li> 세포 이식하기 전에 마우스 케타민을 (100 MG / kg)과 Xylazine (10 MG / kg)의 혼합물의 intraperitoneal (IP) 주입에 의해 anesthetized 있습니다. 다음 TA 근육 주변 머리가 다리에 나이르를 적용하고 증류수로 깨끗이 닦아 30 초 동안 대기에 의해 제거됩니다. </li><li> 마우스가 마취하에 여전히 있지만, 10μl HBSS에 5x10 5 전지 천천히 30 게이지 바늘을 사용하여 3 점 각 TA 근육에 주입하고 있습니다. </li><li> 4 단계 후, 마우스는 정기적으로 생체내 형광 이미징에 의해 몇 군데하실 수 있습니다. 높은 민감한 전하 결합 카메라가 장착된 형광 이미징 역 NightOwl LB981 (베르톨드 기술 주식 회사)는, 생쥐의 방해 다리의 이미지를 얻는 데 사용됩니다. </li><li> 생체내 이미징에의 날, 우리는 먼저 TA 근육에 머리 regrowth를 확인하십시오. 필요한 경우, 우리는 케타민을과 Xylazine의 혼합으로 마우스를 anesthetizing 후, 위에 설명된대로 머리를 제거하는 나이르를 다시 적용됩니다. </li><li> 마우스가 마취하는 동안, 우리는 검은 비 형광 종이 (스트라 스에서 검은 Artagain 용지)의 작품에 자주 발생하는 위치에 마우스를 놓으십시오. 충분히 더 나은 이미지를위한 TA 근육을 노출하기 위해, 우리는 종이로 뒷다리 발톱 테이프. </li><li> 우리는 이미징 챔버와 위치 카메라의 시야의 중심에 몇 군데로 뒷다리 다리에 마우스를 놓으십시오. 우리는 처음 5 초 노출 시간과 다리의 전통 회색 스케일 사진 사진을 찍을 수있는 방사 필터를 전환합니다. 필요한 경우 카메라의 마우스와 초점의 위치를​​ 재조정. 노출 시간 (1250 MS), 표본의 높이 (0.9 ㎝) 등 이미징 매개 변수는 실험 과정에서 지속적으로 보관됩니다. </li><li> 그러면 녹색 형광 단백질 파장에 해당하는 방출 필터에 스위치. 우리는 1250 MS와 1 비닝 번호 노출 시간 형광 이미지를 가져가라. 이미징 후, 마우스 회복을 기다릴 수있는 케이지에 이미징 챔버에서 제거됩니다. </li><li> 분석을 위해, 우리는 초당 광자의 관점에서 그들의 강도를 측정하는 형광 신호를 통해 관심 영역 (ROI)을 그립니다. 우리는 또한 다른 부량 값으로 픽셀의 측면에서 투자 수익 (ROI)의 크기를 측정합니다. 세로 데이터를 취득하기 위해 필요한 경우 이미징 실험은 몇 개월 동안 더 자주 매주 반복하거나 수 있습니다. </li></ol> 실험의 마지막에는, 마우스 euthanized되고 TA 근육은 조직학 분석에 수확합니다.

<ol><li>Ballou, B., Ernst, L. A., Waggoner, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescence+imaging+of+tumors+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Med+Chem%22%5BJournal%5D)">Fluorescence imaging of tumors in vivo.</a> Curr Med Chem. 12, 795-805 (2005).</li>
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</ol>

우리는이 연구에서 호스트 골격근에 형광 표시 이식 세포를 추적하기위한 안정적이고 안정적​​인 이미지 플랫폼을 설정할 수 있습니다. GFP 유전자 변형 마우스 GFP - 라벨 myoblasts은 향후 세포 치료를위한 후보 것입 성인 줄기 세포의 유형을 나타냅니다. 휴대폰 번호, 휴대 사출, 명확한 배경 이미지 위치 및 기계 매개 변수를 포함하여 지속적인 조작은 높은 품질의 이미지를 확보와 특히 정량 분석​​을 위해 중요합니다. 형광 이미징은 사용하는 비침습, 쉬운으로 생물 의학 연구에 많은 응용 프로그램을 가지고 있으며, 높은 처리량을하고 있습니다. 또한 형광 이미징의 산란, 감쇠 및 흡수에 의한하지만 광자 건의에 따라 양적 측정을 제공할 수 불빛이 기법의 단점이다 조직에 큰 거리를 침투할 수 없습니다. 노력은 빛의 침투 깊이를 높이기 위해 빨간색이나 가까운 적외선 기자를 사용하여 진행되었습니다. 형광 이미징의 또 다른 장점은 특정 형광 기자가 인간의 사용 승인을하는 경우가 클리닉에 번역되어있다. 그것이 고가의 하드웨어 및 이미징 에이전트를 필요로하지 않으므로 MRI, CT 및 PET과 비교, 형광 이미징 높은 유연성을했다. 한 예로 클리닉에서 사용되었습니다 형광 기반의 내시경 및 마이크로 내시경이다. 다른 modalities와 형광 이미징을 결합함으로써, 우리는 기본적인 생물 학적 과정에 대한 해부학 및 기능 정보를 모두 얻을 수있는 기능을 달성하기 위해 기대하고 있습니다.

<table><tbody><tr><td>NightOwl LB981</td><td>Berthold Technologies</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

작은 동물의 근육 engraftment의 역학에 의해 추적 vivo에서 형광 이미징

Tracking Dynamics of Muscle Engraftment in Small Animals by In Vivo Fluorescent Imaging

근육 dystrophies는 수축성 근육 세포의 점진적 상실의 특징 퇴행성 근육 질환의 그룹입니다. 현재 사용 가능한 치료 치료가 없습니다. 줄기 세포 생물학의 최근 발전은 이러한 질병을 치료하는 효과적인 세포 기반 치료법​​의 개발을위한 새로운 희망을 생성합니다. dystrophic 동물 모델의 근육에 형광 단백질로 표시 줄기 세포의 다양한 종류의 이식이 분야에 광범위하게 사용되고 있습니다. 이식 세포의 운명을 추적하는 기능이있는 비침습 기술은 길이 방향보다 정확하고 효율적으로 이식 세포 근육 engraftment을 평가하는 우리의 능력이 더 있습니다. 현재 연구에서 우리는 생체내 형광 이미징에서 이식 GFP (녹색 형광 단백질) 표시 마우스를 골격 근육에있는 세포를 추적 민감하고 안정적인 방법입니다 보여줍니다. 형광 단백질 여기에 필요한 외부 조명의 사용으로 인해 배경에 대한 우려에도 불구하고, 우리는 어느 누드 ​​마우스를 사용하거나 머리 제거 시약과 머리를 제거하여 더이 문제가 제거되고있는 것으로 나타났습니다. CCD 카메라를 사용하여 형광 신호는 GFP 형질 전환 마우스 또는 eGFP가 myoblast 문화를 transduced 중 하나에서 5 × 10 5 세포의 주입 후에 정강뼈 앞쪽에 (TA) 근육에서 발견하실 수 있습니다. 같은 더 많은 외면적인 근육에 대한 신근의 digitorum longus의 (편집 판단리스트), 적은 수의 세포의 주입은 감지 신호를 생성합니다. 신호 강도가 측정 및이자 (ROI)의 지역에서 초당 방출되는 광자의 개수로 계량하실 수 있습니다. 획득 이미지가 engrafted 지역 demarcating 명확한 경계를 표시 때문에, 투자 수익 (ROI)의 크기뿐만 아니라 측정할 수 있습니다. 다리가 지속적으로 때마다 위치하는 경우, 근육 및 투자 수익 (ROI)의 크기 초당 당 광자의 총수의 변경 engrafted 세포의 숫자의 변화와 engrafted 영역의 크기를 반영합니다. 따라서 시간이 지남에 따라 같은 근육의 변화가 같지는 있습니다. 생체내에서 형광 이미징 기술이 tumorogenic 세포의 성장을 추적하기 위해 주로 사용되고 있습니다, 우리의 연구는 이식 줄기 세포의 운명을 추적하기 위해 우리를있게 해주는 강력한 도구입니다 보여줍니다.

우리는 설명을<em&gt; 생체내에</em&gt; 형광 이미징 프로토콜은 건강하고 dystrophic 두 생쥐의 골격 근육에 이식 후 GFP - 라벨 myoblasts 의한 근육 재생을 모니터링합니다. 이 프로토콜은 세포의 다른 유형의 이식에 의해 다른 근육의 조건뿐만 아니라 근육 재생 연구를 적용할 수 있습니다.

작은 동물의 근육 Engraftment의 역학에 의해 추적 VIVO에서 형광 이미징

근이영양증은 수축성 근육 세포의 점진적인 손실을 특징으로 하는 일군의 퇴행성 근육 질환입니다. 현재까지는 ...

안녕하세요, 보스턴 버검 여성 병원 마취과(Department of Anesthesia)의 마주완입니다. 오늘은 생쥐의 근육 재생 과정을 모니터링하기 위해 생체 내(in vivo) 형광 영상을 획득하는 기술을 보여드리겠습니다. 저희 실험실에서는 이 절차를 통해 이식된 근육 줄기세포의 생착을 연구하고 있습니다.이제 시작하겠습니다. 이식을 위한 GFP 표지 세포를 GFP 형질전환 생쥐로부터 분리하여 배양합니다. 계속 진행하기 전, 발가락 꼬집기 테스트를 통해 생쥐가 완전히 마취되었는지 확인합니다. 그 후 뒷다리 근육을 제거하며, 무균 조건 하에서 해당 근육을 쇄상합니다.다진 조직을 2% collagenase 용액과 함께 37 °C에서 1시간 동안 배양하여 위성 세포를 분리합니다. 배양 후, Ham F 10과 20% FBS가 포함된 성장 배지를 첨가하여 효소 소화를 중단시킵니다. 그 다음 파스퇴르 피펫을 이용해 반복적으로 트리튜레이션(trituration)함으로써 근육을 분리합니다.다음으로 세포를 세포 스트레이너로 여과한 후 코팅되지 않은 배양 접시에 분주합니다. 해당 접시를 표준 세포 배양 인큐베이터에 넣고 1시간 동안 배양합니다. 부착력이 더 강한 다른 세포군으로부터 위성 세포를 분리하기 위해, 상층액을 콜라겐 코팅 접시로 옮겨 담고 다시 1시간 동안 배양합니다.이 배양 후, 결과물인 위성세포가 풍부한 상층액을 다시 한 번 제거하여 새로운 콜라겐 코팅 플레이트에 도포하고 근아세포 군집이 관찰될 때까지 배양합니다. 이 과정을 전배양이라고 하며, 세포가 60~70%의 세포 합류도에 도달하면 계대 배양합니다. 세포의 소량을 면역세포화학법에 사용하며, 근원성 세포 마커로 염색하여 배양된 근육 세포의 순도를 확인합니다.근원성 세포의 순도가 확인되면, 동일한 배양 조건에서 세포를 증식시킵니다. 세포 이식 전 처리 과정으로, 0.25% Trypsin-EDTA를 사용하여 세포를 분리합니다. 세포를 두 번 세척한 후 5 × 10⁷ cells/mL 농도의 HBSS에 재부유시키며, 전경골근(tibialis anterior, TA muscle)당 10 µL의 세포 용액을 주입합니다.in vivo 이미징을 위해, GFP 표지된 근아세포(Myoblasts)를 4~6주령 수컷 생쥐에 먼저 이식합니다. 생쥐를 케타민-자일라진으로 마취하며, 마취 상태가 확인된 후 절차를 시작합니다. 배경 노이즈를 줄이기 위해 양쪽 뒷다리에 네어(nare)를 바르고 30초 동안 기다린 후 닦아내어 털을 제거합니다.면봉을 사용하여, 증류수에 적신 새로운 면봉으로 다리를 다시 닦아 남아 있는 조직 파편과 털을 제거함으로써 세포를 마우스에 이식할 준비를 합니다. 먼저 10 µL의 HBSS에 포함된 5 × 10⁵개의 세포를 해밀턴 시린지(Hamilton syringe)로 흡입합니다. 30게이지 바늘을 사용하여 TA 근육의 장축을 따라 상단 내측, 중앙, 하단 세 위치에 동일한 수의 세포를 주입합니다.각 주사 후에는 바늘을 통해 용액이 새어 나오는 것을 방지하기 위해, 바늘을 근육에서 뽑기 전 2분 동안 그대로 유지합니다. 대기 시간 동안 동일한 양의 세포를 다른 주사기에 취하여 반대측 TA 근육에 주입합니다. 세포 주입 후, 마우스는 즉시 검은색 비형광 종이 위에 복와위로 놓이며, 발바닥이 아래로 향하도록 하여 양발을 종이에 고정하고 다리를 90도로 벌립니다. 그 후 마우스를 Night Owl LB 981 형광 이미징 스테이션의 챔버에 넣습니다.고감도 전하결합소자(CCD) 카메라를 장착하고, 뒷다리 하나를 카메라 시야의 중심에 배치합니다. 먼저, 다리의 일반적인 그레이스케일 사진을 촬영합니다. 이미징을 시작하기 위해, 녹색 형광 단백질(GFP)의 특정 파장에 맞는 적절한 방출 필터를 선택합니다.노출 시간을 1,250 milliseconds로 설정하여 이미지 한 장을 촬영한 후, 이어서 500 milliseconds로 설정하여 다른 한 장을 촬영합니다. 노출 시간이 길수록 약한 신호를 검출할 수 있는 반면, 노출 시간이 짧을수록 더 자세한 세부 정보를 확인할 수 있음을 알 수 있습니다. 한쪽 뒷다리의 촬영이 완료되면, 다른 쪽 뒷다리를 카메라 시야의 중앙에 위치시키고 앞서 설명한 것과 동일한 방식으로 촬영합니다.비교 가능한 결과를 얻기 위해 검체 높이는 일정하게 유지해야 합니다. 이미징 후 생쥐를 다시 케이지로 옮기고 마취에서 회복되는지 모니터링합니다. 분석을 위해 형광 신호 위에 관심 영역(region of interest)을 지정하여 초당 광자 수를 측정합니다.또한, 종단적 데이터를 획득하기 위한 추가적인 정량적 수치로서 관심 영역의 크기를 픽셀 수로 측정하며, 영상 실험은 필요에 따라 다른 날짜나 주차에 반복해서 수행할 수 있습니다. 실험 결과, GFP 표지 세포를 주입한 당일에 촬영한 마우스 뒷다리의 형광 영상에서는 높은 신호 강도가 나타났습니다. 이후 신호 강도는 2일차에 감소했다가 7일, 14일, 21일차까지 안정적인 수준으로 증가했습니다. 이러한 형광 변화를 초당 광자 수로 신호 강도를 측정하여 정량화했을 때, 주입 하루 뒤에 신호 강도가 현저히 감소하는 것이 관찰되었으며, 이는 GFP 양성 세포 수의 감소를 반영합니다.하지만 7일, 14일 및 21일째에는 신호 강도가 안정적인 수준으로 증가하여 근육 재생이 일어났음을 나타냈습니다. 지금까지 GFP 표지 세포를 주입한 후, 인비보(in vivo) 형광 이미징을 사용하여 재생되는 근육의 진행 과정을 모니터링하는 방법을 보여드렸습니다. 이 방법을 통해 모든 종류의 형광 표지 세포를 주입한 후 근육 재생의 역학을 연구할 수 있습니다.지정된 간격으로 비침습적으로 영상을 획득할 수 있으므로, 더 적은 수의 동물과 낮은 작업 부하로 더 정확한 종단적 데이터를 수집할 수 있습니다. 고정된 측정 파라미터를 사용하는 경우, 동일한 동물에서 시간에 따라 얻은 영상들은 정량적으로 비교 가능해야 합니다. 배경 잡음을 줄이기 위해 근육 위 피부 표면을 깨끗하게 유지하는 것이 매우 중요하며, 따라서 다리를 덮고 있는 모든 털을 제거하고 면봉이나 패드로 해당 부위를 철저히 닦아내는 것이 절대적으로 필수적입니다.그리고 모든 측정값의 일관성을 유지하기 위해 항상 동일한 매개변수 세트를 사용해야 한다는 점을 잊지 마십시오. 이것으로 모든 설명을 마치겠습니다. 시청해 주셔서 감사하며, 실험에 좋은 결과가 있기를 바랍니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

생체내 bioluminescence과 자기 공명 영상에서 (I), 그리고 (ii) 해부 histological 분석 :이 문서를 사용하여 쥐 두뇌에있는 세포 이식의 multimodal 이미징을위한 이벤트를 최적화된 순서를 설명합니다. 하나의 동물에서 이러한 이미징 modalities를 결합하면 높은 해상도, 민감도와 특이성과 세포 이식 평가를하실 수 있습니다.

마우스의 중추 신경계에서 줄기 세포 주입의 Multimodal 이미징

이 비디오는 녹색 형광 단백질 발현 췌장암 세포를 마우스의 췌장에 이식하는 프로토콜을 보여줍니다. 정소성 마우스 모델은 원발성 및 전이성 종양에 대한 새로운 치료법의 효능을 조사하는 데 도움이 됩니다.

형광 정교성 마우스 모델: 생체 내 종양 진행을 평가하기 위해 암세포를 발현하는 GFP를 마우스에 이식

myoblast 이식의 성공 여부를 평가하는 비 침습적 방법이 설명되어 있습니다. 방법은 그의 표현 다른 이미징 modalities를 이미징 할 수 있습니다 유전자로 구성된 통합 된 퓨전 리포터 유전자의 장점을 걸립니다. 여기, 우리는...

이식 근육 전구 세포를 타겟팅 할 수 분자 이미징

유도된 만능 줄기 세포 (iPSC)유래 한 근생 선조는 근 이영양증을 치료하는 세포 치료 전략에 대한 유망한 후보입니다. 이 프로토콜은 급성 및 만성 근육 재생의 마우스 모델에서 iPSC 유래 메소포아세포(근육 선조의 일종)의 이식 및 분화를 평가하는 데 필요한 이식 및 기능측정을 설명합니다.

근육 재생의 마우스 모델에서 유도 만능 줄기 세포 유래 메소안지오블라스트 와 같은 근생 성 전구의 이식

조혈 줄기 및 전구 세포의 표시 조합 5 형광 단백질은 재생 중에 골수 조혈 아키텍처에 대한 통찰력을 제공하는 공 초점과 두 광자 현미경을 통해 생체 클론 추적에 있습니다. 이 방법은 이식 다음 시간의 광범위한 기간에 대한 손상 조직의 스펙트럼으로 구분 HSPCs 유래 세포의 비 침습적 운명 매핑 할 수 있습니다.

공 초점 및 다중 광자 현미경을 사용하여 다섯 형광 단백질에 의해 표시됨 조혈 줄기 및 전구 세포의 생체 내 클론 추적에서

우리는 쥐에 형광 기자를 활용, 폐 전이에서 종양 세포 기질 상호 작용의 생체 라이브 영상에 대한 비교적 간단한 방법을 설명합니다. 스피닝 디스크 공 촛점 현미경을 사용하여,이 기술은 최소 4 시간 동안 생균의 시각화를 가능하게하고 다른 염증성 폐 상태를 학습하도록 구성 될 수있다.

예는 폐 전이 및 그들의 미세 환경의 라이브 영상을 생체 내

Intravital 형광 현미경 검사 법 (IVFM)는 calvarium의 유도 및 조 혈 모 세포의 골 수 (BM) 틈새로 engraftment 연구 유전 동물 모델에 적용 됩니다.

Intravital 형광 현미경 검사 법 (IVFM)를 결합 하 여 유전자 모델 골 틈새에 조 혈 모 세포의 Engraftment 역학을 공부 하

우리는 전 임상 생체 내에서 암 전이의 추적에 대 한 프로토콜을 설명합니다. 그것은 비 침략 적 [18F] tetrafluoroborate-애완 동물, 그리고 유선형 비보 전 확인에 대 한 형광 단백질에 의해 감지 나트륨 요오드 화물 symporter 결합 방사성 핵 종 형광 기자를 기반으로 합니다. 방법은 전 임상 vivo에서 세포 종양 생물학 넘어 추적에 적용 합니다.

방사성 핵 종 형광 취재 원 유전자 설치류 종양 모델에서 종양의 진행을 추적 하기 위해 이미징

여기 우리가 사용 발광, x 선, 그리고 양전자 방출 단층 촬영/컴퓨터 단층 촬영 이미징 공부 어떻게 억제 mTOR 활동 영향이 종이 식 모델에서 골 engrafted 발성 종양. 이로써 순수 관련, 비-침략 적, 및 복합 요법 골 engrafted 발성 종양에서 vivo에서대상의 안티 발성 효과의 분석.

다 발성 골 수 Xenografts 노 그 쥐에서의 복합 발광 및 양자 방출 단층 촬영/컴퓨터 단층 촬영 영상

여기, 선물이 붙일 레이블된 인간의 자궁내 막 조각 쥐에 투입의 라이브 이미징에 대 한 프로토콜. 메서드를 모니터링을 통해 endometriotic 병 변 크기에 선택의 약의 효과 실시간으로 형광 기자에 의해 방출 되는 형광의 정량화를 공부 하 고 수 있습니다.

궁의 분리 마우스 모델에서 병 변 크기의 비 침 투 적인 모니터링

이 기사에서는 설치류 비복근 근육에서 생체 내 (표면 및 바늘 전극 어레이 사용) 및 생체 외 (유전체 셀 사용) 전기 임피던스 근조영술을 수행하는 방법에 대해 자세히 설명합니다. 생쥐와 쥐 모두에서 기술을 시연하고 사용 가능한 수정 (즉, 비만 동물, 새끼)을 자세히 설명합니다.

설치류에서 생체 내 및 생체 외 전기 임피던스 근전도 수행

배우세요 생체 내 형광 이미징을 이용한 마우스 근육 재생 모니터링 방법을. GFP 표지 근육 줄기세포 이식 후 역학을 추적하여 재생의학 연구에 활용할 수 있습니다.

작은 동물의 근육 Engraftment의 역학에 의해 추적 VIVO에서 형광 이미징

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