2009년 8월 4일
단백 분해 효소 형광 탐지 키트는 fluorometry를 사용하는 프로 테아제 활동의 측정을 위해 설계되었습니다. 그것은 또한 프로 테아제 오염 성분의 검출에 적합합니다. 방법은 FITC - 카제인 표시 기판의 독자적인 배합의 proteolytic hydroysis을 기반으로합니다.
이 프로토콜은 마이크로 원심분리 튜브에 배양 완충액, FXI 카제인 용액 및 관심 프로테아제가 함유된 샘플을 첨가한 다음 부드럽게 혼합하여 섭씨 37도에서 어둠 속에서 60분 동안 배양하는 것으로 시작합니다. 배양 기간이 끝날 때 단백질 분해 반응을 멈추려면 TCA 용액을 넣고 부드럽게 혼합한 다음 어두운 곳에서 다시 섭씨 37도에서 30분 동안 배양합니다. 이 단계는 반응성이 없는 기질이 침전되도록 합니다.
샘플을 10분 동안 원심분리합니다. 10에, 000 Gs는, 산성 녹는 FXI에 의하여 레테르를 붙인 파편을 포함하는 상등액을 제거한다. 상등액을 수의사에게 옮기거나 여러 웰 플레이트를 분석액으로 희석하고 형광계에서 샘플을 판독합니다.
안녕하세요, 저는 Carrie Cup Vineyard이고 미주리 주 세인트루이스에 있는 Sigma Aldridge DeKalb 시설의 과학자입니다. 오늘은 플루오로 메트릭 프로테아제 활성 측정 절차를 보여 드리겠습니다. 우리는 품질 관리 실험실에서 이 절차를 사용하여 낮은 프로테아제 활성을 결정합니다.
이제 시작하겠습니다.이 절차를 위해 배양 완충액, 분석 완충액 및 0.6 일반 트리클로로아세트산 또는 TCA 용액이 즉시 사용 가능한 용액으로 제공됩니다. 카이트(Cain)라고 표시된 파이트(fite) 용액을 분취하여 섭씨 영하 20도에서 보관한다. 호박색 바이알을 사용하거나 투명 튜브를 호일 알리로 싸서 빛으로부터 보호하십시오.
fite Cain 기질을 인용하면 반복적 인 동결 해동 주기, 반복적 인 동결 해동 주기 또는 fite Cain의 격렬한 흔들림 또는 혼합의 필요성을 최소화하여 Cain에서 fite가 분리되어 더 높은 배경이 생성될 수 있습니다. 형광측정기를 교정하거나 fit e 신호에 대한 선형 범위를 결정하는 경우 fit control solution을 준비하십시오. 분석 완충액을 적절한 농도로 재용해하여 용액을 신선하게 만듭니다.
준비가 되면 용액을 빛으로부터 보호하십시오. 마지막으로, 동결건조된 트립신 바이알에 100마이크로리터의 1밀리몰 염산을 첨가하여 트립신 프로테아제 제어를 준비하고 트립신이 용해되도록 간단히 혼합합니다. 트립신을 산성 조건에서 보관하면 안정성이 향상됩니다.
Tripsin 제어 용액은 온도에 민감하며 낮은 농도에서는 안정적이지 않습니다. 다음으로, 테스트 샘플과 대조군을 포함하는 모든 분석 샘플과 분석 전체의 블랭크를 준비하기 시작합니다. 각 테스트 샘플에 대해 샘플을 빛으로부터 보호하십시오.
마이크로 원심분리기 튜브, 20마이크로리터의 배양 버퍼, 20마이크로리터의 핏 c kian 기판 및 10마이크로리터의 테스트 샘플에 결합합니다. 샘플이 어두운 곳에서 배양되는 한 투명한 마이크로 원심 분리기를 사용할 수 있습니다. 또한 프로테아제 활성이 높은 테스트 샘플은 희석해야 합니다.
트립신 대조군 샘플은 검출 한계를 결정하기 위해 분석이 적절하게 수행되고 있는 양성 대조군으로 사용되거나, 트립신 대조군을 준비하기 위한 일반 표준 곡선을 생성하고, 산성화된 트립신을 배양 완충액의 9개 부분 또는 테스트 샘플에 사용된 완충액에 결합하고 잘 혼합합니다. 트립신의 최종 작용 농도는 밀리리터당 20마이크로그램입니다. 다른 특정 프로테아제를 사용하는 경우, 해당 특정 프로테아제와 적절한 완충액으로 대조 용액을 준비합니다.
마이크로 원심분리 튜브에 20마이크로리터의 배양 완충액, 20마이크로리터의 fz cain 기질 및 10마이크로리터의 트립신 대조군을 결합하여 대조군 샘플을 계속 준비합니다. 각 분석법과 함께 5나노그램 트립신의 대조군 샘플을 하나 이상 실행하거나 연속 희석을 사용하는 것이 좋습니다. 마지막 샘플은 마이크로 원심분리 튜브에 20마이크로리터의 배양 완충액, 20마이크로리터의 Fitz Caine 기질 및 10마이크로리터의 초순수를 결합하여 준비된 블랭크입니다.
세 가지 유형의 샘플이 준비되면 각 튜브를 부드럽게 혼합하고 섭씨 37도의 어둠 속에서 60분 동안 배양합니다. 과도한 난기류는 높은 형광 배경을 유발하고 분석의 감도를 감소시킬 수 있으므로 너무 격렬하게 혼합하지 않도록 주의하십시오. 민감도를 높이기 위해 최대 24시간까지 배양할 수 있지만 FXI 카제인이 분해되기 시작할 수 있으므로 더 긴 배양은 권장되지 않습니다.
다시 말하지만, 배양이 완료되면 높은 형광 배경으로 이어지며 적절한 보호 장비를 사용하여 각 마이크로 원심분리기 튜브에 150마이크로리터의 TCA 용액을 추가합니다. TCA로 배양할 때 튜브에 존재하는 흰색 연무를 관찰해야 하며, 이는 침전되고 소화되지 않은 불용성 케인 혼합물이며 30분 동안 어둠 속에서 섭씨 37도에서 배양해야 합니다. TCA 해결책을 가진 외피의 끝에 10, 실내 온도에 000 Gs에 10 분 동안 관을 원심 분리하십시오.
상등액에는 형광 측정 피펫에 사용되는 Cain 단편으로 표시된 산성 용해성 파이트가 튜브 상단에서 부드럽게 포함되어 있어 펠릿의 침전물이 피펫 팁으로 유입되지 않도록 하며, 이는 10마이크로리터의 TCA 상등액과 튜브 내 1밀리리터의 분석 완충액을 결합한 형광계를 사용하여 프로테아제 활성을 측정하기 위해 다음 형광 검출 중에 위양성 판독을 유발합니다 그리고 부드럽게 섞습니다. 또한 10마이크로리터의 FE를 1ml의 분석 버퍼에 첨가하여 분석을 위한 FE 표준물질을 희석합니다. FE 제어 및 Tripsin 표준은 샘플이 TC의 용액을 초과해서는 안 되는 형광 수준을 제공합니다. 상층액 및 분석 완충액은 형광을 측정하기 전에 최대 24시간 동안 섭씨 2도에서 8도의 어둠 속에 보관할 수 있습니다.
vete를 사용하여 측정하는 경우 용액 1ml를 적절한 vete로 옮기고, 많은 수의 샘플을 실행해야 하는 경우 96웰 플레이트와 형광 플레이트 리더를 사용하여 형광 측정 데이터를 획득할 수 있습니다. 이 분석에서 플루오레세인 이소티오시아네이트는 가능한 기기 보정을 위한 대조군으로 제공됩니다. 다음은 설명된 절차에 따른 FS e 신호의 대표적인 선형성 범위입니다.
첫 번째 배양 단계에서 30분의 배양 시간으로 이 키트를 사용하면 1.5나노그램에서 25나노그램 범위의 트립신 및 대조군 샘플에 대한 일반적인 표준 곡선을 얻을 수 있습니다. 형광 측정은 멀티웰 플레이트에서 이루어졌습니다. 분석법의 검출 한계는 blank 샘플로 얻은 값보다 높은 상당한 형광 판독값을 생성하는 프로테아제의 양입니다.
오늘은 Sigma Aldridge 단백질 분해 효소 측정 키트를 사용하여 생물학적 샘플에서 Fluor metric 단백질 분해 효소 활성을 검출하는 방법을 보여 드렸습니다. 이 키트는 용도에 최적화되어 있지만 특정 프로테아제의 경우 약간의 수정이 필요할 수 있음을 기억하는 것이 중요합니다. 그게 다야.
시청해 주셔서 감사드리며 실험에 행운을 빕니다.
Protease Fluorescent Detection Kit은 형광 측정을 통해 프로테아제 활성을 측정할 수 있게 해주어 미량의 프로테아제 오염 검출에 적합합니다. 이 방법은 특허받은 FITC-표지된 카제인 기질을 단백질 분해 가수분해에 사용합니다.
The Protease Fluorescent Detection Kit enables sensitive, quantitative measurement of protease activity using a fluorometric readout of FITC-labeled casein cleavage. This assay supports early-stage target validation by providing a reliable, reproducible method to assess proteolytic function in biological samples, facilitating mechanistic de-risking of protease-dependent pathways. Its compatibility with microcentrifuge tubes and multiwell plates allows integration into screening workflows for lead identification and assay development in drug discovery programs.
The assay fits within the discovery continuum from target validation through lead optimization, where quantitative protease activity measurements inform structure-activity relationships and selectivity profiling.