Name: Dissociated 성인 포유류의 뉴런으로 DNA의 Microinjection Intranuclear (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-12-10T17:10:00.000+00:00
Duration: 13 min 39 s
Description: 배우세요 분리된 성인 포유류 뉴런의 핵내 DNA 미세주입 기법을 통해 유사분열 후 세포에서 높은 단백질 발현을 달성하는 방법을. 이 기술은 신경과학 및 세포생물학 연구에 필수적인 도구입니다.

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저희 실험실의 연구는 NIH의 교내 연구 프로그램, 알코올 남용과 알코올 중독에 국립 연구소에 의해 지원됩니다.

<html> 주사 I. 준비 이 섹션에서는 뉴런의 핵으로 cDNA 주입하기 전에 이동해야하는 준비 단계를 설명합니다. 뉴런에 절연 절차는이 문서의 범위를 벗어나지만, 그것은 각각의 세포에 dissociated 뉴런을 가지고 있으며 (이것을 달성하기위한 유용한 정보에 대한 토론 참조) 35mm의 세포 배양 접시의 바닥 표면에 잘 준수하는 것이 중요합니다. 다른 뉴런의 다양한 잠재적으로 사용될 수 있지만 그들이 편리하게 이용할 수 있으며, 뉴런의 다수를 얻을 수 있기 때문에, 그러한 우수한 경추 신경 (SCG) 또는 지느러미 루트 신경으로 말초 신경은 해부 선호하고 있습니다. SCG 뉴런을 사용하는 추가적인 장점들은 세포의 비교적 동질적인 인구 것을하고 1,2,3,4를 잘 묘사. 주사에 대한 cDNA 플라스미드의 A. 준비 <ol><li> 오염이나 DNA의 고장을 방지하기 위해, 장갑은 준비 기간 동안 착용해야합니다. </li><li> 관심의 단백질을 인코딩 DNA는 고도와 constitutively 활성 사이토 메갈로 바이러스 (CMV) 발기인의 규정에 따라 이러한 PCI (Promega, 매디슨, WI)와 같은 적당한 포유 동물 발현 벡터,에 subcloned입니다. 단백질이 표시되지 않는 경우, 플라스미드 기자 예를 들어, 인코딩 EGFP는 (pEGFP - N1, BD Biosciences Clontech, 팔로 알토, CA), 성공적인 분사와 표현을 확인하는 공동 주입이다. DNA은의 입자를 제거하는 PVDF 필터 (0.1 μm의, Millipore, 베드 포드, MA)와 원심 필터 장치를 사용하여 고품질의 분리 칼럼 (예 : QIAfilter 미디 준비 키트, Qiagen, 챗스워스, CA)와 더 정화를 사용하여 격리 사출 과정에서 사출 pipets 방해가 될 수 있습니다 플라스미드 준비. Plasmids는 적절한 DNA 저장 버퍼 (: 10 MM 트리스, 1 MM EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산), 산도 8.0 예 : TE 버퍼)에 약 1 μg / μl의 농도에서 -20 ° C에 저장됩니다. </li><li> microinjection 즉시 이전, 플라스미드 cDNAs는 TE 버퍼 또는 H 2 O.에서 원하는 최종 농도로 희석 및 혼합 일반적으로 50-10 NG / 리포터 유전자의 μl가 주입된 세포를 분류하기 위해 충분하고, DNA가 높은 농도에서 점성이며 사출 pipets을 방해할 수 있기 때문에 주입하는 cDNA의 총 농도는 200 NG / μl를 초과해서는 안됩니다. 분사에 대한 cDNA의 작은 볼륨 (5-10 μl)가 Parafilm (종이 후원 아래 쪽)의 작은 조각의 깨끗한 표면에 솔루션의 혼합 방울에 의해 준비가되어 있습니다. pipetor로 여러 번을 pipeting 아래에서 함께 솔루션의 방울을 혼합하고 혼합하는 동안 공기 방울을 도입하지 마십시오. </li><li> microloader의 pipet 팁을 (Eppendorf, Brinkmann 인 스트 루먼트, 베리, NY)를 사용하여, 특별히 준비 혈소판 튜브 (피셔 과학, 피츠버그, PA)에 cDNA 솔루션을 전송합니다. 혈소판 튜브 (자료 표) 준비에 대한 지침 자료 섹션을 참조하십시오. 1.5 ML의 microcentrifuge 관에 cDNA 사출 솔루션을 포함하고있는 혈소판 튜브를 놓습니다. </li><li> 실내 온도 (20-24 ° C) 침전 입자로 cDNA 솔루션을 차단할 수에서 고정 각도 또는 스윙 버킷 로터 (Eppendorf)이 장착된 microcentrifuge 10 000g에 15-30 분 튜브를 원심 분리기 microinjection pipet. cDNA 분사 솔루션은 사출 세션 동안 실온에서 보관하실 수 있습니다. </li></ol> 사출 pipets의 B. 제작 <ol><li> 일회용 유리 microinjection의 pipets은 (microinjection의 pipet 당 $ 10) 편리하지만 비싼되는 (예 : Femtotips, Eppendorf) 상업적으로 사용할 수 있습니다. 사출 pipets는 프로그램 P - 97 플라밍 브라운 pipet의 풀러 (서터 악기 회사 노바토, CA)와 filamented, 얇은 벽으로 borosilicate 유리 모세관 튜브 (세계 정밀 계측기, 사라소타, 플로리다)를 사용하여 실험실에서 제조 수 있습니다. 이 옵션은 더 비용 효율적인 있으며, microinjection의 pipet의 모양과 크기의 제어를위한 수 있습니다. </li><li> 2 단계 프로그램은 좁은 microinjection의 pipet 팁 당겨하는 데 사용됩니다. microinjection의 pipets의 개통은 가벼운 현미경 검사가 너무 좁은 것이므로 분사 pipets의 품질은 프로그램 설정이 완료되기 전에 몇 가지 세포를 주사하여 직접 평가해야합니다. 다음은 열, 당겨, 속도 및 시간 설정에 대한 대략적인 설정은 다음과 같습니다 (당기 1) 600, 115, 15, 250, (당겨 2) 640, 130, 65, 200. 이러한 설정은 유리의 다른 일괄와 풀러의 가열 필라멘트의 상태에 따라 다를 수 있으며 필요에 따라 조정해야합니다. 5 참조 자세한 내용은을 보려면. </li><li> 사출 세션 중에 손상이나 문제의 경우, 주입하는 뉴런의 요리마다 여러 가지 (2-5) 사출 pipets을 당기세요. 스토어 사출 microinjection의 pipet 팁 입력에서 먼지를 방지하기 위해 대상 컨테이너에 pipets. </li></ol> II. Intranuclear microinjection 십t &quot;&gt;이 섹션에서는 세부 뉴런의 핵으로 cDNA 주입의 과정. 기본 microinjection은 설정 프로세스를 시각화하기 위해 거꾸로 위상 대비 현미경 (예 : 니콘 Diaphot TMD, 니콘, 멜빌, NY), micromanipulator를 (포함 예 pipet에서 cDNA 솔루션을 추방하기 위해 분사 pipet의 움직임과 압력 주입기 (예 : Eppendorf FemtoJet 익스프레스)를 제어할 수 Eppendorf 5171)가. micromanipulator에 압력 주입기를 연결 주사 중 후자의 두 프로세스의 동기화를위한 수 있습니다. 기타 옵션지만, 추천, 구성 요소가 장착된 비디오 모니터링 시스템 (CCD 카메라, Cohu 주식 회사, 샌디에고, CA, 흑백 비디오 모니터, 소니 주식 회사, 도쿄, 일본)가 있습니다.이 시스템은 주사에 대한 절대적인 요구하지 않습니다; 그러나, 흑백 모니터는 세포 핵의 개선 시각화를위한 높은 콘트라스트를 제공하며 긴 사출 세션 동안 더 편안하게 볼 수 경험을 제공합니다. 또한, 휴대용 컨트롤러를 작동하는 소프트웨어를 실행하는 노트북 컴퓨터에 세미 활용할 수 (자세한 내용은 토론 참조) 사출 과정을 자동화합니다. SCG 뉴런를 삽입하는 이상적인 시간은 3~6시간 이후 해리이다. 이 단계에서는 세포가 단단히 접시의 바닥에 붙어하고, 핵이 하나 또는 여러 개의 nucleoli (그림을 포함하는, 어두운 막과 중앙 둥근 organelle으로 위상 대비 현미경으로, 명확하게 볼 수 있습니다, 구형 아르 1A). <ol><li> 현미경 단계의 중앙에 dissociated 뉴런 한 접시를 놓습니다. 초점을 조절하고 신경의 핵이 명확하게 볼 수 있도록 현미경의 위상 콘트라스트 광학을 최적화합니다. </li><li> microloader의 pipet 팁을 사용하여 microinjection의 pipet으로 준비 cDNA 솔루션의 Pipet 2 μl. 이 원심 분리하는 동안 정착 입자를 저어 수 있으므로 혈소판 튜브 하단의 솔루션을 그리기하지 마십시오. microinjection의 pipets의 필라멘트 끝에 솔루션을 그리기에 도움이 있지만, 작은 기포가 발생하면 부드럽게 그들을 이동시키다하는 유리의 측면 버려해야합니다. </li><li> 압력 주입기의 모세관 홀더에 microinjection의 pipet를 삽입하고 다음 micromanipulator에 홀더를 확보. 홀더는 45 °의 각도로 고정됩니다. </li><li> 그릇에 microinjection의 pipet를 낮춥니다. pipet는 문화 매체를 입력으로 초승달 모양은 그 빛의 굴절에 영향을 주며 뉴런의 이미지 품질을 절감 형성됩니다. 뉴런의 핵이 다시 명확하게 표시되기 전까지는이 문제를 완화하려면 위상 링 터렛은 약간 오프셋 수 있습니다. </li><li> 일부 압력 분사 시스템은 짧은 기간 동안 microinjection의 pipet 팁에서 최대 공기 압력을 적용하는 &quot;깨끗한&quot;기능이 있습니다. 팁이 막혀 나타나는 경우에는 시작하기 전에 주사 중에 파편의 pipet을 지우려면이 기능을 사용하십시오. 이 기능을 사용하면서 무너 뜨 리신 액체가 화면에 표시되지 않으면, 새로운 사출 pipet로 바꿉니다. </li><li> 센터 microinjection의 모니터에서 보는 pipet과 신경 옆에와 nucleolus 같은 초점 비행기의 제보를 맞춥니다. micromanipulator에 낮은 Z 축 제한으로 위치를 설정합니다. 이 위치는 microinjection의 pipet은 주사하는 동안에 진출하게됩니다 깊이입니다. microinjection의 pipet은 뉴런의 맨 위에를 지우는 그래서 지금 약 30 μm의이 시점 위의 팁을 위치. </li><li> Eppendorf 5171 micromanipulator의 &quot;삽입&quot;모드는 intranuclear 주사를 수행하기 위해 다음과 같은 설정으로 정의할 수 있습니다. 주입 기능에 대한 설정, 찌르려고 기능이 해제 남아 반면. 대각선 주입 경로는 (X와 Z - 축을 따라) 세포 손상의 최소 금액을 생산하고, 따라서 축 모드는 주사에 사용해야합니다. 300 μm의 / s의 주사 속도가 충분하고, microinjection의 pipet는 Z 축 제한 설정에 도달하면 압력을 빌드 - 업 동기화할 수 있습니다. </li><li> 압력 주입기는 핵에 주입 cDNA 솔루션의 수량을 제어합니다. &quot;자동&quot;분사 모드에서, DNA의 전달 시간을 제어하고 연결 micromanipulator에 의해 시작됩니다. 사출 압력 (PI)는 100-200 hectopascals (, 1 고전력 증폭기 ~ 0.015 PSI 고전력 증폭기); 사이에 설정해야 높은 사출 압력 주사의 성공 속도 또는 품질을 개선하지 않으며 microinjection의 pipet 팁 크기 또는 DNA 순도 다른 문제를 나타낼 수 있습니다 . 0.3 s의 주입 기간 (TI)와 pipet 팁에 배지에서 입자 occluding의 항목을 피하기 위해 지속적으로 긍정적인 압력을 공급 30 고전력 증폭기의 보상 압력 (PC)를, 사용해야합니다. </li><li> 현미경의 XY 축 스테이지 컨트롤을 사용하여 microinjection의 pipet의 일각에 따라 주입하는 신경 세포를 놓습니다. t 사이에서 앞뒤로 초점에 의해 핵의 중앙 위에 pipet의 팁을 정렬그는 팁 및 nucleoli. </li><li> 주입 단추 (micromanipulator)에 눌러 핵을 주입. 사출 단계에 대한, microinjection의 pipet과 cDNA 솔루션의 릴리스의 움직임은 micromanipulator에 의해 제어됩니다. 그것은 눈으로 성공 intranuclear 주사를 확인하기 어렵지만, 상대적으로 낮은 점도 cDNA 용액의 주입 (점성 원자력 환경에 비해)는 종종 위상 대비 광학 아래 흰 깃털로 표시하고 주입의 지표로 사용될 수 핵으로. 가끔 microinjection의 pipet는 핵 막에 침투하지 않고 단순히 핵을 nudges. 같은 위치에서 두 번째 주입 시도가 핵에 DNA의 성공적인 주사가 발생할 수 있습니다. 세포의 팽창하는 것은 신성 모독이 세포질 주입 대개 나타내는 것입니다. 또한, 중요한 핵 붓기는 물론 곧 이후에 세포 죽음에 신경 일반적으로 결과가 용납하지 않습니다, 따라서 분사 압력과 기간은 제안된 값을 넘지 않아야합니다. </li><li> microinjection의 pipet에서 다음 신경 세포를 정렬하기 위해 현미경의 무대를 재배치하여 뉴런를 넣고 계속합니다. 체계적으로 하룻밤 배양을위한 인큐베이터로 뉴런의 요리를 제공하기 전에 약 50-100 핵을 삽입하기 위해 요리를 통해 이동합니다. 성공적으로 주입 뉴런은 기자의 유전자 표현하여 다음날 확인할 수 있습니다. </li></ol> III. 대표 결과 <img src="/files/ftp_upload/1614/1614fig1.jpg" alt="그림 1" /> 그림 1 : 우수 자궁 경부 신경절 (SCG) 뉴런. 뉴런을 SCG의 위상 대비 영상 삼시간 후 분리 (A). 이 단계에서는 핵은 microinjection의 pipet 팁의 정렬 에이즈있는 명확하게 볼 수 있습니다. 핵은 단일 (왼쪽) 또는 여러 (오른쪽) 어두운 nucleoli와 뉴런의 중심에 나타납니다. 핵 (B)로 cDNA EGFP의 주입에 따라 뉴런 16 시간 SCG. 왼쪽, 위상 콘트라스트 조명 아래에 많이 신경을 SCG. 맞아, 성공적인 주사를 보여주는 하나의 신경 세포에서 EGFP 표현을 발생하는 동일한 뉴런의 epifluorescent 이미지. 화이트 규모 표시줄은 20 μm의 수 있습니다. <img src="/files/ftp_upload/1614/1614figure2tmb.jpg" alt="그림 2" border="0" /> 그림 2 : 전류를 통해 전체 세포 녹음 heterologously - 표현 G - 단백질 내심 신경을 SCG에서 K + (GIRK) 채널을 정류 결합. GIRK 전류 (I GIRK)는 -140에서 -60 뮤직 비디오의 개최 가능성에서 40 뮤직 비디오에 200 MS 전압 램프 (중 삽입된 페이지) norepinephrine에 의해 내생 α 2 - adrenoceptors 중 다음과 활성화 (NE, 10 μm의)에 의해 evoked되었습니다 . 겹쳐 흔적 전에 (검은색)와 NE 혼자 (파란색) 또는 NE 중 하나의 응용 프로그램에 추가로 10 MM 바 2 + (적색) 후 동일한 신경 세포에서 녹음되고 있음을 나타냅니다. 점선 라인은 제로 현재 수준을 나타냅니다. I GIRK, 포함된 외부 솔루션 (MM)를 130 NaCl, 5.4 KCl, 10 HEPES, 10 CaCl 2, 0.8 MgCl 2, 15 포도당, 15 자당과 NaOH로 pH의 7.4 조정 0.0003 TTX를 기록하십시오. 내부 녹음 솔루션 (MM)를 135 KCl, 11 EGTA, 1 CaCl 2, 2 MgCl 2, 10 HEPES, 4 MgATP, 그리고 코와 산도 7.2 조정 0.3 나 2 GTP를 포함. 현재의 부족이 uninjected SCG의 뉴런에서 NE의 존재에 전압 램프에 의해 elicited (A)는 SCG 뉴런은 내생 GIRK 채널을 표현하지 보여줍니다. NE (B, 왼쪽)에 노출되면 플라스미드 cDNA 인코딩 기능 GIRK 11 번 채널의 성공적인 주입은 전압 램프 중에 큰 전류에 상승을 제공합니다. G - 단백질 결합 수용체 작용제 (NE), 내면 정류 및 putative GIRK 채널 차단, 바 2 + (B, 오른쪽 붉은 추적)에 의해 전류 차단에 의해 활성화 : 해류가 GIRK 채널을 통해 전류의 전형적인 특성을합니다. 열고 채워진 동그라미가 나는 각각 잡고 정상 전류에 GIRK 나타냅니다. 하시기 바랍니다 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1614/1614figure2.jpg">여기를 클릭</a> 그림 2의 더 큰 버전을 볼 수 있습니다.

<ol><li>Eccles, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+action+potential+of+the+superior+cervical+ganglion%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">The action potential of the superior cervical ganglion.</a> J Physiol. 85, 179-206 (1935).</li>
<li>Ikeda, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Voltage-dependent+modulation+of+N-type+calcium+channels+by+G-protein+%CE%B2%CE%B3+subunits%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Voltage-dependent modulation of N-type calcium channels by G-protein βγ subunits.</a> Nature. 380, 255-258 (1996).</li>
<li>Schofield, G. G., Ikeda, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Potassium+currents+of+acutely+isolated+adult+rat+superior+cervical+ganglion+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Potassium currents of acutely isolated adult rat superior cervical ganglion neurons.</a> Brain Res. 485, 205-214 (1989).</li>
<li>Schofield, G. G., Ikeda, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sodium+and+calcium+currents+of+acutely+isolated+adult+rat+superior+cervical+ganglion+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Pflugers+Arch%22%5BJournal%5D)">Sodium and calcium currents of acutely isolated adult rat superior cervical ganglion neurons.</a> Pflugers Arch. 411, 481-490 (1988).</li>
<li>Dean, D. A. Chapter 4. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDean%2C+DA+%22Live+Cell+Imaging%3A+a+Laboratory+Manual%22">Live Cell Imaging: a Laboratory Manual</a>. Goldman, R. D., Spector, D. L. 1, Cold Spring Harbor Laboratory Press. 51-66 (2005).</li>
<li>Ikeda, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heterologous+expression+of+receptors+and+signaling+proteins+in+adult+mammalian+sympathetic+neurons+by+microinjection%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Heterologous expression of receptors and signaling proteins in adult mammalian sympathetic neurons by microinjection.</a> Methods Mol Biol. 83, 191-202 (1997).</li>
<li>Ikeda, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+G-protein+signaling+components+in+adult+mammalian+neurons+by+microinjection%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Expression of G-protein signaling components in adult mammalian neurons by microinjection.</a> Methods Mol Biol. 259, 167-181 (2004).</li>
<li>Ikeda, S. R., Jeong, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+RGS-insensitive+G%CE%B1+subunits+to+study+endogenous+RGS+protein+action+on+G-protein+modulation+of+N-type+calcium+channels+in+sympathetic+neurons.%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Use of RGS-insensitive Gα subunits to study endogenous RGS protein action on G-protein modulation of N-type calcium channels in sympathetic neurons.</a> Methods Enzymol. 389, 170-189 (2004).</li>
<li>Washbourne, P., McAllister, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Techniques+for+gene+transfer+into+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Techniques for gene transfer into neurons.</a> Curr Opin Neurobiol. 12, 566-573 (2002).</li>
<li>Zhang, Y., Yu, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-cell+microinjection+technology+in+cell+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Bioessays%22%5BJournal%5D)">Single-cell microinjection technology in cell biology.</a> Bioessays. 30, 606-610 (2008).</li>
<li>Vivaudou, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Probing+the+G-protein+regulation+of+GIRK1+and+GIRK4%2C+the+two+subunits+of+the+KACh+channel%2C+using+functional+homomeric+mutants%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Probing the G-protein regulation of GIRK1 and GIRK4, the two subunits of the KACh channel, using functional homomeric mutants.</a> J Biol Chem. 272, 31553-31560 (1997).</li>
</ol>

일반적인 문제가 발생하여 제안 : 언급했듯이 이전, 성공적인 핵 주사는 조직 문화 판에 점착 성의 세포를 필요에 따라 달라집니다. 주사의 시작을 연기 세포 분리 절차를 따라 몇 시간이 뉴런은 요리의 하단을 준수 할 수 있습니다. 또한, 0.1 MG / 고분자량 폴리 - L - 라이신 (시그마, 세인트 루이스, MO) 요리의 하단 표면에 뉴런의 에이즈 접착력의 ML과 코팅 요리. DNA의 높은 농도를 삽입하려고 시도하는 특히 microinjection의 pipets의 차단은, 자주 문제가 될 수 있습니다. 플라스미드 DNA를 분리하고 정화 고품질의 분리 컬럼을 사용하고, (스핀 필터, 혈소판 튜브의 회전) 언급된 추가 정화 단계를 수행하면 이전에 주입하는 입자를 제거하는 데 도움이 될 수 있습니다. 주사하는 동안 압력 주입기의 &quot;깨끗한&quot;함수는 (0.2 s에 대한 충분합니다) 사용할 수 있지만 그 문제가 해결되지 않으면, 새로운 사출 pipet을 사용해야합니다. microinjection의 pipets의 대부분이 사출 세션 동안 막힌 될 경우, 더 큰 개방과 microinjection의 pipet 도움말을 생산하는 유리 pipet의 풀러의 설정을 변경 고려하십시오. 핵 주사하는 동안 발생 또 다른 문제는 조직 문화 요리의 바닥 표면의 얼룩이다. 이 변화는 바로 깊이 이후 주사하는 동안 pipet 탐색이 고정되는 핵에 주입 pipet 팁의 타겟팅 정확성에 영향을 미칩니다. 따라서,이 Z 축 제한은 같은 접시 내에 주사하는 과정 중에 조정해야합니다. 조정이 필요한 때 명백한 것입니다 (이 핵 주입에 대한 표시 (핵이나 세포가 완전히 놓친 것입니다에 없음 흰색 깃털) 없다, 또는 사출 pipet 팁 가까이 접시의 바닥에 오는 될 세포 압축 혹은) 접시의 바닥에 pipet 팁을 충돌. 유리 - 복제 실린더가 (. OD 10mm, 캣 번호 2090-01010, Bellco 유리, 바인랜드, 뉴저지)보다 작은 밀폐된 공간에서 그들을 제한하는 뉴런의 도금을하는 동안 사용할 수 있으므로 이동하는 데 필요한 거리를 최소화 주사 사이 사출 pipet. 이러한 복제 실린더는 microinjections를 수행하기 전에 제거됩니다. 기술의 단점 : Intranuclear microinjections은 기술적으로 인내와 운영자가 수동 손재주의 높은 수준을 요구하는, 요구하고 있습니다. 이 기술 능력, 다른 기술과 마찬가지로, 연습과 함께 제공됩니다. 그러므로, 그것은 실제 실험을 시도하기 전에 혼자 리포터 유전자의 핵 주사 연습 좋습니다. 더 사출 과정을 돕기 위해, 그것은 컴퓨터 프로그램에 micromanipulator과 압력 주입기의 단계를 통합하는 것이 가능해 질 수 있습니다. 이러한 이고르 프로 (WaveMetrics, 레이크 오스 베고, OR)와 같은 프로그램은 (대한 6,7,8 참조 microinjection 설정을 저장하고 반 자동화 사출 과정 다기능 컨트롤러 (ShuttlePro, 컨투어 디자인, 윈더험, NH) 프로그램에 활용할 수 세부 사항). intranuclear microinjection 기법의 또 다른 단점은 낮은 성공률이다. 시도 핵 주사의 약 10-20% 단백질 표현식로 이어집니다. 이 효율이 표현 세포의 많은 예를 들어, 전기 생리학, 다양한 생화학 assays이 충분하지 않을 수 있습니다 필요하지 않은 애플 리케이션을위한 충분히있을 수 있습니다 반면. 기술의 응용 : 그 결점에도 불구하고, DNA의 intranuclear microinjection은 heterologously 뉴런의 단백질을 표현하는 매우 유용한 기술입니다. 단백질 표현의 높은 수준 때문에 주사, 유전자 전사, 그리고 핵의 plasmids 긴 안정성을 조절 높은 활성 CMV 프로 모터 동안 핵에 출시 plasmids의 다수의 핵 microinjections 함께 얻을 수 있습니다. 표현 이상의 단백질은 단백질 heterologous 높은 수준의이 내생 단백질을 압도하는 데 필요한 지배 - 부정적인 실험에 특히 유용합니다. intranuclear 주사의 또 다른 장점은 여러 구성을 주입 때 핵으로 cDNA 구성의 일관성 비율을 제공하는 능력입니다. 다른 transfection 방법으로, 그것은 reproducibly 같은 접시 이내에 transfections 사이의 서로 다른 세포로 구성 각 DNA의 동일한 비율을 소개하기가 어렵습니다. 핵으로 cDNA 솔루션의 직접 분사는 다양성의 원인을 제거하고 표현 단백질의 비율이 효과적으로 titered 수 있습니다. 전통 transfection 방법 때문에 transfection의 reag과 관련된 핵 9 화학 독성에 DNA의 낮은 정관의 사후 mitotic 세포의 제한된 효과를 가지고엔트 10. 핵 microinjections는 핵에 기계적으로 유전 물질을 도입하여 이러한 문제를 극복합니다. 이 기술이 더 관련되어 있지만, 기능적인 생물 학적 시스템에서 단백질의 효과를 연구하는 능력,이 기술의 힘드는 자연에 대한 보상보다, 내생 신호 경로와 함께 완료되었습니다. 동물의 모든 실험 절차는 애니멀 케어 및 사용을위한 건강의 지침 국립 연구소에 따라 수행되었다.

<table><tbody><tr><td>Ultrafree-MC 필터 유닛</td><td>EMD Millipore</td><td>UFC30VV00</td><td>Durapore PVDF 필터; 0.1 &amp;#x03BC;m 공극 크기</td></tr><tr><td>TE 완충액</td><td>Quality Biological, Inc.</td><td>351-010-131</td><td>10 mM Tris, 1 mM EDTA, pH 8.0</td></tr><tr><td>마이크로-헤마토크릿 모세관</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-362-574</td><td>비헤파린 처리 준비물:&lt;br/&gt;100% 에탄올에 하룻밤 동안 담가 둡니다. 탈이온수로 3회 충분히 세척하고 오븐(95&amp;#x00B0;C)에서 유리 제품을 건조 베이킹합니다. 다이아몬드 팁 스크라이버를 사용하여 세척된 헤마토크릿 관을 3-4 cm 길이로 자르고, 포셉으로 유리를 잡은 상태에서 화염으로 한쪽 끝을 밀봉합니다. 깨끗한 유리 비커에 보관하고 먼지가 쌓이지 않도록 덮어둡니다.</td></tr><tr><td>원심분리기</td><td>Eppendorf</td><td>5417 R</td><td>고정각 또는 스윙 버킷 로터 포함</td></tr><tr><td>Microloader 20 &amp;mu;l 피펫 팁</td><td>Eppendorf</td><td>5242 956.003</td><td></td></tr><tr><td>미세주입용 모세관 유리</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>TW120F-4</td><td>필라멘트가 포함된 박벽관, 외경 1.2 mm, 내경 0.9 mm, 길이 100 mm</td></tr><tr><td>화염/Brown 마이크로피펫 풀러</td><td>Sutter Instrument Co.</td><td>P-97</td><td>백금-이리듐 박스 필라멘트 포함 (부품 번호 FB330B)</td></tr><tr><td>Nikon Diaphot TMD 도립 현미경</td><td>Nikon Instruments</td><td></td><td>진동 절연 테이블에 설치된 20x 및 40x 위상차 대물렌즈</td></tr><tr><td>전하결합소자(CCD) 카메라</td><td>Cohu Inc.</td><td>6410</td><td></td></tr><tr><td>비디오 모니터</td><td>Sony Corporation</td><td>PVM-122</td><td>흑백, 9&amp;#8221; 화면</td></tr><tr><td>미세조작 시스템</td><td>Eppendorf</td><td>5171</td><td></td></tr><tr><td>미세주입 유닛</td><td>Eppendorf</td><td>FemtoJet Express</td><td></td></tr><tr><td>미세주입 컨트롤러</td><td>Contour Design</td><td>S-PROV2</td><td>프로그래밍 가능 멀티미디어 컨트롤러</td></tr><tr><td>Igor Pro</td><td>WaveMetrics</td><td>Version 4.05A</td><td>S. Ikeda가 작성한 미세주입 컨트롤러 제어용 명령 프로그램</td></tr></tbody></table>

dissociated 성인 포유류의 뉴런으로 dna의 microinjection intranuclear

Intranuclear Microinjection of DNA into Dissociated Adult Mammalian Neurons

기본의 연결을 세포 문화는 그들이 영원히 세포 라인에 비해보다 생물학적으로 관련 시스템을 나타내는 이후 단백질 기능을 연구하기 위해 귀중한 도구입니다. 그러나, 기본 뉴런의 포스트 mitotic 자연은 electroporation 또는 화학적 - 중재 transfection과 같은 일반적인 절차를 사용하여 효과적인 heterologous 단백질 발현을 방지합니다. 따라서, 다른 기술은 효과적이 아닌 나누어 세포의 단백질을 표현하기 위해 채용해야합니다. 이 문서에서는, 우리는 dissociated 성인 동정 뉴런으로 cDNA 구성의 intranuclear 주사를 수행하는 데 필요한 단계를 설명합니다. 뉴런의 다른 유형에 적용되어이 기술은, 성공적으로 heterologous 단백질 발현을 유도하실 수 있습니다. microinjection 절차에 필수적인 장비는 세포, N 2 (g) 압력 전달 시스템에 연결된 cDNA 용액 가득한 유리 사출 pipet 및 micromanipulator을 시각화하기 위해 거꾸로 현미경을 포함합니다. micromanipulator은 pipet 팁로부터 cDNA 솔루션을 꺼낼 수 가압 N 2의 간단한 펄스로 microinjection의 pipet의 사출 움직임을 조정합니다. 이 기술은 다른 많은 transfection 방법과 관련된 독성을 가지고 일관된 비율로 표현되는 여러 DNA 구조를 가능하게하지 않습니다. 주입된 세포의 낮은 숫자는 물론 같은 electrophysiological 녹음 및 광학 이미징과 같은 단일 세포 연구에 적합 microinjection 절차를 만들지만, 세포 높은 transfection 효율의 큰 숫자를 요구 생화학 assays 적합하지 않을 수 있습니다. intranuclear microinjections는 장비와 시간 투자를 필요로하지만, 생리학 관련 환경에서 heterologous 단백질 표현의 높은 수준을 달성하는 능력이 기술에게 단백질 기능을 조사하기 위해 매우 유용한 도구를합니다.

cDNA의 직접 intranuclear 주사 후 mitotic 세포에 대한 효과적인 transfection 기술입니다. 이 방법은 하나 또는 여러 개의 cDNA 구조에서 heterologous 단백질 표현의 높은 수준을 제공하고 단일 셀 assays의 다양한 생리학 관련 환경에서 공부하는 단백질 기능을 수 있습니다.

Dissociated 성인 포유류의 뉴런으로 DNA의 Microinjection Intranuclear

1차 신경세포 배양은 ...보다 생물학적으로 더 관련성이 높은 시스템을 나타내므로 단백질 기능을 연구하는 데 가치 있는 도구입니다.

이 주입 절차의 첫 번째 단계에서는, DNA 용액의 작동 농도를 원심 분리하여 침전시킵니다. 그 다음, BO 규산염 유리 모세관 튜브로 제작된 입자 물질 주입 피펫에 DNA 용액을 채웁니다. 세포를 현미경 스테이지 위에 놓고 세포핵의 시각화를 최적화합니다.피펫을 핵에 맞춘 후 세포에 주입합니다. 다음 날 각 디쉬의 여러 세포에 주입을 수행합니다. 성공적으로 주입된 세포는 리포터 유전자의 발현을 통해 확인합니다.안녕하세요, 저는 국립보건원(National Institutes of Health) 산하 국립 알코올 남용 및 알코올중독 연구소(National Institute on Alcohol Abuse and Alcoholism)의 Stephen Akeda 박사님 연구실 소속 Van Mu입니다. 저는 역시 Akeda 연구실의 Damien Williams입니다. 그리고 저는 AKEDA 연구실의 Eugene run입니다.오늘은 해리된 뉴런에 cDNA 컨스트럭트를 INTERCLEAR 미세 주입하는 절차를 보여드리겠습니다. 이 방법은 전통적으로 형질전환이 어려운 분열 후 세포(post mitotic cells)에서 관심 단백질을 이종 발현시키는 효과적인 방법입니다. 저희 연구실에서는 N 채널의 G 단백질 조절 기전을 연구하기 위해 이 기술을 사용하고 있습니다.이제 신경세포를 준비하겠습니다. 먼저 0.1 mg/mL의 고분자량 poly L lysine이 코팅된 세포 배양 접시에 분리된 성체 포유류 신경세포를 플레이팅하십시오. 이는 신경세포가 접시 바닥 표면에 잘 부착되도록 돕습니다.유리 클로닝 실린더를 사용하여 플레이트에 배양된 뉴런을 더 작고 제한된 영역으로 응집시킬 수 있습니다. 이는 주입 대상 뉴런 간의 거리를 최소화하기 위함입니다. 세포가 디쉬 바닥에 충분히 부착될 수 있도록, 핵 내 미세 주입을 수행하기 전 디쉬를 37 °C 인큐베이터에 3~6시간 동안 보관하십시오.뉴런을 배양하는 동안, Sutter P 97 화염 연마식 풀러(flaming brown puller)와 박벽 붕규산 유리 모세관을 사용하여 미세주입 피펫을 준비합니다. 1차 풀(pull)과 2차 풀에 대해 다음과 같은 설정을 적용한 2단계 풀 프로그램을 사용합니다. 필요한 설정 값은 유리 배치마다 다르고 풀러 내 가열 필라멘트의 상태에 따라 달라지므로, 필요에 따라 조정해야 합니다.주입 세션 중 피펫이 손상되거나 문제가 발생할 경우를 대비하여, 뉴런 접시 하나당 최소 5개의 주입용 피펫을 제작해야 합니다. 제작된 주입용 피펫은 주입 직전 마이크로인젝션 피펫 팁에 먼지가 유입되는 것을 방지하기 위해 덮개가 있는 용기에 보관해야 합니다. 플라스미드 cDNA를 작업 농도로 희석합니다. 작업대 위에 작은 파라폼 조각을 놓고 종이 뒷면을 제거합니다.CD NA 스톡 용액과 TE 버퍼를 파라미터에 추가합니다. CD NA를 희석할 때, 최종 CDNA 농도는 200 nanograms per microliter 미만으로, 총 부피는 2~10 microliters 사이로 사용하는 것을 권장합니다. CD NA에 의해 인코딩된 단백질에 태그가 없는 경우, 예를 들어 EGFP를 인코딩하는 리포터 플라스미드를 실험용 CD NA와 함께 공동 주입할 수 있습니다. 주입 및 발현이 성공적으로 이루어졌는지 확인하려면, 피펫팅으로 여러 번 위아래로 섞어 CD NNA 용액을 혼합합니다.나중에 미세주입 피펫을 막을 수 있는 cDNA 용액 내의 입자들을 침전시키기 위해, 기포가 유입되지 않도록 주의하십시오. 마이크로 로더 피펫 팁을 사용하여 세척 후 한쪽 끝을 절단하고 화염 밀봉한 헤마토크리트 튜브로 용액을 옮깁니다. 그다음 헤마토크리트 튜브를 1.5 milliliter 마이크로 원심분리 튜브에 넣고 15분에서 30분 동안 원심분리합니다.상온에서 10, 000 g로 원심분리합니다. 원심분리가 완료되면 cDNA 주입 용액이 들어 있는 튜브를 따로 둡니다. 해당 용액은 주입 세션 동안 1~2시간 정도 상온에서 보관할 수 있습니다.세포를 플레이팅한 후, 유리 클로닝 실린더를 제거합니다. 그런 다음, 주입 세션 전까지 남은 배양 기간 동안 플레이팅된 세포를 다시 인큐베이터에 넣습니다. 주입을 시작하려면, 먼저 인큐베이터에서 뉴런이 플레이팅된 디쉬를 꺼내 주입 장치의 현미경 스테이지 위에 놓습니다.실험 장치는 도립 위상차 현미경, 마이크로 조작기에 연결된 압력 주입기 및 비디오 모니터링 시스템으로 구성됩니다. 위상차 관찰 시, 뉴런은 구형 세포로 나타나며, 핵은 어두운 막을 가진 중앙의 둥근 소기관으로 뚜렷하게 보이고 하나 또는 여러 개의 인을 포함할 수 있습니다. 마이크로 로더 피펫 팁을 사용하여 헤마토크릿 튜브에서 준비된 CD NA 2 µL를 흡입하십시오.입자가 가라앉아 있을 수 있는 튜브 바닥 근처의 용액은 피하도록 주의하십시오. 용액을 미세주입 피펫으로 옮깁니다. 미세주입 피펫 내부의 필라멘트가 용액을 팁 끝까지 끌어당기는 것을 도울 것입니다.하지만 작은 공기 방울이 계속 남아 있다면, 유리벽 측면을 가볍게 쳐서 방울을 제거하고, 압력 인젝터의 모세관 홀더가 45도 각도로 고정되었는지 확인하십시오. 그다음 마이크로인젝션 피펫을 모세관 홀더에 삽입하고, 홀더를 마이크로 매니퓰레이터에 고정합니다. 이어서 마이크로 매니퓰레이터를 사용하여 마이크로인젝션 피펫을 디쉬 안으로 내립니다. 피펫이 배양액에 진입하면 메니스커스가 형성되어 시료를 통과하는 빛의 경로가 변경되며, 이로 인해 뉴런의 이미지 품질이 저하됩니다.이 문제를 해결하려면 뉴런의 핵이 명확하게 보일 때까지 위상 조절 링(phasing turret)을 조정하십시오. 주입을 시작하기 전에, 압력 주입 시스템의 세척(clean) 기능을 사용하여 피펫 내부의 이물질을 제거하고 미세 주입 피펫의 품질을 확인하십시오.배출된 용액이 화면에 보여야 합니다. 이 기능을 사용하면 적정 크기의 피펫 팁에서 유체가 얇은 흐름으로 배출됩니다. 미세주입 피펫이 막혔거나 너무 좁은 경우, 세척 기능을 사용해도 유체가 배출되지 않습니다.팁이 너무 넓거나 파손된 경우, 액체가 넓은 줄기 형태로 분출됩니다. 주입 중에 팁의 상태가 최적이 아닌 것으로 보이면 주입 피펫을 교체하십시오. 이제 뷰잉 모니터에서 미세주입 피펫의 중심을 맞추십시오. 핵의 초점을 유지하면서 피펫 팁이 뉴런 인근에서 초점이 맞을 때까지 낮추십시오.이 위치를 마이크로 조작기의 Z축 하한선으로 설정하십시오. 이 위치는 미세주입 피펫이 주입 중에 전진하게 될 깊이입니다. 다음으로, 팁을 이 지점에서 약 30 micrometers 위에 위치시키십시오.이제 미세주입 피펫이 뉴런의 상단을 가로지릅니다. 다음으로 미세주입을 위한 마이크로 매니퓰레이터 설정을 프로그래밍하십시오. 세포 손상을 최소화하기 위해 에이너(Einor) 마이크로 매니퓰레이터의 주입 모드(inject mode)는 on으로, 천자 기능(impale function)은 off로 설정하십시오.미세주입 시, 축 모드(axial mode)를 선택하여 대각선 주입 경로를 지정하십시오. 주입 속도는 300 micrometers per second로 설정하고, 한계점에서 압력 증가가 동기화되도록 설정하십시오. 다음 프로그램으로 진행하십시오.압력 주입기의 설정을 통해 주입 압력(PI)을 100에서 200 hPa 사이로, 주입 시간(ti)을 0.3초로, 그리고 보정 압력(PC)을 30 hPa로 설정합니다. 조작기 설정을 조정한 후, 핵 내 주입을 수행할 수 있습니다. 현미경의 XY축 스테이지 제어 위치를 사용하여, 미세 주입 피펫 팁 아래에 뉴런을 위치시킵니다.피펫 팁과 핵 사이의 초점을 위아래로 조절하여 팁의 끝을 핵의 중심 위에 맞춥니다. 마이크로 매니퓰레이터의 주입 버튼을 눌러 핵에 주입합니다. 상대적으로 낮은 점성의 주입입니다.CDNA 용액은 위상차 현미경으로 관찰했을 때 핵 내에서 종종 흰색 깃털 모양의 구름 형태로 나타납니다. 현미경 스테이지를 이동시켜 다음 뉴런을 미세주입 피펫 아래에 맞춤으로써 뉴런 주입을 계속 진행하십시오.디쉬 전체를 체계적으로 훑어갑니다. 계속해서 핵을 주입하십시오. 앞서 설명한 세척 기능을 10~15회 주입할 때마다 사용하여 미세주입 피펫의 상태를 확인하십시오.피펫이 막혔거나 손상된 경우, 새로운 주입 피펫으로 교체하십시오. 조직 배양 접시 바닥 표면의 불균일함으로 인해 주입 피펫이 세포를 놓치거나 핵 내에서 흰색 플룸(plume)이 보이지 않을 수 있습니다. 이러한 경우, 미세주입 피펫 팁을 핵과 동일한 초점 평면으로 조정하고, 이를 새로운 x축 제한값으로 설정하십시오.그 다음 뉴런 주입을 계속합니다. 때때로 미세주입 피펫이 핵막을 관통하지 못하고 단순히 핵을 밀어내기만 할 때가 있습니다. 이런 경우, 동일한 위치에서 두 번째 주입을 시도하면 핵 내로 DNA를 성공적으로 주입할 수 있습니다.세포의 팽창은 보통 의도치 않은 세포질 주입을 나타냅니다. 50개에서 100개의 핵에 주입을 완료하면, 뉴런이 담긴 디쉬를 인큐베이터로 옮겨 하룻밤 동안 배양하십시오. 16시간 후, 리포터 유전자의 발현을 통해 성공적으로 주입된 뉴런을 확인할 수 있습니다.본 실험에서는 하나의 상경신경절(superior cervical ganglion, SCG) 뉴런에 주입이 이루어졌으며, 이는 EGFP 발현을 통해 식별할 수 있습니다. 내인성 G 단백질 결합 내향 정류 칼륨(G protein coupled inwardly rectifying potassium, girK) 채널이 없는 비주입 SCG 뉴런은 전압 램프(voltage ramp) 중에 측정 가능한 전류를 생성하지 않습니다. 이와 대조적으로, 기능적인 girK 채널을 인코딩하는 플라스미드 DNA가 성공적으로 주입된 뉴런은 G 단백질 결합 수용체 작용제인 노르에피네프린(norepinephrine)에 노출되었을 때, 전압 램프 중에 큰 전류를 생성합니다.여기서 측정된 전류는 Kirk 채널의 전형적인 특성을 보이며, norepinephrine에 의한 활성화, 내부 정류 및 추정되는 grk 채널 차단제에 의한 억제가 특징입니다. Barium, 뉴런의 핵에 CD NA를 주입하는 방법을 방금 보여드렸습니다. 이 기술을 수행할 때 기억해야 할 네 가지 중요한 사항이 있습니다.첫째, 주입 전 DNA를 원심 분리하기 위함입니다. 둘째, 핵이 명확하게 보이는지 확인하기 위함입니다. 셋째, 디쉬 내를 이동할 때 Z축 제한 범위를 재조정하기 위함입니다.네 번째로, 주입 사이에 PepTip의 품질을 정기적으로 확인하십시오. 시청해주셔서 감사드리며, 실험에 좋은 결과가 있기를 바랍니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

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여기 형광와 결합 microinjection의 전원을 고용 분석을...

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AAV2의 지주막하 주입에 의한 마우스 신피질 뉴런의 광범위한 형질도입

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Dissociated 성인 포유류의 뉴런으로 DNA의 Microinjection Intranuclear

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