Name: 성인 Zebrafish에서 기관의 해부 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-03-04T16:45:00.000+00:00
Duration: 10 min 18 s
Description: 배우세요 성인 제브라피쉬의 주요 기관 해부 기법을 통해 척추동물 발달생물학 연구를 수행하는 방법을. 이 프로토콜은 심장, 간, 소장, 생식선 등 내부 장기의 정밀 분리와 현미경 관찰을 가능하게 합니다.

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이 작품은 MCM과 TG에 미국 암 협회 박사 과정 이수 원정대 # PF - 05-041 - 01 - DDC에 NIH R01 부여 HD050901에 의해 지원되었다.

<ol><li> 남성 zebrafish는 여성 물고기 다음 먼저 해부하는 것입니다. 절개를 시작하기 전에 0.2 % Tricaine에서 물고기를 마취 후 15 분 동안 얼음물에 부화하여 안락사. </li><li> 가볍게 종이 타월에 마른 생선을 끝날하고 해부 매트에 배치하여 시작합니다. 외부, zebrafish 단일 지느러미, 꼬리와 항문 지느러미와 결합하여 가슴과 골반 지느러미 (그림 1)가. <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig1.jpg" alt="그림 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 1"> 그림 1. 표시된 지느러미 달린 성인 남자 생선. </li><li> 꼬리의 다육 질의 부분을 통해 해부 매트에 생선과 안구 소켓의 복부 부분을 핀. </li><li> 항문 지느러미에 단지 앞쪽에 물고기의 뱃속에있는 피부를 싹둑. 항문 지느러미에서 operculum에 배꼽을 따라 피부와 근육 기본 (아가미를 통해 하드 커버) (그림 2, 1 단계)을 잘라 버릴거야. <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig2.jpg" alt="그림 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 2"> 그림 2. 내장을 폭로하기 위해 피부 및 신체 벽면 근육을 제거하는 단계가. </li><li> 다음, 가슴 거들 (지느러미의 기지에서 두께, 뼈다귀 지역) (그림 2 단계 2)를 포함하여 operculum와 가슴 지느러미를 제거합니다. 아래 항문 지느러미 (그림 2, 3 단계)에 다음 생선의 측면을 따라 지금 노출된 길 뒤로 위쪽에서 피부와 근육 기본 시작 컷합니다. </li><li> 조심스럽게 물고기의 측면에서 피부와 기본 근육을 제거하십시오. 내부 장기의 대부분은 (그림 3) 지금은 볼 수 있습니다. <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig3.jpg" alt="그림 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 3"> 그림 3. 신체 벽 근육과 성인 남성이 물고기는 내부 장기의 시각화를 허용 제거. </li><li> testes는 등의 신체 벽에 연결된 긴, 백색, 이점 기관입니다. testis를 제거하고 PBS 한 접시에 놓으십시오. spermatagonia에서 spermatids로 개발 배아 세포의 다양한 단계 (릴 외., 2009)와 cysts가 들어있는 정액을 운반하는 tubules (그림 4)를 시각화하는 반사광과 testis을 검사합니다. <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig4.jpg" alt="그림 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 4"> 그림 4. testis의 해부. 하얀 둥그스름한 구조는 정액을 운반하는 tubules 수 있습니다. </li><li> 다음 물고기의 뱃속에서 위장 시스템을 제거합니다. 간장은 그 큰 크기, lobed 형태, tannish 색상 및 광범위한 vascularization에서 확인할 수 있습니다. 밝은 빨간색으로 나타납니다 담낭, 녹색 반투명​​ 액체 가득한 색, 그리고 비장은, 내장 내에 볼 수 있습니다. </li><li> 장기의 나머지 부분에서 대장을 분리하고 그것을 스트레칭. 대장의 앞쪽에, 중간 및 사후 지역은 상피 주름의 높이 (월러스 외., 2005)에 의해 정의됩니다. </li><li> PBS에서 소장의 조각을 장소와 전달 빛을 사용하여 상피 주름을 관찰. </li><li> 다음, 수영 방광을 확인합니다. 수영 방광 Weberian 장치 (피니 외., 2006)을 통해 내이 (内耳)에 연결되어있는 공압 덕트, 그리고 앞쪽에 챔버를 통해 식도에 연결된 후부 챔버로 이루어져 있습니다. </li><li> 제거하고 수영 방광을 삭제. 생선을 핀을 빼다 다시 핀 그 복부 쪽 최대 지느러미 몸 벽을 따라있는 신장을 해부하다 수 있습니다. 신장은 지느러미 대동맥과 색소 세포와 관련된 반투명 분홍색 구조입니다. 신장은 머리, 몸, 그리고 꼬리 지역 (그림 5)으로 나뉘어져 있습니다. 신장의 한 부분을 절개하다하고 PBS에 놓으십시오. 신장 tubules을 나타내기 위해 신장 조직을 분리 애타게. <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig5.jpg" alt="그림 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 5"> 그림 5. 머리, 몸, 그리고 지느러미 몸 벽을 따라 꼬리 신장의 위치. </li><li> 여성 생선을 해부하다. 이전에 설명한 바와 같이, 얼음 물 속에 물고기를 안락사와 해부 매트에 걸어 건조하기 전에 그것을 두드려. 이전 증명과 같은 물고기의 측면에서 피부를 제거합니다. 난소는 vascularized mesovarium하여 뱃속에 정지하는 bilobed 구조입니다. </li><li> 난소 중 하나 엽을 제거, PBS에 배치하고, 전송 빛을 그것을 검사합니다. oocytes는 좋은 바늘을 사용하여 분리 조롱하고 (그림 6, 셀맨 외., 1993) 개최하실 수 있습니다. 스테이지 I oocytes는 약 10 있습니다 - 크기와 반투명 150 미크론. 크기가 350 마이크론과 대뇌 피질의 과립의 모양에 의해 정의 - 스테이지 II의 oocytes는 약 150입니다. 스테이지 III의 oocytes는 350 있습니다 - 크기가 750 마이크론과 난황의 축적으로 인해 불투명하고 있습니다. 성숙 단계 IV 및 V oocytes는 반투명하고 일반적으로 최근에 짝짓기가 암컷의 난소에서 찾을 수 없습니다. <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig6.jpg" alt="그림 6" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 6"> 그림 6. 라이브 무대 I, II, III 및 제품 oocytes은 아래의 관찰전송 빛을 현미경을 해부. </li><li> 다음 물고기의 마음을 해부하다. 마음은 후부와 아가미에 복부에 위치하고 있습니다. 심장과 주변 조직의 모든을 절단하고 PBS에 배치하여 시작합니다. 조심스럽게 섬세한 아트리움을 손상하지 않도록주의하고, 심장을 둘러싼 조직을 멀리 해부하다. </li><li> 심장 박동을 관찰하기 위해 링어의 솔루션으로 해부하는 마음을 놓으십시오. 아트리움, 뇌실 및 bulbus arteriosus (그림 7, 후진타오 외., 2001)를 식별합니다. <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig7.jpg" alt="그림 7" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 7"> 그림 7. 어른 마음을 해부 했어요. </li><li> 물고기의 머리를 제거하여 절개를 완료합니다. 물고기를 unpinning와 면도날로 머리를 제거하여 시작합니다. 포셉와 두개골의 복부 측면에서 가능한 한 많은 부드러운 조직으로 제거합니다. 작은 스프링 가위를 사용하여 눈을 제거합니다. 두개골을 열고 브레이크와 두뇌의 복부 측면에서 뼈를 제거합니다. 지금은 PBS의 접시에 머리를 장소와 뇌의 등의 측면에서 피부와 두개골 뼈를 제거합니다. </li><li> , telencephalon, habenula, 광 tectum, 소뇌 및 모수 (., 실링, 2002 그림 8, Wullimann 외, 1996) 후각 구근을 확인합니다. <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig8.jpg" alt="그림 8" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 8"> 그림 8. 해부 성인 zebrafish의 뇌. 맨 앞쪽에 도설보기. </li></ol>

<ol><li>Finney, J. L., Robertson, G. N., McGee, C. A., Smith, F. M., Croll, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure+and+Autonomic+Innervation+of+the+Swim+Bladder+in+the+Zebrafish+%28Danio+rerio%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Structure and Autonomic Innervation of the Swim Bladder in the Zebrafish (Danio rerio).</a> J Comp Neurol. 495, 587-606 (2006).</li>
<li>Hu, N., Yost, H. J., Clark, E. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+morphology+and+blood+pressure+in+the+adult+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Anat+Rec%22%5BJournal%5D)">Cardiac morphology and blood pressure in the adult zebrafish.</a> Anat Rec. 264, 1-12 (2001).</li>
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<li>Schilling, T. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+morphology+of+larval+and+adult+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Zebrafish%3A+A+Practical+Approach+%28The+Practical+Approach+Series%29%22%5BJournal%5D)">The morphology of larval and adult zebrafish.</a> Zebrafish: A Practical Approach (The Practical Approach Series). Nusslein-Volhard, C., Dahm, R. , Oxford University Press. (2002).</li>
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<li>Wallace, K. N., Akhter, S., Smith, E. M., Lorent, K., Pack, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+growth+and+differentiation+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Mech+Dev%22%5BJournal%5D)">Intestinal growth and differentiation in zebrafish.</a> Mech Dev. 122, 157-173 (2005).</li>
<li>Wullimann, M. F., Rupp, B., Reichert, H. Neuroanatomy of the zebrafish brain : a topological atlas. , Birkhäuser Verlag. (1996).</li>
</ol>

동물 실험은 펜실베니아 기관 애니멀 케어 및 사용위원회의 대학에 의해 명시된 지침과 규정에 따라 수행되었다.

시약 : 0.2 % Tricaine (에틸 3 aminobenzoate) 200 MG tricaine 분말 97.9 ML DD 물 ~ 1 ML 1 M 트리스 (산도 9) 7.0 산도를 조정 인산은 생리 (PBS)를 버퍼 4.0 g NaCl 0.1 g KCl 100 ML 0.1 M PO 4 버퍼, pH를 7.3 150 ML DH 2 O 링거스 솔루션 6.7g NaCl 0.2g KCl 0.2g CaCl 2 1.2g의 Hepes 1 LH 2 O 7.2 산도를 조정 장비 : 매트와 해부 접시 전자 현미경 과학 카탈로그 # 70540 Vannas 스프링 가위 파인 과학 도구 카탈로그 # 91500-09

성인 zebrafish에서 기관의 해부

Dissection of Organs from the Adult Zebrafish

지난 20 년 동안, zebrafish는 척추 개발과 질병을 이해하는 강력한 모델 생물되었다. 배아 및 유충의 실험 분석 광범위하며 형태가 잘 문서화되어 있지만, 함께 어른과 함께 작업을위한 기술과 성인 zebrafish의 해부학 및 성인 구조와 장기 발전 연구에 대한 설명이 부족합니다. 유충의 기관들은 전체적인 구조, 형태, 그리고 어른 전환하는 애벌레 동안 해부학 위치에 중대한 변화를 받고있다. 내부의 장기는 거대한 성장과 개조를 받아야하는 동안 외부, 투명 유충은 그 특성 성인 줄무늬 안료 패턴과 결합하여 골반 지느러미를 개발하고 있습니다. 또한, bipotential 생식선의 primordium은 testis이나 난소 중으로 개발하고 있습니다. 이 프로토콜은 성인의 기관의 많은 식별하고 두뇌, 생식선, 위장병 시스템, 심장, 그리고 성인 zebrafish의 신장의 해부하는 방법을 보여줍니다. 해부하는 기관은 현장 하이브리드화에 immunohistochemistry, 조직학, RNA 추출, 단백질 분석, 및 다른 분자 기법을 사용할 수 있습니다. 이 프로토콜은 애벌레 기관의 리모델링, 성인 장기 시스템의 성인 및 기타 조사 특정 장기의 morphogenesis을 포함 zebrafish의 연구 확대에 도움이 될 것입니다.

이 프로토콜은 성인 zebrafish에서 장기를 식별하고 해부를위한 절차를 설명합니다.

성인 Zebrafish에서 기관의 해부

지난 20년 동안 제브라피시는 척추동물의 발달과 질병을 이해하기 위한 강력한 모델 생물로 자리 잡았습니다. 비록 실험적...

지난 20년 동안 제브라피시는 척추동물의 발달과 질병을 이해하기 위한 강력한 모델 생물로 자리 잡았습니다. 배아와 자어의 형태에 대해서는 많은 기록이 남아 있지만, 성체 제브라피시의 해부학적 설명과 성체를 다루는 기술에 대한 자료는 부족한 실정입니다. 펜실베이니아 대학교의 Mary Mullin 연구실에서는 생식샘 발달을 연구하며, 성체 물고기의 난소와 정소를 정기적으로 적출합니다.본 프로토콜에서는 생식선의 해부 방법과 더불어 다른 주요 기관계의 식별 및 해부 방법을 설명합니다. 먼저, 물고기를 마취 및 안락사시킨 후 해부 매트에 고정합니다. 물고기의 피부와 하부 근육을 제거하여 심장, 간, 장, 생식선 및 부레를 노출시킵니다.체강에서 내장 기관을 제거합니다. 추가적인 검사 또는 실험을 위해, 펜실베이니아 대학교 세포 및 발생 생물학과의 Mary Mullins 연구실 소속 Tripti Gupta가 성어의 여러 기관을 식별하고, 성체 제브라피시에서 이를 해부하는 방법을 시연할 것입니다. 명확하고 용이한 해부를 위해, 수컷 제브라피시에서는 정소, 위장관 및 신장을 해부하고, 암컷 제브라피시에서는 난소, 심장 및 뇌를 해부하겠습니다.장 내 음식물 양을 줄이기 위해, 해부 전날에는 물고기에게 먹이를 주지 마십시오. 수컷 제브라피쉬를 해부합니다.먼저 해부 매트, Venice Spring 가위, 포셉, 해부 핀, PBS가 담긴 접시, 그리고 마취 및 안락사시킨 물고기가 필요합니다. 페이퍼 타월로 물고기의 물기를 가볍게 닦아낸 후 옆으로 눕힙니다. 해부 매트 위에서 확인하면, 제브라피시는 단일 등지느러미와 뒷지느러미, 그리고 쌍을 이룬 배지느러미와 가슴지느러미를 가지고 있습니다.해부 핀을 사용하여 물고기의 꼬리 살집이 있는 부분과 안와(eye socket)의 복측을 통해 해부 매트에 고정합니다. 스프링 가위를 사용하여 항문지 바로 앞쪽의 물고기 배 부분 피부를 자릅니다. 항문지부터 아가미를 덮고 있는 딱딱한 덮개인 operculum까지 배를 따라 피부와 그 아래의 근육을 절개합니다.가위와 핀셋을 사용하여 덮개뼈와 가슴지느러미를 잘라내십시오. 이때 가슴지느러미 기저부에 위치한 두꺼운 뼈 부위인 가슴띠를 포함하여 절제합니다. 이를 제거하여 아가미를 노출시킵니다. 노출된 아가미 위쪽부터 물고기의 측면을 따라 뒤쪽으로, 그리고 항문지느러미까지 피부와 하부 근육을 절개하십시오.내장 기관을 노출시키기 위해 물고기 측면의 피부와 그 아래의 근육을 조심스럽게 제거합니다. 정소는 등쪽 체벽에 부착된 길고 하얀 쌍으로 된 기관입니다. 정소 하나를 분리하여 상온의 PBS가 담긴 접시에 넣습니다. 정소에 붙어 있는 지방을 제거합니다.해부 현미경 하에서 반사광을 이용하여 정소(testis)를 관찰하여, 정조세포(spermatogonia)부터 정세포(spermatids)까지 다양한 발달 단계의 생식 세포를 포함하는 낭(cyst)이 있는 세정관(seminiferous tubules)을 시각화합니다. 다음으로, 물고기의 체강에서 위장관을 제거합니다. 내장 기관 내에서는 녹색의 반투명한 액체가 채워진 주머니 형태인 담낭과 밝은 붉은색을 띠는 비장을 확인할 수 있습니다. 간은 큰 크기의 엽상 형태, 황갈색, 그리고 광범위한 혈관 분포를 통해 식별할 수 있습니다.장관을 나머지 장기들과 분리하여 길게 펴줍니다. 장관의 전방, 중앙 및 후방 영역은 상피 주름의 높이로 정의하며, 전방의 높이가 가장 높습니다. 장관의 일부를 PBS에 넣고 투과광을 이용하여 현미경으로 상피 주름을 관찰합니다.이제 부레를 관찰합니다. 부레는 기관을 통해 식도와 연결된 후실과 아리안 기관(Arian apparatus)을 통해 내이와 연결된 전실로 구성되어 있습니다. 부레를 제거하여 폐기하고, 물고기를 고정했던 핀을 뽑은 뒤 배 쪽이 위로 향하게 다시 고정하여 신장을 해부합니다.신장은 등쪽 체벽을 따라 위치한 반투명한 분홍색 구조물이며, 등쪽 대동맥 및 색소 세포와 연관되어 있습니다. 신장은 머리, 몸통, 꼬리 영역으로 나뉩니다. 자, 여기 머리, 신장 몸통, 그리고 꼬리가 있습니다.이것은 대동맥이며, 이것들은 색소 세포입니다. 신장 조직의 일부를 절제하여 현미경 아래 PBS에 놓으십시오. 바늘을 사용하여 신장 조직을 조심스럽게 분리하여 신세뇨관을 노출시킵니다.암컷 물고기의 해부를 위해서는 이전과 동일한 도구에 더해 미세 바늘, 면도날, 그리고 링거액(ringer solution)이 담긴 접시가 필요합니다. 심장 해부를 위해, 안락사시킨 물고기의 물기를 닦아내고 해부 매트에 고정합니다. 이전과 마찬가지로, 동일한 기법을 사용하여 암컷 물고기 옆면의 피부를 제거합니다.난소는 혈관이 풍부한 중장간막(mesenterium)에 의해 체강 내에 매달려 있는 두 개의 엽으로 구성된 구조입니다. 난소의 한쪽 엽을 제거하여 PBS에 넣으십시오. 현미경 하에서 입사광을 이용하여 난소를 관찰하십시오.미세 바늘을 사용하여 세포들을 떼어낸 다음, 크기와 외형에 따라 단계별로 분류할 수 있습니다. 다음으로, 물고기에서 심장을 적출합니다. 심장은 아가미의 후방 및 복측에 위치해 있습니다.먼저 심장과 그 주변 조직 전체를 절제하여 현미경 하의 PBS에 놓습니다. 섬세한 심방이 손상되지 않도록 주의하면서 심장 주변 조직을 조심스럽게 박리합니다. 박리된 심장을 링거액(ringer solution)에 넣고 현미경 아래에 배치합니다.심박동을 관찰하려면 심방, 심실 및 동맥구(bulbus arteriosis)를 확인하십시오. 뇌에 접근하려면 물고기의 핀을 제거하고 면도날로 머리를 분리하십시오. 핀셋을 사용하여 두개골의 복측면에서 가능한 한 많은 연조직을 제거하십시오.시신경교차(optic chiasm)를 확인한 후, 작은 스프링 가위를 사용하여 안구를 제거합니다. 핀셋으로 두개골을 부수어 열고 뇌의 복측에서 뼈를 제거합니다. 스프링 가위로 뇌신경을 절단합니다.필요한 경우, 머리를 PBS가 담긴 배양 접시로 옮깁니다. 머리를 뒤집어 현미경 하에서 뇌의 배측으로부터 피부와 두개골을 제거하고, 후각구를 확인합니다. 뇌장, 시신경교차, 소뇌 및 연수를 확인합니다.여기에 후각구, 청록색의 머리, 척수, 시신경엽, 소뇌와 연수가 있습니다. 심장, 위장관, 생식샘, 부레, 신장 및 뇌를 성체 제브라피쉬에서 적출하였습니다. 이제 이 기관들을 in situ hybridization, 면역조직화학, 조직학, RNA 추출 또는 기타 분자 생물학적 기법에 사용할 수 있습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

zebrafish의 신장은 모두 신장과 조혈 성인 줄기 / 전구 세포의 고향이며, 척추 모델 생물에서 이러한 세포 유형과 그들의 자손을 공부하기 위해 우수한 기회를 나타냅니다. 여기, 우리는 세포 분리, 이식 및 신장 및 / 또는 혈액 세포 집단의 표현 연구와 같은 애플 리케이션에 사용할 수있는 성인 zebrafish의 신장을 확인하고 수술 제거하는 연구자 수 있도록 상세한 해부 절차를 보여줍니다.

성인 Zebrafish의 신장의 해부

여러 발달 단계에있는 zebrafish 심장의 해부 및 격리에 대한 명확하고 표준화된 방법 설명되어 있습니다. 주석과 부량 기법도 설명합니다.

애벌레의 심장 해부, 소년과 성인 Zebrafish, Danio rerio</em

이 비디오는 생체 활성 화합물의 장 흡수를 평가하기 위해 장을 분리하는 기술을 설명합니다. 이 샘플에서는 면역 자극제의 흡수를 분석하기 위해 성체 제브라피시의 장을 분리할 것입니다.

성체 제브라피시 장 해부: 화합물 흡수를 분석하는 기술

이 비디오는 심장 발달, 성숙 및 노화를 연구하기 위해 여러 발달 단계에서 제브라피시로부터 심장을 분리하는 기술을 설명합니다.

심장 박리: 제브라피시 심장 발달을 관찰하는 방법

이 비디오는 성인 제브라피시의 뇌를 미세 해부하는 기술을 설명합니다. 이 방법은 더 자세히 연구할 수 있는 전체 뇌 유래 중성구를 얻는 데 도움이 됩니다.

제브라피쉬 뇌 해부: 물고기 신경생물학 기법

이러한 확산, 패턴, 차별화, 그리고 축삭지도 등의 발달 과정은 쉽게 제브라 피쉬의 척수에서 모델링 할 수 있습니다. 이 문서에서는, 우리는 이러한 이벤트의 시각화를 최적화하는 제브라 피쉬 배아에 대한 설치 절차를 설명합니다.

해부 및 제브라 피쉬 배아의 측면 장착 : 척수 개발의 분석

심혈관 연구를 위한 제브라피쉬의 사용은 성인 심장에 대한 연구로 확장되고 있습니다. 이러한 응용 분야의 경우, 심장 조직을 빠르고 간단하게 분리하는 것이 사후 변화를 피하고 적절한 수의 샘플을 얻는 데 중요합니다. 여기에서는 성체 제브라피시 심장을 빠르고 재현 가능한 방법으로 해부할 수 있습니다.

높은 처리량 응용 프로그램에 대한 성인 Zebrafish의 마음의 복구

여기서 우리는 제브라 피쉬 섹스의 분화 및 유지 보수의 조사를 용이하게 애벌레 제브라 피쉬의 성선 조직을 분리하기위한 프로토콜을 제시한다.

애벌레 Zebrafish의 생식소 조직의 해부

여기, 우리는 방법 프로토콜 neoangiogenesis 및 구조적인 변화에 연결 된 장기 혈관 병 리의 설정에서 빠른 읽기로 쉽게 성인 tg(fli:EGFP) zebrafish 망막 맥 관 구조 분석 수 있는 논의.

물고기는 눈을 통해 당뇨병을 공부: 기정, 시각화, 및 성인 tg(fli:EGFP) Zebrafish 망막 맥 관 구조 분석

이 프로토콜은 간 재생의 연구를 가능하게 하기 위하여 성인 얼룩말물고기에 있는 간의 복부 엽을 제거하기 위한 절차를 기술합니다.

성인 얼룩말 피시의 부분 간 절제술

본 프로토콜은 전기생리학적 연구에 적합한 성체, 청소년, 유충 및 배아 제브라피쉬(Danio rerio)로부터 생존가능한 심장 및 혈관 평활근 세포의 급성 단리를 기술한다.

전기 생리 학적 연구를위한 성체, 청소년, 애벌레 및 배아 제브라 피쉬에서 심장 및 혈관 평활근 세포 분리

배우세요 성인 제브라피쉬의 주요 기관 해부 기법을 통해 척추동물 발달생물학 연구를 수행하는 방법을. 이 프로토콜은 심장, 간, 소장, 생식선 등 내부 장기의 정밀 분리와 현미경 관찰을 가능하게 합니다.

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