Name: Mitochondria 높은 결합 랫 마음의 준비 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-09-23T17:30:00.000+00:00
Duration: 12 min 28 s
Description: 학습하세요 쥐 심장에서 고품질 미토콘드리아를 분리하는 방법을. 차등 원심분리와 저온 처리를 통해 세포 생물에너지학 및 단백질체학 연구에 필수적인 기능적 미토콘드리아를 얻을 수 있습니다.

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우리는이 프로 시저에 mitochondrial 생물학 많은 유용한 통찰력과 조언의 분야에 대한 저자의 소개 교수 A. Vinogradov 및 박사 베라 Grivennikova 감사합니다. 저자는 비디오 준비 도움 퀸즈 대학교 미디어 사무실에서 부인 아만다 McKintock에게 감사하고 있습니다.

소개 쥐의 심장에서 Mitochondria은 세포 대사의 과거 및 현재 연구에 대한 가장 일반적인 준비의 하나입니다. 그들은 야생 입력하거나 노크 아웃 동물에서 다량으로 신속하고 안정적​​으로 얻을 수 있습니다. 일반적인 절차는 트립신, 분류 및 차등 원심 분리에 의해 조직 소화로 구성되어 있습니다. 심장 (그림 1)을 포함한 다양한 조직에서 mitochondria의 분리 동안 보관해야 할 몇 가지 조건이 있습니다. <ul><li> 조직은 직접적으로 얻을 mitochondria의 수율에 영향을 미치는 때문에 철저하게, 다진되어야한다. 심장 조직은 작은 곡선 가위로 말하다하는 것이 가장 좋은 방법입니다 그리고 조직 연삭기는 1.0 주변 mm 직경의 콘센트 구멍의 직경과 마늘을 눌러 사용할 수없는 경우 Latapie 조직 분쇄기를 사용하여 다음 또는 수 있습니다. </li><li> 그것은 각 단계에서 솔루션의 온도를 유지하기 위해 필요합니다. 따라서 전체 절차는 차가운 방에서 모든 악기에 실시해야하고 솔루션을 준비하고 사전에 냉각해야합니다. 온도 조건이 유지되지 않으면 준비 안정 몇 가지 속성이 손실될 수 있습니다. Mitochondrial 구조 때문에 적극적인 교통 연구 중요 특히, 허용되지 않습니다 (원심 분리하는 동안 예를 들면) 정지 overfreezing 동결 매우 민감합니다. </li><li> 중요한 매개 변수는 프로 시저의 시간 길이입니다, 격리는 가능한 한 빨리 수행하며 얻은 준비는 즉시 사용할 수있다한다. 따라서, 수술 도구, 솔루션 및 어플 라이언 스는 사전에 준비해야합니다. </li></ul> 재료 및 악기 악기 <ol><li> 스트레이트 운영 가위, 샵 포인트 </li><li> 곡선 가위 </li><li> 집게 </li><li> 페트리 접시 </li><li> 작은 깔때기 + 나일론 필터의 조각 (prewashed) </li><li> 6 비커 ​​50 ML </li><li> 두 자성 stirrers 두 얼음 욕조 </li><li> 큰 얼음 목욕 </li><li> 이 작은 자석 막대 </li><li> 힘든 펠렛에 대한 Spatulas </li><li> 원심 분리기 튜브 </li><li> Latapie 조직 보도는 (마늘 프레스로 대체 가능) </li><li> 20ml 테플론 - 유리 homogenisers 1 - 2ml </li><li> 폐기물 비커 </li><li> 단백질 결정에 대한 최종 mitochondrial 정지 및 샘플 Eppendorf 튜브 </li><li> 얼음 욕조 </li></ol> 솔루션 (2 쥐 당 계산) : <ol><li> 워싱 버퍼 : 0.3 M의 자당, 10 MM의 HEPES (산도는 = 7.2), 0.2 MM EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) (1000 ML) </li><li> 절연 버퍼 : 0.3 M의 자당, 10 MM의 HEPES (산도 = 7.4), 0.2 MM EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산), 1 MG / ML BSA (시그마 A6003) (세척 버퍼에서 준비 100ml). 알부민 소 혈청은 저렴 지방산 무료 analogues로 대체 수 있습니다. 동일한 버퍼 또는 isotonic 유사 콘텐츠는 버퍼를 Resuspending으로 사용할 수 있습니다. </li><li> 트립신 (시그마 T8003) 솔루션 : 1mM HCL에 2.5mg/ml (0.5 ML) </li><li> 간장 콩에서 트립신 억제제 (시그마 T9128) 절연 버퍼의 6.5 mg/10 ML </li></ol> 프로토콜 절차의 일반적인 구조는 그림에 표시됩니다. 1. 마음은 냉각과 버퍼, 심실 조직은 excised 귤껍질과 트립신과 photolytic 치료하는 동안 homogenised 세탁에 세탁해야합니다. 정지는 낮은 속도 centrifuged하며 얻은 뜨는은 mitochondria 수집하는 높은 속도로 다시 centrifuged입니다. 계획 실험에 따라 resuspending 버퍼는 다른 isotonic 솔루션으로 대체하실 수 있습니다. 동물은 영국에 따라 종료했다 "동물 (과학 절차) 법." 잘린 다음 경추 전위에 의해. 그것은 바로 동물의 잘린 후 마음을 추출하는 데 필요한, ​​동물 종료 및 심장 추출 사이에 지연이 없다 그래야. mitochondria간에 병렬로 고립이 예상되는 경우 쥐 전에 실험에 밤새 금식을해야합니다. <ol><li> 버퍼 워싱 40 ML을 포함한 세 비커를 준비합니다. 다음 단계로 진행하기 전에 3-5 분 얼음 소금 목욕에서 그들을 쿨. 그들을 overfreeze 얼음 결정의 구름이 나타나도록 그냥 시작 후 즉시 사용하지 않도록하십시오. </li><li> 참수 암흑의 흉부를 열고 심장을 압축을 풉니다. 작은 incisions를 확인 후 바로 첫 번째 비커에 얼음처럼 차가운 솔루션에 마음을 전송할 수 있습니다. 혈액을 제거하고 두 번째 비커에 넣어 가슴을 묶어라. 각각의 마음에 대해이 작업을 반복합니다. </li><li> 필터 종이에 마음을 건조. 모든 지방, 응고된 혈액, auricles 및 fasciae과 수영장 심실 조직을 제거합니다. </li><li> 입자의 크기가 1-2mm에 대한 때까지 5 분 주위에 얼음에 페트리 접시에 작은 곡선 가위로 풀링 조직을 말하다. </li><li> 조직 보도에 다진 조직을 넣고 통과통과. 자료의 상당한 금액이 때문에 언론의 벽과 바닥의 모든 심장 조직을 수집 언론에 남아있을 수 있습니다 점에 유의하십시오. </li><li> 50 ML의 세척 버퍼로 비커에 자료를 전송하고 저어. 그런 다음 나일론 필터를 통해 현탁액을 필터링합니다. 워싱 버퍼와 필터 3 회에 다진 조직을 세척하고 여과물 폐기하십시오. </li><li> 워싱 버퍼 20 ML로 씻어 조직을 전송하고 자기 활동가에 얼음 욕조에 넣습니다. 지속적인 교반 하에서 트립신 솔루션의 0.5 ML를 추가하고 타이머를 시작합니다. 또 자기 활동가, 얼음 욕조와 두 번째 50 ML의 비커를 준비합니다. </li><li> 4 번째 잠깐 간단히 정지를 해산까지 몇 아래 스트로크와 작은 느슨하게 장착되어 유리 테플론 homogeniser (10 - 15ml)을 사용 부분에 의해 서스펜션 부분을 homogenise. homogenisation 후 두 번째 비커에 정지를 전송합니다. 당신이 총 정지 homogenisation 두 번 수행할 수 있도록, 9 번째 분의 절차를 반복합니다. 부화 15 분 후, 버퍼가 들어있는 트립신 억제제를 분리 10 ML을 추가, 1 분 알을 품다. </li><li> 나일론 필터를 통해 다시 정지를 필터링하고 여과물을 저장합니다. 워싱 버퍼의 15-20 ML 1 분 필터와 homogenise ​​왼쪽 미립자 분수를 수집합니다. </li><li> 여과액 및 600g에 15 분 원심 분리기로 homogenate를 결합합니다. </li><li> 조심스럽게 새로운 원심 튜브에 발생 뜨는을 필터링합니다. 펠렛의 오염을 방지하고 8,500g 15 분 다시 원심 분리기. </li><li> 고속 원심 분리 후 뜨는을 버리고 버퍼 폐기 무성한 하얀 바깥쪽 가장자리 층 1 ML과 펠릿 2-3 번 씻어. 주걱으로 펠렛을 휴식하지만 맨 아래에있는 적혈구의 붉은 자리를 피하십시오. 혈액 세포가 루스있다면, homogenisation 전에 정지에서 빨간색 비트를 제거합니다. </li><li> 부드러운 pipetting하여 작은 homogeniser하거나 또는와 펠렛을 Resuspend. 더 많은 Isolationbuffer과 정지를 희석하고 8천5백g 15 분 다시 원심 분리기. </li><li> 뜨는을 취소, 버퍼 (선택 isotonic 버퍼) Resuspending에서 펠렛을 resuspend 다시 원심 분리기. </li><li> 결과 갈색 펠렛은 씻어 그대로 mitochondria가 포함되어 있습니다. 원하는 isotonic 버퍼의 아주 작은 볼륨에서 펠렛을 Resuspend. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/2202/2202fig1.jpg" alt="그림 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 1"> 그림 1. mitochondria 쥐 심장의 분리의 단계 절차에 의해 단계를 보여주는 제도. 상단 부분, 단계 1-9 : 조직 파괴, 트립신 처리 및 homogenisation, 하단 부분, 단계 10-15 : 차등 원심 분리.

<ol><li>Jacobus, W. E., Saks, V. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Creatine+kinase+of+heart+mitochondria%3A+changes+in+its+kinetic+properties+induced+by+coupling+to+oxidative+phosphorylation%5BTitle%5D)+AND+%22Arch.+Biochem.+Biophys%22%5BJournal%5D)">Creatine kinase of heart mitochondria: changes in its kinetic properties induced by coupling to oxidative phosphorylation.</a> Arch. Biochem. Biophys. 219, 167-178 (1982).</li>
<li>Gostimskaya, I. S., Grivennikova, V. G., Zharova, T. V., Bakeeva, L. E., Vinogradov, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+situ+assay+of+the+intramitochondrial+enzymes%3A+use+of+alamethicin+for+permeabilization+of+mitochondria%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">In situ assay of the intramitochondrial enzymes: use of alamethicin for permeabilization of mitochondria.</a> Anal. Biochem. 313, 46-52 (2003).</li>
</ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

커플링의 높은 학위를 그대로 mitochondria의 격리에 대한 자세한 급속한 프로토콜이 설명되어 있습니다. 획득 준비는 셀룰러 bioenergetics, proteomic 연구 또는 mitochondrial DNA와 지질 콘텐츠의 분석 기능이나 구조 연구에 사용할 수 있습니다. 이온과 신진 대사 중간체의 적극적인 교통 Biophysical 연구도 수행할 수 있습니다. 그것은 더 submitochondrial 입자, 바깥쪽 막이나 산화 인산화의 정화 별도의 구성 요소를 분리하기 위해 mitochondrial 준비를 처리할 수 있습니다. 설명한 방법은 제이 코 버스와 삭스 1 고립의 표준 프로토콜의 수정입니다. 준비 mitochondria의 예상 수확량은 마음 당 mitochondrial 단백질과 malate / 등 준비 글루 탐 산염은 간의 차이에 대한 호흡 관리 비율의 약 10-15 MG는 0.12 주위 μmol O 2 xmin -1 xmg 단백질의 주 IV의 호흡과 함께 8-12 23 -1 ° 0.25 M의 자당, 10 MM KCl, 0.2 MM EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산), 초기화 상태 III의 호흡 150 μm의의 ADP (정확한 실험 조건 및 추가에 대한 심판을 참조하십시오 5 MM의 칼륨 나트륨 (산도 8.0)를 구성된 매체 C 2.). 특별한주의는 격리 절차의 시작하기 전에 몇 가지 기술적인 세부 정보를 제공해야합니다. 그것은 깨끗한 폴리 카보 네이트 또는 폴리 프로필렌의 원심 분리기 튜브를 사용하는 데있어 매우 중요합니다, 따라서 튜브는 철저하게 깨끗한 칫솔과 온수, 그러나 세제 치료를 최소한으로 유지되어야 함께 세탁해야합니다. 또한, 그것은 고립되기 전에 하루 추운 방에 필요한 모든 유리와 악기를 수집하는 것이 좋습니다. 절연 동안 비커에 flasks에서 버퍼를 전송할 때, а 특별한주의가 솔루션에 얼음 물이 방울을 방지하기 위해 제공해야합니다. 조직을 다룰 때 그것은 심장 추출이 동물의 잘린 및 조직을 냉각 사이에도 짧은 시간 지연이 부분 uncoupled mitochondria을 초래 하리라는 사실 때문에 가능 한한 빨리 수행되어야한다는 것을 강조해야합니다. 신속한 냉각 및 제거 마음의 철저한 세척는 헤모글로빈과 적혈구 NADase에서 무료로 표준 준비를 얻기 위해 필수적입니다. 트립신은 homogenisation 중 전단의 강제로 조직의 자화율을 높일 결합 단백질의 저하에 사용됩니다. 그것이 열등 품질의 mitochondria 결과 이​​후 프로 테아제에 대한 조직의 장시간 노출을 피해야한다. 고속 centrifugations 후 원심 분리기 튜브의 벽은 벽에 축적된 지방 소재의 예금을 제거 티슈로 닦아해야합니다. 최종 resuspension의 경우는 저장 (심장 당 버퍼 150-200 μl) 동안 mitochondrial 기능의 손실을 최소화하기 위해 최종 버퍼의 낮은 볼륨을 사용하는 것이 좋습니다. 이가의 양이온의 수송 연구에 대한 chelating 요원들이 EGTA 무료 매체를 여러 번 씻어 및 절연 후 첫번째 시간 이내에 사용해야하므로 mitochondria 최종 준비에 존재이어야합니다.

mitochondria 높은 결합 랫 마음의 준비

Preparation of Highly Coupled Rat Heart Mitochondria

산화 인산화 과정에서 세포 ATP의 생성에 mitochondria의 기능은 널리 인정되고 있습니다. 지난 수십 년 동안 에너지의 생성보다 mitochondria 기타의 기능에 대한 우리의 이해에 상당한 진보가 있었있다. 이러한 organelles, 포유류의 개발을 신호 및 세포 대사 및 세포 증식 사이의 협력에 자신의 기여뿐만 아니라 노화 역할, apoptosis의 역할을 포함합니다. mitochondria에 의해 변조된 생물 학적 과정에 대한 우리의 이해는 고립과 실험실 동물의 조직에서 손상 mitochondria의 취급에 대한 강력한 방법을 기반으로합니다. 쥐의 심장에서 Mitochondria 노크 아웃 동물 연구를 포함하여 세포 대사의 과거 및 현재 연구에 대한 가장 일반적인 준비의 하나입니다. 여기 커플링의 높은 학위를 그대로 mitochondria의 격리에 대한 자세한 신속한 방법을 설명합니다. mitochondria 쥐 심장의 이러한 준비 셀룰러 bioenergetics, mitochondrial DNA, 단백질 및 lipids의 biomolecules, proteomic 연구 및 분석의 교통에 대한 기능 및 구조 연구를위한 훌륭한 개체입니다.

우리는 세포 bioenergetics, biophysical 측정, proteomics 또는 mitochondrial DNA와 lipids 분석의 기능이나 구조 연구 mitochondria 순수, 높은 결합 쥐 심장의 절연을위한 а 프로토콜을 설명합니다.

Mitochondria 높은 결합 랫 마음의 준비

산화적 인산화 과정에서 세포 ATP 생성을 위한 미토콘드리아의 기능은 널리 알려져 있습니다. 지난 수십 년 동안...

저는 Ska 박사입니다. 오늘은 적심장 미토콘드리아를 분리하는 방법을 보여드리겠습니다. 조직에서 미토콘드리아를 분리할 때의 핵심 단계는 먼저 기계적 또는 효소적 처리를 통해 조직과 세포를 파쇄하는 것입니다.둘째, 저속 차등 원심분리를 통해 잔해물과 파괴된 세포 및 핵을 제거합니다. 셋째, 고속 원심분리를 통해 미토콘드리아를 수집합니다. 기구와 용액은 사전에 콜드룸에서 준비하여 보관하였습니다.분리 과정에서 몇 가지 조건을 유지해야 합니다. 첫째, 조직 파쇄 정도가 미토콘드리아 수율에 직접적인 영향을 미치므로 조직을 충분히 파쇄해야 합니다. 둘째, 모든 단계에서 낮은 온도를 유지하되, 특히 원심분리 중에 용액이 과하게 얼지 않도록 주의하십시오.셋째, 작업 속도가 빠를수록 얻어지는 미토콘드리아의 품질이 더 좋습니다. 동물은 영국 동물 과학 절차법(UK Animal Scientific Procedure Act)에 따라 희생시켰으며, 이후의 모든 작업은 냉장실에서 수행하였습니다. 세척 버퍼 40 mL가 담긴 비커 3개를 준비합니다.다음 단계로 진행하기 전, 이를 얼음물 배스(ice cold bath)에서 3~5분 동안 냉각시키십시오. 과하게 얼리지 않도록 주의하고, 얼음 결정이 빠르게 나타나기 시작한 직후 즉시 머리가 제거된 붉은색 개체의 흉부를 열어 심장을 추출하십시오. 작은 절개를 가한 다음, 심장을 즉시 얼음 냉각 용액으로 옮기십시오.첫 번째 비커에서 심장을 짜내어 혈액을 제거한 후, 이를 두 번째 비커에 넣습니다. 각 심장에 대해 이 작업을 반복합니다. 헤모글로빈, 적혈구 및 adas가 없는 표준 표본을 얻기 위해서는 적출한 심장을 빠르게 냉각하고 세척하는 것이 필수적입니다.거름종이 위에서 심장을 건조시킵니다. 모든 지방, 응고된 혈액, 그리고 동맥을 빠르게 제거합니다. 그 후 심실 조직을 떼어냅니다.그런 다음 페트리 접시 위에서 작은 곡선 가위로 조직을 잘게 자릅니다. 5분 동안 MIT 조직을 조직 속에 넣습니다. 누른 후 통과시킵니다. 조직을 누른 후, 재료를 50 mL의 세척 버퍼가 담긴 비커로 옮기고 교반합니다.그런 다음 현탁액을 아일랜드 필터로 여과합니다. 필터 위의 조직을 세척 완충액으로 3회 세척하고 필터는 폐기합니다. 세척된 조직을 20 mL의 세척 완충액으로 옮긴 후, 마그네틱 외부의 아이스 배스에 둡니다.지속적으로 교반하면서 용액에 trips를 추가하고, 배양 4분째에 타이머를 시작하십시오. 작고 느슨하게 맞물린 유리 테플론 균질기를 사용하여 현탁액을 조금씩 나누어 짧게 균질화합니다. 균질화 후, 현탁액을 다른 비커로 옮겨 두 번째 교반기에서 교반하십시오.9분째에 해당 절차를 반복하여, 두 번째 균질화 이후 총 두 번의 균질화를 수행합니다. 배양 15분째에 트립신 억제제가 포함된 분리 버퍼 10 mls를 첨가하고 1분 더 배양합니다. 현탁액을 나일론 필터로 다시 여과합니다. 이때 여과액은 보관하고, 나머지 조직을 균질기에 옮겨 균질화합니다.1분 동안 원심분리 튜브에서 균질액과 여과액을 혼합합니다. 튜브의 무게 균형이 동일한지 확인하고, 저속으로 15분 동안 원심분리합니다. 600 G에서 생성된 상층액을 새로운 원심분리 튜브에 조심스럽게 여과합니다.펠렛에 의한 오염을 방지하며 8,500 G에서 15분 동안 다시 원심분리합니다. 고속 원심분리 후, 상층액을 제거하고 버퍼로 펠렛을 헹구어 흰색의 솜털 같은 외곽 층을 제거합니다. 분리 버퍼 1mL를 추가합니다. 튜브를 좌우로 기울여 남은 버퍼를 제거합니다.울트라-로우 어드히전(ula) 팁을 사용하여 하단의 적혈구 붉은 부분을 피하며 펠렛을 분쇄하거나, 소형 균질기로 펠렛을 현탁시키거나 또는 부드럽게 파이펫팅하여 분산시킵니다. 현탁액을 분리 완충액으로 더 희석한 후 8,500 G에서 15분 동안 다시 원심분리합니다. 상층액을 제거합니다. 펠렛을 Resus 현탁 완충액에 현탁하고 8,500 G에서 다시 원심분리합니다. 결과물로 얻어진 갈색 펠렛에는 세척된 온전한 미토콘드리아가 포함되어 있습니다. 펠렛을 매우 적은 양의 resus 현탁 완충액에 다시 현탁합니다.사용하는 부피가 적을수록 미토콘드리아 조제물의 안정성이 높아집니다. 보통 심장 하나당 200 µL의 완충액이면 충분합니다. 조제된 미토콘드리아의 예상 수율은 심장 하나당 약 10~15 mg의 미토콘드리아 단백질입니다.해당 조제물의 complex I 기질에 대한 호흡 조절 지수(respiratory control ratio)는 8에서 12 사이여야 합니다. 실험 준비에 좋은 결과 있기를 바랍니다.

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JoVE Journal

Biology

생물학

본 논문에서 우리는 성인 쥐 심장 myocytes를 분리하고 문화에 전형 방법을 설명했다. Collagenase와 단백 분해 효소는 단일 myocytes을 소화하고 격리하는 데 사용됩니다. Myocytes는 대부분의 실험 요구 사항을 충족이 프로토콜을 따라 교양.

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미토콘드리아 절연 마우스 중심부에 mitochondrial 투과 전환 기공 개구의 측정을위한 spectrofluorometric 프로토콜이 여기에 제공됩니다. 검정은 미토콘드리아 칼슘의 동시 측정을...

미토콘드리아 절연 마우스 중심부에 투과율 전환 기공 영업의 다중 매개 변수 측정

포유 동물 조직 생검에서 미토콘드리아의 신속한 분리를위한 방법을 설명한다. 쥐 간 또는 골격근 제제 상용 조직 dissociator 균질화하고, 미토콘드리아는 나일론 메쉬 필터를 통한 여과에 의해 미분을 분리 하였다. 대안적인 방법을 사용하여 100 분간 - 미토콘드리아 분리 시간은 60 비교 &lt;30 분이다.

조직 해리 차동 여과 이식 미토콘드리아의 신속한 분리 및 정제

쥐 심장에서 다른 심장 세포 유형의 분리를 위해 몇 가지 프로토콜이 개발 및 기술되었습니다. 여기에는 실험 준비 비용을 줄이기 위해 단일 준비에서 고품질 주요 심장 세포 유형 (cardiomyocytes, endothelial cell, fibroblast)을 분리 할 수있는 최적화 된 프로토콜이 설명되어 있습니다.

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여기, 우리는 고립 된 미토 콘 드리 아 및 경작된 한 세포에 있는 미토 콘 드 리아 캘리포니아2 + 유입의 측정에 대 한 두 개의 프로토콜을 제시. 고립 된 미토 콘 드리 아에 대 한 우리는 플레이트 리더 기반 Ca2 + 가져오기 세부 분석 결과 사용 하 여 Ca2 + 민감한 염색 칼슘 그린-5N. 경작된 한 세포에 대 한 우리 confocal 현미경 검사 법 방법 Ca2 + 염료 오전-2/로드를 사용 하 여 설명 합니다.

고립 된 미토 콘 드리 아 및 경작된 한 세포에 있는 미토 콘 드 리아 칼슘 유입의 분석

여기, 우리가 보존된 방출 분수와 함께 대사 증후군 관련 심장 마비의 쥐 모델에서 단일 셀 심 방 cardiomyocytes의 격리에 대 한 최적화, Langendorff 기반 절차를 설명합니다. 심장 구멍의 intraluminal 압력의 수동 조절 기능 그대로 myocytes 흥분-수축-결합 연구에 대 한 적합 한를 구현 됩니다.

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이전에 냉동 보관 된 고체 조직에서 미토콘드리아 농축 샘플의 준비는 다양한 실험 양식에서 미토콘드리아의 기능적 및 분석 평가를 모두 수행 할 수 있었습니다. 이 연구는 냉동 심장 조직에서 미토콘드리아농축 제제를 준비하고 미토콘드리아의 분석 평가를 수행하는 방법을 보여줍니다.

소우의 자손에서 이전에 냉동 된 심장 조직에서 미토콘드리아 전자 전송 복합체 측정 : 운동 유발 미토콘드리아 생물 에너지 변화를 평가하는 모델

이 방법은 야생형 대조군에 비해 증가된 심근세포 미토콘드리아 코엔자임 Q 함량을 갖는 신생아 깨지기 쉬운 X 증후군 마우스에서 기공 개방에 대한 전압 역치를 결정하기 위해 낮은 전도도 양성자 누출에 대한 미토콘드리아 투과성 전이 기공의 기여를 이용한다.

코엔자임 Q 과량의 설정에서 미토콘드리아 투과성 전이 기공의 개방 확률의 평가

미토콘드리아에 대한 생체 에너지 및 대사체 연구는 많은 질병에서 미토콘드리아의 다면적인 역할을 밝혀냈지만, 이러한 세포 소기관에 대한 분리 방법은 다양합니다. 여기에 자세히 설명된 방법은 여러 조직 소스에서 고품질 미토콘드리아를 정제할 수 있습니다. 품질은 호흡 조절 비율 및 고해상도 호흡 측정법으로 평가된 기타 지표에 의해 결정됩니다.

설치류 심장 조직으로부터 강력한 미토콘드리아 분리 

본 연구는 호흡량 측정 및 효소 분석을 통해 미토콘드리아 기능에 대한 생체이물의 효과를 연구하는 방법론을 소개한다. 다양한 종의 전자 전달 사슬 조절을 조사하여 곤충 매개체 매개 질병에 대한 표적 생물 살충제 개발에 대한 통찰력을 제공합니다.

고립된 미토콘드리아에서 이종생물 수송 및 효과 공개: 호흡량 측정 및 효소 분석의 통찰력

학습하세요 쥐 심장에서 고품질 미토콘드리아를 분리하는 방법을. 차등 원심분리와 저온 처리를 통해 세포 생물에너지학 및 단백질체학 연구에 필수적인 기능적 미토콘드리아를 얻을 수 있습니다.

Mitochondria 높은 결합 랫 마음의 준비

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