Name: Neurosphere 분석을 사용하여 마우스 배아 신경 줄기 세포 문화 구축 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-01-11T20:10:00.000+00:00
Duration: 11 min 54 s
Description: 배우세요 E14 마우스 배아 뇌에서 신경 줄기 세포를 분리하고 신경구 배양법으로 확장하는 방법을. 강간돌기 조직을 채취하여 단일 세포 현탁액을 만들고 배양하는 전 과정을 확인하세요.

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1. 기본은 절개로 진행하기 전에 설정 : <ol><li> 전체 NSC 매체의 적절한 볼륨이 각각 9시 1분 비율 NeuroCult NSC 기초 중간 및 NeuroCult NSC 확산 보조 식품을 혼합하여 준비가되어 있습니다. </li><li> 매체는 37 ° C의 물을 욕조에 워밍업이다. </li><li> 항생제의 높은 농도 (10 %)와 추위 HEPES 버퍼 최소 필수 매체 (앙)은 절개와 세탁 목적을 위해 준비가되어 있습니다. 또한, 항생제의 보완과 함께 NSC 기초 매체는 또한 이러한 목적으로 사용할 수 있습니다. </li><li> 항생제를 포함하는 감기 앙의 25-30 ML은 배아를 수집 무균 50 ML 튜브에 적절합니다. </li><li> 여러 10cm 플라스틱 배양 접시는 절개시 태아와​​ 두뇌를 개최하는 데 필요한 또한 해부 조직을 개최합니다. </li><li> 배아 (대형 가위, 작은 지적 가위, 큰 집게, 작은 곡선 포셉) 또는 배아 뇌 해부를위한 것이 (작은 포셉, 곡선 좋은 포셉, 45 ° 직각 좋은 포셉, 작은 가위)를 제거하기 위해 필요한 수술 도구는 사용 소독 아르 250 유리 구슬 살균기 ° C 또는 기타 가능한 압력솥 방법. </li><li> 해부 현미경은 70 % 알코올로 닦아 및 층류 또는 PC2 후드 내부에 설정됩니다. </li></ol> 2. E14 마우스 두뇌와 마이크로 절개를 수확 : <ol><li> 임신 마우스를 성관계 시간이 하루에 하나의 기관 승인 동물 프로토콜에 따라 태동 14 일 anesthetized입니다. </li><li> 자궁 경부 전위는 동물이 고통과 고통을 경험하게하지 않도록하기 위해 수행됩니다. </li><li> anesthetized 마우스는 흡수성 티슈에 미치는 뒷면에 마련이고, 복부는 지역을 소독하기 위해 70 %의 에탄올로 씻어서 있습니다. </li><li> 복부 이상의 피부는 큰 집게를 사용하여 파악하고, 다음 피부와 기본 근막은 복강과 자궁 뿔을 폭로 큰 가위로 절단됩니다. </li><li> uteri 작은 집게와 가위로 제거되고 50 ML 원뿔 튜브 함유 추위 앙을로 전송됩니다. </li><li> 자궁 조직이 후드로 전송 후 혈액과 머리카락과 같은 가능한 오염 물질을 제거하는 신선한 무균 추위 앙의 충분한 볼륨 한두 번 씻어서 있습니다. </li><li> 자궁 조직은 다음 차가운 앙을 포함 10cm 페트리 접시로 전송됩니다. </li><li> 자궁 뿔은 작은 곡선 집게와 가위를 사용하여 개설하고 배아는 추위 앙을 포함하는 새로운 10cm 요리로 전송됩니다. </li><li> 태아의 머리가 자궁 경부 척수 수준에서 분리되어 추위 앙을 포함하는 다른 페트리 접시로 전송됩니다. </li><li> 페트리 접시는 두개골에서 뇌를 제거하는 해부 현미경으로 전송됩니다. </li><li> 머리는 머리의 등 부분의 면이 위쪽 직면만큼 꼬리 측면에서 멋진 곡선 포셉 개최하고 있습니다. 를 사용하여 마이크로 가위, 먼저 수평 상처가 눈 위에서 만든 다음 머리 뒤쪽으로 이마의 정중선에서 계속됩니다. 피부와 두개골을 통해 절감과 기본 뇌 손상하지 않도록하십시오. </li><li> 두뇌는 곡선 집게를 사용하여 역방향 움직임에 절단 부분의 가장자리를 추진하여 두개골에서 제거됩니다. 모든 두뇌는 두개골에서 제거되기 전까지는이 절차는 계속됩니다. </li><li> 두뇌는 지속 등의 측면이 상처가 후각 구근에서 ganglionic eminences을 폭로하는 북반구의 뒷면에 걸친 각 반구의 피질을 통해 수행되는 microscissors를 사용하는 이상하고 직면되도록 곡선 집게를 사용하여 개최됩니다. </li><li> 한손에 곡선 포셉와 다른 45 ° 직각 집게를 사용하여 cortices의 컷 펄럭이 확산되고 ganglionic eminences 밖을 해부하고 있습니다. </li><li> 해부 조직은 멸균 10cm 페트리 접시에 배치되며, 모든 머리가 마이크로 해부 때까지이 절차가 반복됩니다. </li><li> 조직 조각은 1 ML 피펫 팁의 NSC 매체 1 ML을 사용하여 수집하고 15 ML의 원심 관으로 전송됩니다. </li><li> 조직은 철저히 다음 dissociated이지만, 부드럽게 튜브의 바닥에 피펫 팁을 누르고 정지를 pipetting 아래로. 이 방법은 대단히 짧은 시간은 단일 세포로 헤어 졌 수 있습니다. Pipetting는 우유 같은 현탁액이 달성되도록 3-4 회를 실시합니다. 그런 다음, 정지가 아닌 dissociated 대단히 짧은 시간이 precipitates만큼 1~2분을 받아들여야 허용됩니다. </li><li> 거의 모든 세포 현탁액은 다른 튜브로 전송됩니다 그리고 NSC 매체의 또 다른 한 ML은 설명된대로 남아있는 대단히 짧은 시간 및 단일 세포에 dissociated에 추가됩니다. </li><li> 튜브의 내용은 700rpm (110g)에서, 실온에서 5 분 풀링 및 centrifuged 있습니다. </li><li> 뜨는은 실제 펠렛 아래로 떨어져 진공 청소기로 청소를하고, 세포가 완전한 NSC 매체 1 ML에 resuspended 있습니다. </li><li> 매체는 부드럽게하기 위해 아래 pipetted 있으며단일 단일 세포 현탁액 있습니다. </li><li> 세포 현탁액의 10 μL는 셀 카운트를 수행하는 trypan 파랑 90 μL와 혼합됩니다. </li><li> 마지막으로, 세포가 20ng / ML 표피 성장 인자 (EGF)와 보충 전체 NSC 매체에 2x10 5 셀 / ML의 밀도에 도금입니다. 5 ML 매체는 T175 flasks에 대한 T75 40 ML에 대한 T25, 20 ML에 사용됩니다. </li><li> 37 ° humidified 인큐베이터에서 C 5 % CO 2에서 incubated 때 Neurospheres는 5~7일를 형성하고 있습니다. 6-7일에서 분야는 150-200 미크론 사이에 측정해야하며 subculture (통로)을 준비합니다. </li></ol> 3. Passaging 및 배아 NSCs의 확장 : <ol><li> neurospheres가 subculture (직경 150-200 μm의)에 대한 준비가되면, 중지 분야와 매체는 flasks에서 삭제 적절한 크기 무균 조직 배양 튜브에 배치하고,시 5 분 700 RPM (110g)에 centrifuged입니다 상온. </li><li> 뜨는은 삭제되고 분야는 0.05 % 트립신 - EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) 1 ML에 resuspended 있습니다. </li><li> 세포 현탁액은 다음 2-3 분 37 ° C의 물을 욕조에 incubated이며, 다음 대두 트립신 억제제의 동등한 볼륨 트립신의 활동을 중지하는 데 사용됩니다. </li><li> 세포 현탁액은 부드럽게 트립신가 완전히 inactivated되었는지 확인하기 위해 아래 pipetted하고 있습니다. </li><li> 세포 현탁액은 5 분 700 RPM (110g)에 centrifuged입니다. 그런 다음, 표면에 뜨는이 제거되고 세포 전체 NSC 매체 1 ML에 resuspended 있습니다. </li><li> 세포 현탁액의 10 μL는 셀 카운트를 수행하는 trypan 파랑 90 μL와 혼합됩니다. </li><li> 세포는 적절한 크기의 조직 문화 플라스크에 20ng / ML EGF와 보충 전체 NSC 매체에 5x10 4 셀 / ML의 농도에 도금입니다. 5 ML 매체는 T175 flasks에 대한 T75 40 ML에 대한 T25, 20 ML에 사용됩니다. </li><li> 37 ° humidified 인큐베이터에서 C 5 % CO 2에서 incubated 때 보조 neurospheres는 5~7일를 형성하고 있습니다. </li></ol> 4. 대표 결과 : 기본 배아 NSC 문화에서, 세포의 대부분은 비대가 될 것이며, 도금시 조직 문화 요리에 첨부합니다. 세포의 대부분이 중 죽게하거나 2-3일 후 차별화되지만, proliferative 전지는 기판 (그림 1)에서 분리됩니다 세포의 작은 클러스터를합니다. 문화의 첫 48 시간에 큰 회전 타원체의 집계의 형성은 주요 분야에 대한 착각해서는 안됩니다. 집계 형성은 주로 파편과 문화의 비 dissociated 조직 대단히 짧은 시간의 양을에 따라 달라집니다. 진정한 neurospheres이 단계 밝고하고 크기 증가 (그림 2)와 같은 더 구형이된다. 작은 microspikes이 가능한 건강 분야 (그림 3)의 바깥쪽 표면에 나타납니다. 5~7일 후, 분야는 둥근 수 있지만 압축 안된다, 그리고 직경 150 사이 200 μm의 측정해야합니다. neurospheres가 (문화 9~10일 이후) 너무 커질 수있다면, 그들은 집계를 형성하거나 (비디오 참조) 분야의 중심에 있기 때문에 세포 죽음의 어두운 색상이 될 수도 있습니다. 대형 neurospheres 결국 (기판에 연결하여 주변위한 마이 그 레이션) 현장에서 차별 시작 있습니다. 그것은 또한 큰 neurospheres을 떼어 놓다하기 어려운 그들을 subculture. <img src="/files/ftp_upload/2457/2457fig1.jpg" alt="그림 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 1"> 그림 1. 삼일 도금 후 기본 E14 NSC 문화. 화살표 NSCs의 proliferating 클러스터를 보여줍니다. 원본 확대, 20x <img src="/files/ftp_upload/2457/2457fig2.jpg" alt="그림 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 2"> 그림 2. 칠일 도금 후 기본 E14 NSC 문화. 원본 확대, 10X <img src="/files/ftp_upload/2457/2457fig3.jpg" alt="그림 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 3"> 그림 3. 도금 후 패시지 한 E14 neurospheres 오일합니다. 분야의 주변에있는 마이크로 스파이크를 (화살표) 참고. 원본 확대, 20x

<ol><li>Reynolds, B. A., Weiss, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+neurons+and+astrocytes+from+isolated+cells+of+the+adult+mammalian+central+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system.</a> Science. 255, 1707-1710 (1992).</li>
<li>Morshead, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+stem+cells+in+the+adult+mammalian+forebrain%3A+a+relatively+quiescent+subpopulation+of+subependymal+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Neural stem cells in the adult mammalian forebrain: a relatively quiescent subpopulation of subependymal cells.</a> Neuron. 13, 1071-1082 (1994).</li>
<li>Craig, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+growth+factor+expansion+of+endogenous+subependymal+neural+precursor+cell+populations+in+the+adult+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">In vivo growth factor expansion of endogenous subependymal neural precursor cell populations in the adult mouse brain.</a> J Neurosci. 16, 2649-2658 (1996).</li>
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<li>Reynolds, B. A., Rietze, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+stem+cells+and+neurospheres--re-evaluating+the+relationship%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Neural stem cells and neurospheres--re-evaluating the relationship.</a> Nat Methods. 2, 333-336 (2005).</li>
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</ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

neurosphere 분석 때문에 간단하고 재현성의 신경 줄기 세포 1-5의 격리 및 확장을 위해 선택의 방법입니다. 이 분석은 체외에서 생체내 연구에서 모두 사용할 수 undifferentiated CNS 전구체 세포의 대규모 발전을위한 소중한 도구입니다. 그것은 neurospheres는 타고난 신경 줄기 세포 및 기타 제한된 progenitors 모두에서 발생 될 수 있다고 강조해야합니다. 따라서 neurosphere 성형 주파수를 계산하는 것은 단순히 특정 신경 세포 인구 6 타고난 NSCs의 개수를 과대 평가. 타고난 NSCs의 빈도를 추정하기 위해, 그것은 강력하게이 목적 7에 대한 개발되었습니다 세포 분석을 형성 신경 콜로니 (N - CFCA)를 사용하는 것이 좋습니다. E14 NSCs의 일관된 고품질 neurosphere 문화를 위해, 우리는 좋습니다 <ol><li> 배아를 수확하기...

* 앙을 만들려면, 1M HEPES의 멤 and160ml의 110L 패킷을 혼합하고 증류수를 사용하여 8.75 L로 볼륨을 가져. 7.4에 대한 최종 PH를 설정하고 그것은 4 ° C. 저장을

neurosphere 분석을 사용하여 마우스 배아 신경 줄기 세포 문화 구축

Establishing Embryonic Mouse Neural Stem Cell Culture Using the Neurosphere Assay

mammalians에서 줄기 세포는 동물의 수명 동안 여러 조직과 장기의 세포 창 및 갱신을 유지하기 위해 undifferentiated 세포의 소스 역할을합니다. 그들은 잠재적인 노화 과정에서 부상과 질병의 과정에서 길을 잃었 세포를 바꿀 수 있습니다. 신경 줄기 세포 (NSCs)의 존재가 처음 소설 혈청 무료 문화 시스템, neurosphere 분석 (NSA)를 사용하여 성인 포유류의 중추 신경계 (CNS)에 레이놀즈와 바이스 (1992)에 의해 설명되었다. 이 분석을 사용하여, 그것은 또한 배아 CNS의 다른 지역에서 NSCs을 분리하고 확장 가능합니다. 체외 확장의 NSCs에서 이들은 multipotent 있으며 CNS의 세 가지 주요 세포 유형 상승을 줄 수 있습니다. NSA가 수행하는 비교적 간단한데 동안 안정적이고 일관된 결과를 달성하기 위해 필요합니다 여기 증명 절차에주의. 이 비디오는 사실상 NSA가 14 마우스 뇌 조직을 생성하고 배아 날로부터 NSCs을 확장하는 방법을 보여줍니다 하나는 재현성 neurosphere 문화를 달성할 수 있도록 기술적인 세부 사항을 제공합니다. 프로 시저는 단일 세포 현탁액을 얻기 위해 NSC 매체에서 수확한 조직의 ganglionic eminences, 분리를 수확, 뇌 microdissection을 E14 마우스 배아를 수확하고, 마지막으로 NSA의 문화에 세포를 도금이 포함되어 있습니다. 문화 5-7일 후 결과 기본 neurospheres은 더 이후의 실험에 대한 NSCs의 수를 확장 passaged 있습니다.

이 비디오 프로토콜은 배아 일 14 마우스 뇌의 ganglionic eminences에서 신경 줄기 세포의 분리 및 확장에 대한 neurosphere 분석의 응용 프로그램을 보여줍니다.

Neurosphere 분석을 사용하여 마우스 배아 신경 줄기 세포 문화 구축

포유류에서 줄기세포는 생애 전반에 걸쳐 다양한 조직과 기관의 세포 생성 및 재생을 유지하기 위한 미분화 세포의 공급원 역할을 합니다...

본 비디오 프로토콜의 목적은 뉴로스피어 분석법(neurosphere assay)을 사용하여 마우스 배아 뇌에서 신경 줄기세포를 분리하고 증식시키는 것입니다. 실험 절차에는 E 14 마우스 배아 수확, 신경절 융기(ganglionic eminences) 수확을 위한 뇌 미세 절제, 단일 세포 현탁액을 얻기 위한 수확 조직의 해리, 그리고 마지막으로 뉴로스피어 배양 접시에 세포를 플레이팅하는 과정이 포함됩니다. 안녕하세요, 저는 플로리다 대학교 마이트 뇌 연구소(Mite Brain Institute)의 Brent Frennels 박사 연구실 소속 Hassan Ali입니다.오늘은 뉴로스피어 분석법(neurosphere assay)을 이용하여 생쥐 배아 뇌로부터 뉴로스피어 배양을 구축하는 방법을 보여드리겠습니다. 저희 실험실에서는 신경 줄기세포를 분리하고 증식시키기 위해 이 분석법을 일상적으로 사용하고 있습니다. 그럼 시작해 보겠습니다.교배된 임신 쥐를 마취합니다. 임신 14일째에 경추 탈구를 수행하고 복부를 70% ethanol로 헹굽니다. 큰 포셉을 사용하여 복부 피부를 잡은 다음, 큰 가위로 피부와 그 아래의 근막을 절개합니다.복강과 자궁각을 노출시키기 위해, 배아가 포함된 자궁각을 제거하여 차가운 HEM이 담긴 50 ml conical tube로 옮깁니다. 자궁 조직을 PC two hood로 옮긴 후, 50 ml tube에서 HEM을 제거하고 신선하고 차가운 HEM을 충분한 양으로 사용하여 혈액이나 털과 같은 오염 물질을 제거하도록 조직을 헹구며, 이 과정을 2~3회 반복합니다. 이후 자궁 조직을 차가운 HEM이 담긴 10 centimeter Petri dish로 옮깁니다.작은 곡선 핀셋과 가위를 사용하여 자궁각을 열고 배아를 차가운 hem이 담긴 새 디쉬로 옮깁니다. 모든 배아를 수집할 때까지 이 과정을 반복합니다. 그 후 배아를 해부 현미경 아래에 놓습니다.배아의 머리를 경추 척수 수준에서 분리하여 차가운 hem이 들어 있는 다른 페트리 접시로 옮깁니다. 미세 곡선 핀셋으로 머리를 잡고 미세 가위를 사용합니다. 먼저 코 윗부분을 가로로 절개한 다음, 이마에서 머리 뒤쪽 방향으로 정중선을 따라 계속 절개합니다.피부와 두개골을 절개하되, 그 아래의 뇌가 손상되지 않도록 주의하십시오. 곡선 핀셋을 사용하여 절개된 단면의 가장자리를 뒤쪽 방향으로 밀어내어 두개골에서 뇌를 분리하십시오. 모든 두개골에서 뇌가 제거될 때까지 이 과정을 반복하십시오.곡선 핀셋을 사용하여 뇌의 등쪽 면이 위를 향하도록 안정적으로 고정한 다음, 미세 가위로 각 반구의 후각구부터 반구 뒷부분까지 피질을 절개합니다. 신경절 융기를 노출시키기 위해 뇌를 제자리에 고정한 상태에서, 45도 각도 핀셋으로 신경절 융기 전체를 박리하여 다른 페트리 접시에 옮깁니다. 여기에서 내측 및 외측 부위가 포함된 신경절 융기의 모습이 명확하게 나타납니다.또는, 미세 핀셋을 사용하여 주변 조직을 제거함으로써 신경절 융기를 분리할 수 있습니다. 두 영역 중 어느 한 곳에서 세포를 배양하고자 하는 경우, 융기 전체를 내측과 외측 절반으로 자를 수도 있습니다.모든 뇌 조직의 미세 절제가 완료될 때까지 이 과정을 반복합니다. 1 mL의 신경 줄기세포 배지를 사용하여 조직 조각들을 수집하고 이를 15 mL 원심분리 튜브로 옮깁니다. 조직이 누락되지 않도록 15 mL 튜브 내에서 조직 덩어리들이 가라앉을 때까지 기다립니다.상층액 배지를 일부 제거하고 페트리 접시 바닥을 세척하여 남아 있는 조직을 15 ml 튜브로 옮깁니다. 피펫 팁을 튜브 바닥에 댄 후, 현탁액을 3~4회 피펫팅하여 조직을 분쇄함으로써 단일 세포 현탁액을 만듭니다.그런 다음 현탁액을 1분 동안 방치하여 결합되지 않은 덩어리들이 침전되도록 한 후, 세포 현탁액의 거의 전체를 다른 15 ml 튜브로 옮깁니다. 그 다음, 남은 덩어리들에 신경 줄기세포 배지 1 ml를 첨가하여 단일 세포로 해리시킵니다. 튜브의 내용물을 회수합니다.그 다음 현탁액을 700 RPM 또는 110 G에서 5분 동안 원심분리합니다. 상층액을 제거하고 세포를 1 mL의 완전 신경줄기세포 배지에 다시 현탁합니다. 세포 현탁액 10 µL를 취하여 90 µL의 trypan blue와 잘 섞습니다.그런 다음 이 현탁액 10 µL를 취해 혈구계수기(hemocytometer)로 옮깁니다. 세포 수를 측정합니다. T 80 플라스크 하나에 분주하기 위해, 총 20 mL의 완전 신경줄기세포 배지를 50 mL 원추형 튜브로 옮깁니다.그 다음 세포 현탁액을 혼합하고, 밀리리터당 200,000 cells 또는 T 80 플라스크당 4 million cells의 총 밀도가 되도록 적절한 양의 세포를 추가합니다. 최종 농도가 20 nanograms per milliliter가 되도록 EGF를 첨가합니다. 성장 인자가 포함된 완전 신경 줄기세포 배지 내의 세포들을 혼합한 후, 세포 현탁액을 T 80 플라스크로 옮깁니다.플라스크에 라벨을 붙이고 현미경으로 세포를 관찰하여 조직 덩어리 없이 단일 세포 현탁액 상태인지 확인하십시오. 플라스크를 37 °C, 5% CO2 조건의 배양기에 넣고 5~7일 동안 배양하십시오. 5~7일 후, 현미경으로 플라스크 내 상태를 평가하십시오.이 시점이 되면 뉴로스피어(neurospheres)가 형성되어 직경이 150에서 200 microns 사이가 되며, 계대 배양할 준비가 됩니다. 플라스크의 내용물을 적절한 크기의 멸균 조직 배양 튜브에 수집하고, 튜브를 원심 분리한 후 상층액을 제거합니다. 구체들을 1 mL의 예열된 trypsin에 재현탁하고, 튜브를 37 °C 항온 수조에 2분 동안 둡니다.그 후, 트립신 활성을 중단시키기 위해 동일한 부피의 트립신 억제제(trypsin inhibitor)를 첨가하고 부드럽게 잘 섞어줍니다. 다시 원심분리한 후 상층액을 제거합니다. 그런 다음 세포를 1 mL의 완전 신경줄기세포 배지에 재현탁하고, 앞서 언급한 방식대로 세포 수를 측정합니다. T 175 플라스크 하나에 분주하기 위해, 총 40 mL의 완전 신경줄기세포 배지를 50 mL 원추형 튜브로 옮깁니다.그런 다음 세포를 혼합하고, M flask당 50,000 cells 또는 T 1 75 flask당 2 million cells의 총 밀도가 되도록 적절한 양의 세포를 추가합니다. 이어서 EGF를 최종 농도 20 nanograms per mil이 되도록 첨가합니다. 성장 인자가 포함된 완전 신경 줄기 세포 배지 내의 세포들을 혼합하고, 세포 현탁액을 T 1 75 flask로 옮깁니다.플라스크에 라벨을 부착하고 인큐베이터로 옮겨 5~7일 동안 배양합니다. 이는 일차 E 14 신경줄기세포 배양의 예시입니다. 플레이팅 3일 후, 화살표는 증식 중인 신경줄기세포 클러스터를 나타냅니다.기질에 부착되어 분화된 세포들도 확인할 수 있습니다. 이는 플레이팅 7일 후의 primary E 14 신경 줄기세포 배양 예시입니다. 보시는 바와 같이 다양한 크기의 구체들이 형성되어 있습니다.분화된 세포들도 존재합니다. 잔해물의 양은 성체 신경구 1차 배양물보다 훨씬 적습니다. 또한, 구체들이 응축되지 않고 주변부에 미세 돌기(micro spikes)가 형성되어 있어, 구체들이 건강하고 생존 능력이 있음을 나타냅니다.구체가 너무 크게 자라지 않도록 해야 하는데, 중심부의 세포 사멸로 인해 색이 어둡게 변할 수 있기 때문입니다. 또한 구체가 커지면 기질에 부착되어 분화할 수 있습니다. 이것은 플레이팅 5일 후의 계대 1회 E 14 신경구(neurospheres)의 예시입니다.여기서 다시 구체의 주변부에 있는 마이크로 스파이크(micro Spikes)를 확인할 수 있습니다. 지금까지 여기에 설명된 것과 동일한 절차에 따라 E 14 생쥐의 신경절 융기(ganglionic eminences)로부터 신경구(neurospheres)를 배양하는 방법을 보여드렸습니다. 피질(cortex)이나 중뇌(mesencephalon)와 같은 뇌의 다른 부위에서도 신경구를 배양할 수 있습니다.시청해주셔서 감사합니다. 신경구 배양 실험에 좋은 결과가 있기를 바랍니다.

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연구

JoVE Journal

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Isolation and Culturing of Adult Neural Stem Cells from the Mouse Subcallosal Zone

이 비디오는 성체 쥐의 뇌에서 외측 심실 벽을 분리하고 효소 조직 해리를 수행하여 단일 세포를 얻기 위한 자세한 프로토콜을 보여줍니다. 그런 다음 이러한 세포는 신경 줄기 세포의 증식을 선택적으로 강화하고 희소돌기아교세포와 성상세포의 공동 배양으로의 분화를 촉진하는 특정 배양 조건에 적용됩니다.

성체 마우스 신경 줄기세포에서 혼합 희소돌기아교세포와 성상교세포 배양 획득

여기서 우리는 subventricular 영역과 개인 성인 쥐의 치아 이랑 (dentate gyrus)에서, 부착 단층 또는 neurosphere를 하나로서, 신경 전구 세포 배양의 동시 발생에 대한 자세한 프로토콜을 설명합니다.

하나의 마우스, 두 문화 : 분리 및 성인 신경의 문화가 개인 마우스의 두 신경 인성 영역에서 줄기 세포

신경 줄기 세포 (NSCs의)는 자기 갱신과 세 가지 신경 계통으로 분화 할 수 세포를 참조하십시오. 여기서는 클론 조건 neurosphere 형성 및 분화를 이용하여 주어진 세포 집단에서 NSC 주파수를 결정하는 프로토콜을 기술한다.

신경 줄기 세포의 열거 클론 세이를 이용하여

여기, 예비 중앙 운하 틈새 주택 내 인 성 신경 줄기 세포 (NSCs) 성인 마우스에서 최소한의 척수 상해 모델의 성능을 보여 줍니다. 우리는 활성화 및 마이그레이션 고 원시적인 NSCs 부상 다음의 척도를 neurosphere 분석 실험을 사용 하는 방법을 보여줍니다.

최소한의 척수 상해의 마우스 모델에서 내 인 성 신경 줄기 세포 활성화 평가 Neurosphere 분석 결과

여기, 전자13 마우스 배아 절 예 하에서 신경 줄기 세포의 분리에 대 한 새로운 microsurgical 기술을 소개합니다.

절연 및 마우스 배아 신경 줄기 세포의 문화

이 기사에서는, 구체적으로, 메인 마우스 신경생성 틈새에서 유래된 산후 마우스 신경 줄기 세포로부터의 신경구 배양물의 생성을 위한 프로토콜을 설명한다. 신경구는 전구체 세포 수의 추정을 허용하는 두뇌 조직에서 신경 줄기 세포를 확인하기 위하여 이용됩니다. 더욱이, 이 3D 구조물은 세포 운명의 연구 결과허용하는 신경, oligodendrocytes 및 성상 세포를 초래하는 분화한 조건에서 도금될 수 있습니다.

산후 (P1−3) 마우스 신경성 틈새에서 신경구의 격리 그리고 확장

여기에서는 성체 쥐 뇌실 영역에서 분리된 확장된 신경 줄기 세포(NSC)에서 유전자 전달 효율성을 향상시키도록 설계된 핵절충 시스템에 대해 설명합니다. 이 연구 결과는 이 방법이 NSC의 유전자 섭동을 크게 개선하여 기존 transfection 프로토콜의 효과를 능가하고 세포 생존율을 향상시킨다는 것을 보여줍니다.

Isolation, Expansion, and Nucleofection of Neural Stem Cells from Adult Murine Subventricular Zone

배우세요 E14 마우스 배아 뇌에서 신경 줄기 세포를 분리하고 신경구 배양법으로 확장하는 방법을. 강간돌기 조직을 채취하여 단일 세포 현탁액을 만들고 배양하는 전 과정을 확인하세요.

Neurosphere 분석을 사용하여 마우스 배아 신경 줄기 세포 문화 구축

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