Name: 정맥 혈전증의 전해 하부 대정 맥 모델 (EIM) (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-07-12T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 3 s
Description: 학습하세요 정맥 혈전 형성을 연구하는 전해 하부 대정맥 모델 기법을 마우스에서 적용하는 방법을. 혈류가 있는 상태에서 혈전을 유도하고 다양한 마우스 계통에서 혈전 크기와 용해성 펙틴 수준의 상관관계를 분석할 수 있습니다.

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NIH 1P01HL089407 - 01A1 (로렌스, PI), 동물 코어, NIH 한 K01 HL080962 - 01A2 (마이어스, PI)에 의해 지원됩니다.

1. 마우스 아나스타샤 절차 <ol><li> 동물들은 케이지에서 제거하고 2% isoflurane과 분당 0.5 리터 (기화기 제어)의 유량 100 % 산소로 가스 유도를위한 마취 미리 수술 유도 챔버에 배치됩니다. </li><li> 생쥐는 마취 유도 챔버에서 진정 챔버에서 제거하고 머리 depilatory가 (1 분) 사용되는 경우 복부 복부는 전기 면도기로 면도, 또는 챔버 내에 유지집니다. </li><li> 아직 진정제를 맞았 는데도, 그들은 무게가 있지만, 내 눈을 그 다음 isoflurane과 산소를​​ 사용하여 코 콘로 전신 마취하에 온수 순환 난방 장치 등의 recumbancy에 위치 살균 안과 연고와 함께 윤활 있습니다. 이 시점에서 산소 요금은 분당 0.2 리터로 축소됩니다. </li><li> 복부는 chlorhexidine 솔루션을 뿌려놓은 (chlorhexidine의 디아 세 테이트 빠르게 bacterialcidal 및 영구이다) 및 멸균 거즈로 세 번 닦아 또는 외과 사이트 깨끗한까지입니다. </li></ol> 2. 마우스 미세 수술 및 복구 절차 <ol><li> 복부 정중선 절개 (2cm)은 복부를 노출 피부와 복벽을 통해 홍채 가위로 이루어집니다. 거즈의 멸균 생리 젖었 2x2은 동물의 왼쪽에 장내를 반영하는 데 사용됩니다. 마우스 restrainer는 하부 대정 맥 (IVC)의 장소 있도록 시각화에 들어가게된다. </li><li> 이 시점에서, isoflurane 2 %의 유지 보수 수준으로 감소되고 산소 비율이 수술의 나머지를 위해 분당 0.2 리터에 남아 있습니다. </li><li> 무딘 절개는 살균 작은 주걱의 면봉과 별도의 섬세한 홍채 절반 곡선 조직 집게를 사용하여 용이합니다. 관리들은 매우되기 위해 마우스 조직 처리로 촬영해야합니다. </li><li> 신장 혈관에서 장골의의 분기점 모든 IVC 사이드 지점은, 7-0 반응 prolene의 봉합과 함께 출혈도 잡았 있습니다. 백 가지 특허 있었다. </li><li> 은색 코팅 동선 (KY - 30 - 1 - GRN, Electrospec, 도버, NJ)에 연결된 전해 IVC 모델 (EIM), 25G 스테인리스 바늘에 노출된 꼬리 IVC (그림 1)에 삽입 그리고 앞의 벽 (양극)에 대한 위치. </li><li> 또 다른 와이어는 subcutaneously 회로 (음극)을 완료 이식입니다. </li><li> 십오분 이상 250 μAmps의 전류는 그라스 S48 스퀘어 웨이브 자극기와 정전류 장치를 (그라스 기술, 아스트로 - 메드 (주), 웨스트 워릭, RI)를 사용하여 적용되었다. thrombogenic 환경과 이후의 혈전 형성을 촉진 IVC의 내피 표면을 침식 전기의 독성 제품의 형성에 직류 결과. </li><li> 십오분 후 주사 바늘을 제거하고 면봉은 출혈을 방지하기 위해 지역과 접촉 부드럽게 열립니다 </li><li> 가짜 동물에 주사 바늘을 현재의 응용 프로그램없이 IVC에 배치 후 제거됩니다. </li><li> 개복술 사이트는 2 계층 방식으로 닫힙니다. 우리 연구실은 복벽을 닫습니다 지속적인 패턴에 5-0 vicryl, 합성 봉합사를 사용합니다. 접착제 피부 접착제는 피부를 닫습하는 데 사용됩니다. 제거에 대한 외부 봉합이 없습니다. </li><li> 마우스가 다음 밀접하게 가열 램프 (24인치 거리 케이지에서 분 거리)에서 (2 시간 45 분) 후 operatively 관찰, 개별 마우스 케이지에서 발견되며, 다음 원래 주택으로 돌아왔습니다. 그것이 연구 목적을 방해하지 않는 경우 진통제 및 안티 - 염증성 에이전트를 사용할 수 있습니다. 과학 고통 약품을 보류 칭의, 동물, 그리고 ICUCA의 승인이 필요합니다. 저희 연구실은 Buprenorphine ,0.05 - 0 0.1 MG / kg SQ 쥐를위한 훌륭한 사전 및 사후 수술 진통 것을 발견했습니다. 또한, 4mg/kg (0.4 ML / 1 %의 솔루션의 kg)에 Lidocaine는 체계적인 진통제가 실험 결과를 혼란시킬 수있다 때 절개 사이트에 들어갈 수 있습니다. </li><li> 우리는 일반적으로 DVT로 인한 사후 수술 악영향을 발생하지 않습니다. 그러나 불리한 게시물 수술 효과가 자발적인 마취 사망, 수술 출혈 및 신경 외상으로 인해 일부 부전 마비를 포함할 수 있습니다. 복구 않으려하고 동물 먹이 누트리아 젤하거나 젖은 차우는 동물의 회복을 촉진하기 위해 새장 바닥에 놓여있을 수 있습니다. 끊어 포스트 수술 합병증과 동물은 euthanized 편안해야합니다. </li><li> 지정된 시점에서 안락사는 설치류 동물에 대한 안락사에 미국 베티 의사회 가이드에 명시된 권장 사항에 따라 편안하게 수행됩니다. </li></ol> 3. 대표 결과 EIM은 지속적인 혈류의 존재에 혈전 형성하는 모델입니다. 다음 그림은이 소설의 모델 조사 매개 변수를 보여줍니다. <img src="/files/ftp_upload/2737/2737fig1.jpg" alt="그림 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 1"> 어디 25G 스테인리스의 그림 1 definesthe 해부 영역은색 코팅 동선 (KY - 30 - 1 - GRN, Electrospec, 도버, NJ)에 부착된 바늘이 삽입됩니다. 림프 노드가 거의 존재와 꼬리 IVC를 찾을 수 랜드마크로 도움이 있습니다. <img src="/files/ftp_upload/2737/2737fig2.jpg" alt="그림 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 2"> 그림 2 : 2 일 다른 변종의 EIM 후 혈전 무게. 예상했던대로, 혈전 무게 PAI - 1 KO 마우스의 하단과 hypercoagulable 델타 중부 표준시 마우스 (^ CT)에 큰되었습니다. <img src="/files/ftp_upload/2737/2737fig3.jpg" alt="그림 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 3"> 그림 3 : 가용성식이 P - selectin, 깊은 정맥 혈전증에 대한 제조 업체는 다른 종자로 측정되었다. 가장 높은 수준 hypercoagulable 델타 중부 표준시 마우스에서 발견된 반면 가장 낮은 수준은 PAI - 1 KO 마우스에서 발견되었습니다. <img src="/files/ftp_upload/2737/2737fig4.jpg" alt="그림 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 4"> 혈전 무게와 P - selectin 가용성이 다른 변종이 발견되었습니다 사이의 상관 관계를 그림 4. 참고의 짧은 혈전 크기를 생성한 그룹에서 감지 P - selectin 가용성은 (PAI - 1 KO 마우스) 가장 낮은되었습니다. 가장 큰 혈전 크기를 생성한 그룹에서 감지 P - selectin 가용성은 (hypercoagulable 델타 CT) 최고되었습니다. <img src="/files/ftp_upload/2737/2737fig5.jpg" alt="그림 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 5"> 그림 5 : 혈액 흐름의 존재를 증명하기 위해서는 초음파가 EIM을받은 생쥐에서 수행되었다. 그림 5 2 일 EIM 후 마우스로 진행 초음파를 보여줍니다. 그러면 표본은 수확했다. 혈전 형태 흐름의 존재에 혈전 형성을 제안하는 참고

<ol><li>Diaz, J. A., Hawley, A. E., Alvarado, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thrombogenesis+with+continuous+blood+flow+in+the+inferior+vena+cava.+A+novel+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22Thromb+Haemost%22%5BJournal%5D)">Thrombogenesis with continuous blood flow in the inferior vena cava. A novel mouse model.</a> Thromb Haemost. 104, 366-375 (2010).</li>
<li>Eitzman, D. T., Westrick, R. J., Nabel, E. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasminogen+activator+inhibitor-1+and+vitronectin+promote+vascular+thrombosis+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Plasminogen activator inhibitor-1 and vitronectin promote vascular thrombosis in mice.</a> Blood. 95, 577-580 (2000).</li>
<li>Myers, D., Farris, D., Hawley, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selectins+influence+thrombosis+in+a+mouse+model+of+experimental+deep+venous+thrombosis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Selectins influence thrombosis in a mouse model of experimental deep venous thrombosis.</a> J Surg Res. 108, 212-221 (2002).</li>
<li>Myers, D. D., Hawley, A. E., Farris, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((P-selectin+and+leukocyte+microparticles+are+associated+with+venous+thrombogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vasc+Surg%22%5BJournal%5D)">P-selectin and leukocyte microparticles are associated with venous thrombogenesis.</a> J Vasc Surg. 38, 1075-1089 (2003).</li>
<li>Pierangeli, S. S., Barker, J. H., Stikovac, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+human+IgG+antiphospholipid+antibodies+on+an+in+vivo+thrombosis+model+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Thromb+Haemost%22%5BJournal%5D)">Effect of human IgG antiphospholipid antibodies on an in vivo thrombosis model in mice.</a> Thromb Haemost. 71, 670-674 (1994).</li>
<li>Pierangeli, S. S., Liu, X. W., Barker, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+thrombosis+in+a+mouse+model+by+IgG%2C+IgM+and+IgA+immunoglobulins+from+patients+with+the+antiphospholipid+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Thromb+Haemost%22%5BJournal%5D)">Induction of thrombosis in a mouse model by IgG, IgM and IgA immunoglobulins from patients with the antiphospholipid syndrome.</a> Thromb Haemost. 74, 1361-1367 (1995).</li>
</ol>

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

마우스 생체내 실험에 대한 훌륭한 연구 도구입니다. 따라서 밀접하게 질병이나 병적인 조건을 모방 마우스 모델의 개발이 필요합니다. 광화학 (2), 스테이 시스 (3-4), 기계적 외상 (5-6) : 여러 정맥 혈전증 마우스 모델을 포함 DVT을 연구하는 데 사용되었습니다. 그러나 이러한 모델 중 누구도 지속적인 혈류의 존재에 혈전을 생성하는 내부 내피 자극을 사용하지 않습니다. EIM은 IVC 내에서 전기 자극을 사용하여 혈액 흐름의 존재에 내피 활성화 (1) 정맥 thrombogenesis을 추진하고 있습니다. 그것은 쉽게 재현할 수, 기술적으로 간단하고 높은 생존율 (99 %)를하고 있습니다. 전류가 전기를 생성하는 데 사용됩니다 사실에도 불구하고, 열 (1) 생성되지 않습니다. EIM 모델은 밀접하게 임상 DVT을 시뮬레이션하고, 따라서 혈전 형성 및 해결의 본질적인 메커니즘을 연구를위한 가치있는 도구로 제공하고 있습니다. EIM 모델은 혈전증 질환에 대한 새로운 치료 접근의 발전에도 유용합니다.

<table border="1"><tbody><tr><th> 시약의 이름 </th><th> 회사 </th><th> 카탈로그 번호 </th><th> 댓글 (옵션) </th></tr><tr><td> DMEM </td><td> Invitrogen </td><td> ABCD1234 </td><td></td></tr></tbody></table>

정맥 혈전증의 전해 하부 대정 맥 모델 (eim)

Electrolytic Inferior Vena Cava Model (EIM) of Venous Thrombosis

동물 모델은 혈전 형성, 혈전 해상도를 공부하고 잠재적인 치료 화합물 (1) 테스트하기 위해 깊은 정맥 혈전증 (DVT) 연구에 중요한 역할을 제공하고 있습니다. DVT의 치료 및 예방에 활용하는 새로운 화합물은 현재 개발되고있다. 영향을 thrombosed 정맥에 잠재적인 치료 길항제 화합물의 배달 문제가되었습니다. 에서 치료 응용 프로그램의 컨텍스트 부분 스테이시 스를 사용하고 지속적으로 주요 정맥 내에 thrombi를 생성하는 모델은 최근에 설립되었습니다. 전해 하부 대정 맥 모델 (EIM)는 지속적인 혈류의 존재에 혈전 형성을 허용 DVT의 마우스 모델입니다. 이 모델은 치료 요원들이 역동적인 방식으로 혈전 접촉에있을 수 있으며, DVT (1)의 다른 모델보다 더 민감합니다. 또한,이 혈전증 모델은 밀접하게 혈전 형성의 임상 상황을 시뮬레이션하고 정맥 내피 세포 활성화, 백혈구 마이 그 레이션, 정맥 thrombogenesis을 연구하고 치료 응용 프로그램 (1) 테스트 이상적입니다. EIM 모델은, 쉽게 재현할 수, 기술적으로 간단 일관 thrombi 크기를 생성 및 분석을 위해 필요한 큰 예제 (예 : 혈전과 정맥 벽)에 있습니다.

내피 활성화 및 일부 혈액 스테이시, Virchow의 깡패의 두 가지 구성 요소로 인해 정맥 혈전 형성 유형의 하부 대정 맥 결과의 내부 표면에 내피 활성화 전해 유도.

정맥 혈전증의 전해 하부 대정 맥 모델 (EIM)

동물 모델은 혈전 형성 및 혈전 분해를 연구하고 잠재적인 치료법을 시험하기 위해 심부정맥 혈전증(DVT) 연구에서 매우 중요한 역할을 합니다.

본 실험 절차의 전반적인 목표는 전해질 하대정맥(inferior Vanna CVA) 모델을 사용하여 마우스에서 정맥 혈전증을 유도하는 것입니다. 이를 위해 먼저 복강을 절개하여 하대정맥 또는 IVC를 노출시킵니다. 그다음, IVC의 측분지들을 결찰합니다.그 다음 양극과 음극을 삽입하고, 혈전 형성을 유도하기 위해 전류를 가합니다. 마지막으로, 동물을 봉합하고 회복하도록 둡니다. 최종적으로, 혈류가 존재하는 상태의 마우스 IVC 내에 정맥 혈전이 형성되었음을 보여주는 결과와, 서로 다른 마우스 계통에서 펙틴 수치와 혈전 크기 사이의 상관관계를 얻을 수 있습니다.Lucchesi 박사는 1980년에 이 기법의 개념을 발표했으며, 이를 동맥계에 성공적으로 적용하였습니다. 제가 미시간 대학교 연구실에 합류했을 때, 저는 이 기존 기법을 정맥계에서 사용할 수 있도록 수정하는 업무를 맡았습니다. 이 과정에서 저는 혈류 방향을 고려하여 하대정맥(IVC)의 기점 근처에 바늘을 삽입하는 방법을 고안하였습니다.마우스에서 심부정맥 혈전증을 유도하려면, 먼저 수술 전 유도 챔버에서 5% isof fluorine과 100% oxygen을 분당 0.5 liters의 속도로 투여하여 동물을 마취합니다. 마우스가 진정되면 유도 챔버에서 꺼내어 전기 바리캉으로 복부 하단을 제모합니다. 다음으로 마우스의 체중을 측정합니다.그 후 안연고를 도포하고, isof fluorine과 100% oxygen을 이용한 전신 마취 하에 온수 순환 가열 패드 위에 등을 대고 눕힙니다. 절개 부위를 소독하기 위해 복부에 chlorhexidine 용액을 분사하고 멸균 거즈로 닦아냅니다. 이 과정을 3회 반복하거나 수술 부위가 깨끗해질 때까지 수행합니다.수술을 시작하려면, 홍채 가위(iris scissors)를 사용하여 피부와 복벽을 따라 2 cm 길이의 복측 정중선 절개를 하여 복부를 노출시킵니다. 멸균 식염수에 적신 2x2인치 거즈를 사용하여 장을 동물의 왼쪽으로 밀어냅니다. 그런 다음 마우스 고정 장치를 설치하여 하대정맥(inferior vena cava 또는 IVC)을 노출시킵니다.이 시점부터 2% isof fluorine와 분당 0.2 liters의 산소를 사용하여 유지하십시오. 멸균 면봉과 매우 정밀한 iris half curved tissue forceps를 사용하여 IVC 양측의 근막을 둔성 박리함으로써 IVC와 그 분지들에 완전히 접근할 수 있도록 합니다. 인근에 림프절이 있어 7-0 비반응성 proline 봉합사를 이용해 IVC를 결찰하는 지표로 사용할 수 있음에 유의하십시오.신정맥부터 장골 분기점까지 모든 하대정맥(IVC) 측분지를 결찰합니다. 후분지는 개방된 상태로 둡니다. 다음으로, 은 코팅 구리선이 연결된 25게이지 스테인리스 스틸 바늘을 노출된 하대정맥(IVC)에 삽입하고 전벽에 밀착시켜 위치시킵니다.이것이 양극입니다. 그런 다음 전선이 연결된 다른 바늘을 피하에 삽입하여 회로를 완성합니다. 이것이 음극입니다.Grass S 48 사각파 자극기와 정전류 장치를 사용하여 15분 동안 250 µA의 전류를 가합니다. 이를 통해 IVC의 내피 표면을 손상시켜 대조군용 혈전을 형성합니다. 동물 실험의 경우, 전류를 가하지 않은 상태로 바늘을 IVC에 15분 동안 삽입합니다. 시술 과정 중 바늘 주변에 작은 검은 점이 생기는 것과 같은 미세한 변화가 보통 관찰되며, 이는 시술이 성공적으로 이루어졌음을 확인시켜 줍니다.15분 후, 바늘을 등쪽으로 낮추어 제거하고, 바늘 삽입 지점 위쪽에서 면봉을 사용하여 바늘 주변의 IVC 내강에 혈액이 다시 채워지도록 합니다. 바늘을 제거하면서 정맥을 아래로 누릅니다. 출혈이 멈출 때까지 면봉으로 부드럽게 압박합니다.개복 부위를 폐쇄하기 위해 5-0 Vicryl 합성 봉합사를 사용하여 복벽을 연속 봉합합니다. 그런 다음 피부 접착제를 도포하여 피부를 폐쇄합니다. 마우스가 가온 램프가 설치된 개별 케이지에서 회복하도록 하고, 원래의 사육 장치로 돌려보내기 전까지 세밀하게 모니터링합니다.EIM은 지속적인 혈류가 존재하는 상태에서 혈전이 형성되는 모델입니다. 다음 그림들은 이 새로운 모델에서 조사된 파라미터들을 보여줍니다. 혈전 크기의 측정값인 혈전 무게는 예상대로 EIM 유도 2일 후의 마우스 계통별로 제시되어 있습니다.ELA 수용성 펙틴을 사용했을 때, 혈전 용해가 증가하여 결과적으로 작은 혈전이 형성되는 것으로 알려진 PA I one knockout 마우스에서는 혈전 무게가 더 낮았으며, 과응고 상태의 delta CT 마우스에서는 더 높았습니다. 여러 계통에서 심부정맥 혈전증 마커를 측정하였습니다. 가장 낮은 수치는 PI one knockout 마우스에서 나타났으며, 가장 높은 수치는 과응고 상태의 delta CT 마우스에서 나타났습니다.이 그래프는 더 짧은 혈전 크기를 생성한 PI one 결핍 생쥐의 서로 다른 생쥐 계통에서 발견된 혈전 무게와 수용성 펙틴 사이의 상관관계를 보여줍니다. 검출된 수용성 펙틴은 가장 낮았으며, delta CT 생쥐는 가장 큰 혈전 크기를 생성했고 이들의 수용성 펙틴 검출 수준은 가장 높았습니다. 혈류의 존재를 입증하기 위해 EIM을 받는 생쥐를 대상으로 초음파 검사를 수행하였습니다.이 그림은 EIM 후 2일째 된 마우스의 초음파 결과입니다. 혈전의 모양으로 보아 이 절차의 진행 과정 중 혈류가 있는 상태에서 형성되었음을 알 수 있습니다. 항상 환자의 상태를 주의 깊게 살펴야 합니다.저체온증은 수술 후 기간 동안 동물의 생명과 연구 결과에 심각한 영향을 미칠 수 있는 가장 중요한 요인입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

하부 대정 맥 혈전증의 마우스 전체 스태시스 모델은 정맥 벽 조직 및 혈전의 같지는 금액을 산출. 이것은 정맥 벽과 occlusive 혈전 사이에 만성 염증으로 급성에서 진행을 평가 상호 작용을 평가하기위한 유용한 입증되었습니다.

하부 대정 맥 혈전증의 마우스 완전한 스테이 시스 모델

우리가 설명 여기에 열 등 한 베 나 정 맥 협 착 증 깊은 정 맥 혈전 증의 murine 모델. 이 모델이 혈액 흐름 제한, 인 간에 있는 정 맥 혈전 증의 주요 트리거 중 하나.

열 등 한 베 나 정 맥의 협 착 증: 깊은 정 맥 혈전 증의 Murine 모델

현재 프로토콜 스테이 시스 모델을 사용 하 여 정 맥 혈전 증을 얻기에 단계를 설명 합니다. 또한, 우리는 시간이 지남에 혈전 형성 및 해상도 측정 하는 비-침략 적 방법을 사용 하는.

스테이 시스 고주파 초음파에 의해 모니터링 하는 쥐에 의해 유도 된 깊은 정 맥 혈전 증

정확한 심장 내 심장 초음파(ICE)는 유망하고 유망한 심장 구조 추정 방법인 좌심방 구조를 추정하는 데 상당한 정확도를 보여줍니다. 여기서는 ICE 및 FAM(Fast Anatomical Mapping) 카테터 리모델링을 통한 좌심방 및 폐정맥의 3차원 모델링을 위한 프로토콜을 제안합니다.

정확한 심장 내 심장 초음파 접근 방식을 사용한 좌심방 및 폐 정맥의 3차원 모델링

이 논문은 정맥 결찰을 달성하기 위해 혈관 클립을 사용하여 마우스 암 모델에서 정맥 혈전증을 평가하기 위한 최적화된 방법을 제시하는 것을 목표로 합니다. 최적화는 혈전증 관련 측정의 변동성을 최소화하고 인간 암 관련 정맥 혈전증과의 관련성을 향상시킵니다.

암의 마우스 모델에서 정맥 혈전증 분석

이 프로토콜은 비혈전성, 혈전성 및 혈전 후 심부 정맥에서 정맥 성형 풍선(VB) 중재를 테스트하기 위한 생존 설치류 모델을 제시합니다.

설치류 하부 정맥 Cava 정맥 성형술 풍선 모델

본 연구는 실크 봉합법과 레이저 반점 조영 영상 및 고해상도 초음파를 결합하여 평가를 위해 실크 봉합법과 레이저 반점 조영 영상 및 고해상도 초음파를 결합하여 상시상동 혈전증을 재현 가능하고 최소 침습 모델로 확립하는 프로토콜을 제시합니다.

수정된 염화철 유도 상시상동 혈전증 형성

분기점 인간의 대뇌 동맥류을 흉내낸 동맥 분기 동맥류의 microsurgical 생성을위한 최적화된 기술이 설명되어 있습니다. 정맥 주머니는 모두 공통 경동맥 동맥의 인위적으로 만들어진 사실이 분기로 봉합니다. 촉진 microsurgical 기법과 적극적인 수술 anticoagulation와 진통제는 최소화 병적 속도와 높은 동맥 명백 속도로 이어집니다.

토끼 모델에서 Microsurgical 정맥 주머니 아티 - 분기점의 동맥류 : 기술적인 관점

세포 및 분자 neotissue 형성에 대한 우리의 지식을 개선하기 위해, TEVG의 쥐 모델은 최근에 개발되었다. 이식은 C57BL / 6 마​​우스의 신동맥 대정맥 개재 이식으로 이식되었다. 이 모델은 우리의 임상 연구에서 달성 된 것과 유사한 결과를 얻을 수 있지만, 훨씬 단축 된 시간 과정을 통해.

마우스 모델에서 하대 정맥 끼어 이식의 주입

암 종양 주변 조직뿐만 아니라 로컬 프 및 항 염증 매개 의해 영향 복잡한 질환이다. 따라서, 오히려 피하 모델보다 이방성 주입 모델은 방식으로 더 잘 모방 인간의 병리 암의 진행을 연구하기 위해 유용 할 수 있습니다.

마우스의 유방 지방 패드에 유방암 세포의 소성 주입은 종양의 성장을 연구한다.

학습하세요 정맥 혈전 형성을 연구하는 전해 하부 대정맥 모델 기법을 마우스에서 적용하는 방법을. 혈류가 있는 상태에서 혈전을 유도하고 다양한 마우스 계통에서 혈전 크기와 용해성 펙틴 수준의 상관관계를 분석할 수 있습니다.

정맥 혈전증의 전해 하부 대정 맥 모델 (EIM)

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