Name: 중간 대뇌 동맥 폐색의 마우스 모델 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-02-13T17:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 43 s
Description: 학습하세요 마우스 중간 대뇌 동맥 폐색 모델을 통해 뇌졸중 연구를 수행하는 방법을. 단일사 실선을 이용한 수술 기법과 TTC 염색을 통한 경색 크기 평가 방법을 상세히 알아보세요.

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이 작품은 NIH 부여 NS057195, UCSF REAC 수상하고, 켄트 주립 대학 시작 기금 WH Chou의에 의해 지원되었다.

1. MCAO 방법 이 프로토콜은 실험 동물의 사용을위한 건강 지침 국립 연구소에 의해 기관 애니멀 케어 및 사용위원회 UCSF와 켄트 주립 대학에서, 그리고 abides에 의해 승인되었습니다. <ol></ol><ol><li> 20mm 세그먼트에 5-0 monofilament의 봉합을 (하버드 장치, 홀리스튼, MA) 잘라. cauterizer (브레인 트리 과학 주식 회사, 브레인 트리, MA) 근처 가열하여 각 세그먼트의 팁을 라운드. 마이크로 미터 (응용 이미지 주식, 로체스터, NY)를 사용하여 팁의 직경을 측정합니다. 우리는 25-30 G.의 체중을 가진 마우스에 대한 0.21-0.22 mm의 최종 팁 직경과 봉합을 사용하여 </li><li> autoclaving (최소 121 ° C, 15 분 15 PSI).하여 모든 수술 도구를 소독 70 % 에탄올을 사용하여 수술 테이블 및 관련 장비를 살균하십시오. </li><li> 와 8~12주 된 마우스 (25-30그램) 마취 5% 30% O 2 /에서 (Aerrane, 백스터, 디어 필드, IL) isoflurane 70% N V - 10 아나스타샤 시스템을 사용 2 O (VetEquip, Inc의 ., 플레즌턴, CA). 마취의 유도에 따라, isoflurane의 수준을 줄이고 1.5 %에 그것을 유지합니다. </li><li> 가열 패드에있는 위로 향한 위치에 마우스를 놓습니다. 직장 프로브를 삽입하고, 36.5-37.5 사이의 체온 ° C를 사용하여 TR - 200 homeothermic 온도 시스템 (좋은 과학 도구 주식 회사, 포스터 시티, CA).을 모니터링하고 유지 </li><li> 피부를 노출 전기 면도기 (브레인 트리 과학)와 복부 목 지역에있는 모피를 면도. 70 % 에탄올 세 응용 프로그램을 사용하여 외과 사이트를 소독. </li><li> 스테레오 해부 현미경 (니콘, 일본), 목을 1cm 길이 정중선 절개를합니다. 외과 분야를 노출하고 오른쪽 일반적인 경동맥 (CCA), 외부 경동맥의 동맥 (ECA), 그리고 내부 경동맥의 동맥 (ICA)을 식별 견인기 (브레인 트리 과학)를 사용하십시오. 조심스럽게 신경 및 근막 주변에서 무료로 동맥을 해부하다. </li><li> 추가 distally ECA를 해부하다 및 바이폴라 coagulator (하워드 악기 주식 회사, 터스칼루사, AL)를 사용하여 ECA와 뛰어난 갑상선 동맥 (STA) 지점을 응고. coagulated 세그먼트에서 ECA와 STA 컷. </li><li> 대충 ECA 스텀프 통해 두 8-0 실크 봉합을 묶어. ECA와 ICA에 CCA의 분기점에서 혈관 클램프 (파인 과학 도구)을 적용합니다. </li><li> Vannas 스타일 스프링 가위 (파인 과학 도구)와 ECA 유세의 끝부분에 작은 절개를합니다. 측정과 끝에 둥글게 5-0 monofilament의 봉합의 길이를 기록합니다. 절개로 봉합를 삽입하고 클램프에 미리. 충분히 인 주거 monofilament의 봉합의 이동성을 확보 아직 보존 루멘 주위 두 실크 봉합를 조이십시오. </li><li> 분기점에서 클램프를 제거합니다. 부드럽게 MCA의 출처를 막다하기 위해 CCA의 분기점 넘어 90~10밀리미터의 거리에 대한 ICA에 ECA의 루멘에서 monofilament의 치료를 사전. 수술 기간은 30-45 분 정도입니다. </li><li> 목에 절개를 봉합하고 마취에서 회복하고, 우리를 그것을 반환하는 35 ° C 간호 상자에서 마우스를 놓으십시오. 그것은 일반적으로 마취에서 회복하기 위해 생쥐를 위해 50-10 분 정도 소요됩니다. 과도 MCAO를 수행하려면, 연구자들은, 보통 사이 0.5-2 H.에 마우스를 다시 마취하고 일정 기간 후 ECA의 선거 유세에 다시 봉합을 인출할 수 </li><li> 스물 네 시간 MCAO의 유도 후 5 % isoflurane으로 마우스를 마취하고 경추 탈구하여 안락사. 마우스를 참살하고 두뇌를 수집합니다. 얼음 두뇌 매트릭스 (브레인 트리 과학)과 사 2 mm 슬라이스로 coronally 머리를 슬라이스. 2퍼센트의 뇌 조각 실온에서 20 분 1X PBS에서 2,3,5 - triphenyltetrazolium은 염화물 (TTC) (시그마 - 알드리치) 경색의 크기와 범위를 결정하는 부화. 이미징 때까지 중립은 4 포르말린 솔루션 (시그마 - 알드리치) 버퍼 10 % 뇌 조각 ° C를 수정. 조브 프로토콜 955 (에서 설명한대로 경색의 범위는 계량 수 <a href="https://www.jove.com/index/Details.stp?ID=955">https://www.jove.com/index/Details.stp?ID=955</a> ) 9. </li></ol> 2. 대표 결과 <ol></ol> MCAO에 의해 생성된 infarcts는 striatum과 dorsolateral 피질에서 볼 수 있습니다. striatum는 대뇌 피질보다 국소 빈혈에 더 민감합니다. MCAO 이상의 시간의 간격 striatum, 피질 모두를 손상시킬 수있는 동안 MCAO 서른 분 거리에 있으며, 단지 striatum의 경색을 생산합니다. 24 H 영구 MCAO 후, 총 경색의 비율은 40 ~ ± 수술 후 북반구와 사망률의 5 % ~ 10 %입니다. 과도한 출혈 수술하는 동안 발생하면 우리는 더 연구에서 생쥐를 제외, 수술 시간이 90 분 초과, 생쥐는 15 분 이내에 마취에서 회복하기 위해 실패하거나, 출혈이 뇌 조각 또는 사후 심사 중에 윌리스의 원안의 기본에서 찾을 수 있습니다 . jove_content "&gt; <img src="/files/ftp_upload/2761/2761fig1.jpg" alt="그림 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 1"> 영구 MCAO 24 H 후 TTC - 스테인드 뇌 조각의 그림 1. 대표 이미지 (코로나 레벨 1-4). 괴사 영역에서 이러한 효소 활동의 부재로 인해 흰색 남아 살아있는 동안에 조직 TTC는 효소, 색상에 빨간색 1,3,5 - triphenylformazan (TPF)에 dehydrogenases에 의해 감소​​됩니다. 따라서, 경색의 지역 TPF에 TTC의 변환의 부족은 백색으로 확인할 수 있습니다. 참고 : TT​​C는 다소 열 등 열과 최대한 빛으로부터 스테인드 섹션을 보호 불안정 조명입니다.

<ol><li>Howard, G., Howard, V. J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHoward%2C+G+%22Distribution+of+stroke%3A+hetrogeneity+of+stroke+by+age%2C+and+sex%22">Distribution of stroke: hetrogeneity of stroke by age, and sex</a>. , Elsevier Inc. New York. 3-12 (2004).</li>
<li>Thom, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+disease+and+stroke+statistics--2006+update%3A+a+report+from+the+American+Heart+Association+Statistics+Committee+and+Stroke+Statistics+Subcommittee%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Heart disease and stroke statistics--2006 update: a report from the American Heart Association Statistics Committee and Stroke Statistics Subcommittee.</a> Circulation. 113, e85-e151 (2006).</li>
<li>Mohr, J. P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMohr%2C+JP+%22Middle+cerebral+artery+disease%22">Middle cerebral artery disease</a>. , Elsevier Inc. New York. 123-166 (2004).</li>
<li>Longa, E. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reversible+middle+cerebral+artery+occlusion+without+craniectomy+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats.</a> Stroke. 20, 84-91 (1989).</li>
<li>Chou, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutrophil+protein+kinase+Cdelta+as+a+mediator+of+stroke-reperfusion+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Neutrophil protein kinase Cdelta as a mediator of stroke-reperfusion injury.</a> J. Clin. Invest. 114, 49-56 (2004).</li>
<li>Hudgins, W. R., Garcia, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+electrocautery%2C+atmospheric+exposure%2C+and+surgical+retraction+on+the+permeability+of+the+blood-brain-barrier%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">The effect of electrocautery, atmospheric exposure, and surgical retraction on the permeability of the blood-brain-barrier.</a> Stroke. 1, 375-380 (1970).</li>
<li>Carmichael, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rodent+models+of+focal+stroke%3A+size%2C+mechanism%2C+and+purpose%5BTitle%5D)+AND+%22NeuroRx%22%5BJournal%5D)">Rodent models of focal stroke: size, mechanism, and purpose.</a> NeuroRx. 2, 396-409 (2005).</li>
<li>Durukan, A., Tatlisumak, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+ischemic+stroke%3A+overview+of+major+experimental+rodent+models%2C+pathophysiology%2C+and+therapy+of+focal+cerebral+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol.+Biochem.+Behav%22%5BJournal%5D)">Acute ischemic stroke: overview of major experimental rodent models, pathophysiology, and therapy of focal cerebral ischemia.</a> Pharmacol. Biochem. Behav. 87, 179-197 (2007).</li>
<li>Taniguchi, H., Andreasson, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+hypoxic-ischemic+encephalopathy+model+of+perinatal+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">The hypoxic-ischemic encephalopathy model of perinatal ischemia.</a> J Vis Exp. , (2008).</li>
</ol>

우리는 공개 잠재적인 충돌 관심이 없습니다.

생쥐의 MCAO는 일반적으로 인간에 초점 뇌 국소 빈혈을 모델로 사용됩니다. 뇌졸중 연구 생쥐를 사용하기 때문에 유전자 변형 및 녹아웃 종자의 가용성을 더 자주되었다. 프로토콜 참고로 몇 가지 중요한 세부 사항이 있습니다 : <ol><li> 그것은 수술하는 동안 마우스 체온을 유지하기 위해 필수적이며, 그것은 완전히 마취에서 회복하기 전에. 체온이 경색의 정도에 영향을 가지고, 저체온증의 감소와 고열은 경색의 크기를 증가시킵니다. </li><li> 노출과 CCA와 ECA를 분리하는 동안, 경색 크기 감소의 가능성을 높일 수있는 인근의 미주 신경 및 기관을 손상하지 마십시오. </li><li> 이상의 10mm의 분기점을 통과 monofilament의 봉합을 삽입하지 마십시오. 너무 멀리 삽입 봉합은 뇌출혈의 앞쪽에 대뇌 동맥 및 결과를 구멍 수 있습니다. 저항은 봉합이 분기점 포인트 너머 90-10밀리미터에 대한 고급 때 느낄 수 있습니다. 이 경우, 연구자는 봉합을 증진 중단하고 거리를 확인합니다. </li></ol>

<table><tbody><tr><td>Isoflurane</td><td>화학 물질</td><td>Baxter Internationl Inc.</td><td>95045-588</td><td></td></tr><tr><td>V-10 마취 시스템</td><td>장비</td><td>VetEquip</td><td>901807</td><td></td></tr><tr><td>TR-200 온도 조절기</td><td>장비</td><td>Fine Science Tools</td><td>21060</td><td></td></tr><tr><td>전기 바리캉</td><td>장비</td><td>Braintree Scientific, Inc.</td><td>CLP-9931</td><td></td></tr><tr><td>해부 현미경</td><td>장비</td><td>Nikon Instruments</td><td>SMZ745T</td><td></td></tr><tr><td>리트랙터 시스템</td><td>장비</td><td>Braintree Scientific, Inc.</td><td>ACD-014</td><td></td></tr><tr><td>양극 응고기</td><td>장비</td><td>Howard Instrument</td><td>64000</td><td></td></tr><tr><td>실크 봉합사</td><td>재료</td><td>Harvard Apparatus</td><td>510479</td><td></td></tr><tr><td>단사 봉합사</td><td>재료</td><td>Harvard Apparatus</td><td>723351</td><td></td></tr><tr><td>혈관 클램프</td><td>장비</td><td>Fine Science Tools</td><td>00396-01</td><td></td></tr><tr><td>바나스 가위</td><td>장비</td><td>Fine Science Tools</td><td>15000-08</td><td></td></tr><tr><td>뇌 매트릭스</td><td>장비</td><td>Braintree Scientific, Inc.</td><td>BS-2000C</td><td></td></tr><tr><td>2,3,5-triphenyltetrazolium chloride</td><td>화학 물질</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8877</td><td></td></tr><tr><td>10% 중성 완충 포르말린</td><td>화학 물질</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT5011</td><td></td></tr></tbody></table>

중간 대뇌 동맥 폐색의 마우스 모델

Mouse Model of Middle Cerebral Artery Occlusion

뇌졸중은 미국 1 가장 흔한 치명적인 신경 질환입니다. 두뇌에있는 혈관의 막힘 (허혈성 뇌졸중) 2 스트로크의 대부분 (88 %) 결과. 대부분의 허혈성 뇌졸중 (~ 80 %) 중간 대뇌 동맥 (MCA) 3의 영토 발생 이후 개발된 많은 동물 스트로크 모델이 동맥에 집중했습니다. 중간 대뇌 동맥 폐색 (MCAO)의 intraluminal monofilament 모델은 외부 경동맥 동맥에 수술 필라멘트의 삽입과 팁은 MCA의 출처를 occludes 때까지 정지 그 결과, 내부 경동맥의 동맥 (ICA)에 기대를 스레딩을 포함 혈액 흐름과 MCA 테리토리 4 이후 뇌 경색의. 기술은 영구적인 또는 일시적인 폐색 5 모델하는 데 사용할 수 있습니다. 봉합사가 특정 간격 (30 분, 1 H, 2 H) 후 제거하면, reperfusion는 (일시적 MCAO) 이루어집니다, 필라멘트가 자리에 남아있다면 (24 H) 절차는 영구 MCAO의 모델로 적합합니다 . 이 기술은 craniectomy, intracranial 압력 및 온도 6에 영향을 미칠 수있는 두개골의 일부를 제거하는 neurosurgical 절차를 필요로하지 않습니다. 그것은 쥐 및 생쥐 7,8에 영구와 일시적인 대뇌 국소 빈혈 초점을 모방하는 데 가장 자주 사용되는 방법이되었습니다. 대뇌 경색의 범위를 평가하기 위해, 우리는 허혈성 뇌 조직 9 식별 2,3,5 - triphenyltetrazolium 염화물 (TTC)와 뇌 조각 얼룩. 이 비디오에서는, 우리는 MCAO 방법과 TTC의 얼룩에 의해 경색 크기의 결정을 보여줍니다.

우리는 비디오 intraluminal monofilament를 사용하여 성인 마우스의 중간 대뇌 동맥 폐색을 생산하는 방법을 보여줍니다. 또한 2,3,5 - triphenyltetrazolium 염화물 (TTC) 염색법에 의해 대뇌 경색의 범위를 평가하는 방법을 보여줍니다.

뇌졸중은 미국에서 가장 흔한 치명적인 신경계 질환입니다 1. 뇌졸중의 대부분(88%)은 ... 내 혈관의 폐쇄로 인해 발생합니다.

안녕하세요, 제 이름은 Terrence Jam입니다. 제 이름은 Hai Joe입니다. 오늘은 마우스 중대뇌동맥 폐쇄 모델을 수행하는 방법을 보여드리겠습니다.이제 시작해 보겠습니다. 이 실험은 봉합사 준비부터 시작합니다. 먼저 봉합사를 20 millimeter 길이로 자릅니다.봉합사를 소작기 쪽으로 당겨 팁을 둥글게 맙니다. 그 후, 봉합사의 팁 길이를 측정합니다. 이제 등에 마스크를 씌운 상태로 수술을 시작할 준비가 되었습니다.중앙선을 따라 절개합니다. 포셉을 사용하여 ECA를 노출시킵니다. ECA를 따라 외경동맥에는 많은 분지들이 있습니다.이러한 분지 중 하나는 상갑상선동맥(STA)입니다. STA는 양극 핀셋으로 응고시켜야 합니다. 그 다음 ECA를 더 잘 분리하기 위해 STA를 절단해야 합니다.다음으로, 외경동맥(ECA)을 결찰하고 총경동맥(CCA)에서 가능한 한 멀리 떨어뜨립니다. 이때 접근성을 높이기 위해 외경동맥(ECA)을 분리하는 것이 좋습니다. 그런 다음 외경동맥(ECA) 주위에 두 개의 봉합사를 몇 mm 간격으로 느슨하게 묶습니다.CCA에서 ECA와 ICA로 갈라지는 분지점에 클램프를 적용합니다. 그런 다음 ECA 그루터기의 끝부분을 클립으로 집습니다. 다음으로, ECA를 ICA와 일직선이 되도록 재배치합니다.이렇게 하면 봉합사가 ECA에서 ICA까지 연속적으로 진입할 수 있습니다. 삽입 전 봉합사의 전체 길이를 측정하십시오. ECA 그루터기를 클리핑하여 만든 개구부에 봉합사를 삽입하십시오.봉합사가 원위부 매듭을 지나면, 매듭을 조여 고정합니다. 다음으로 클램프를 제거하고 봉합사를 ECA 내부로 더 깊이 삽입합니다. 봉합사가 근위부 매듭을 지나면, 매듭을 조여 고정합니다.두 매듭을 모두 고정한 후, 봉합사를 동맥을 따라 9~10 mm 정도 통과할 때까지 조심스럽게 삽입합니다. 분지점까지의 봉합사 길이를 전체 봉합사 길이에서 빼면 분지점을 확인할 수 있습니다. 봉합사가 MCA의 기점에 도달하도록 합니다.MCA를 폐쇄합니다. 24시간 후, 실험 동물을 희생시키고 뇌를 적출합니다. TTC 염색을 위해 적출한 뇌를 몰드에 넣고 면도날로 절편합니다.그런 다음 뇌를 2% TTC에 넣고 상온에서 20분 동안 둡니다. 마지막으로 뇌를 중성 완충 포르말린에 넣어 하룻밤 동안 고정합니다.봉합사 준비는 매우 섬세한 과정입니다. 다음은 도움이 될 만한 몇 가지 팁입니다. 봉합사와 소작기를 다음과 같이 배치하십시오.그런 다음 소작기를 고정한 상태에서 봉합사를 천천히 가까이 가져옵니다. 다음으로 봉합사의 크기가 적절한지 측정합니다. 본 실험에서 사용하는 봉합사의 크기는 약 0.21에서 0.22 Millimeters입니다.수술을 시작하려면, 마스크를 등 쪽에 위치시키고 30% oxygen과 70% nitrogen으로 마취를 유도합니다. 중앙선을 따라 절개한 후 리트랙터를 사용하여 해당 부위에 접근할 수 있도록 개방합니다. 모습은 다음과 같아야 합니다.포셉을 사용하여 조직을 조심스럽게 분리합니다. 그런 다음 포셉으로 ECA를 노출시키고 분리합니다. ECA를 분리하는 과정에서 STA를 응고시키고 절단해야 합니다. 이렇게 하면 더 긴 길이의 ECA를 분리할 수 있습니다.다음으로, 양극 핀셋(bipolar forceps)을 사용하여 외경동맥(ECA)을 응고시킵니다. 응고 후, ECA를 절단합니다. 이어서 ECA를 분리하고, ECA 주변으로 수 밀리미터 간격을 두고 두 개의 봉합사를 느슨하게 묶습니다. 결과는 다음과 같은 모습이어야 합니다.이제 CCA에서 ICA와 ECA로 갈라지는 분지점에 클램프를 적용하십시오. 클램프가 ECA로 가는 혈류를 완전히 차단했는지 확인하십시오. 그런 다음 ECA 단단(stump)의 끝부분을 클립으로 집으십시오.ECA에 절개창을 만든 후, 삽입 전 봉합사의 길이를 측정합니다. 봉합사를 삽입하여 원위부 매듭(distal Knot) 너머로 통과시킵니다. 봉합사가 원위부 매듭을 통과하면 매듭을 조입니다.다음으로 클램프를 제거합니다. 원위부 매듭이 단단히 고정되었는지 확인한 후, 봉합사를 근위부 매듭 너머의 ECA를 따라 더 깊게 삽입합니다. 그런 다음, 근위부 매듭을 조입니다.이제 ECA를 따라 ICA 내부로 봉합사를 조심스럽게 삽입하십시오. 봉합사가 분기점(bifurcation point)을 9~10 mm 지나갈 때까지 ICA를 따라 계속 삽입하십시오. 이는 전체 봉합사 길이에서 분기점까지의 봉합사 길이를 빼서 계산할 수 있습니다.다음으로, 주변 조직에 손상을 주지 않도록 봉합사를 다듬습니다. 그 후 절개 부위를 봉합하고 Mouse가 회복되도록 합니다. 수술 24시간 후에 TTC 염색을 준비합니다.경추 탈구를 통해 마우스를 희생시키는 것으로 시작합니다. 그다음 두개골에서 뇌를 분리하여 몰드에 넣습니다. 면도날로 절편을 만든 후, 실온에서 2% TTC로 20분 동안 뇌를 염색합니다.그런 다음 하룻밤 동안 고정하고 10% 중성 완충 용액으로 멜린(melin) 처리를 합니다. 이것으로 모두 마쳤습니다. 시청해 주셔서 감사하며, 실험에 좋은 결과가 있기를 바랍니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

중간 대뇌 동맥의 폐색 Filamentous은 생쥐에서 허혈성 뇌졸중 공부를위한 일반적인 모델입니다.

마우스의 모델링 스트로크 - 필라멘트 모델 중간 대뇌 동맥 폐색

intraluminal 중간 대뇌 동맥 폐색 (MCAO) 모델은 실험 허혈성 뇌졸중 모델 중 가장 자주 사용되는 모델입니다. 여기서 우리는 전체 레이저 도플러 flowmetry의 가이드와 함께 상세하게 모델 및 대표 결과를 보여줄 것입니다.

마우스의 레이저 도플러 Flowmetry 안내와 허혈성 뇌졸중에 대한 중간 대뇌 동맥 Intraluminal 폐색 (MCAO) 모델

쥐 intraluminal 중간 뇌성 가림 모델은 여기서 제공됩니다. 대뇌 경색의 범위는 neurologic 점수와 cresyl 보라색의 착색, TTC의 대안 얼룩, 병렬 많은 관심 마커에서 테스트 큰 이점을 제공함으로써 평가됩니다.

Intraluminal MCAO의 마우스 모델 : Cresyl 보라 착색에 의한 뇌 경색 평가

중대 뇌동맥 폐색 (MCAO)의 다양한 쥐 모델은 널리 실험 뇌 연구에 사용됩니다. 여기서 우리는 인간의 허혈성 뇌졸중의 대다수에 의해 부과 된 손상에 해당하는 크기의 일관성있는 대뇌 피질의 경색을 생산 두개 영구 원심 MCAO의 모델을 보여줍니다.

마우스의 모델링 스트로크 : 말초 중간 대뇌 동맥의 영구 응고

대뇌 국 소 빈 혈 reperfusion의 마우스 모델 선의 이상 조사를 설립 하다. 우리는 distally 오른쪽 중간 대뇌 동맥과 바로 일반적인 경 동맥 선 하 고 국 소 빈 혈의 10 또는 40 분 후 혈액 흐름을 복원.

대뇌 국 소 빈 혈 reperfusion의 2 배 폐색 마우스 모델

중간 대뇌 동맥 폐색의 다른 모델 (MCAo) 실험 적인 뇌졸중 연구에 사용 됩니다. 여기서, 외부 경동맥(ECA)을 통한 과도 MCAo의 실험적인 뇌졸중 모델이 기술되며, 이는 자발적인 혈전 용해 또는 치료로 인해 뇌혈관 혈전이 제거되는 인간의 뇌졸중을 모방하는 것을 목표로 한다.

마우스에서 뇌졸중 모델링: 외부 경동맥을 통한 일시적인 중간 뇌동맥 폐색

이 프로토콜은 중간 크기의 경색과 우수한 생존율을 가진 독특한 마우스 스트로크 모델을 보여줍니다. 이 모델을 통해 전임상 뇌졸중 연구자는 허혈 기간을 연장하고, 노령 마우스를 사용하고, 장기적인 기능적 결과를 평가할 수 있습니다.

늙은 쥐의 뇌졸중 결과를 연구하기 위해 수정된 경두개 중뇌동맥 폐색 모델

이 프로토콜은 중뇌동맥의 내강 내 폐색을 통한 마우스의 일시적인 국소 대뇌 허혈 모델을 설명합니다. 또한 자기 공명 영상 및 행동 테스트를 사용하여 결과 평가의 예를 보여줍니다.

뇌졸중의 일시적인 중뇌동맥 폐색 모델

여기에서는 C57BL/6J 마우스에서 경두개 전기응고를 통해 원위 중뇌동맥 폐색(dMCAO) 모델을 확립하고 후속 신경학적 행동 및 조직병리학적 특징을 평가하기 위한 프로토콜을 제시합니다.

원위 중동맥 폐색 기법을 사용한 마우스의 급성 허혈성 뇌졸중 유도

현재 프로토콜은 손상을 입히지 않고 뇌 혈관의 해부학적 구조를 보존하는 중대뇌 동맥 폐색/재관류의 쥐 모델을 설명합니다.

대뇌 혈관의 해부학적 구조를 손상시키지 않고 중간 대뇌 동맥 폐색/재관류의 쥐 모델

본 연구의 목적은 쥐에서 두개골 절제술 후 영구적이고 선택적인 중뇌동맥 폐색을 수행하는 재현 가능한 방법을 확립하여 운동 및 공간 기억 결손에 대한 실험 연구에 적용하는 것이었습니다.

쥐의 중뇌동맥 선택적 및 영구 폐색: 운동 및 공간 기억 결손 연구를 위한 실험적 접근법

학습하세요 마우스 중간 대뇌 동맥 폐색 모델을 통해 뇌졸중 연구를 수행하는 방법을. 단일사 실선을 이용한 수술 기법과 TTC 염색을 통한 경색 크기 평가 방법을 상세히 알아보세요.

중간 대뇌 동맥 폐색의 마우스 모델

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