Name: 리어링을위한 최적화된 프로토콜 Fopius arisanus Tephritid 과일 Parasitoid 난다 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-07-02T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min
Description: 배우세요 Fopius arisanus를 이용한 과일파리 생물학적 방제를 위한 최적화된 사육 프로토콜입니다. 이 방법은 열대 지역 농업 해충 관리에 효과적인 지속 가능한 해결책을 제공합니다.

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우리는 컴퓨터 그래픽 도움 insectary와 나타샤 Sostrom에 도움 키스 Shigeteni 감사합니다. 이 작품은 USDA - ARS에 의해 투자되었다. 본 출판물에 표현 의견, 결과, 결론이나 권고는 저자의 견해이며, 반드시 USDA의 의견을 반영하지 않습니다. USDA는 동등한 기회 제공 및 고용주입니다.

1. parasitization에 대한 호스트 과일 플라이 달걀을 준비 <ol><li> 가득한 요리, 측면 당 길이는 10cm와 1.5 cm 깊이, 한천을 (보다 비용 효율적인 옵션 또는 Gelcarin GP812, FMC 생체 고분자, 유잉 NJ)가 준비하여 parasitized하는 과일 플라이 달걀의 기판을 준비합니다. 물의 리터 당 9g의 농도에 한천을 준비합니다. </li><li> 액체 배지 (약 70ml)로 가장자리에 요리를 입력하고 (최소한 45 분) 그들이 냉각 및 응고 수 있습니다. </li><li> 한천 블록은 탄탄한되면, 각 블록의 상단을 덮고, 티슈의 단일 계층 (조지아 퍼시픽 '환경 설정'배치 조직의 단일 가닥)을 적용합니다. 조직 때문에 표면 수분의 한천 쉽게 붙어해야합니다. </li><li> 한천 블록의 조직 대상 표면에 물이 정지 0.5 ML 볼륨 과일 플라이 달걀을 적용합니다. 우리 insectary에서는이 Bactrocera 발등 (ML 당 12,000 계란)의 6000에 대한 알을 동일합니다. </li><li> 넓은 브러시는 조직 표면 균일 과일 플라이 달걀을 확산하기 위해 물에 담근 깨끗한 2.5 cm를 사용하십시오. </li><li> 산란을 허용하도록 parasitoid 연습장의 하단 화면에서 과일 파리 계란을 넣으십시오. 계란을 방해 수도 죽은 기생충을 제거하기 위해 하단 화면의 아래쪽을 누릅니다. 아래 화면은 계란을 만지지 않는 경우 그게 최선입니다. </li><li> 기생충은 야간과 다음날에 약 21 시간 알을 낳다 수 있습니다. 이것은 parasitized하는 계란의 높은 비율을위한 충분한 시간이다. 긴 노출 위험의 superparasitization. </li></ol> 2. parasitized 호스트 과일 해칭 및 pupation 난다 <ol><li> 상승에 직면하고 계란과 과일 비행 다이어트 19 1.25 리터 당 parasitized 알을 3-3.5 준비 한천 블록을 배치하여 용기를 양육 준비합니다. </li><li> 큰 pupation 컨테이너에 좋은 성적 vermiculite이나 씻어 모래 1.5 cm 깊이 레이어를 통해 라이저에 계란과 다이어트 컨테이너를 놓습니다. 와 마스킹 테이프의 가장자리 뚜껑과 테이프로 pupation 컨테이너를 커버. Vermiculite는 (아래 참조) 선별 후 재사 용할 수 있습니다. </li><li> 과일 플라이 아웃 크롤 링 애벌레 아래 vemiculite로 20 '팝'에 대한 다이어트 컨테이너의 상단과 pupation 컨테이너 뚜껑 사이에 충분한 공간이 있는지 확인하십시오. </li><li> 27 방에 pupation 컨테이너를 이동 ° C 그리고 1 주일간 80 %의 상대 습도 (RH). 첫 4 일 동안 어두운 천으로 커버 용기 그러면 남은 일 동안 천을 제거합니다. </li><li> 일주일 뒤에 애벌레 다이어트 제거되면 애벌레는 쫌 및 pupation에 대한 vermiculite을 입력했습니다. vermiculite의 애벌레가있다면, 그들이 하룻밤 사이에 번데기가되다 수 있습니다. </li><li> 체 vermiculite에서 pupae. 굵은 체 (약 3mm)로 시작 다음 vermiculite의 나머지 대단히 짧은 시간을 제거하는 손 체를 사용합니다. </li></ol> 3. 정렬 및 선택 <ol><li> 번데기가 포함된 F. arisanus는 부분적으로 크기 unparasitized 과일 파리에서 시위 수 있습니다. 이들은 parasitized 파리에 대해 풍부하게되므로, 직경 1.65와 2.26 mm 사이에 번데기를 수집합니다. 대부분 소형 parasitoids를 포함, 큰 번데기는 주로 파리를 포함하는 작은 12 번데기가. parasitized pupae에 대한 여성의 비율의 크기가 12 적극적으로 상호 그것도 있습니다. </li><li> 방법 다양한 크기 pupae를 정렬하는 고용 수 있습니다. 우리는 사용자 정의 크기 분류기 21을 사용하여 기계적인 방법을 설명합니다. </li><li> 서서히 크기 분류기 피드 진동 피더 상단의 깔때기에 pupae를 배치합니다. </li><li> 30 °의 각도로 약간 분기하는 압연 바​​의 쌍 구성되어 크기 분류기로 pupae 먹이. 깔때기를 통해 열 별도의 용기에 비어있는 슬롯의 배열에 크기에 따라 개별적으로 pupae 놓습니다. </li><li> 1.65의 크기 범위에있는 컵에서 2.26 mm까지 pupae를 수집하고 대부분의 파리 unparasitized pupae에서 부상까지 7 일 동안 더 출현 케이지에 넣습니다. </li><li> 다음, 저 아직 포함 곤충에서 빈 번데기를 구분하기 위해 부채를 사용합니다. </li></ol> 4. F. arisanus의 출현 및 유지 보수 <ol><li> F.의 식민지를 유지하기 위해 arisanus 약 25cm 쪽 당 길이, 이동식 유리 앞에 함께 parasitoid 들고 케이지를 사용합니다. 케이지는 양쪽의 위쪽과 두 1mm이 검사를하고 있습니다. 새장 뒷면은 액세스 9cm 구멍이있는 고무 시트에 덮여 있습니다. 새장 바닥 밖 parasitoid 산란을위한 과일 플라이 달걀 두 개의 한천 블록의 배치를 허용하는 충분히 큰 1~2mm이 화면 내부에 적용 상처가 있습니다. </li><li> 보관 케이지는 또한 고가 사망률의 결과로, 새장 앞 따라 parasitoid 크롤 링을 만들 수 있습니다 조명을 최소화하기 위해 유리 전면의 하단 분기 따라 적용된 부분이 있어야합니다. </li><li> 이러한 selec 약 11g을 플레이스지름 플라스틱 용기에 테드 pupae 약 9cm. 이것은 케이지 당 600-700에 대한 기생충을 생산해야합니다. 크기 선택 약 60 %의 여성에서 발생한다. </li><li> 용기 검사 뚜껑을 첨부합니다. 뚜껑은 성인 F. 수 2mm이 상영으로 덮여 있어야 출현시 컨테이너를 떠나 arsianus 있지만, 남아있는 과일 파리가 포함됩니다. </li><li> 24 기생충을 유지 ° C와 12시 12분 photoperiod 좋은 환기와 RH 45 %. 높은 사망률이 관찰되면, 몇 시간이나 증가 통풍을위한 옥외 새장을 이동하면 그것을 줄일 수 있습니다. 기생충 하나 추가 일주일에 알을 낳다 준비되어야하며 두 개 더 주 생산해야합니다. </li><li> 줄무늬가 연습장 상단의 주당 또는 언제든지 사용할 수있는 벌꿀은 건조 적어도 세 번 부른 꿀을 undiluted. 손가락을 사용하여 좁은 줄무늬에 늘인 벌꿀을 적용합니다. 줄무늬가 너무 무거운 경우에는 벌꿀이 케이지에 똑 않습니다, 너무 밝은 경우, 벌꿀 신속하게 밖으로 건조하고 자주 reapplication가 필요합니다. </li><li> 기생충에 습기를 제공하기 위해, 새장의 꼭대기에 자리 한천 블록 (10cm X 10cm X 4cm). 이들은 두 번 주당 변경해야합니다. </li></ol> 5. 대표 결과 : 우리는 여기서 USDA - ARS F. 실시 품질 관리 절차의 결과를보고 1월 5일 및 2010년 6월 22일 사이 힐로, 하와이에서 arisanus 양육 작업. 이 동영상이 문서 및 프로토콜에 설명되어있는 규모의 힐로 위치에 리어링 8 월 2009 년 시작되었고, 새로운 위치를 초기 문제와 조정은 대부분 1 월 해결했다. 따라서 이러한 데이터는 다른 연구자가 설명한대로 그들이 프로토콜을 따르는 경우 자신의 식민지를 시작 얻을 수있는 결과의 대표이며, 일반적으로 경험 양육 곤충 있습니다. 이 기간 동안 우리는 F.의 작은 식민지를 유지했다 arisanus : 3,600 대해 F.에 해당하는 주당 생산 4 parasitoid 잡고 케이지, arisanus. 농축 parasitization 요금의 초기 검사는 1.65의 크기 범위에서 pupae의 2g 샘플을 복용에 의해 실시되었다 - 2.26 mm (농축)을 들고 새장에 개발의 추가 주 (전에 애벌레 다이어트가 제거 즉시 IE와 pupae는 걸러서와 크기가 정렬. 우리는)​​ '초기 pupae'와 같은 이들을 참조하십시오. 2010 년 첫 3 달 동안 풍부한 샘플의 평균 비율의 기생충은 0.46 (SD = 0.18가)되었습니다. 다음 분기 동안이 의미는 새로운 위치에있는 식민지와 양육 절차의 안정화를 반영, 0.58 (SD = 0.08가)되었습니다. 성공적으로 parasitized하지 않은 농축 pupae가 emergents을 생산 안되는 그 파리를 생산 이들을 포함합니다. 빈 번데기의 개최 케이지 제거에 추가 주 후에 다른 이g 샘플 ( '늦은 pupae') 촬영했습니다. 과일 파리는이 두 번째 예제의 1 % 미만 표현. 과일 파리의 낮은 비율은 이전 기생충에 비해 파리의 출현 때문에 보관 용기에 남아 가장 야구를하기 위해 부분적으로 때문입니다. 마지막으로, 그림 1 준 2010 년 월부터 pupal 대량의 수율을 제공합니다. 수확량은 관심의 크기 범위에서 pupae 강화, 1.65-2.26 mm에서 측정됩니다. 조정이 새로운 시설로 만들어진 동안 일년의 시작 부분에있는 '초기 pupae'의 큰 질량은 과일 파리의 비율이 높다고 그 시간에 unemerged pupae을 나타냅니다. <img src="/files/ftp_upload/2901/2901fig1.jpg" alt="그림 1" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="그림 1"> 그림 1. 초기 농축 (pupal 직경 1.65 - 2.26mm)의 항복 (즉시 크기를 선택 후)와 힐로, 하와이에서 ARS - USDA F. ariasnus 콜로니에서 '늦은'(한 주 동안 보관하고 빈 탄피를 제거 후) pupae , 2010년 1월에서 6월까지

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우리는 보고서에 관심을 전혀 충돌이 없습니다.

이 프로토콜과 함께 동영상이 문서에서는 F.를 양육을위한 최적화된 프로토콜을 설명하고 증명하고있다 ariasnus, 실험실 환경에서 Tephritid 과일 파리의 parasitoid. 이 프로토콜은 식민지를 유지하는 데 필요한 노동과 전문 장비의 양을 최소화하기 위해 몇 년 동안 정제되었습니다. 우리는 호스트 과일 파리가 잘 설립, 생산하고 안정적​​인 식민지가 양육 parasitoids에서 시도를 위해 필요합니다. 우리 insectary 우리는 호스트 과일 플라이로 Bactrocera 발등을 사용하지만 다른 종뿐만 아니라 14-17 관할 호스트로 표시되었습니다. F. 여러 측면 arisanus 콜로니 유지 보수 탐험으로 남아 있습니다. 이들은이 수종 10 실험실 적응의 속도, 22 학습의 메카니즘과 적응 및 호스트 과일 플라이의 소성에 관여있을 수 있습니다 메커니즘 발생할 수있는 유전자 변화를 포함합니다. 폴리네시아, B.에 B. 발등 : 지난 10 년 동안 특히 전세계 Dacine의 파리의 확산의 여러 예제 속 Bactrocera 이들하려고 애썼던 남미, B.의 일부에 carambolae 아프리카와 B.에 invadens 아프리카 북부 지중해. 3,23,18 테스트 같은 F.과 같은 생물 학적 제어 에이전트의 효율성에 zonata 다른 Bactrocera 종에 대한 arisanus은 높은 우선순위되어야하고,이 프로토콜과 함께 비디오 문서에서 설명하는 방법의 응용 프로그램 F. 연구를 가속화할 것입니다 우리의 희망입니다 위치 24보다 다양한 arisanus. 마지막으로, 기점으로이 방법을 사용하여 추가 조사는 또한 소설 달걀 parasitoids의 식민지 25,1에 중요한 정보를 제공할 수 있습니다

리어링을위한 최적화된 프로토콜 fopius arisanus tephritid 과일 parasitoid 난다

An Optimized Protocol for Rearing Fopius arisanus, a Parasitoid of Tephritid Fruit Flies

Fopius arisanus (소난)는 적어도 두 가지 이유 때문에 Tephritid 과일 파리의 중요한 parasitoid입니다. 첫째, 그것은 계란 1 단계 동안 호스트를 감염하는 것으로 알려져 단지 세 opiine의 parasitoids의 하나입니다. 둘째, 그것은 잠재적인 과일 비행 호스트 다양한 있습니다. 그 삶의 역사, F.으로 아마도 인해 arisanus가 성공적으로 여러 열대 지역 2-4 과일 파리의 생물 학적 제어에 사용되고 있습니다. F.의 넓은 사용하는 하나의 장애 과일 비행 제어를위한 arisanus는 안정적인 실험실 식민지 5-9를 구축하기 어려운 것입니다. 이러한 어려움에도 불구하고, 1990 년대 USDA 연구원에서 F.의 실험실 인구를 유지하기 위해 신뢰할 수있는 방법을 개발 arisanus 10-12. F.에 상당한 관심이있다 arisanus 생물학 13,14, 특히 Tephritid 호스트의 다양한 14-17를 식민지하기 위해 능력에 대한, 관심은 특히 지난 10 년 18 새로운 대륙에 Bactrocera 과일 파리 해충의 놀라운 확산에 의해 구동됩니다. F.에 대한 자세한 연구 arisanus 및 생물 학적 제어 에이전트로이 종류의 추가 배치는 양육 방법의 최적화 및 개선 도움이 될 것입니다. 이 프로토콜 및 관련 비디오 문서에서 우리는 F.를 양육을위한 최적화된 방법을 설명 arisanus는 이전에 설명한 방법을 기반으로 12. 우리가 여기서 설명하는 방법은 있습니다 F.의 양육 전세계와 상대적으로 낮은 수동 노동 요구 열대 지역에서 사용할 수있는 재료를 사용하여 과일의 사용없이 작은 규모 arisanus.

Fopius arisanus 성공적으로 이러한 중요한 열대 해충의 생물 학적 제어에 사용되는 Tephritid 과일 파리의 달걀 애벌레 parasitoid입니다. 우리는 여기서 F.을 양육을위한 최적화된 프로토콜을 설명 쉽게 사용 가능한 재료를 사용하여 작은 규모 arisanus.

리어링을위한 최적화된 프로토콜 Fopius arisanus Tephritid 과일 Parasitoid 난다

Fopius arisanus (Sonan)는 적어도 두 가지 이유로 초파리과 과실파리의 중요한 기생벌이다. 첫째, 이 종은 단 세 종류뿐인 opiine...

FOIA Aus는 열대 지방 전역, 특히 이곳 하와이에서 심각한 경제적 해충인 과실파리를 공격하기 때문에 하와이에서 중요한 생물학적 방제 인자입니다. FOIA Aus의 장점은 해충의 알 단계에서 공격하여 초기 단계에서 곤충을 제어한다는 점입니다. 다음 영상들에서 실험실 환경에서 FOIA Aus를 어떻게 사육하는지 근접 촬영 영상을 확인하실 수 있습니다.그리고 이 프로그램의 마지막 부분에서는, 이 특정 기생벌이 프랑스령 폴리네시아의 성공적인 방사 프로그램에 어떻게 활용되었는지에 대한 논의가 이어질 것입니다. 이제 호스트 초파리의 알에 기생할 준비가 된 성충 기생벌을 사용하여 프로토콜을 시작하겠습니다. 첫 번째 단계는 기생벌에게 제공할 초파리 알을 준비하는 것입니다.다음으로, 초파리 유충이 부화하여 성장하고 번데기가 될 때까지 기다립니다. 초파리가 번데기 단계에 도달하면, 기생충을 농축하기 위해 크기별로 분류합니다. 마지막으로, 기생충이 우화하면 성숙할 때까지 사육합니다.그 후 이들은 서로 만나 다시 새로운 과일 묶어에 알을 낳을 준비를 합니다. 초파리 알. 이것으로 주기(cycle)가 완료됩니다.한 변의 길이가 약 10cm인 한천 블록을 만들어 초파리 알을 위한 기질을 준비합니다. 한천은 증류수 1L당 한천 가루 9g의 농도로 준비합니다.평평한 표면에서 디쉬의 가장자리까지 액체 어거(auger)를 채우고, 최소 45분 동안 굳힙니다. 어거 블록이 완전히 굳으면, 각 어거 블록의 상단을 덮도록 티슈 페이퍼를 한 겹으로 붙입니다. 표면의 수분으로 인해 티슈가 어거에 쉽게 부착될 것입니다.두 번째 롤링을 수행합니다. 초파리 알을 오거 블록의 조직으로 덮인 표면에 도포합니다. 현탁액 상태의 초파리 알 0.5 milliliter는 블록당 약 6,000개의 알을 생성합니다.물에 적신 2.5 centimeter 너비의 붓을 사용하여 초파리 알을 조직 표면에 고르게 폅니다. 그 후 초파리 알을 기생벌 케이지의 바닥망 아래에 배치하여 기생벌이 산란할 수 있도록 하며, 망의 아랫부분을 가볍게 두드려 초파리 알을 방해할 수 있는 죽은 기생벌을 제거합니다. 초파리 알은 기생벌이 하룻밤 동안 산란할 수 있게 합니다.초파리 알의 높은 비율이 기생되도록 하려면 약 21시간이면 충분합니다. 노출 시간이 더 길어지면 과잉 기생(Super parasitizing)의 위험이 있습니다. 기생충 노출 후 알을 배양하는 데 필요한 주요 구성 요소는 초파리 유충 배지, 유충 배지 용기 및 번데기 용기입니다.준비된 기생 알이 포함된 3~3.5개의 오거 블록을 1.25L의 초파리 유충 먹이에 놓습니다. 알이 들어 있는 먹이 용기를 받침대 위에 놓고, 그 위에 1.5cm 깊이의 미세 입자 버미큘라이트 또는 세척 모래 층이 깔린 번데기 형성 용기를 덮습니다.마스킹 테이프로 번데기 용기의 가장자리를 밀봉합니다. 유충이 기어 나와 아래의 질석으로 떨어질 수 있도록 먹이 용기의 상단과 번데기 용기 뚜껑 사이에 충분한 공간이 있는지 확인합니다. 번데기 용기를 27 °C, 상대 습도 80%의 실험실로 옮겨 일주일 동안 유지합니다.일주일 후 처음 4일 동안 용기를 두꺼운 천으로 덮어줍니다. 번데기 형성 용기를 열고 유충 먹이를 제거합니다. foia Airis를 사육하기 위해 Bre Dorsals를 호스트 초파리로 사용합니다.Asfa 및 sitis 속의 다른 종들도 잠재적인 숙주가 될 수 있습니다. 버미큘라이트에 넣지 않은 유충이 있는 경우, 하룻밤 동안 번데기가 되도록 둡니다. 버미큘라이트에서 번데기를 분리하려면 거친 체와 큰 용기를 사용하십시오.다음으로, 손 체를 사용하여 opia를 포함하는 버미큘라이트 덩어리를 제거합니다. 기생하지 않은 초파리로부터 기생벌을 부분적으로 분리할 수 있습니다. 이전 연구를 바탕으로 직경 1.65에서 2.26 밀리미터 사이의 기생벌만 수집하며, 이보다 작은 기생벌은 대부분 크기가 미달하는 개체들입니다.더 큰 aria에는 주로 파리가 포함되어 있습니다. 번데기를 크기별로 분류하기 위해 다양한 방법을 사용할 수 있습니다. 여기서는 수집된 기생 aria를 위해 맞춤형 크기 분류기를 사용하는 기계적 방법을 설명하겠습니다.크기가 커질수록 암컷의 비율이 증가합니다. 기계식 크기 분류기의 상단 깔때기에 피쉬(puy)를 넣습니다. 진동 피더가 이들을 30도 각도로 약간 벌어진 한 쌍의 롤링 바 상단으로 이동시킵니다. 개체들은 개별적으로 슬롯 배열로 떨어지며, 이 슬롯들은 깔때기를 통해 10개의 별도 용기로 배출됩니다.1.65 millimeters에서 2.26 millimeters 크기 범위의 번데기를 우화 케이지에 넣고, 기생된 번데기에서 대부분의 파리가 우화할 때까지 7일 더 유지합니다. 다음으로, 팬을 사용하여 빈 파리 외피와 여전히 살아있는 기생벌이 들어 있는 외피를 분리합니다. Opia Aus 군집을 유지하려면 각 변의 길이가 약 25 centimeters이며 전면 유리를 제거할 수 있는 기생벌 유지 케이지를 사용하십시오.케이지의 상단과 두 측면에는 1mm² 크기의 망이 설치되어 있습니다. 케이지 뒷면은 고무 시트로 덮여 있으며, 접근을 위해 9cm 크기의 구멍이 뚫려 있습니다. 케이지 바닥에는 컷아웃이 있으며, 내부에는 1~2mm² 크기의 망으로 덮여 있습니다.과일 초파리 알을 기생충의 상위에 배치할 수 있도록 두 개의 오거 블록을 넣기에 충분한 크기여야 합니다. 사육 케이지의 전면 유리 하단 4분의 1 지점에는 기생충이 케이지 앞면에 밀집되는 것을 최소화하기 위해 색이 들어간 부분이 있어야 합니다. 선택한 배지를 약 11g씩 지름 약 9cm의 플라스틱 용기에 담습니다.이렇게 하면 케이지당 약 600에서 700마리의 기생충이 생성될 것입니다. 크기 선택을 통해 약 60%의 암컷을 확보해야 합니다. 용기에 스크린 뚜껑을 부착하십시오. 뚜껑은 2 제곱 밀리미터의 망으로 덮여 있어야 하며, 이는 우화 후 초파리가 용기를 떠날 수 있게 하면서도 남은 초파리들은 내부에 가둘 수 있게 합니다.기생충을 24°C, 상대 습도 약 45%, 12:12 광주기와 적절한 환기 조건에서 유지하며, 일주일에 최소 3회 이상 케이지 상단에 원심분리된 꿀을 줄무늬 모양으로 도포합니다. 또는 가용한 꿀이 말랐을 때마다 손가락 끝을 사용하여 좁은 줄무늬 형태로 원심분리된 꿀을 도포하십시오. 줄무늬가 너무 두꺼우면 꿀이 케이지 내부로 떨어질 수 있으며, 너무 얇으면 꿀이 빠르게 말라 자주 도포해야 함에 유의하십시오. 기생충에게 수분을 공급하기 위해 가로세로 10cm, 깊이 4cm의 오거 블록을 케이지 상단에 배치합니다.이 블록들은 일주일에 두 번 교체해야 합니다. 2001년에 우리는 오리엔탈 초파리가 당시 모든 열대 과일에 믿기 힘들 정도의 피해를 주고 있었기에, 이 상황을 완화하기 위해 프렌치 폴리네시아에 생물학적 방제법을 도입할 수 있을지 확인하기 위한 소규모 시드 그랜트를 지원받았습니다. 이곳 하와이의 연구소에서 우리는 10회분의 발송을 진행했습니다.따라서 이러한 각 운송분은 보통 약 10만 마리의 Fopcua axios에 달했으며, 실제로는 그보다 훨씬 더 많았지만, 기생벌이 들어있는 오리엔탈 초파리 퍽(PPE)을 운송한 다음 이를 부화시켰습니다. 이에 따라 저희는 타히티에 작은 실험실을 마련하여 이들을 수령하고 Fopcua axios를 부화시켰습니다. 그 결과, 약 1년의 기간 동안 거의 100만 마리의 Fopcua axios를 방사했습니다.전반적으로, 이는 하와이 외 지역에서 가장 성공적인 사례입니다. FOIA Aus가 하와이에서 처음 방출되었을 때, 이는 태평양 전역에서 초파리의 생물학적 방제에 관한 최고의 사례가 되었습니다. 지난 10년 동안 전 세계적으로 Bactrocera Dorsalis 복합종의 엄청난 확산이 있었습니다.따라서 Bactrocera Carbo가 남미의 수리남으로 확산되었으며, 현재는 브라질 북부에도 퍼져 있습니다. 또한 Bacter Inance라고 불리는 또 다른 종이 아프리카 전역으로 확산되어 온갖 피해를 주고 있습니다. 그리고 bacter papaya 또한 확산되었습니다.따라서 이러한 성공으로 이제 남미, 아프리카 및 아시아의 다른 지역에 이러한 FOIA Aus를 보급할 기회가 열렸습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

무균 및 무균 조건에서 초파리 melanogaster의를 양육하는 방법이 제공된다. 플라이 배아는, 차아 염소산 나트륨에 dechorionated 멸균 다이어트에 무균 적으로 전송하고, 밀폐 용기에 양육된다. 박테리아와식이 요법과 배아를 접종은 무균 협회에 이르게하고, 세균의 존재는 전신 초파리 균질 도금에 의해 확인된다.

과일 비행을 양육<em&gt; 노랑 초파리</em&gt; 무균 및 무균 조건에서

여기서 우리는 토양 샘플에서 entomopathogenic 균류 (EPF)를 분리하고 선택하는 데 사용 된 식사 벌레 (Tenebrio molitor)-미끼 시스템을 기반으로 프로토콜을 제시합니다. 효과적인 코니디아 번호(ECN) 포뮬러는 현장에서 해충 미생물 조절을 위한 생리적 특성에 기초하여 높은 스트레스 내성 EPF를 선택하는 데 사용된다.

토양 샘플에서 내토모 병원성 곰팡이의 격리 및 선택 및 곤충 해충에 대한 곰팡이 독성의 평가

Ganaspis brasiliensis-Drosophila suzukii (세계적인 침습성 과일 작물 해충)의 애벌레 기생충 -이 해충의 생물학적 방제를 위해 유럽과 미국에 도입 될 것으로 승인되었거나 고려되었습니다. 이 기사는이 기생충의 소규모 및 대규모 양육을위한 프로토콜을 제공합니다.

기생충 Ganaspis brasiliensis를 양육하는 방법, 침습성 초파리 스즈키에 대한 유망한 생물학적 조절제

현장에서 미성숙 테프리티드 초파리의 탐지를 증가시키면 이러한 파괴적인 해충의 개체군을 제거하기 위한 시기 적절한 노력을 촉발할 수 있습니다. 늦은 instar 유충을 검출하는 것은 숙주 과일을 가방에 넣고 펄프를 일련의 체를 통과시킬 때 손으로 자르고 육안 검사보다 더 빠르고 정확합니다.

들판에서 미성숙한 테프리티드 초파리를 검출하기 위해 과일 펄프를 체질합니다.

여기에서 우리는 숲 나무 천공충에서 곤충병원성 균류를 얻기 위한 프로토콜과 딱정벌레목 모델 곤충을 사용하여 곤충병원성 활성을 평가하는 대체 방법을 제시합니다. 이 방법은 자연 산림에서 나무를 뚫는 곤충 해충으로부터 곤충 병원성 곰팡이 자원을 탐사하는 데 효율적이고 편리합니다.

Isolation, Behavioral Identification, and Pathogenicity Assessment of Entomopathogenic Fungi from a Forest Wood Borer(포레스트 우드 보어의 곤충병원성 곰팡이의 격리, 행동 식별 및 병원성 평가)

이 논문은 Lower dipteran fly Bradysia (Sciara) coprophila의 실험실 유지 관리 (짝짓기 및 먹이 포함)를 간략하게 설명합니다.

Lower Dipteran Fly Bradysia (Sciara) coprophila의 실험실 유지 보수 : 새로운 / 오래된 신흥 모델 유기체

이 프로토콜의 목표는 Asobara japonica 와 Drosophila melanogaster 에서 기생벌-숙주 상호작용의 기능적 분석을 용이하게 하는 것입니다. 최적화된 사육 방법, 단일 산란 감염 분석, RNAi 매개 유전자 다운을...

내기생충 말벌 Asobara japonica와 그 숙주 Drosophila melanogaster의 효율적인 사육 및 기능 분석 프로토콜

(과일 파리) Drosophila의 침략을 유학

이 동영상은 실험실에서 뒤쪽 아노 펠 레스 gambiae하는 데 사용되는 일반적인 기법을 보여줍니다. 실험실 모기를 돌보는위한 방법은 혈액 먹이 어른 pupae에 애벌레에서 유기체의 생명주기의 모든 단계를 통해 증명하고 있습니다.

모스키토 리어링 (A. gambiae)에 대한 프로토콜

공중 식물 장기는 표피, supramolecular biopolyester - 왁스 어셈블리의 보호를받습니다. 우리는 고체 NMR 및 원자 힘 현미경에 의한 분자와 마이크로 저울에 토마토 과일 손톱에서의 선택적 제거 에피와 intracuticular 왁스, 각각을 모니터링하고, 공학 cuticular biopolyesters의 가교 능력을 평가하기 위해 프로토콜을 소개합니다.

분리 및 과일 손톱의 Biophysical 연구

배우세요 Fopius arisanus를 이용한 과일파리 생물학적 방제를 위한 최적화된 사육 프로토콜입니다. 이 방법은 열대 지역 농업 해충 관리에 효과적인 지속 가능한 해결책을 제공합니다.

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