Name: 기본 마우스 Trophoblast 셀 및 Trophoblast의 침략 분석의 절연 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-08T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 28 s
Description: 학습하세요 마우스 태반 트로포블래스트 세포 분리 및 Matrigel 침략 분석 방법을. Percoll 밀도 구배를 이용한 효율적인 세포 분리 기술과 체외 침략 실험을 통해 태반 생물학 연구에 활용할 수 있습니다.

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저자는이 비디오를 제작 미주리 학술 지원 센터의 대학에서 크리에이티브 서비스 팀에게 감사하고 싶습니다. 이 작품은 국립 보건원의 아동 건강 및 인간 발달의 유니스 케네디 Shriver 국립 연구소, 교부금 번호 HD055231에 의해 지원되었다

1. 마우스 태반의 해부 <ol><li> 마우스의 결합 쌍을 설정합니다. </li><li> 다음과 같은 일의 각에서 copulatory 플러그의 존재를 확인합니다. 플러그가 감지되는 날은 0.5 일 이후의 성교 (dpc) 7 간주됩니다. </li><li> 태반은 D 10.5에 성숙 태반의 발달과 태반 가능한 시작의 깨끗한 절개로, 임신의 원하는 단계에서 수집 될 수 있습니다. 여기, 우리는 14.5 dpc을 보여줍니다. 주어진 볼륨에서 10.5 dpc에 40-60 태반, 그리고 14.5 dpc에 10-20 태반은 명확하게 볼 수 trophoblast 세포 레이어를 얻을 수 있습니다. </li><li> 임신 마우스를 안락사시켜야하고, 자궁 경부에서 절단, 자궁을 제거하고 mesometrium 따라. </li><li> 각 conceptus (그림 1A) 사이에 컷 날카로운 가위를 사용합니다. </li><li> 포셉의 두 쌍을 사용하여 절단 가장자리에 자궁 벽을 파악하고, 분열, myometrium (그림 1B)를 제거 . 한 쌍의 톱니 모양 (곡선 또는 직선) 적당히 고급 집게와 한 쌍의 아주 좋은 포셉 (# 5, 예를 들어)을 권장합니다. </li><li> 태반 맞은 편에 태반 노출, 집게 가위로 decidua를 엽니 다. 한 포셉 쌍과 자궁 조직을 파악하는 것은 분리 할 수있는 태반 (그림 1C) 아래에 다른 집게를 끼 웁니다. 만약 태반에서 필요한, ​​별도의 태아와 태아 막의. 또한 태반 조직을 잃지 않고 절개로 모든 decidual 조직을 제거 할 수는 없지만 추가 decidual 조직은 (창백한) 부드럽게 집게와 필링하여 태반의 표면에서 제거 할 수 있습니다. 우리는 더 정화를위한 Percoll 기울기에 의존합니다. </li><li> 모든 dissections이 완료 될 때까지 50 ML 원뿔 튜브 25 ML의 얼음 차가운 해리 버퍼에있는 각 해부 태반를 놓습니다. 나중에 단계에서, coarsely 해리 버퍼에 전송하기 전에 보 또는 면도날과 태반 세포를 이기다. </li></ol>trophoblast 세포의 tle "&gt; 2. 절연 <ol><li> 45-60분을위한 37 ° C의 물에 대충 모자 원뿔 튜브 및 장소. 대략 10 분 pipetting하여 힘차게 분리 솔루션을 섞는다. 총 소화 시간이 면밀히 모니터해야하며 가능성이 몇 가지 시행 착오를 최적의 세포 복구를 달성하기 위해 필요합니다. 조직은 10 ML의 pipet 통과 할 수 있어야하지만, 조직의 표시 부분은 유지됩니다. Overdigestion 가난 세포 생존과 도금 효율이 높아집니다. 몇 세포의 clumps이 존재하는 경우 최적의 세포 생존과 도금 효율은 비교적 분리가 달성 될 때보다 발생합니다. 반대로, underdigestion는 percoll 분리에 따라 감소 순도로 이어질 것입니다. 적절한 소화 지점에 도달했을 때, 얼음에 장소 튜브 collagenase의 활동을 중지 할 수 있습니다. </li><li> 소화되지 않은 물질을 제거하고 5 분 @ 500 XG를 원심 분리기하는 셀 스트레이너를 통해 솔루션을 전달합니다. </li><li> 씻어 제거10 ML 세척 솔루션의 표면에 뜨는 및 resuspend 세포. 5 분 @ 500 XG를 원심 분리기. </li><li> 원심 분리하는 동안, 9.6 ML percoll, 13.4 ML 세척 솔루션과 고속 원심 분리에 적합한 50 ML 튜브에 1.1 ML 10 배 중간 199 혼합하여 percoll 솔루션을 준비합니다. </li><li> 2 ML 세척 용액에 표면에 뜨는 및 resuspend 세포 펠렛을 제거합니다. </li><li> 솔루션을 percoll와 4에서 30 분 @ 30,000 XG를 원심 분리기에 셀을 추가 ° C. </li><li> 기울기를 방해하지 않으면 서 원심 분리기에서 튜브를 제거합니다. 밝은 광원 앞의 그라데이션, 장소 튜브를 시각화합니다. trophoblast 밴드 (그림 2)을 찾아 아래 적혈구 밴드를 방해하지 돌보는, pipet을 대기음. trophoblast 대역의 볼륨은 5-8 ML 될 것입니다. </li><li> 50 ML 원뿔 튜브에 trophoblast 세포를 전송합니다. 45ml의 총 볼륨에 대한 솔루션을 씻어 추가 할 수 있습니다. </li><li> 5 분 @ 500 XG를 원심 분리기. 표면에 뜨는 제거하고, 문화 메디에 resuspend음 ... (NCTC-135). 세포는 37 ° C 5 % CO 2에서 얇은 층 matrigel 또는 조직 배양 플라스틱에 배양 할 수 있습니다. 일 10.5에서 각 태반은 80-90% 긍정적 인 cytokeratin되는 대략 50,000 라이브 세포를 산출. </li></ol> 3. Trophoblast의 침공 분석 <ol><li> 37 각 matrigel 챔버 및 품다 1-2 ML 문화 매체 (NCTC-135)을 추가 °, 30-90 분에 대한 5% CO 2. </li><li> 미디어를 제거하고, 상부 챔버에 2ml 매체에 1.5 ML × 10 5 갓 고립 된 세포를 추가 할 수 있습니다. 낮은 막 표면을 충당하기 위해 하부 챔버에 1 ML 매체를 추가 할 수 있습니다. </li><li> 18~24시간에 대한 삽입의 문화 세포. </li><li> 거품 면봉을 사용하여 삽입에서 다쳤고, 셀 및 matrigel. </li><li> 2 ML PBS의 상단과 챔버의 바닥을 씻어. </li><li> PBS 1 ML 4 % paraformaldehyde에 5 분 수정. </li><li> 400 μl DAPI (300nM)와 하부 챔버 채워 청바지 30 분에 품다. </li><li> PBS에서 간단히 세 번 씻으십시오. </li><li><li> 슬라이드 마운트 매체 (PBS의 50 % 글리세롤)의 10 μl 방울을 추가합니다. 집게를 사용하여 드롭에 막 놓여 있었다. 매체의 또 다른 10 μl 방울을 추가 한 다음 조심스럽게 coverslip. </li><li> 사진 및 count 세포. 사용중인 현미경에 대한 적절한 방향 막 (아래 셀 사이드 업 또는 셀 측)에 있는지 확인하십시오. 이미지 J 소프트웨어 (보건 국립 연구소)이 목적을 위해 사용할 수있는 수동 계산 기능을 포함 할 수 있습니다 어도비 포토샵 또는 수동 카운터 있습니다. </li></ol> 4. 대표 결과 <img src="/files/ftp_upload/3202/3202fig1.jpg" alt="그림 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 1"> 그림 1. 마우스 태반의 해부. (A) 자궁이 mesometrial 표면을 따라, (노란색) oviducts 따라 절단하여 제거하고 자궁 경부 (아래)에 있습니다. 개인 conceptuses 그런 다음 그림과 같이 가위로 절단하여 분리 할 수​​ 있습니다. (B) 자궁 벽은 컷 자궁 표면에있는 두 집게을 배치하고, 태아 근처에 떨어진 태반에서 반 mesometrial 쪽을 따라 찢어 의해 제거됩니다. (C) 태반은 다음 집게로 물체를 움켜 태반과 자궁 사이에 서로를 슬라이딩으로 절연되어 있습니다. 탯줄 및 기타 extraembryonic 멤브레인은 다음 태반에서 분리 할 수​​ 있습니다. <img src="/files/ftp_upload/3202/3202fig2.jpg" alt="그림 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 2"> trophoblast 세포의 그림 2. Percoll 분리. 원심 분리 후, 세 가지 주요 밴드가 왼쪽에 만화 같이 볼 수 있으며, 사진 오른쪽 것입니다. 위 밴드는 세포 파편과 섬유 아세포를 포함하고 가장 명백 할 것이다. 적혈구가 포함 된 하단에 꼭 (빨간색) 밴드는 확산 trophoblast 밴드 아래에 표시됩니다. 단지 사진의 화살표의 왼쪽에 표시된 두에서와 같이 셀을 합산 가능성이, trophoblast 밴드에서 볼 수 있습니다. ove_content "&gt; <img src="/files/ftp_upload/3202/3202fig3.jpg" alt="그림 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 3"> 그림 3. 침윤성 trophoblast 세포 (흰색 화살표)는 멤브레인의 바닥 표면에 게재 matrigel 층과 막 숨구멍을 통과하게된다. 모공은 (검은 색 화살촉)도 볼 수 있습니다. 전체 막 표면 또는 대표 샘플 지역에 세포의 수는 계산 될 수 있습니다. 형광 DAPI 핵 염색의 그레이 스케일 이미지는 세포의 시각화를 개선하기 위해 반전되었습니다. <img src="/files/ftp_upload/3202/3202fig4.jpg" alt="그림 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 4"> 그림 4. Trophoblast 세포는 식별 및 격리 인구의 순도는 cytokeratin 7 (센터, 마젠타)에 immunostaining에 의해 평가 될 수있다. 세포는 DAPI (위, 청색)로 counterstained 있습니다. 통합 이미지 하단에.

<ol><li>Thordarson, G., Folger, P., Talamantes, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+placental+cell+culture+system+for+studying+the+control+of+mouse+placental+lactogen+II+secretion%5BTitle%5D)+AND+%22Placenta%22%5BJournal%5D)">Development of a placental cell culture system for studying the control of mouse placental lactogen II secretion.</a> Placenta. 8, 573-585 (1987).</li>
<li>Petroff, M. G., Phillips, T. A., Ka, H., Pace, J. L., Hunt, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+culture+of+term+human+trophoblast+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Methods.+Mol.+Med%22%5BJournal%5D)">Isolation and culture of term human trophoblast cells.</a> Methods. Mol. Med. 121, 203-217 (2006).</li>
<li>Kliman, H. J., Nestler, J. E., Sermasi, E., Sanger, J. M., Strauss, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification%2C+characterization%2C+and+in+vitro+differentiation+of+cytotrophoblasts+from+human+term+placentae%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Purification, characterization, and in vitro differentiation of cytotrophoblasts from human term placentae.</a> Endocrinology. 118, 1567-1582 (1986).</li>
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<li>Librach, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((92-kD+type+IV+collagenase+mediates+invasion+of+human+cytotrophoblasts%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">92-kD type IV collagenase mediates invasion of human cytotrophoblasts.</a> J. Cell. Biol. 113, 437-449 (1991).</li>
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<li>Tanaka, S., Kunath, T., Hadjantonakis, A. K., Nagy, A., Rossant, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Promotion+of+trophoblast+stem+cell+proliferation+by+FGF4%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Promotion of trophoblast stem cell proliferation by FGF4.</a> Science. 282, 2072-2075 (1998).</li>
</ol>

우리는 공개 할 아무 것도 없습니다.

이 동영상에서는, 우리는 마우스 태반에서 trophoblast 세포의 절연을 보여줍니다. 우리는 trophoblast의 침략에의 시험 관내 분석을 보여줍니다. 이 절차를 사용은 크게,하지만 완전히 trophoblast 세포의 순수한 인구는 얻을 수 있습니다. 더 순도가 필요한 경우 기본 인간 trophoblast 세포에 대한 설명 되었기 때문에, 자기 비드 분리 또는 유동 세포 계측법은 수행 할 수 있습니다. collagenase 분리 단계의 적절한 길이는 각 실험 결정해야하며, 경험을 배울 수 있습니다. 이하 소화가 감소 순도뿐만 아니라, 감소 숫자로 이어질 수 있습니다 반면 이상 - 소화는 심각하게, 세포 복구를 줄일 수 있습니다. 우리가 상업적으로 준비 matrigel의 침략 챔버의 사용을 보여 있지만, 그들은 또한 원하는 두께의 코팅 transwell 챔버에 matrigel을 추가하여 준비 할 수 있습니다.

기본 마우스 trophoblast 셀 및 trophoblast의 침략 분석의 절연

Isolation of Primary Mouse Trophoblast Cells and Trophoblast Invasion Assay

태반은 태아에게 영양분, 가스 및 성장 요인의 운송뿐만 아니라 폐기물의 제거를 담당하고 있습니다. 따라서, 태반 개발에 결함이 태아와 어머니에 대한 중요한 결과를 가지고 있고, 배아 lethality의 주요 원인입니다. 태반의 태아 부분의 주요 세포 유형은 trophoblast입니다. 기본 마우스 태반 trophoblast 세포는 정상과 비정상 태반 개발을 공부에 유용한 도구이며, 세포 라인과는 달리, 격리 및 임신의 특정 단계에서 trophoblast을 공부하는 데 사용할 수 있습니다. 또한, 유전자 변형 생쥐에서 trophoblast의 주 문화는 태반 세포에서 특정 유전자의 역할을 연구하는 데 사용할 수 있습니다. 여기에 제시된 프로토콜은 Thordarson 외하여 설명에 따라 달라집니다. percoll 기울기는 절연 마우스 태반에서 비교적 순수한 trophoblast 세포 인구를 얻기 위해 사용되는 1. 그것은 더 널리 사용하는 유사합니다인간 trophoblast 세포 절연 2-3에 D 방법. 순도는 cytokeratin 7 4에 대한 격리 세포의 immunocytochemical 착색에 의해 평가 될 수 있습니다. 여기서, 절연 셀은 다음 체외 5-6에 trophoblast의 invasiveness을 평가하기 위해 matrigel 침공 분석을 사용하여 분석하고 있습니다. 침입 세포는 계산에 대한 immunocytochemistry과 스테인드에 의해 분석됩니다.

이 프로토콜에서는, 우리는 Percoll 기울기를 사용하여 trophoblast 세포의 분리에 이어 임신 d10.5에 마우스에서 placentae의 절개를 설명합니다. 우리는 matrigel의 침공 분석에서 분리 된 세포의 사용을 보여줍니다.

기본 마우스 Trophoblast 셀 및 Trophoblast의 침략 분석의 절연

태반은 영양소, 가스 및 성장 인자를 태아에게 전달하고 노폐물을 제거하는 역할을 담당합니다.
따라서 결함은...

본 실험 절차의 전반적인 목표는 세포 배양을 위해 마우스로부터 일차 태반 영양막 세포를 분리하는 것입니다. 또한 이러한 세포의 활용 방법 중 하나인 매트리젤 침습 분석법을 시연하겠습니다. 임신한 마우스에서 자궁을 적출하고 태반을 박리할 것입니다.태반 조직을 효소적으로 소화하여 개별 세포 또는 작은 세포 덩어리를 얻은 후, 프로토콜 밀도 구배를 통해 세포를 분리합니다. 영양막 세포가 포함된 밴드를 흡입하고, 결과물로 얻은 세포 집단을 세척하여 플레이트에 분주할 수 있습니다. 다음으로 침습 분석법(invasion assay)을 시연하겠습니다. 세포는 얇은 막을 덮고 있는 Matrigel 층 위에 분주됩니다.침습 세포는 Matrigel 층을 분해하고 막의 8 µm 기공을 통과하게 됩니다. 이후 세포를 고정하고 막을 제거합니다. 이렇게 침습한 세포를 염색하여 그 수를 측정할 수 있습니다.안녕하세요, 저는 미주리주 컬럼비아에 위치한 미주리 대학교 산부인과 및 여성 건강 학과 Schultz 연구실의 Kathleen Pennington입니다. 오늘은 임신한 생쥐로부터 일차 영양막 세포를 분리하는 절차를 보여드리겠습니다. 이어서 해당 세포를 테스트하는 데 사용하는 침습 분석법을 시연하겠습니다.우리는 태반 영양막 세포의 발달과 세포외 기질 침투 능력에 영향을 미치는 요인들을 연구하기 위해 이 절차들을 사용합니다. 이제 시작하겠습니다. 먼저, 다음의 각 날짜에 맞춰 마우스 교배 쌍을 구성하십시오.교미 플러그(copul plug)의 형성 여부를 확인하십시오. 플러그가 발견된 날을 0.5일차로 간주합니다.분만 후 태반은 임신 원하는 단계에서 수집할 수 있습니다. 여기서는 벤치탑에서 14.5일 된 태반의 박리 방법을 시연하겠습니다. 다만, 더 이른 단계에서는 조직 시각화를 위해 현미경이 필요할 수 있습니다. 자궁의 위치를 확인한 다음, 자궁-난관 접합부를 절단하십시오.자궁경부와 다른 난관 접합부를 절단하여 지방과 혈관을 계속해서 제거합니다. 자궁을 적출하기 위해, 날카로운 가위를 사용하여 자궁을 깨끗한 페트리 접시에 옮깁니다. 각 개념체를 분리합니다. 분리가 완료되면, 각 개념체를 깨끗한 접시로 옮깁니다.태아는 태반의 반-자궁근층(anti myometrial) 측에 위치합니다. 태반은 자궁의 장간막(meso) 측을 따라 위치합니다. 포셉 한 쌍을 사용하여 절단면 근처의 자궁을 잡습니다.두 쌍의 포셉을 조심스럽게 서로 반대 방향으로 당겨 자궁벽의 항근층(anti myometrial) 측을 찢습니다. 이 과정에서 일반적으로 태막도 함께 파열됩니다. 이렇게 하면 위쪽에는 태아가 명확하게 보이고, 아래쪽에는 붉은색의 태반과 흰색의 자궁 조직이 남게 됩니다.그 아래에서, 미세 핀셋을 사용하여 태아 탯줄과 양막 조직을 태반에서 분리합니다. 한 쌍의 핀셋으로 자궁 조직을 잡고, 다른 한 쌍의 핀셋을 태반과 그 아래의 자궁 조직 사이에 밀어 넣습니다. 이때, 태반에서 과도한 탈락막 조직을 제거할 수 있습니다.하지만 일부 탈락막 세포가 남아 있을 가능성이 큽니다. 모든 해부가 완료될 때까지 해부된 각 태반을 얼음처럼 차가운 해리 버퍼에 넣어 두십시오. 해부가 완료되면 태반과 해리 용액이 들어 있는 원추형 튜브의 뚜껑을 느슨하게 닫고 37 °C 항온수조에 45분에서 60분 동안 넣어 두십시오.10분 후, 피펫팅을 통해 해리 용액을 세게 위아래로 섞으며 소화 진행 상태를 주의 깊게 관찰하십시오. 콜라게나아제(collagenase) 해리 단계의 적절한 소요 시간은 매 실험마다 결정해야 하며, 경험을 통해 익힐 수 있습니다. 과도한 소화는 세포 회수율을 심각하게 감소시키며, 소화가 불충분할 경우 세포 수의 감소뿐만 아니라 순도 저하로 이어질 수 있습니다.소화되지 않은 조직 조각이 거의 남지 않았을 때 반응을 중단합니다. 용액을 세포 스트레이너(cell strainer)에 통과시켜 소화되지 않은 물질을 제거하고, 500 ×g에서 5분간 원심 분리하여 태반 세포를 펠렛(pellet) 형태로 모읍니다. 그 다음, 세포를 세척합니다.해리 용액을 제거합니다. 상청액을 제거하고 세포를 10 mL의 세척 용액에 재부유시킨 후 500 ×g에서 5분 동안 원심분리합니다. 그동안 고속 원심분리에 적합한 튜브에 Percoll 9.6 mL와 세척 용액 13.4 mL를 혼합하여 Percoll 용액을 준비합니다.10 x 배지 1.1 mL를 추가하여 등장성 세포 용액을 제조한 후, 튜브를 뒤집어 혼합합니다. 원심분리와 세척 용액 처리 후, 상층액을 제거하고 세포 펠렛을 재부유시킵니다. 2 mL의 세척 용액에 세포를 프로토콜 용액에 추가하고 혼합하여 구배를 생성한 뒤, 4 °C에서 20,000 ×g로 30분 동안 원심분리합니다. 구배가 흐트러지지 않도록 주의하며 원심분리기에서 튜브를 꺼냅니다.튜브를 광원 앞에 대고 보면 구배를 더 쉽게 시각화할 수 있습니다. 튜브 상단 부근에는 주로 세포 파편을 포함하는 흰색 띠가 보이며, 튜브 하단 부근에는 적혈구 띠가 보일 가능성이 높습니다. 바로 위쪽에서.이것이 영양막 띠(trophoblast band)입니다. 영양막 띠 바로 윗부분까지 배지를 흡입하여 제거하십시오. 그런 다음 피펫을 사용하여 영양막 띠를 35 mL의 세척액이 들어 있는 깨끗한 원심분리 튜브로 옮기고 500 ×g에서 5분 동안 원심분리하십시오.영양막 세포를 펠렛화하기 위해 펠렛을 영양막 배양 배지에 재부유시킵니다. 여기에서 세포는 6-웰 플레이트 내의 침습 챔버(invasion chambers)에서 배양됩니다. Matrigel 챔버를 제조사의 지침에 따라 미리 세척한 후, 각 인서트 아래의 웰에 0.5에서 1 ml의 배양 배지를 피펫으로 분주합니다.그런 다음, 배지 일정량에 1.5 × 10⁵ cells를 챔버에 추가합니다. 37 °C, 5% CO2 조건에서 배양합니다. 18~24시간 후 인큐베이터에서 침습 챔버를 꺼냅니다.배양액을 제거하고 챔버를 PBS로 3회, 매회 5분 동안 부드럽고 철저하게 헹굽니다. 인서트의 상단 표면에서 세포와 주요 겔을 긁어냅니다. 면봉을 사용하여 웰을 4%para formaldehyde 용액으로 채우고 5분 동안 배양하여 막의 하단 표면에 침습된 세포를 고정합니다.PBS로 3회 세척합니다. DAPI와 같은 핵 염색 시약을 웰에 채워 침습된 세포를 염색합니다. 20분 동안 배양합니다.다시 PBS로 3회 세척합니다. 메스 날을 사용하여 유리 슬라이드에 마운팅 매질 한 방울을 떨어뜨린 후, 핀셋으로 침습 챔버에서 멤브레인을 조심스럽게 제거합니다. 세포가 위를 향하도록 하여 멤브레인을 슬라이드로 옮깁니다.기포가 생기지 않도록 주의하며 멤브레인을 액적 위에 올립니다. 마운팅 매질을 한 방울 더 추가한 후 커버슬립으로 덮습니다.막 표면에 침습한 세포들을 주의 깊게 관찰하고 촬영합니다. 그림 1과 같이 침습성 영양막 세포는 matrigel 층과 막의 기공을 통과하여 막의 바닥 표면에 나타납니다. 기공 또한 관찰될 수 있습니다.침습된 세포의 수는 수동으로 또는 컴퓨터 소프트웨어를 사용하여 측정하고 처리군 간에 비교할 수 있습니다. 그림 2와 같이, 핵 염색 외에도 면역세포화학법을 사용하여 침습된 세포의 특성을 규명할 수 있습니다. 여기서는 세포가 영양막 세포임을 확인하기 위해 cytokeratin seven에 대한 항체를 사용하였습니다.본 연구에서는 생쥐 태반으로부터 영양막 세포를 분리하는 방법을 입증하였습니다. 이어서 영양막 세포 침습을 확인하기 위한 인비트로(in vitro) 분석법을 제시하였습니다. 이 절차를 대부분 활용하면(완전히 동일하지는 않더라도), 순수한 영양막 세포 집단을 얻을 수 있습니다.더 높은 순도가 필요한 경우, 일차 인간 영양막 세포(primary human trophoblast cells)에 대해 설명된 바와 같이 자성 비드 분리 또는 유세포 분석을 수행할 수 있습니다. 본 영상에서는 상용화된 Matrigel 침습 챔버의 사용법을 보여주었으나, 코팅되지 않은 Transwell 챔버에 원하는 두께로 Matrigel을 추가하여 직접 제작할 수도 있습니다. 시청해주셔서 감사하며, 귀하의 실험에 좋은 결과가 있기를 바랍니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

이 비디오에서는, 우리는 마우스 blastocysts의 고립과 blastocysts에서 trophoblast의 줄기 세포의 유도를 보여줍니다. 우리는 또한 줄기 세포 속성의 유지 보수뿐만 아니라 문화에 분화의 유도에 대한 조건을 설명합니다.

Blastocysts에서 마우스 Trophoblast의 줄기 세포의 유도

이 프로토콜은 효과적으로 격리 갓 인간 융모 cytotrophoblasts에 siRNA를 형질 감염 microporation을 사용하여 이들 세포의 DNA 단백질 복합체를 식별하는 방법을 설명한다. 형질 감염된 세포는 웨스턴 블롯에 의해 모니터링 될 수 있고, EMSA는 4 일간의 배양 기간 동안 분석한다.

갓 고립 된 인간의 산모 Cytotrophoblasts에 siRNA를 형질 및 EMSA 분석

이 원고는 저산소증/재산소화 하에서 배양된 면역정제된 인간 융모 세포영양아세포 세포의 독특한 체외 모델을 제시합니다. 이 모델은 멜라토닌과 같은 유망한 치료법이 산화 스트레스 증가 및 태반 기능 변화와 관련된 임신 합병증에 대한 보호 효과를 연구하는 데 적합합니다.

인간의 기본 영양막 세포 멜라토닌에 대해 저산소증의 보호 효과를 연구하기 위해 세포 배양 모델 / 재산 소화에 의한 혼란

여기에서는 Tfap2c, Gata3, Eomes 및 Ets2의 10일 과발현을 통해 쥐 배아 섬유아세포를 완전한 기능을 갖춘 안정적인 영양막아세포 줄기세포로 직접 전환하기 위한 프로토콜을 제시합니다.

영양막 줄기 세포로 쥐 배아 섬유 아세포의 직접적인 변환을위한 프로토콜

여기에 제시 된 인간 placental villous 조직의 기본 세포 배양에 대 한 cytotrophoblasts의 격리 다음 샘플링에 대 한 프로토콜이입니다. TNFα와 trophoblasts의 치료 비만 자궁내 환경에 염증이 분자 대상 산 모 비만과 염증 반응과에 의해 규제의 발견을 촉진 한다.

태에서 Autophagy의 규제에 모성 비만과 관련 된 염증의 효과 연구 하는 기본 인간 Trophoblast 모델

이 프로토콜은 응용 프로그램 (예: immunocytochemistry, cytometry, 등)의 다양 한 사용 될 수 있는 기간 placentae의 태아 세포 막에서 수집한 기본 인간 decidual 세포의 고립에 대 한 메서드를 보여 줍니다 목표로 임신 합병증에 다른 세포 인구의 역할...

기간 Placentae의 태아 세포 막에서 기본 인간 Decidual 세포의 고립

여기, 우리는 3 개의 생체 외 분석 실험을 사용 하 여 인간의 trophoblast 셀에 셀 운동 평가 위한 매우 액세스할 수 있는 프로토콜 제시: 스크래치 분석 결과, transwell 침략 분석 결과 및 세포 확산 분석 실험.

마이그레이션, 침공, 불멸 하 게 인간의 첫 번째 임신 Trophoblast 셀 라인의 확산을 평가를 생체 외 분석 실험에서

시험관내 세포 침습 분석기는 단백질 매트릭스를 함유하는 세포 배양 삽입을 사용하여 침입 및 이동을 위한 세포 전이를 정량화함으로써 암 전이의 잠재력을 측정하는데 사용된다. 세포는 단백질 매트릭스와 다공성 막을 통해, 화학유도제를 향해, 그 때 가벼운 현미경 검사법에 의해 정량화되기 위하여 도전됩니다.

종양 발생 세포 행동의 척도로 시험관 내 침략 분석에서 마우스 유방 종양 세포의 사용

여기에서, 우리는 시험관내 이식 기간을 통해 그(것)들을 배양하고, 단 하나 세포로 소화하고 추가 조사를 위한 초기 trophoblast 세포를 수집하는 유리한 인간 blastocysts를 온난화하는 방법을 기술합니다.

페리 이식 단계 인간 배아에서 트로포 블라스트 세포의 단일 세포 수집

현재 프로토콜은 영양막 세포와 같은 세포가 세포외 기저막 매트릭스 층에 걸쳐 모세관 같은 구조로 조직되는 고전적인 체외 혈관 형성 분석에서 형성된 튜브와 같은 구조를 복구할 수 있도록 합니다. 회수된 구조는 다양한 생화학 분석을 위한 RNA 및 단백질 분리에 사용됩니다.

분화 마커 발현 분석을 위한 Angiogenesis-Tube Formation Assay에서 영양막 세포 회수

이 프로토콜은 인간 기저 배반의 소추모 및 융모막에서 1차 HLA-G+ 외 영양층(EVT)의 정제, 특성 분석 및 배양을 가능하게 합니다. 1차 EVT 배양은 96시간 동안 생존 가능성을 유지하여, 샘플이 일치한 모체 면역세포와의 공동 배양과 이들의 상호작용에 대한 유동 세포 및 분자 분석을 가능하게 합니다.

표현형 및 기능 분석을 위한 HLA-G+ 외 영양층 정제 인간 임기 태반 조직에서

학습하세요 마우스 태반 트로포블래스트 세포 분리 및 Matrigel 침략 분석 방법을. Percoll 밀도 구배를 이용한 효율적인 세포 분리 기술과 체외 침략 실험을 통해 태반 생물학 연구에 활용할 수 있습니다.

기본 마우스 Trophoblast 셀 및 Trophoblast의 침략 분석의 절연

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