2011년 12월 21일
내피 Ca2 + 신호의 paracrine 파생 ROS 유도를 시각화에 대한 통찰력을 얻기 위해 효율적인 방법이 설명되어 있습니다. 이 방법은 공동의 문화 모델에서 혈관 내피 세포의 Ca2 +의 동원을 촉발 paracrine 파생 ROS 측정을 활용합니다.
이 절차의 전반적인 목표는 주극비 유래 활성 산소 종 또는 r os에 의해 유발되는 혈관 칼슘 신호를 시각화하는 것입니다. 이는 먼저 활성 대식세포에서 산화에 민감한 염료를 사용하여 R을 시각화함으로써 수행됩니다. ROS는 또한 플라스미드 기반 형광 센서를 사용하여 내피 세포에서 시각화할 수 있습니다.
그런 다음 공동 배양 모델에서 4개의 표지된 내피 세포의 세포 추적기, 빨간색 표지된 활성화된 대식세포 및 독감을 동시에 시각화합니다. 마지막으로, 대식세포 유래 R os에 의해 유발되는 내피 세포의 칼슘 신호를 측정합니다. 컨포칼 이미징 시스템을 사용합니다.
이러한 결과는 R os 수준을 독립적으로 입증할 수 있을 뿐만 아니라 송골매 유래 ROS에 의해 유발된 세포 내 칼슘 동원을 동시에 평가할 수 있습니다. 이 방법을 사용하면 혈관 신호 전달 및 시뮬레이터 병태생리학적 설정을 밀접하게 유도하는 두 개의 서로 다른 신호 분자를 동시에 평가할 수 있습니다. 제 연구실의 두 박사후 연구원인 Karthik과 Raj는 원시 및 칼슘 측정과 대식세포 내피 세포 상호 작용에 대한 절차를 시연할 것입니다.
배양 쥐 단핵구 유래 대식 세포는 유리 바닥 35mm 접시에 있습니다. 그런 다음 톨 유사 수용체 작용제(toll-like receptor agonist)를 세포에 투여하고 섭씨 37도에서 6시간 동안 배양합니다. 세포소의 시각화를 위해.
ROS는 산화에 민감한 염료를 첨가하고 세포를 20분 동안 배양합니다. 이제 컨포칼 이미징 시스템의 온도 제어 스테이지에서 세포를 시각화합니다. 또는 TLR 활성화 세포에서 미토콘드리아 ROS를 시각화하려면 미토콘드리아 과산화물 지시약을 추가하고 섭씨 37도에서 30분 동안 세포를 배양합니다.
음성 대조군의 경우, 양성 대조군을 위해 PBS 또는 DMSO로 세포를 처리합니다. 2개의 밀리몰 항마이신으로 세포를 치료합니다. A: 컨포칼 이미징 시스템의 온도 제어 스테이지에서 모든 세포를 시각화합니다.
이미지 J 소프트웨어를 사용하여 모든 이미지 데이터를 분석합니다. 형광 센서 하이퍼는 과산화물의 서브 마이크로몰 농도를 특이적으로 감지하며, 포유류의 발현을 기반으로 세포질 또는 미토콘드리아를 대상으로 벡터 설계를 할 수 있습니다. 전기천공법을 사용하여 부적절한 hyper expression plasmid를 포함하는 마우스 폐 미세혈관 내피 세포의 안정적인 라인을 만듭니다.
완전한 TMEM에서 저밀도의 콜로니 성장 플레이트 세포를 촉진하고 48시간 동안 배양하려면 배지를 선택 항생제가 보충된 완전한 배양 배지로 교체하십시오. 가장 높은 비율의 hyper positive cell을 위해 클론을 스크리닝하고 배양을 증폭하여 개별 실험에서 안정적인 hyper positive line을 생성합니다. 0.2%젤라틴 코팅의 종자 세포는 하룻밤 사이에 80% 합류점으로 커버를 덮고 배양합니다.
이제 TLR 리간드로 세포를 활성화하고 섭씨 37도에서 6시간 동안 배양합니다. 세포질 ROS를 검출하려면 세포의 커버 슬립을 adelo cell chamber에 장착합니다. 1ml의 예열 탱크를 추가하고 소금 용액의 균형을 맞춘 다음 챔버를 컨포칼 이미징 시스템의 온도 제어 스테이지에 배치했습니다.
미토콘드리아의 검출을 위해 세포의 형광 변화를 기록합니다. 선생님. 2개의 마이크로몰 항마이신의 양성 대조군을 포함하십시오.A. 그런 다음 공초점 현미경 검사를 위해 처리된 세포의 커버 슬립을 준비합니다. image J 소프트웨어를 사용하여 이미지 분석을 수행합니다.
세포 내 칼슘 변화의 시각화 및 측정을 위해 젤라틴 코팅 유리 커버 슬립에서 80% 합류로 성장한 내피 세포로 시작합니다. 형광 염료 독감 오 4:00 AM의 세포를 실온에서 30분 동안 배양하여 염료 손실을 최소화하고 suen pyro zone을 포함하는 실험적 이미징 솔루션으로 세포를 세척합니다. 이제 800마이크로리터의 사전 예열된 실험용 이미징 용액의 아델로 셀 챔버에 장착 커버를 끼우고 세포를 별도의 튜브에 있는 컨포칼 이미징 시스템의 온도 제어 스테이지에 배치합니다.
15분 동안 밀리리터당 500나노그램의 세포 추적기 RED C-M-T-P-X를 사용하여 조사 중인 대식세포 집단을 라벨링하고, 세포를 세척하고, 200마이크로리터의 실험용 이미징 용액에 펠릿을 재현탁합니다. 이제 라벨이 붙은 대식세포를 독감 오 4:00 AM에 추가합니다. 공초점 챔버 어셈블리의 내피 세포는 10분 동안 3초마다 녹색과 적색 형광을 기록합니다.
이 실험에서 J 7 74 0.1 세포에 6시간 동안 TLR 2, 3, 4개의 리간드를 투여했습니다. 대표적인 컨포칼 이미지는 DCF에 의해 측정된 증가된 세포질 R을 보여줍니다. 흥미롭게도, 유사분열 양말 빨간색 형광은 미토콘드리아 ROS의 유사한 증가를 나타냅니다.
이러한 형광 변화는 정량적입니다. 따라서 결과는 정규화되어야 하며 처리당 상대적 접힘 변화로 표현되어야 하며, 항마이신 A 신호는 미토콘드리아 ROS 생성에 대한 양성 대조군을 검증합니다. 이 그림은 hyper cyto 또는 hyper D mito를 안정적으로 발현하는 내피, 세포질 및 미토콘드리아 과산화물 수준의 이미지를 보여줍니다.
TLR 작용제로 자극된 MP ECS. 평균 형광 변화의 정량화는 공동 배양 시스템에서 6시간의 자극 후 hyper cyto 및 hyper D mito 형광의 증가를 보여줍니다. 야생형과 GP 91 Fox null 마우스 모두에서 갓 분리된 송골매 ROS 신호를 평가하기 위해 null 마우스는 6시간 동안 LPS 1밀리리터당 1마이크로그램으로 활성화되었습니다.
대식세포는 C-M-T-P-X로 빨간색으로 표시되었고 녹색 독감 4호에 추가되었습니다. 로드. MPM 엑시스. 흥미롭게도, 야생형 마우스에서 분리된 LPS 활성화 대식세포는 GP 91 Fox null 마우스의 대식세포에 비해 MPM ECS에서 크고 빠른 칼슘 동원을 유발했습니다.
LI 시도가 이 절차를 수행하는 동안 장기간 다운로드하거나 레이저에 노출되면 DCF가 자동으로 산화된다는 점을 기억하는 것이 중요합니다. hyper cyto 및 hyper D mitral의 광표백을 피하는 것이 중요합니다. 일단 숙달되면 대식세포와 내피 세포의 RA 측정이 적절하게 수행될 경우 7시간 이내에 완료할 수 있습니다.
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이 기사는 패러크라인 유래 활성 산소종(ROS)에 의해 유도된 혈관 칼슘 신호전달을 시각화하는 방법을 설명합니다. 이 접근 방식은 산화에 민감한 염료와 형광 센서를 사용하여 공동 배양 모델 내의 대식세포와 내피 세포에서 ROS를 관찰합니다.
This method enables visualization of paracrine ROS-induced calcium signaling in vascular endothelial cells, providing a mechanistic link between inflammatory cell activation and vascular dysfunction. It supports target validation by demonstrating how macrophage-derived ROS trigger intracellular signaling pathways relevant to ischemia/reperfusion injury and sepsis. The approach offers predictive value for de-risking therapeutic candidates aimed at modulating ROS-mediated endothelial activation in preclinical disease models.
The method fits within the discovery continuum from target hypothesis testing to preclinical validation, enabling iterative assessment of ROS-mediated vascular signaling in inflammatory contexts.